Western_blot_实验技术及原理
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Western blot 实验技术
定义:
印迹法(blotting)是指将样品转移到固相载体上,而后利用相应 的探测反应来检测样品的一种方法。
1975年,Southern建立了将DNA转移到硝酸纤维素膜(NC膜)上, 并利用DNA-RNA杂交检测特定的DNA片段的方法,称为 Southern印迹法。 而后人们用类似的方法,对RNA和蛋白质进行印迹分析,对RNA 的印迹分析称为Northern印迹法,对单向电泳后的蛋白质分子的印 迹分析称为Western印迹法,对双向电泳后蛋白质分子的印迹分析 称为Eastern印迹法
条带比正常的窄?
凝胶聚合不均匀,灌胶时候尽量混合 均匀,动作轻缓 拔梳子要迅速,清洗加样孔要小心, 以免把上样带扭曲 样品盐浓度过高会挤压其他条带导致 宽窄不一,纯化样品,调整盐浓度 胶板底部有气泡会影响电泳效果,应 赶走气泡。同时注意电泳槽装臵是否 合适
“微笑”或“倒微笑”
条带?
管号 ddH2O 蛋白标 准液 样品 HCL 0 80 1 70 2 70 3 70 4 70 5 70 6 70 7 70 8 70
0 10 10
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SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳
原Hale Waihona Puke Baidu:
SDS 是一种离子性的界面活性剂,它有强离子性的硫酸根离子也带有疏水 性的长碳链.当 SDS 与蛋白质混合时,它会以其碳链与蛋白质之疏水性胺 基酸结合将蛋白质包起来,而以硫酸根离子外露与水分子作用.大多数蛋 白质和 SDS 的平均结合量是 1:1.4 (以重量为单位),而蛋白质结合固定 比例之 SDS 後,由於 SDS 带强负价,使蛋白质原先的带电价微不足道,且 每单位重量之蛋白质带电价一致 (charge density),所以决定不同蛋白 的泳动速率就只剩下分子大小一项因素
背景太高
原 因 膜没有均匀浸湿
膜或者缓冲液污染 封闭不充分 抗体与封闭剂出现交 叉反应 抗体浓度过高
1.
1.
2.
3. 4.
2.
对 策
3.
5.
4.
转膜前用100%甲醇将膜完 全浸湿 拿取膜与吸水纸时要戴手 套,更换新鲜转膜缓冲液 检测一抗、二抗与封闭剂 是否有交叉反应 杂交前检测一抗、二抗的 工作浓度
价格便宜
简单快速封闭非特异性抗体结合
膜的选择
封闭非特异性抗体结合麻烦
尼龙膜
价格昂贵
需要更高的蛋白结合率
(尼龙膜: 480µ g/cm2 ;硝酸纤维素膜:80µ g/cm2 )
特殊要求下的选择 目的蛋白与硝酸纤维膜的结合能力弱 需要更大的机械强度
转膜
半干法
将凝胶和固相基质象三明治一样加在用缓冲液湿 润滤纸之间,电转10-30min。 湿法 将凝胶和固相基质夹在滤纸中间,浸泡在转移装 臵的缓冲液中,电转45min或过夜。
膜面积以0.1ml/cm2的量加入加入一抗溶液与滤膜温育。
37℃一小时,4 ℃过夜。
倒掉一抗溶液,用PBS漂洗液滤膜3次,每次10min。 加入用封闭液配制的二抗,摇床上缓慢摇动, 37℃一小时, 4 ℃过夜。
倒掉一抗溶液,用PBS漂洗液滤膜3次,每次10min。
二抗与底物反应显色
•辣根过氧化物酶法(HRP)
凝胶成份
丙烯酰胺和N,N’-亚甲双丙烯酰胺 SDS 配胶的Tris缓冲液
TEMED
过硫酸铵(时间) Tris-甘氨酸电泳缓冲液
凝胶浓度与蛋白分离范围
凝胶浓度(%) 线性分离范围(KD)
15
10
12-43
16-68
7.5
5.0
36-94
57-212
转膜
硝酸纤 维素膜
水溶液提取法 针对水、稀盐、稀酸或碱溶液中的蛋白质。稀盐和缓冲系统的水溶液 对蛋白质稳定性好、溶解度大、是提取蛋白质最常用的溶剂 。 细胞裂解液: 50 mmol/L Tris-HCl, 150 mmol/L Nacl ,5 mmol/L EDTA, 1%NP40 ,
0.05% PMSF , 2μg/mL Aprotinin, 0.5μg/mL Leupeptin , pH8.0
转膜后检测
丽春红S染色 蛋白带出现后,于室温用去离子水漂洗硝酸纤维素滤 膜,换水几次。 印度墨汁染色 只用于放射性标记抗体或放射性标记A蛋白探针的 Western印迹过程。
封闭
脱脂奶粉(5%) BSA Western Blot 膜封闭液(生物试剂公司提供)
一抗、二抗孵育
把硝酸纤维素滤膜放在密闭塑料袋或者培养皿中,根据滤
转膜及抗体检测
凝胶肿胀或卷曲?
可将凝胶在转膜之前放到转膜缓冲液 中浸泡5-10min
条带歪斜或漂移?
单个或多个白点? 转膜缓冲液过热?
电转仪长期使用导致海绵变薄,“三
明治”结构不紧凑导致。可在两块海 绵之间垫上少许普通的草纸
确保膜和胶块之间没有气泡
缓冲液中离子浓度太低,电流或电压 太高。转膜过程注意降温
有机溶剂提取法 对于分子中非极性侧链较多的蛋白质可用有机溶剂提取,包括乙醇、
丙酮和丁醇等。
通过层析或电洗脱法制备目的蛋白
蛋白样品的定量
Bradford法
考马斯亮蓝G-250有红、蓝两种不同颜色的形式,在一定浓度的乙醇和酸性条件下,可 配成淡红色的溶液,与蛋白结合后形成蓝色化合物,该化合物在595nm处有最大吸收值, 化合物颜色深浅与蛋白的浓度高低成正比 。(上样量) 试剂:考马斯亮蓝工作液,0.1N盐酸,双蒸水,蛋白标准液( 将10mg/ml蛋白溶液稀释至 4.0mg/ml, 3.5mg/ml, 3.0mg/ml, 2.5mg/ml, 2.0mg/ml, 1.5mg/ml, 1.0mg/ml, 0.5mg/ml。)
Western Blot基本原理
在电场的作用下将电泳分离的多肽从凝胶转移至一种 固相支持体,然后用这种多肽的特异抗体来检测。
Western Blot一般流程
转膜
蛋白样品的制备 SDS聚丙烯酰胺 凝胶电泳
封闭
一抗杂交
二抗杂交
底物显色
蛋白样品的制备
通过有机溶剂或水溶法制备总蛋白
•碱性磷酸酶法(AP)
•化学发光显色法(HRP)
Western Blot常见问题分析
SDS-PAGE电泳
胶板洗刷干净
胶不平? 凝胶漏液?
加入APS和TEMED的量要合适
加入试剂后摇匀,使其充分混
合,防止部分胶块聚合不均匀 温度合适,受热不均匀导致胶 聚合不均匀 两块玻璃板底部要对齐
定义:
印迹法(blotting)是指将样品转移到固相载体上,而后利用相应 的探测反应来检测样品的一种方法。
1975年,Southern建立了将DNA转移到硝酸纤维素膜(NC膜)上, 并利用DNA-RNA杂交检测特定的DNA片段的方法,称为 Southern印迹法。 而后人们用类似的方法,对RNA和蛋白质进行印迹分析,对RNA 的印迹分析称为Northern印迹法,对单向电泳后的蛋白质分子的印 迹分析称为Western印迹法,对双向电泳后蛋白质分子的印迹分析 称为Eastern印迹法
条带比正常的窄?
凝胶聚合不均匀,灌胶时候尽量混合 均匀,动作轻缓 拔梳子要迅速,清洗加样孔要小心, 以免把上样带扭曲 样品盐浓度过高会挤压其他条带导致 宽窄不一,纯化样品,调整盐浓度 胶板底部有气泡会影响电泳效果,应 赶走气泡。同时注意电泳槽装臵是否 合适
“微笑”或“倒微笑”
条带?
管号 ddH2O 蛋白标 准液 样品 HCL 0 80 1 70 2 70 3 70 4 70 5 70 6 70 7 70 8 70
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SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳
原Hale Waihona Puke Baidu:
SDS 是一种离子性的界面活性剂,它有强离子性的硫酸根离子也带有疏水 性的长碳链.当 SDS 与蛋白质混合时,它会以其碳链与蛋白质之疏水性胺 基酸结合将蛋白质包起来,而以硫酸根离子外露与水分子作用.大多数蛋 白质和 SDS 的平均结合量是 1:1.4 (以重量为单位),而蛋白质结合固定 比例之 SDS 後,由於 SDS 带强负价,使蛋白质原先的带电价微不足道,且 每单位重量之蛋白质带电价一致 (charge density),所以决定不同蛋白 的泳动速率就只剩下分子大小一项因素
背景太高
原 因 膜没有均匀浸湿
膜或者缓冲液污染 封闭不充分 抗体与封闭剂出现交 叉反应 抗体浓度过高
1.
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3. 4.
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对 策
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4.
转膜前用100%甲醇将膜完 全浸湿 拿取膜与吸水纸时要戴手 套,更换新鲜转膜缓冲液 检测一抗、二抗与封闭剂 是否有交叉反应 杂交前检测一抗、二抗的 工作浓度
价格便宜
简单快速封闭非特异性抗体结合
膜的选择
封闭非特异性抗体结合麻烦
尼龙膜
价格昂贵
需要更高的蛋白结合率
(尼龙膜: 480µ g/cm2 ;硝酸纤维素膜:80µ g/cm2 )
特殊要求下的选择 目的蛋白与硝酸纤维膜的结合能力弱 需要更大的机械强度
转膜
半干法
将凝胶和固相基质象三明治一样加在用缓冲液湿 润滤纸之间,电转10-30min。 湿法 将凝胶和固相基质夹在滤纸中间,浸泡在转移装 臵的缓冲液中,电转45min或过夜。
膜面积以0.1ml/cm2的量加入加入一抗溶液与滤膜温育。
37℃一小时,4 ℃过夜。
倒掉一抗溶液,用PBS漂洗液滤膜3次,每次10min。 加入用封闭液配制的二抗,摇床上缓慢摇动, 37℃一小时, 4 ℃过夜。
倒掉一抗溶液,用PBS漂洗液滤膜3次,每次10min。
二抗与底物反应显色
•辣根过氧化物酶法(HRP)
凝胶成份
丙烯酰胺和N,N’-亚甲双丙烯酰胺 SDS 配胶的Tris缓冲液
TEMED
过硫酸铵(时间) Tris-甘氨酸电泳缓冲液
凝胶浓度与蛋白分离范围
凝胶浓度(%) 线性分离范围(KD)
15
10
12-43
16-68
7.5
5.0
36-94
57-212
转膜
硝酸纤 维素膜
水溶液提取法 针对水、稀盐、稀酸或碱溶液中的蛋白质。稀盐和缓冲系统的水溶液 对蛋白质稳定性好、溶解度大、是提取蛋白质最常用的溶剂 。 细胞裂解液: 50 mmol/L Tris-HCl, 150 mmol/L Nacl ,5 mmol/L EDTA, 1%NP40 ,
0.05% PMSF , 2μg/mL Aprotinin, 0.5μg/mL Leupeptin , pH8.0
转膜后检测
丽春红S染色 蛋白带出现后,于室温用去离子水漂洗硝酸纤维素滤 膜,换水几次。 印度墨汁染色 只用于放射性标记抗体或放射性标记A蛋白探针的 Western印迹过程。
封闭
脱脂奶粉(5%) BSA Western Blot 膜封闭液(生物试剂公司提供)
一抗、二抗孵育
把硝酸纤维素滤膜放在密闭塑料袋或者培养皿中,根据滤
转膜及抗体检测
凝胶肿胀或卷曲?
可将凝胶在转膜之前放到转膜缓冲液 中浸泡5-10min
条带歪斜或漂移?
单个或多个白点? 转膜缓冲液过热?
电转仪长期使用导致海绵变薄,“三
明治”结构不紧凑导致。可在两块海 绵之间垫上少许普通的草纸
确保膜和胶块之间没有气泡
缓冲液中离子浓度太低,电流或电压 太高。转膜过程注意降温
有机溶剂提取法 对于分子中非极性侧链较多的蛋白质可用有机溶剂提取,包括乙醇、
丙酮和丁醇等。
通过层析或电洗脱法制备目的蛋白
蛋白样品的定量
Bradford法
考马斯亮蓝G-250有红、蓝两种不同颜色的形式,在一定浓度的乙醇和酸性条件下,可 配成淡红色的溶液,与蛋白结合后形成蓝色化合物,该化合物在595nm处有最大吸收值, 化合物颜色深浅与蛋白的浓度高低成正比 。(上样量) 试剂:考马斯亮蓝工作液,0.1N盐酸,双蒸水,蛋白标准液( 将10mg/ml蛋白溶液稀释至 4.0mg/ml, 3.5mg/ml, 3.0mg/ml, 2.5mg/ml, 2.0mg/ml, 1.5mg/ml, 1.0mg/ml, 0.5mg/ml。)
Western Blot基本原理
在电场的作用下将电泳分离的多肽从凝胶转移至一种 固相支持体,然后用这种多肽的特异抗体来检测。
Western Blot一般流程
转膜
蛋白样品的制备 SDS聚丙烯酰胺 凝胶电泳
封闭
一抗杂交
二抗杂交
底物显色
蛋白样品的制备
通过有机溶剂或水溶法制备总蛋白
•碱性磷酸酶法(AP)
•化学发光显色法(HRP)
Western Blot常见问题分析
SDS-PAGE电泳
胶板洗刷干净
胶不平? 凝胶漏液?
加入APS和TEMED的量要合适
加入试剂后摇匀,使其充分混
合,防止部分胶块聚合不均匀 温度合适,受热不均匀导致胶 聚合不均匀 两块玻璃板底部要对齐