大肠杆菌检验
检测大肠杆菌的方法
检测大肠杆菌的方法
检测大肠杆菌的方法包括以下几种：
1. 化学方法：使用化学试剂检测大肠杆菌的生长产物，例如检测β-半乳糖苷酶（β-galactosidase）或亚硝酸盐的产生。
2. 免疫学方法：使用抗原抗体反应来检测大肠杆菌的存在。
可以通过免疫层析试纸、酶联免疫吸附试验（ELISA）或免疫荧光染色等技术进行检测。
3. 分子生物学方法：使用DNA提取和PCR扩增技术，通过特定基因的检测来确定大肠杆菌的存在。
常用的是检测16S rRNA基因。
4. 血液培养法：将样品接种到含有适合大肠杆菌生长的培养基上，经过一段时间后观察是否有菌落形成。
5. 基于大肠杆菌特定生理和生化特征的传统方法：根据大肠杆菌在营养琼脂培养基上形成金属光泽、产生气泡、使用L-色氨酸作为唯一氮源，以及产生酸和气体等特征来进行初步检验。
这些方法可以单独或结合使用来对大肠杆菌进行检测，并能够提供快速、准确的结果。
大肠杆菌的检测及原理
大肠杆菌的检测及原理1.检测原理：大肠菌群是一群能发酵乳糖、产酸产气、需氧和兼性厌氧的革兰氏阴性无芽孢杆菌，该菌主要来源于人畜粪便，故以此作为粪便污染指标来评价食品的卫生质量，推断食品中有否污染肠道致病菌的可能。
食品中的大肠菌群数系以100ml(g)检样内大肠菌群最可能数(MPN)表示。
2.仪器设备与器具：2.1 恒温培养箱：36±1℃。
2.2 1000ml三角烧瓶、1ml、10ml移液管。
2.3 接种针。
2.4 显微镜。
2.5 超净工作台。
2.6 玻片、酒精灯、洗耳球、试管架。
2.7 天平：感量0.01g。
2.8 灭菌釜。
2.9 培养皿（直径为90mm）、试管，经121℃、30分钟灭菌。
2.10试管夹、酒精灯、秒表、载玻片3.培养基及试剂：3.1 乳糖胆盐发酵管：按照制造厂家使用说明进行配制，灭菌。
3.2 伊红美兰琼脂平板：按照制造厂家使用说明进行配制，灭菌。
3.3 乳糖发酵管：按照制造厂家使用说明进行配制，灭菌。
3.4 革兰氏染色液。
3.4.1 结晶紫染色液：结晶紫1g95%乙醇20ml1%草酸铵水溶液80ml将结晶紫溶解于乙醇中，然后与草酸铵溶液混合。
3.4.2 革兰氏碘液：碘1g碘化钾2g蒸馏水300ml将碘与碘化钾先进行混合，加入蒸馏水少许，充分振摇，待完全溶解后，再加蒸馏水至300 ml。
3.4.3 沙黄复染液：沙黄0.25g95%乙醇10ml蒸馏水90ml将沙黄溶解于乙醇中，然后用蒸馏水稀释。
3.5 生理盐水。
4.检验程序：检样稀释↓乳糖胆盐发酵管，36±1℃，24±2hr ↓不产气产气↓大肠菌群阴性伊红美兰琼脂平板，36±1℃，24±2hr报告↓ ↓革兰氏染色乳糖发酵管，36±1℃，24±2hr ↓ ↓ ↓G+ G-，无芽孢杆菌产气不产气大肠菌群阴性大肠菌群阴性报告大肠菌群阳性报告5.测定方法：5.1 检样稀释：5.1.1 以无菌操作将检样25ml(或25g)放于含有225ml灭菌生理盐水的灭菌塑料烧杯中，经充分振摇成1：10均匀稀释液。
致病性大肠埃希氏菌及其检验
致病性：（1）致 病因素
LT与ST的比较
特性
分子量 耐热性 免疫原性 B亚单位受 体
致病机理
不耐热肠毒素
耐热肠毒素
较大，73000
较小，1500-5000
不耐热
耐热
有
无
肠黏膜GM1神经节苷酯 肠黏膜GM1神经节苷酯
活化细胞腺苷酸环化酶，活化细胞鸟苷酸环化酶，
细胞内cAMP含量升高， 细胞内cGMP含量升高，
原理：伊红美蓝琼脂平板含伊红和美蓝染料，在此亦作为指示剂。 大肠菌群发酵乳糖造成酸性环境时，故可染上酸性染料伊红，又因 伊红与美兰结合（该两种染料即结合成复合物）使大肠菌群产生带 核心的、有金属光泽的深紫色的（龙胆紫的紫色）阳性菌落，从菌 落表面的反射光中还可看到绿色金属闪光。在伊红美兰平板上的典 型菌落呈紫黑色，圆形，边缘整齐，表面光滑湿润，常有金属光泽。 有的由于被检样品影响，亦呈现紫色、粉紫、中心灰紫、无黑心、 湿润等，常为大肠杆菌，均应注意挑选。
革兰氏阴性杆菌
革兰氏 阳性杆 菌
大肠杆菌扫 描电镜照片源自大肠杆菌 透射电镜 照片大肠杆菌革兰氏染色照片
大肠杆菌平 板菌落照片
一、埃希氏菌属生物学特性
生化特性
一．可发酵葡萄糖、乳糖、麦芽糖、甘露醇产酸产气，有些不典型的菌株不发酵或 迟缓发酵乳糖；
二．不同菌株对蔗糖，卫矛醇、水杨苷发酵结果不一致; 三．本菌可使赖氨酸脱鞍、不能使苯丙氨酸脱羧。 四．不产生H2S，不液化明胶，不分解尿素;
二、致病性大肠埃希氏菌的检验
（二）、分离培养
将乳糖胆盐发酵阳性管液与增菌液分别划线接种于麦 康凯或伊红美兰琼脂平板上。 2、于36±1℃培养 18—24小时观察菌落对于污染严重的食品可直接按 划线法接种，不经过增菌过程。不但要注意乳糖发酵 的菌落，同时也要注意乳糖不发酵的菌落。
鉴别大肠杆菌的方法
鉴别大肠杆菌的方法
首先，鉴别大肠杆菌的方法之一是通过培养基培养。
大肠杆菌在营养富集的培养基上生长迅速，因此可以通过在特定培养基上进行培养来鉴别大肠杆菌。
常用的培养基包括大肠埃希菌选择性培养基和大肠埃希菌选择性富集培养基。
在这些培养基上，大肠杆菌会表现出特定的形态和生长特征，有助于鉴别。
其次，大肠杆菌的鉴别方法还包括生化试验。
大肠杆菌具有一些特殊的生化特性，如产气、发酵葡萄糖和乳糖等。
因此，可以通过进行气体产生试验、糖发酵试验等生化试验来鉴别大肠杆菌。
这些试验可以通过观察细菌在特定条件下的反应来确定其是否为大肠杆菌。
另外，分子生物学方法也被广泛应用于大肠杆菌的鉴别。
通过PCR扩增特定基因序列，再通过电泳分析等技术手段来鉴别大肠杆菌。
这种方法具有高度的特异性和准确性，能够快速鉴别出大肠杆菌。
除了上述方法，还可以利用质谱分析、免疫学方法等现代技术手段来鉴别大肠杆菌。
这些方法在鉴别大肠杆菌中起着重要作用，为食品安全和公共卫生提供了有力的支持。
综上所述，鉴别大肠杆菌的方法多种多样，可以根据实际情况选择合适的方法进行鉴别。
在食品生产和公共卫生领域，及时准确地鉴别大肠杆菌对于预防食源性疾病和保障公共健康至关重要。
希望通过不断的研究和实践，能够提高大肠杆菌鉴别的准确性和效率，为食品安全和公共卫生工作做出更大的贡献。
大肠杆菌实验结果与分析
2、实验结果与分析2.1、细菌总数检测结果2.1.2、细菌总数的计算与报告根据菌落总数的计算方法：1、若只有一个稀释度平板上的菌落术在适宜计数范围内，计算两个平板菌落数的平均值，再将平均值乘以相应稀释倍数，作为每克（或毫升）中菌落总数结果。
2、若有两个连续稀释度的平均菌落数载适宜计数范围内时，按下式计算：N=∑c/[(n1+0.1n2)d]式中：N—样品中菌落数；∑C—平板（含适宜范围菌落数的平板）菌落数之和；n1—第一个适宜稀释度平板上的菌落数；n2—第二个适宜稀释度平板上的菌落数；d—稀释因子（第一稀释度）为1.75x107；在浓度10—6(g/ml)的时候，大肠杆菌的细菌总数约为1.60x107；在浓度10—7(g/ml)的时候，大肠杆菌的细菌总数约为2.01x107。
分析数据可知，在浓度10—7(g/ml)的时候，细菌总数远大于其他两个梯度，这与常理不符。
那么有可能是实验过程中的错误导致，可能是稀释不够、密封不紧、没有进行无菌操作等因素有关。
2.2、大肠菌群检测结果2.1.1、初发酵各浓度梯度阳性管数统计附：检验原始记录检验原始记录检测记录与结果培养基配制：样品配制：1、 固体样品，无菌称取25g 样品加225ml 生理盐水，均质。
2、 液体样品，需稀释的，吸取25ml 于225生理盐水，混匀。
菌落总数：检验依据：GB/T4789.2-2008大肠杆菌：检验一句GB/T4789.3-2003大肠杆菌：检验一句GB/T4789.3-2003注：“P ”表示阳性结果，“N ”表示阴性结果检验起止时间：2011年09月25日至2011年09月27日检测人:复核人：。
大肠杆菌的检验方法
大肠杆菌的检验方法样品制备：以无菌操作取25 g样品,放入装有225 mL稀释剂的灭菌均质杯内,于8000 r/min均质1～2min,制成1:10样品匀液(也可用灭菌乳钵研磨的方法代替)。
稀释样品匀液根据对样品污染情况的估计,用稀释剂将样品匀液制成一系列十倍递增的样品稀释液,如10**-2、10**-3、10**-4……。
从制备样品匀液至稀释完毕,全过程不得超过15min。
LST和EC初步筛选：对每个样品,选择适宜的三个连续稀释度的样品稀释液。
每个稀释度接种三管月桂基硫酸盐胰蛋白(月示)(LST)肉汤,每管接种1mL。
将接种管置于36±1℃培养48±2h。
观察试管的产气情况：检查倒管内是否有气泡产生,用直径为3mm的接种环将所有48±2h内产气的LST肉汤管培养物移种于EC肉汤管中。
将所有接种的EC肉汤管在30min内放入带盖44.5±0.5℃水浴箱内,培养48±2h。
EMB平板：取其产气管的培养物划线接种于伊红美蓝(EMB)平板,36±1℃培养24±2h。
检查平板上有无具黑色中心有光泽或无光泽的典型菌落。
如有典型菌落,则从每个平板上至少挑取2个典型菌落；如无典型菌落,则从每个平板上至少挑取2个可疑菌落。
用接种针接触菌落中心部位,移种到营养琼脂斜面上,36±1℃培养18～24h。
生化试验：将斜面培养物移种到下列培养基中进行生化试验。
1 色氨酸肉汤：在36±1℃培养24±2h后,加Kovacs氏试剂0.2～0.3mL,上层出现红色为靛基质阳性反应。
2 MR-VP培养基：在36±1℃培养48±2h。
以无菌操作移取培养物1 mL至13mm×100mm试管中,加5％α-萘酚乙醇溶液0.6mL,40％氢氧化钾溶液0.2mL和少许肌酸结晶,振摇试管后静置2h,如出现伊红色,为VP试验阳性。
水中大肠杆菌的检测实验报告
1. 掌握水中大肠杆菌检测的基本原理和方法。
2. 了解水中大肠杆菌污染的严重性及预防措施。
3. 培养实验操作技能，提高对水质监测的认识。
二、实验原理大肠杆菌（Escherichia coli）是一种条件致病菌，广泛存在于人和动物的肠道中。
在水质监测中，大肠杆菌常作为粪便污染的指示菌。
本实验采用伊红美蓝培养基进行大肠杆菌的检测，通过观察菌落特征，确定水中大肠杆菌的存在。
三、实验材料1. 实验器材：无菌试管、移液器、培养箱、酒精灯、无菌棉签、试管架、培养皿、显微镜等。
2. 实验试剂：伊红美蓝培养基、无菌水、水样、氯化钠、磷酸氢二钠、磷酸二氢钠等。
四、实验步骤1. 水样采集：采集待检测水样，用无菌容器盛装，避免污染。
2. 水样稀释：将水样进行适当的稀释，以便在培养基上形成单菌落。
3. 接种：取适量稀释后的水样，用无菌棉签均匀涂布于伊红美蓝培养基表面。
4. 培养：将接种后的培养基放入培养箱中，在37℃条件下培养24小时。
5. 观察：观察培养基上的菌落特征，如菌落大小、形状、颜色等，判断是否存在大肠杆菌。
6. 鉴定：对疑似大肠杆菌的菌落进行进一步的鉴定，如革兰氏染色、生化试验等。
五、实验结果与分析1. 菌落观察：在伊红美蓝培养基上，大肠杆菌菌落呈深紫色（黑色），边缘整齐，有金属光泽。
2. 鉴定结果：经革兰氏染色和生化试验，证实所观察到的菌落为大肠杆菌。
1. 大肠杆菌是水质监测中的重要指标，其存在表明水质可能受到粪便污染，存在健康风险。
2. 本实验采用伊红美蓝培养基进行大肠杆菌检测，操作简便，结果准确。
3. 在实际水质监测中，还需结合其他指标，如粪大肠菌群、耐热大肠菌群等，全面评估水质状况。
七、实验总结1. 本实验成功检测了水中大肠杆菌，掌握了水中大肠杆菌检测的基本原理和方法。
2. 通过实验，提高了对水质监测的认识，增强了环保意识。
3. 在今后的学习和工作中，将继续关注水质问题，为保护水资源、保障人民群众健康贡献力量。
大肠杆菌检验方法
大肠杆菌检验方法
大肠杆菌(Escherichia coli)是一种革兰氏阴性的厌氧菌，常常被用作指示性微生物来评估食品和水源的卫生质量。
以下是常见的大肠杆菌检验方法：
1. 培养基方法：将样品接种在包含大肠杆菌生长所需营养物质的培养基上，如大肠杆菌选择性琼脂培养基(MacConkey琼脂培养基)和EC培养基等。
大肠杆菌能够利用琼脂中的乳糖发酵产生酸，导致培养基呈现红色或粉红色。
此外，EC 培养基还包含了可以检测大肠杆菌β-葡萄糖苷酶的亚甲基红试剂，如果大肠杆菌存在，则培养基呈现金属光泽。
2. 确认方法：对落有培养基上的鲜艳深色菌落进行进一步确认。
典型的确认方法包括革兰染色、目测观察形态特征、氧化发酵试验和测试产气杆菌酶试验。
3. PCR检测方法：利用聚合酶链反应(PCR)技术，从样品中扩增大肠杆菌特异性基因片段（如16S rRNA基因），然后通过凝胶电泳检测扩增产物。
4. 快速方法：如免疫层析试纸法和光学组织测定法。
免疫层析试纸法利用抗大肠杆菌抗体与大肠杆菌特异性抗原结合生成可视化结果。
光学组织测定法利用大肠杆菌的β-葡萄糖苷酶水解比色底物产生颜色变化。
这些方法都可用于检测大肠杆菌在食品和水源中的存在及其数量。
在进行检验时，应严格遵守相关的操作规程和实验室操作规范，以确保结果的准确性和可靠性。
大肠杆菌检测实验报告
大肠杆菌检测实验报告一、实验目的掌握大肠杆菌的检测方法，了解其在水质检验中的重要性。
二、实验原理1. 大肠杆菌大肠杆菌是一种常见的肠道杆菌，是一类嗜热性、厌氧性以及革兰阴性杆菌。
该菌种常常是肠道菌群的组成部分，同时也是水污染的重要指示菌之一。
（1）标准培养基法经过富营养培养基的生长，大肠杆菌会形成显性和隐性的群体。
这种检测方法适用于水质样本、地球样品以及饮用水。
（2）膜过滤法样品通过过滤器滤过后，将过滤后的膜放入培养基上培养。
这种方法既适合于生物质量较小的样品，也适用于分析浓度高的样品。
（3）MPN法通过使用3组不同浓度的小管，并观察哪个浓度的小管有生长曲线的所有格子都被满足，来计算菌落形成单位的浓度。
可以适用于样品浓度较低的环境。
三、实验操作1. 实验材料大肠杆菌标准菌株、优化阳性对照菌株、培养基、蒸馏水、实验器材、滤纸、吸管、离心机、洗涤液和细胞硬度试剂。
2. 实验步骤（1）制备纯菌液：将大肠杆菌基配合缓冲液跳接种到营养琼脂平板上，并在37℃的恒温培养箱中培养过夜。
将菌落划入脱色水中，通过洗涤和离心的方式，获得纯化的细胞菌悬液。
（2）制备样品：将需要检测的水样分别过滤，过滤膜使用巨孔滤纸。
滤膜被慢慢放在脱色水上U型板中间的孔里，然后浸泡（3）培养过程: 将U型板接入温度为37℃的有氧培养箱内，在24 - 48小时内观察细菌进行生长，并做出相应的计数和检测。
四、实验结果与分析按照实验操作规程进行样品处理和培养后，确认样品中是否存在大肠杆菌。
如果在实验中产生的试样中出现了大肠杆菌生长，且其生长优于阳性对照；或者在某些水样中不能检测出大肠杆菌，说明该水质品质不满足相关规范的要求。
五、实验结论本实验通过不同的大肠杆菌检测方法，较为全面地了解了大肠杆菌的检测方法及其在水质检验中的重要性。
在实验的基础上，我们有理由相信，通过科学准确的操作，人们可以更好地保证饮用水的健全和安全。
食品微生物检验(大肠杆菌全部)
第三章大肠菌群测定一、大肠菌群检验( 一) 检验方法( 二) 培养基( 三 ) 检验时应注意事二、大肠菌群的卫生学意义大肠菌群是评价食品卫生质量的重要指标之一，目前已被国内外广泛应用于食品卫生工作中。
该菌群主要来源于人及温血动物粪便，一般多用来作为食品中的粪便污染指标。
过去我国在大肠菌群的检验方面经验不多，对该菌群的认识也不够充分。
1974 年全国修订食品卫生细菌检验方法座谈会和1976 年全国食品卫生标准会议建议以大肠菌群作为粪便污染指标菌，并提出进行有关大肠菌群方面的科研工作。
为此，我们成立了大肠菌群科研协作组，对犬肠菌群的检验方法( 包括快速检验方法) 及其卫生学意义进行了广泛的科学研究和实践，取得了一定成绩，为制订大肠菌群检验方法提供了科学依据。
在这次修订l976年版食品卫生检验方法的过程中，大肠菌群科研协作组又于1983 ～1985 年对大肠菌群检验方法进行了实验研究，并作了对比观察，同时对国内常用的大肠菌群快速检测方法也进行了研讨，为这次修订国家标准食品卫生检验方法微生物学部分中的大肠菌群测定提供了科学依据。
大肠菌群不是细菌学上的分类命名，而是根据卫生学方面的要求，提出来的一组与粪便污染有关的细菌，这些细菌在生化及血清学方面并非完全一致。
其定义为：系指一群需氧及兼性厌氧、在37℃能分解乳糖产酸产气的革兰氏阴性无芽胞杆菌。
有些科学工作者又用靛基质、甲基红、 V～ P、柠檬酸盐、硫化氢、明胶、动力和 44．5℃乳糖分解等试验，将这群细菌再分为大肠艾希氏菌、柠檬酸杆菌、产气克雷白氏菌和阴沟肠杆菌等。
不论分法如何，对大肠菌群的判定，均应以上述定义为基础。
一、大肠茵群检验( 一) 检验方法1．乳糖发酵试验。
以无菌操作采取样品，采取量及稀释倍数，依据国家或当地卫生标准要求及样品污染情况而定。
将待检样品接种于乳糖胆盐发酵管内，接种量在 l m J 以上者，用双料乳糖胆盐发酵管， lm1 及 1mI 以下者，用单料乳糖胆盐发酵管。
大肠杆菌及其检验
3、EMB平板 EMB平板 EMB
取其产气管的培养物划线接种于伊红美蓝(EMB)平 板,36±1℃培养24±2h。 检查平板上有无具黑色中心有光泽或无光泽的典型 菌落。 如有典型菌落,则从每个平板上至少挑取2个典型菌 落；如无典型菌落,则从每个平板上至少挑取2个可 疑菌落。用接种针接触菌落中心部位,移种到营养琼 脂斜面上,36±1℃培养18～24h。
三、大肠杆菌的检验方法
1、样品制备 以无菌操作取25 g样品,放入装有225 mL稀释 剂的灭菌均质杯内,于8000 r/min均质1～ 2min,制成1:10样品匀液(也可用灭菌乳钵研 磨的方法代替)。从制备样品匀液至稀释完毕, 全过程不得超过15min。
2、LST和EC初步筛选 LST和EC初步筛选
对每个样品,选择适宜的三个连续稀释度的样品稀释 液。每个稀释度接种三管月桂基硫酸盐胰蛋白(月 示)(LST)肉汤,每管接种1mL。将接种管置于36±1℃培 养48±2h。 观察试管的产气情况：检查倒管内是否有气泡产生, 用直径为3mm的接种环将所有48±2h内产气的LST肉汤 管培养物移种于EC肉汤管中。将所有接种的EC肉汤管 在30min内放入带盖44.5±0.5℃水浴箱内,培养48±2h。
大肠杆菌及其检 验
一、大肠杆菌的生物学特性
1、简介 大肠埃希氏菌习惯称为大肠杆菌，分类于肠杆菌科， 归属于埃希氏菌属，大肠杆菌为人和动物肠道中的 常居菌，一般多不致病，在一定条件下可引起肠道 外感染。 2、形态与染色 大小0.4～0.7×1～3um,无芽胞,大多数菌株有动力。 有普通菌毛与性菌毛，有些菌株有多糖类包膜，革 兰氏阴性杆菌
3、培养特性 由于此菌合成代谢能力强，在含无机盐、胺 盐、葡萄糖的普通培养基上生长良好。 最适生长温度为37℃，在42-44℃条件下仍能 生长，生长温度范围为15-46℃。
大肠杆菌检验报告
大肠杆菌检验报告背景介绍大肠杆菌是一类存在于人体和动物肠道中的细菌，其存在通常是正常的，但在某些情况下可能会引起健康问题。
大肠杆菌感染通常通过食物或水传播，可能导致腹泻、呕吐和腹痛等症状。
为了确保食品安全和公共卫生，大肠杆菌的检验是至关重要的。
检验目的大肠杆菌检验的目的是确定样本中是否存在大肠杆菌，并评估其数量。
这有助于判断食品或水源是否存在污染，以及评估其对人体健康的潜在影响。
检验步骤1.样本收集：收集待检样品，如食物或水源样品。
确保样品收集过程中的卫生措施，以避免外部污染。
2.样品准备：将样品转移到适当的容器中。
食物样品可能需要被切碎或液化，以便后续处理。
3.加入培养基：将样品加入含有大肠杆菌培养基的培养皿或试管中。
培养基是一种营养物质，可促进大肠杆菌的生长和繁殖。
4.培养：将培养皿或试管放置在恰当的温度和湿度条件下，以促进大肠杆菌的生长。
通常，在37°C左右培养约24小时。
5.统计菌落：观察培养皿或试管中是否出现大肠杆菌的菌落。
大肠杆菌通常呈现出典型的粘液性、乳白色的菌落，这些菌落可以通过肉眼观察。
6.计数：使用显微镜对培养皿或试管中的菌落进行计数。
通常，将菌落计数为“菌落形成单位”（CFU）。
7.结果解读：根据大肠杆菌的数量，评估样品中是否存在潜在的食品或水源污染。
根据不同的标准和法规，可以确定是否符合安全标准。
结论大肠杆菌检验的结果显示样品中是否存在大肠杆菌污染，并评估其数量。
这对于保障食品和水源的安全至关重要。
如果结果显示样品超过安全标准，相应的措施应被采取，以防止大肠杆菌感染的传播。
注意事项在进行大肠杆菌检验时，需要注意以下事项：•严格遵守卫生操作规程，以避免外部污染。
•使用适量的样品，以确保结果的准确性。
•控制培养的温度和湿度，以促进大肠杆菌的生长。
•在观察和计数菌落时，使用适当的显微镜和计数方法。
大肠杆菌检验是确保食品和水源安全的重要步骤。
通过以上的步骤和注意事项，可以准确评估样品中大肠杆菌的存在和数量，从而保护公众健康。
大肠杆菌检验流程
大肠杆菌检验流程
嘿，咱今天就来唠唠大肠杆菌检验流程这事儿哈！你说这大肠杆菌啊，就像个调皮的小捣蛋，看不见摸不着的，可得把它给揪出来才行呢！
咱先得准备好各种家伙什儿，就像战士上战场得拿好武器一样。
什么培养皿啦、培养基啦，都得齐全咯。
然后呢，就该采集样本啦！这就好比去抓小捣蛋的踪迹，得找对地方。
比如从食品啊、水啊这些地方去弄点样本回来。
接着，把样本放到培养基里，就像给小捣蛋找个家，让它能在里面好好待着。
这时候啊，就等着它慢慢长大啦。
培养了一段时间后，咱就得瞪大眼珠子仔细瞧啦！看看有没有可疑的小菌落长出来。
这就跟在一群孩子里找那个最调皮的一样，得有双火眼金睛。
要是发现有像大肠杆菌的菌落，那可别着急下结论哦！还得做进一步的鉴定呢。
就像警察抓小偷，得有确凿的证据才行。
可以做一些生化试验呀，看看它符不符合大肠杆菌的特点。
这可不能马虎，万一弄错了，那不就闹笑话啦！
要是确定了就是大肠杆菌，那可就得重视起来咯！这可不是闹着玩的，万一它在食品里或者水里捣乱，那可会让人生病的呀！
你想想，要是吃了有大肠杆菌的食物，那肚子还不得翻江倒海呀！所以这检验流程可太重要啦，就像给我们的健康上了一道保险。
咱平时生活里可不能小瞧了这些看不见的小东西，得时刻保持警惕。
就像家里进了老鼠，你不把它找出来能安心吗？
总之啊，大肠杆菌检验流程虽然听起来有点复杂，但只要咱一步一步认真去做，肯定能把这个小捣蛋给抓住！咱可不能让它在咱的生活里胡作非为，对吧？大家都要重视起来哦！
原创不易，请尊重原创，谢谢!。
大肠杆菌检验法分析
大肠杆菌检验法分析大肠杆菌能产生B-葡萄糖醛酸昔酶，能把4-甲基散形酮-葡萄糖醛酸昔酶（MUG）分解为4-甲基散形酮，该分解产物在366 nm紫外光激发下，产生灰蓝色荧光，即为大肠杆菌阳性反应；如果没有产生灰蓝色荧光，则为阴性反应。
基于此，采用MUG试剂为底物制成培养基，以快速检查大肠杆菌，同时设空白对照组，并与部颁方法进行比较。
1检验方法1.1菌株大肠杆菌标准株（44102）由中国药品生物制品检定所提供，其余7株大肠杆菌由长春市药品检验所提供。
1.2供试品六味地黄丸、百合固金丸、益坤丸、牛黄上清丸、牛黄清胃丸、金匾肾气丸、银翘解毒丸、人参归脾丸、舒肝丸共9种，均由本院药房提供[1]。
1.3培养基肉汤、肉汤琼脂、胆盐乳糖（BL）增菌液、伊红美蓝（EMB）琼脂等，均按《药品卫生检验方法》制备。
MUG培养基：pH 7.6～7.8，MUG 0.075 g，氯化钙0.05 g，硫酸胺5 g，磷酸二氢钾0.9 g，硫酸锰0.005 g，硫酸氢二钠6.2 g，硫酸锌0.005 g，亚硫酸钠0.04 g，硫酸镁0.1 g，蒸馏水1000 mL，氯化钠10 g，琼脂（斜面培养基用）15 g。
制法：除MUG外，各成分溶解于1000 mL 水中，校正pH，加人MUG溶解后，每管分装5 mL，115℃灭菌15 min。
1.4菌液配制取经36℃培养18～24 h大肠杆菌肉汤培养物，稀释成10-7（含菌50～100个/mL）备用[2]。
1.5供试液制备按部颁方法制成1∶10供试液备用。
1.6部颁方法分别加供试液各10 mL于2瓶胆盐乳糖（BL）增菌液中，其中一瓶菌液（10-7）而混匀，同置36℃培养24 h，按部颁方法检查大肠杆菌，见表1。
1.7取上述2种培养物摇匀分别取0.2 mL，接种在MUG斜面培养基和MUG 液体培养基中，同置36℃培养，观察培养3、5、10、解h后的荧光反应，见表1。
2讨论采用MUG液体培养基，较固体斜面培养基的实验反应灵敏，对认为染菌的检品，一般5～24 h能在紫外光（366 nm）下观察到很强的灰蓝色荧光，即为阳性反应，本次式样认为污染大肠杆菌的8只检品，MUC法均呈阳性，经部颁法确认无误。
大肠杆菌的微生物学检查
从饮水中分离大肠杆菌①制作伊红美蓝培养基，趁热注入培养皿中，凝成平板，待用。
②用灭过菌的锥形瓶盛取河水或沟水，按1：10稀释。
③取0.1毫升稀释液接种于伊红美蓝培养基上。
用平板划线分离法进行分离。
④将划线后的培养皿倒置37℃温箱中培养18～24小时。
培养基中会出现大肠杆菌菌落，菌落中心呈暗蓝黑色，发金属光泽。
⑤将菌落接种于斜面培养基上（由营养琼脂培养基制成）。
大肠杆菌的微生物学检查细菌的分离鉴定肠道外感染取中段尿、血液、脓液、脑脊液等，腹泻者取粪便。
粪便标本直接接种肠道杆菌选择性培养基。
血液需先经肉汤增菌，再转种血琼脂平板。
其他标本可同时接种血琼脂平板和肠道杆菌选择性培养基。
37℃孵育18～24小时后，观察菌落并涂片染色镜检。
采用一系列生化反应进行鉴定。
肠致病性大肠杆菌须先作血清学定型试验。
必要时检定肠霉毒素。
泌尿系统除确定大肠杆菌外，还应计数，每毫升尿含菌量≥100，000时，才有诊断价值。
卫生细菌学检查大肠杆菌不断随粪便排出体外，污染周围环境和水源、食品等。
取样检查时，样品中大肠杆菌越多，表示样品被粪便污染越严重，也表明样品中存在肠道致病菌的可能性越大。
故应对饮水、食品、饮料进行卫生细菌学检查。
细菌总数：检测每毫升或每克样品中所含细菌数，采用倾注培养计算。
我国规定的卫生标准是每毫升饮水中细菌总数不得超过100个。
大肠菌数指数：指每立升中大肠菌群数，采用乳糖发酵法检测。
我国的卫生标准是每1000ml饮水中不得超过3个大肠菌群；瓶装汽水、果汁等每100ml大肠菌群不得超过5个。
实验二大肠菌群（M.R.N.）检验1 目的了解大肠菌群在食品卫生检验中的意义学习并掌握大肠菌群的检验方法2 原理大肠菌群系指一群能发酵乳糖，产酸产气，需氧和兼性厌氧的革兰氏阴性无芽孢杆菌。
大肠杆菌群检验的实验原理
大肠杆菌群检验的实验原理大肠杆菌（Escherichia coli）是一种常见的肠道细菌，广泛存在于人类和动物的肠道中。
大肠杆菌群检验是一种用于研究肠道菌群组成和功能的实验方法。
本文将从实验原理、样本采集、实验步骤、结果解读和临床应用等方面进行详细介绍。
实验原理：大肠杆菌群检验主要通过对肠道中细菌的DNA进行测序和分析来研究菌群组成和功能。
尤其是通过对16S rRNA基因序列进行分析，可以确定细菌的分类学信息，从而了解菌群的组成。
在这个实验中，主要使用PCR扩增和高通量测序技术。
1. 样本采集：在进行大肠杆菌群检验之前，需要采集肠道样本。
常见的采集方法包括粪便、肠黏膜组织和大肠黏膜刷取等。
样本采集要注意无菌操作，避免外源性细菌的污染。
2. 实验步骤：（1）DNA提取：首先需要提取样本中的DNA，这可以通过商业DNA提取试剂盒来完成。
提取的DNA浓度和质量要满足后续PCR扩增和测序的要求。
（2）PCR扩增：通过设计引物，选择16S rRNA基因的特异性区域进行扩增。
PCR反应体系中加入模板DNA、引物、dNTPs和DNA聚合酶。
PCR反应的温度和循环次数通过程序设定。
（3）PCR产物纯化：将PCR扩增产物纯化，去除引物和杂质。
可以使用DNA 凝胶电泳和商业纯化试剂盒来进行纯化操作。
（4）高通量测序：纯化后的PCR产物进行高通量测序，可以采用Illumina MiSeq 或Ion Torrent等测序平台。
测序后得到的数据包括原始测序片段和测序质量值。
3. 结果解读：经过测序平台生成的数据可以通过特定的分析流程进行处理和解读。
首先将原始测序片段进行质控和过滤，去除接头序列和低质量序列。
然后对质控后的测序片段进行聚类和分类，可以使用聚类算法（如CD-HIT和UPARSE）和数据库（如Greengenes和SILVA）来进行分类鉴定。
最后，通过比较分析菌群间的差异，在样本之间实施群落结构和功能的比较。
4. 临床应用：大肠杆菌群检验可以用于研究肠道菌群与人类健康和疾病之间的关系。
大肠杆菌的快速鉴定和穿刺培养实验的研究
大肠杆菌的快速鉴定和穿刺培养实验的研究1 前言大肠杆菌是人和许多动物肠道中最主要且数量最多的一种细菌，周身鞭毛，能运动，无芽孢。
主要寄生在大肠内。
它侵入人体一些部位时，可引起感染，如腹膜炎、胆囊炎、膀胱炎及腹泻等。
人在感染大肠杆菌后的症状为胃痛、呕吐、腹泻和发热。
感染可能是致命性的，尤其是对孩子及老人。
大肠菌群是评价食品卫生质量的重要指标之一，目前已被国内外广泛应用于食品卫生工作中。
因此快速、方便、灵敏的鉴定出大肠杆菌是食品行业的关键。
2、实验方法2.1鉴定实验2.1.1 M试验在无菌条件下，用小砂轮开启安瓶，取待检物0.2ml，接种至安瓶内用无菌棉将安瓶口封盖，置于36±1℃培养5小时~24小时，在365nm紫外灯光下观察有无荧光，同时用未接种的安瓶做对照。
呈现荧光为阳性，简称M阳性；不呈现荧光为M阴性。
样品瓶呈现明显的荧光，为M阳性；对照瓶不产生荧光。
见图一所示。
2.1.2 I试验观察后，沿培养管的管壁加入1-3滴靛基质试液，轻缓摇动，观察液面颜色。
液面出现玫瑰红环为阳性，简称I阳性；呈试剂本色，为I阴性。
样品瓶呈现玫瑰红环，为I阳性，对照瓶呈试剂本色。
见图二所示。
2.2 穿刺实验采用完全培养基，琼脂量在0.3%、0.4%、0.5%、0.6%、0.7%、0.8%进行穿刺实验琼脂量在0.5%以上的因为培养基硬度较大，限制了自由运动。
见图三所示琼脂加量左边为0.3%，右边为0.5%。
由图三可以看出，左侧试管中沿穿刺线向周围扩散生长，而右侧试管则边缘整齐。
这是因为大肠杆菌为周身鞭毛，其运动向周围扩散生长。
3 结果3.1 鉴定实验结果判断：M阳性、I阳性报告检出大肠杆菌。
通过实验证实M-I实验法对大肠杆菌的鉴定具有快速、方便、灵敏、假阳性少的优点，在食品致病菌快速检验领域具有广泛的应用前景。
3.2 大肠杆菌为周身鞭毛，将大肠杆菌穿刺接种于0.3%的琼脂半固体培养基中，它将沿穿刺线向周围扩散生长。
大肠杆菌的检验注意事项
大肠杆菌的检验注意事项大肠杆菌是一种存在于人和动物的肠道中的细菌，虽然在正常情况下不会对人体造成危害，但一旦进入食物或饮水中，可能引起食源性疾病。
因此，对大肠杆菌的检验显得十分重要。
以下是大肠杆菌检验注意事项。
1. 检验标本的采集：大肠杆菌的检验通常需要使用粪便和食物等标本进行检测。
在采集粪便标本时，应避免混入尿液，最好在清洁的容器中收集。
而对于食物等标本，需要注意避免污染和保存合适。
2. 仪器与设备的维护：对于进行大肠杆菌检验的仪器和设备，需要定期进行维护和保养，以确保其准确性和可靠性。
在使用前需要对仪器进行校准，并在使用过程中进行质控检验。
3. 检验环境的清洁：在进行大肠杆菌检验时，需要确保检验环境的清洁和卫生。
避免交叉污染，减少误差的发生。
4. 检验人员的培训：进行大肠杆菌检验的人员需要接受专业的培训，掌握操作技能和检验流程，了解常见的检验误差和处理方法。
5. 检验流程的规范：在进行大肠杆菌检验时，需要按照标准的检验流程进行，严格遵守操作规程，确保检验结果的准确性和可靠性。
6. 质控的执行：在进行大肠杆菌检验时，需要执行严格的质控程序，包括使用质控品进行校准和验证，监测每一批检验样本的质量控制结果，以及对异常结果的处理和追踪。
7. 结果的解释：对于大肠杆菌检验结果的解释需要慎重，需要结合临床病史和其他相关检验结果进行综合分析，避免误诊或漏诊的发生。
8. 结果的报告：对于大肠杆菌检验结果的报告，需要确保结果准确、清晰、及时，帮助临床医生进行诊断和治疗决策。
综上所述，对大肠杆菌的检验需要严格遵守操作规程和质控要求，确保检验结果的准确性和可靠性，为临床诊断和治疗提供可靠的支持。
大肠杆菌检测方法
大肠菌群及检验一、大肠菌群介绍大肠菌群并非细菌学分类命名，而是卫生细菌领域的用语，它不代表某一个或某一属细菌，而指的是具有某些特性的一组与粪便污染有关的细菌，这些细菌在生化及血清学方面并非完全一致,其定义为：需氧及兼性厌氧、在37℃能分解乳糖产酸产气的革兰氏阴性无芽胞杆菌。
一般认为该菌群细菌可包括大肠埃希氏菌、柠檬酸杆菌、产气克雷白氏菌和阴沟肠杆菌等。
大肠菌群分布较广，在温血动物粪便和自然界广泛存在。
调查研究表明，大肠菌群细菌多存在于温血动物粪便、人类经常活动的场所以及有粪便污染的地方，人、畜粪便对外界环境的污染是大肠菌群在自然界存在的主要原因.粪便中多以典型大肠杆菌为主，而外界环境中则以大肠菌群其他型别较多.大肠菌群是作为粪便污染指标菌提出来的，主要是以该菌群的检出情况来表示食品中有否粪便污染。
大肠菌群数的高低，表明了粪便污染的程度，也反映了对人体健康危害性的大小。
粪便是人类肠道排泄物,其中有健康人粪便，也有肠道患者或带菌者的粪便，所以粪便内除一般正常细菌外,同时也会有一些肠道致病菌存在（如沙门氏菌、志贺氏菌等），因而食品中有粪便污染，则可以推测该食品中存在着肠道致病菌污染的可能性，潜伏着食物中毒和流行病的威胁，必须看作对人体健康具有潜在的危险性.大肠菌群是评价食品卫生质量的重要指标之一，目前已被国内外广泛应用于食品卫生工作中。
二、大肠菌群检验方法：由于大肠菌群指的是具有某些特性的一组与粪便污染有关的细菌，即：需氧及兼性厌氧、在37℃能分解乳糖产酸产气的革兰氏阴性无芽胞杆菌。
因此大肠菌群的检测一般都是按照它的定义进行。
目前国内采用的进出口食品大肠菌群检测方法主要有国家标准和原国家商检局制订的行业标准.两个标准方法在检测程序上略有不同.（一）国家标准：国家标准采用三步法，即：乳糖发酵试验、分离培养和证实试验。
乳糖发酵试验：样品稀释后，选择三个稀释度，每个稀释度接种三管乳糖胆盐发酵管。
36±1℃培养48±2h，观察是否产气.分离培养：将产气发酵管培养物转种于伊红美蓝琼脂平板上，36±1℃培养18-24h，观察菌落形态。
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第三章 大肠菌群测定一、大肠菌群检验(一)检验方法(二)培养基(三)检验时应注意事二、大肠菌群的卫生学意义大肠菌群是评价食品卫生质量的重要指标之一，目前已被国内外广泛应用于食品卫生工作中。
该菌群主要来源于人及温血动物粪便，一般多用来作为食品中的粪便污染指标。
过去我国在大肠菌群的检验方面经验不多，对该菌群的认识也不够充分。
1974年全国修订食品卫生细菌检验方法座谈会和1976年全国食品卫生标准会议建议以大肠菌群作为粪便污染指标菌，并提出进行有关大肠菌群方面的科研工作。
为此，我们成立了大肠菌群科研协作组，对犬肠菌群的检验方法(包括快速检验方法)及其卫生学意义进行了广泛的科学研究和实践，取得了一定成绩，为制订大肠菌群检验方法提供了科学依据。
在这次修订l976年版食品卫生检验方法的过程中，大肠菌群科研协作组又于1983～1985年对大肠菌群检验方法进行了实验研究，并作了对比观察，同时对国内常用的大肠菌群快速检测方法也进行了研讨，为这次修订国家标准食品卫生检验方法微生物学部分中的大肠菌群测定提供了科学依据。
大肠菌群不是细菌学上的分类命名，而是根据卫生学方面的要求，提出来的一组与粪便污染有关的细菌，这些细菌在生化及血清学方面并非完全一致。
其定义为：系指一群需氧及兼性厌氧、在37℃能分解乳糖产酸产气的革兰氏阴性无芽胞杆菌。
有些科学工作者又用靛基质、甲基红、V～P、柠檬酸盐、硫化氢、明胶、动力和44．5℃乳糖分解等试验，将这群细菌再分为大肠艾希氏菌、柠檬酸杆菌、产气克雷白氏菌和阴沟肠杆菌等。
不论分法如何，对大肠菌群的判定，均应以上述定义为基础。
一、大肠茵群检验(一)检验方法1．乳糖发酵试验。
以无菌操作采取样品，采取量及稀释倍数，依据国家或当地卫生标准要求及样品污染情况而定。
将待检样品接种于乳糖胆盐发酵管内，接种量在l m J以上者，用双料乳糖胆盐发酵管，lm1及1mI以下者，用单料乳糖胆盐发酵管。
每一稀释度接种3管，置36±l℃温箱内，培养24±2小时，如所有乳糖胆盐发酵管都不产气，则可报告为大肠菌群阴性；如有产气者，则按下列程序进行。
2．分离培养。
将产气的发酵管分别转种在伊红美蓝琼脂平板上，置36±l℃温箱内，培养18～24小时，然后取出，观察菌落形态，并作革兰氏染色和证实试验。
3．证实试验。
在上述平板上，挑取可疑大肠菌群菌落l～2个进行革兰氏染色，同时接种乳糖发酵管，置36±1℃ 温箱内培养24±2小时，观察产气情况。
凡乳糖管产气，革兰氏染色为阴性的无芽胞杆菌，即可报告为大肠菌群阳性。
4．报告。
根据证实为大肠菌群阳性的管数，查MPN检索表，报告每l 00ml(g)大肠菌群的最可能数。
5．检验程序。
见图3-1图3-I大肠菌群检验程序(=)培养基1．乳糖胆盐发酵培基成分：蛋白胨猪胆盐(或牛，羊胆盐)乳糖 ．、0．04％溴甲酚紫水溶液蒸馏水 ’pH7．4制法：将蛋白胨、胆盐及乳糖溶于水中，并放入一个小倒管，高压灭菌115℃15分钟。
20g5g ‘1 Og25m11 000m1校正pH，加入指示剂，分装每管l 0ml，附注：双料乳糖胆盐发酵培基除蒸馏水外，其他成分加倍。
用途：乳糖发酵试验用。
原理：细菌分解糖类是依靠细菌细胞所产生的各种酶类的作用，细菌产生的分解糖类的酶，随细菌种类不同而异，可以此来鉴别细菌。
乳糖是双糖，细菌分解双糖的酶大多是胞外酶。
乳糖被乳糖酶水解成葡萄糖和半乳糖，葡萄糖可直接被细菌利用，而半乳糖则需在细胞内转化为葡萄糖后再被利用。
糖发酵试验主要是测定细菌分解糖类以后所产生的酸，以培基pH降低(指示剂变色)作为观察结果的指标。
大肠杆菌等细菌在酸性环境中，由于甲酸脱氢酶的作用，可使甲酸分解成CO2和H2，在培基中产生大量气体，进入倒管中，以便观察。
注：常用于供发酵试验的各种糖类、醇类和糖苷类(见表3-1)·2．伊红美蓝琼脂培基成分：蛋白胨 10g乳糖 10g磷酸氢二钾 2g琼脂 17g2％伊红Y溶液 20ml0．65％美蓝溶液 10ml蒸馏水 1000mlpH7.1制法：将蛋l白胨、磷酸盐和琼脂溶解于蒸馏水中，校正pH，分装于烧瓶内，高压灭菌121℃15分钟备用。
临用时加入乳糖，并加热溶化琼脂，冷至50一55℃，加入伊红和美蓝溶液，摇匀，倾注平板。
原理：大肠菌群细菌发酵乳糖产酸，使伊红与美蓝结合而成黑色化合物，故菌落呈黑紫色，有时还可产生金属光泽。
黑色程度与光泽产生情况与伊红、美蓝二者比倒有关。
不发酵乳糖的细菌(如沙门氏菌、志贺氏菌)则为无色菌落。
3．乳糖发酵培基成分：蛋白胨 20g乳糖 10gO．04％溴甲酚紫水溶液 25ml蒸馏水 1000mlpH7．4制法：将蛋白胨及乳糖溶于水中，校正pH，加入指示剂，按检验要求分装30ml、10ml 或3ml，并放入一个小倒管，高压灭菌115℃15分钟。
附注： ’(1)双料乳糖发酵管除蒸馏水外，其他成分加倍。
(2)30ml和10ml乳糖发酵管专供酱油及酱类检验用．3ml乳糖发酵管供大肠菌群证实试验用。
4．蛋白胨水成分：蛋白胨(或胰蛋白胨) 20g氯化钠 5g蒸馏水 1 000ml pH7．4表3-1 供发酵试验用的糖类、醇类和糖苷类 （一）供发酵试验用的各种糖类化学上的分类 名 称戍糖(C5H10O5)已糖(C6H12O6)双糖类(C12H22O11)兰糖类(C6H10O5)3 多糖类(C6H10O5)x 阿拉伯糖 arabinoSe木糖 xylose鼠李糖 rhamnose葡萄糖 glucose dextrose 果糖 fructose,levulose 甘露糖 mannose半乳糖 galactose麦芽糖 moltose乳糖 lactose蔗糖 sucrose草搪 trehalose纤维二糖 cellobiose木蜜糖 melibiose棉子糖 raffinose落叶松糖 melizitose菊糖 inulin淀粉 starch肝糖 glucogen 糊精 dextrin(二)供发酵试验的各种醇类和糖苷类化学上的分类 名 称三元醇C3H5(0H)3 四元醇C4H6(0H)4 五元醇类C5H7(OH)6六元醇类C6H8(OH)8环己六醇(CHOH)6 糖苷类 甘 油 glycerol 赤丝藻醇 erythritol 侧金盏花醇 adonitol 阿拉伯胶醇 arabitol 甘露醇 mannitol 卫矛醇 dulcitol． 山梨醇 sorbitol 肌 醇 inositol 水杨苷 salicin七叶苷 aesculin 松柏苷 coniferlin制法：按上述成分配制，分装小试管，高压灭菌12l℃15分钟．附注：蛋白胨内应含有丰富的色氨酸。
每批蛋白胨买来后，应先用已知菌种鉴定后 方可使用。
（玫瑰吲哚) 图3-2靛基质的产生及呈色的机理图原理：细菌能分解蛋白胨中的色氨酸，生成靛基质，与对二甲氨基苯甲醛作用，形成玫瑰吲跺而呈红色(见图3-2)。
(三)检验时应注意事项1．检验步序。
大肠菌群的检验步序采用三步法(乳糖发酵试验、分离培养和证实试验)。
第一步乳糖发酵试验是样品的发酵结果，不是纯菌的发酵试验，所以初发酵阳性管，经过平板分离和证实试验后，有时可能成为阴性。
大量检验数据表明，食品中大肠菌群检验步序的符合率，初发酵与证实试验相差较大，不同食品三步序的符合情况也不一致(见表3-2)，所以在大肠菌群检验步序方面，应结合食品类别、污染情况以及样品中菌相的差异分别予以考虑。
在食品检验上，除个别情况外，一般来说，如果平板上有较多典型大肠菌群菌落，革兰氏染色为阴性杆菌，即可做出判定。
如平板上典型菌落甚少或均不够典型，则应多挑菌落做证实试验，以免出现假阴性。
只做一步初发酵，对 表3-2检验步序与检出率的关系种 检出阳性率类 样品名称 初发酵 (A) 平板分离 (B) 复发酵 (C)（B/A）*100%（C/A）*100% （C/B）*100%食’ 品羊肉 熟肉 灌肠 生牛奶甜炼乳 奶粉 醋 酱油 冰棍．雪糕．冰砖汽水 炊具(碗)483 298 540 450 163 77 118 3l3 743 12 109483 218 540 439 140 74 41 265 493 12 109483 215 539 439 100 74 38 258 460 12 109 lOO 73.2 100 97.16 85.9 96.1 34.7 84.7 66.4 100 100100 72.1 99.8 97.6 61.3 96.1 32.2 82.4 61.9 100 100100 98.899.8 100 71.4 100 92.7 97.4 93.3 lOO 100合计 3306 2814 2727 85 82．5 96.9某些食品来说，误差是比较大的。
这样做，会有相当部分的合格样品被作为不合格样品处理．应予注意。
2．抑菌剂。
大肠菌群检验中经常使用的抑菌剂有胆盐．洗衣粉、十二烷基硫酸钠． 煌绿、龙胆紫，孔雀绿等。
抑菌剂虽可抑制样品中的一些杂菌，而有利于大肠菌群的生长和挑选，但对大肠菌群中的某些菌株有时也产生一些抑制作用。
有些抑菌剂用量甚微， 称量时稍有差误，即可对抑菌作用产生影响；有的抑菌剂当牌号、规格改变时，也可影响抑菌效果，而需重新测定抑菌的有效剂量。
这些情况均给抑菌剂的使用带来不利条件． 我们曾对胆盐等三种抑菌剂进行大肠菌群检验效果的观察(见表3—3)。
目前我国在食注:(一)表示不加抑菌剂：( )内数字系％．品大肠菌群检验方面采用胆盐作为抑菌剂，猪、牛、羊三种胆盐对大肠菌群的检验效果，经实验观察无何明显差异，可相互替代。
但其他胆盐的检验效果则不一致(见表3—4)，故不宜相互替代。
目前由于胆盐不易购买，有的实验室以3号胆盐、混合胆盐、去氧胆酸钠或兔胆盐等代替猪胆盐加入培基中，这会影响大肠菌群酶检验结果，应予注意。
在胆盐用量上，实验表明1％、O.5％和0.25%三个剂量无何差异。
所以目前乳糖发酵管采用的胆盐剂量(0．5％)是适宜的，在称量时稍有差误，亦不致影响大肠菌群的检出。
注：分母表示接种株教，分予表示产气株数．3．挑选菌落。
大肠菌群是一群肠道杆菌的总称，大肠菌群菌落的色泽、形态等方面较大肠杆菌更为复杂和多样，而且与大肠菌群的检出率密切相关。
所以在实际工作中。
表3—6 茵落形态与检出率的关系注：（ ）内数字系%为了提高大肠菌群的检出率，应当熟习大肠菌群的菌落色泽和形态。
在检验方法中我们选用伊红美蓝平板为分离培基，在该平板上，大肠菌群菌落呈黑紫色有光泽或无光泽，检出率最高；红色、粉色菌落检出率较低。
菌落形态的其他方面(如菌落大小、光滑与粗糙、边缘完整情况、隆起情况、湿润与干燥等)虽亦应注意，但不如色泽方面更为重要(见表3—5、3—6)。