细胞转染
转染细胞实验报告
一、实验目的本实验旨在通过转染技术将外源基因导入哺乳动物细胞中，以研究该基因在细胞中的表达情况及其生物学功能。
具体目标包括：1. 成功构建并转染含有目标基因的质粒载体。
2. 检测转染细胞中目标基因的表达水平。
3. 分析目标基因对细胞生物学功能的影响。
二、实验材料1. 细胞：HEK293细胞（人胚胎肾细胞系）2. 质粒载体：pEGFP-C1（绿色荧光蛋白基因）3. 转染试剂：Lipofectamine 20004. 其他试剂：DMEM培养基、胎牛血清、胰蛋白酶、PBS缓冲液、青霉素-链霉素混合液等5. 仪器：细胞培养箱、倒置显微镜、流式细胞仪、PCR仪、凝胶成像系统等三、实验方法1. 细胞培养：将HEK293细胞接种于6孔板，培养于含10%胎牛血清的DMEM培养基中，置于37℃、5%CO2的培养箱中培养。
2. 质粒提取：按照试剂盒说明书提取pEGFP-C1质粒。
3. 转染：- 将HEK293细胞用胰蛋白酶消化后，用PBS缓冲液洗涤，调整细胞密度至1×10^6细胞/毫升。
- 将Lipofectamine 2000试剂与pEGFP-C1质粒按照说明书比例混合，室温孵育20分钟。
- 将混合液加入细胞培养皿中，轻轻混匀，培养6小时。
- 将培养皿中的混合液弃去，用新鲜DMEM培养基培养细胞。
4. 基因表达检测：- 荧光显微镜观察：在荧光显微镜下观察转染细胞中的绿色荧光蛋白表达情况。
- Western Blot检测：收集转染细胞，提取蛋白质，进行SDS-PAGE电泳，转膜，抗体孵育，化学发光检测。
- 流式细胞术检测：收集转染细胞，进行流式细胞术检测绿色荧光蛋白的表达水平。
5. 功能分析：- 将转染细胞进行体外实验，如细胞增殖、凋亡、迁移等实验，分析目标基因对细胞生物学功能的影响。
四、实验结果1. 荧光显微镜观察：转染细胞中绿色荧光蛋白表达明显，绿色荧光均匀分布。
2. Western Blot检测：转染细胞中绿色荧光蛋白表达量明显高于未转染细胞。
细胞转染实验实验报告
细胞转染是基因工程、分子生物学研究等领域中常用的一种技术，用于将外源基因或RNA导入细胞内，研究基因表达、基因调控等功能。
本实验旨在利用脂质体介导的方法将目的基因转染入HEK293细胞，并观察转染效率及目的基因的表达情况。
二、实验材料1. 细胞：HEK293细胞2. 载体：pEGFP-C1（绿色荧光蛋白基因）3. 试剂：胎牛血清、DMEM培养基、转染试剂（如Lipofectamine 3000）、Trizol 试剂、PCR试剂盒、DNA marker等三、实验方法1. 细胞培养：将HEK293细胞接种于6孔板，培养于含10%胎牛血清的DMEM培养基中，置于37℃、5%CO2的培养箱中培养至对数生长期。
2. 转染：按照Lipofectamine 3000说明书进行操作，将pEGFP-C1质粒与转染试剂混合，室温孵育5分钟，然后加入细胞培养液中，将细胞培养板放入培养箱中继续培养。
3. 检测转染效率：转染后24小时，观察细胞绿色荧光表达情况，以判断转染效率。
4. RT-PCR检测目的基因表达：收集转染后的细胞，使用Trizol试剂提取细胞总RNA，进行RT-PCR扩增目的基因，以判断目的基因的表达情况。
5. Western blot检测目的蛋白表达：收集转染后的细胞，提取细胞总蛋白，进行SDS-PAGE电泳，转膜，加入一抗和二抗，进行Western blot检测目的蛋白表达。
四、实验结果1. 转染效率：转染后24小时，显微镜下观察细胞绿色荧光表达情况，结果显示大部分细胞呈现出绿色荧光，说明转染效率较高。
2. RT-PCR结果：RT-PCR扩增目的基因，结果显示目的基因扩增条带清晰，说明目的基因已成功转染入细胞。
3. Western blot结果：Western blot检测目的蛋白表达，结果显示目的蛋白条带清晰，说明目的蛋白已成功表达。
1. 脂质体介导的转染方法具有操作简单、转染效率高、安全性好等优点，适用于多种细胞类型的转染。
细胞转染实验总结
细胞转染实验总结引言细胞转染是生物学研究中常用的实验技术，用于将外源DNA、RNA或蛋白质引入到目标细胞中。
通过细胞转染，可以实现基因表达、基因敲除、蛋白质定位等多种研究目的。
本文总结了细胞转染实验的基本原理、常用方法和注意事项。
基本原理细胞转染实验的基本原理是通过物理或化学方法将外源DNA、RNA或蛋白质传递到目标细胞内。
细胞内的转染物质可以在细胞内进行表达、干扰或定位，从而实现对目标细胞功能的研究。
常见的细胞转染方法包括：1.电穿孔法：通过应用电流使细胞膜发生临时孔洞，从而使转染物质进入细胞内。
2.化学转染法：利用聚合物、脂质体等化学物质，将目标物质载体化，并与细胞膜结合，实现内源化学转染。
3.病毒载体介导转染法：利用病毒（如腺病毒、逆转录病毒等）作为载体，传递目标物质到细胞内。
常用方法1. 电穿孔法电穿孔法是细胞转染中常用的物理方法之一。
通过应用高电压或脉冲电场，可以使细胞膜发生临时性孔洞，从而使外源DNA、RNA或蛋白质进入细胞内。
常用的电穿孔方法包括：•电转染：将转染物质与细胞悬浮液混合后施加电脉冲，使细胞膜发生孔洞并吸收转染物质。
•静电转染：将转染物质与带正电荷的载体（如聚乙烯亚胺）混合后，与带负电荷的细胞膜相互吸引，从而将转染物质导入细胞内。
2. 化学转染法化学转染法是一种通过化学物质介导的细胞转染方法。
常用的化学转染法有：•使用聚合物：聚合物（如聚乙烯亚胺、聚合丙烯酸等）能与转染物质结合成复合物，使其稳定且易于细胞摄取。
•脂质体转染：脂质体是由磷脂、胆固醇等成分构成的脂质双层结构，可以包裹转染物质形成脂质体-转染物复合物，通过与细胞膜融合实现内源转染。
3. 病毒载体介导转染法病毒载体介导转染法是细胞转染中较常用的方法之一。
常见的病毒载体包括：•腺病毒：腺病毒是一种双链DNA病毒，可以携带大片段的外源DNA，并有效地传递到目标细胞内。
•逆转录病毒：逆转录病毒（如 lentivirus、retrovirus等）可以将外源RNA逆转录成DNA，然后整合到宿主细胞基因组中。
细胞转染的原理操作步骤以及小技巧
细胞转染的原理操作步骤以及小技巧细胞转染是一种将外源DNA、RNA、蛋白质等分子导入到细胞内的实验技术。
这种技术可以用来研究基因功能、发现新的信号通路和治疗基因疾病等。
下面将介绍细胞转染的原理、操作步骤以及一些小技巧。
一、细胞转染的原理：细胞转染主要通过三种方法实现：物理法、化学法和生物学法。
1.物理法：通过高压、电穿孔、微射流等方式，使细胞膜发生瞬时破裂，从而使DNA、RNA等外源分子进入细胞。
常用的物理法有电穿孔法和基因枪法。
2.化学法：通过化学物质，如聚吡咯、脂质体等，使外源分子与细胞膜结合，从而实现转染。
常用的化学法有聚乙烯亚胺（PEI）法、磷酸钙共沉淀法等。
3.生物学法：通过利用病毒载体将外源基因导入目标细胞，实现基因的转移。
常用的生物学法有腺相关病毒（AAV）转染、逆转录病毒（RETRO）转染等。
二、细胞转染的操作步骤：1.细胞的预处理：根据细胞类型和实验要求，将细胞培养至合适的状态。
通常细胞应处于快速生长期，但还未达到接触抑制的阶段。
对于一些特定的细胞，如悬浮细胞，可能需要将其转接至适当的培养基中。
2.外源分子的准备：将外源DNA、RNA等转染载体制备好。
如将DNA克隆并纯化至高质量的质粒DNA，或将RNA合成或纯化。
根据实验要求选择合适的转染载体。
3.转染方法的选择：根据实验要求选择合适的转染方法，如物理法、化学法或生物学法。
一般情况下，物理法适用于悬浮细胞，化学法适用于贴壁细胞，而生物学法适用于大多数细胞类型。
4.细胞转染操作：a.物理法：i.电穿孔法：将细胞悬浮于含有外源分子的缓冲液中，然后通过电穿孔仪的电极或电穿孔板进行电穿孔。
ii. 基因枪法：使用基因枪将外源分子直接“枪”入目标细胞中。
b.化学法：i.PEI法：将PEI与外源DNA或RNA按一定比例混合，在适当条件下形成复合物，然后添加至目标细胞中。
ii. 磷酸钙共沉淀法：将外源DNA与磷酸钙按比例混合，并静置形成磷酸钙- DNA沉淀，然后加入至目标细胞中。
细胞转染步骤
细胞转染步骤细胞转染是一种将外来脱氧核糖核酸（DNA）或核苷酸序列引入细胞内的技术。
这个过程可以用于研究基因功能、病毒感染和基因治疗。
在细胞转染过程中，有几个重要步骤需要注意。
下面是一个关于细胞转染步骤的简要介绍。
第1步：提取DNA或RNA在细胞转染前，需要先准备好DNA或RNA。
其中，DNA可通过PCR扩增、酵母合成，或从细胞中提取。
RNA则可通过反转录酶聚合酶链式反应（RT-PCR）反转录，然后进行DNA扩增。
第2步：选择转染方法目前有很多种不同的细胞转染方法，包括电穿孔、热休克、化学转染等。
要选择适合的转染方法，需要考虑许多因素，如细胞类型、转染效率和毒性等。
常用的转染剂有聚乙烯醇、脂质体、钙磷酸盐等。
第3步：制备转染复合物转染复合物是转染时添加的液体溶液，用于将DNA或RNA引入细胞。
制备复合物通常需要将DNA或RNA与转染剂混合，然后使其与乙醇或其他化学物质形成稳定的颗粒，最终形成复合物。
转染时需要将制备好的转染复合物直接加入培养基中，让细胞与其接触。
接触后，DNA或RNA会被吸附到细胞表面并被内吞到细胞内部。
转染过程通常需要一定程度的时间，具体时间取决于细胞类型和转染复合物的选用。
第5步：培养和维护转染成功后需要对细胞进行培养和维护。
这通常需要注意以下几个因素：1）细胞浸润度：细胞密度应该适合，以便观察细胞形态和产物的表达量。
2）培养基成分：为了保持细胞生长，需要选择适当的培养基成分。
3）药物筛选：转染后可能需要添加药物对细胞进行筛选，以便筛选出目标基因。
4）稳定性维护：为了保证目标基因稳定的表达，需要适当地维护和稳定细胞系。
以上是细胞转染过程中的几个关键步骤。
在进行细胞转染时，需要注意步骤的顺序和方法的选择，以便提高转染效率和成功率。
细胞转染操作方法
细胞转染操作方法一、细胞转染简介细胞转染是指将外源性DNA、RNA、蛋白质等分子通过物理或化学手段导入到细胞内，从而改变细胞的基因表达或功能。
常见的细胞转染方法包括病毒载体介导转染、电穿孔法、钙磷共沉淀法和化学转染法等。
其中，化学转染法是最为常用的方法之一，因为它具有操作简便、成本低廉和适用于多种类型的细胞等优点。
二、实验前准备1. 细胞培养：选择适当的培养基和培养条件，使得细胞处于生长状态。
2. 转染试剂：选择合适的化学转染试剂，如Lipofectamine 2000、PolyJet等。
3. 质粒DNA：准备所需的质粒DNA，并进行纯化和测定浓度。
4. 培养皿：准备适当大小和形状的培养皿，以满足实验需要。
5. 显微镜：准备显微镜以观察细胞转染效果。
三、实验步骤1. 细胞接种：将需要转染的细胞接种到培养皿中，使其达到适当的生长状态。
2. 质粒DNA和化学转染试剂混合：根据试剂说明书的建议，将质粒DNA和化学转染试剂混合，形成转染复合物。
3. 转染复合物与细胞接触：将转染复合物滴加到培养皿中，让其与细胞接触。
4. 培养：将培养皿放入恰当的培养箱中，并按照所选细胞类型的要求进行培养。
5. 观察效果：经过适当时间后，使用显微镜观察细胞转染效果。
若需要，可以通过Western blot、PCR等方法进行进一步验证。
四、注意事项1. 选择适当的化学转染试剂，并按照说明书建议操作。
2. 转染前需要保证质粒DNA纯度和浓度足够，并进行必要的测定。
3. 细胞密度和培养时间应根据所选细胞类型进行调整。
4. 转染复合物与细胞接触时间不宜过长或过短，一般在4-6小时左右。
5. 培养过程中需要注意细胞状态的变化，并根据需要进行适当的处理。
五、实验结果解读通过细胞转染操作，可以实现外源性DNA、RNA、蛋白质等分子的导入，从而改变细胞的基因表达或功能。
实验结果可以通过Western blot、PCR等方法进行进一步验证。
PEI细胞转染液使用方法(标准版)
PEI细胞转染液是一种广泛应用于实验室的转染试剂，用于将外源DNA或RNA 转染到细胞中。
以下为PEI细胞转染液的标准使用方法：一、准备工作1. 细胞：选择合适的细胞类型，如HEK293、CHO等。
确保细胞状态良好，密度适中。
2. 转染试剂：PEI细胞转染液。
3. 外源DNA或RNA：需转染的基因或表达载体。
4. 实验器材：离心机、显微镜、培养皿、移液器等。
二、操作步骤1. 细胞培养：将细胞接种于适当的培养皿中，用含适当抗生素的培养基培养细胞。
将培养皿放入37℃、5% CO₂的培养箱中，进行细胞培养。
2. 转染液制备：根据实验要求，将PEI细胞转染液按照一定比例稀释。
一般情况下，可以使用10倍稀释的PEI细胞转染液。
3. 转染操作：（1）将稀释后的PEI细胞转染液与外源DNA或RNA混合均匀。
（2）用移液器将混合液滴加到细胞培养皿中，注意不要直接将液体倒在细胞上，以免破坏细胞。
（3）将培养皿轻轻摇晃，使转染液与细胞充分接触。
然后将培养皿放入培养箱中，继续培养。
4. 转染后处理：转染后的细胞需要继续培养，观察转染效果。
根据实验要求，可使用荧光显微镜、实时定量PCR等方法检测转染效果。
三、注意事项1. 操作过程中，应确保实验器材干净无菌，避免污染。
2. 转染过程中，应控制转染液的浓度和滴加速度，避免对细胞造成过度刺激。
3. 转染后，注意观察细胞状态，如出现异常情况，应立即处理。
4. 实验过程中，应遵循实验室安全规定，确保人身安全。
以上为PEI细胞转染液的标准使用方法。
实际操作过程中，可能因实验条件、细胞类型等因素而有所调整。
在实际应用中，请根据具体情况进行操作。
细胞转染的原理
细胞转染的原理一、细胞转染的基本概念细胞转染是指将外源性DNA或RNA等物质导入到细胞内，以达到改变细胞基因表达或功能的目的。
它是生物学研究中常用的技术手段之一，广泛应用于基因治疗、药物筛选和基因功能研究等领域。
二、细胞转染的方法1. 化学法：通过化学试剂（如聚乙烯醇、离子脂质体等）将DNA或RNA导入到细胞内。
这种方法简单易行，但毒性较大且效率不高。
2. 物理法：通过机械冲击（如电穿孔）、高压注射、微注射等方式将DNA或RNA直接注入到细胞内。
这种方法效率较高，但操作复杂且对细胞有一定伤害。
3. 病毒载体法：利用病毒作为载体将DNA或RNA导入到细胞内。
这种方法效率高，但存在安全隐患和限制性较大。
三、化学法转染原理1. 离子脂质体介导转染离子脂质体是由阳离子表面活性剂和阴离子脂质组成的复合物，具有良好的生物相容性和可生物降解性。
在转染过程中，DNA或RNA与离子脂质体形成复合物，通过静电作用与细胞膜结合并进入细胞内。
此外，离子脂质体还能促进细胞内吞作用和溶酶体逃逸，提高转染效率。
2. 聚乙烯醇介导转染聚乙烯醇（PEI）是一种阳离子聚合物，在水中能形成稳定的颗粒。
在转染过程中，PEI与DNA或RNA形成复合物，通过静电作用与细胞膜结合并进入细胞内。
PEI不仅能促进细胞内吞作用和溶酶体逃逸，还能与核糖体结合并促进基因表达。
四、化学法转染优缺点1. 优点：简单易行、操作方便、不需要专门设备。
2. 缺点：毒性较大、效率低、对不同类型的细胞有一定限制。
五、物理法转染原理1. 电穿孔法电穿孔法利用电场作用使细胞膜通透，形成微小孔道，从而将DNA或RNA导入到细胞内。
电穿孔法的优点是操作简单、效率高，但缺点是对细胞有一定伤害。
2. 高压注射法高压注射法是通过高压气流将DNA或RNA直接注入到细胞内。
这种方法效率高，但对细胞有较大的伤害。
3. 微注射法微注射法是在显微镜下使用微针将DNA或RNA直接注入到单个细胞内。
细胞转染实验报告结论(3篇)
一、实验背景细胞转染技术是现代分子生物学研究中的一种重要技术手段，它可以将外源DNA、RNA或其他生物大分子导入细胞内，从而实现对细胞功能的研究和调控。
本实验旨在通过细胞转染技术将目的基因导入细胞内，研究该基因在细胞中的表达情况和生物学功能。
二、实验目的1. 确保目的基因成功导入细胞内；2. 观察目的基因在细胞中的表达情况；3. 分析目的基因在细胞中的生物学功能。
三、实验方法1. 细胞培养：将HEK293细胞在含有10%胎牛血清的DMEM培养基中培养至对数生长期；2. 基因构建：通过PCR扩增目的基因，克隆至载体pEGFP-C1中；3. 转染：采用脂质体转染试剂将目的基因导入细胞内；4. 重组蛋白表达检测：通过Western blot检测目的蛋白的表达情况；5. 细胞功能分析：通过细胞实验（如细胞增殖、细胞凋亡等）分析目的基因在细胞中的生物学功能。
四、实验结果1. 成功构建目的基因表达载体：PCR扩增目的基因片段长度符合预期，测序结果与预期序列一致；2. 成功导入目的基因：转染后，细胞中绿色荧光蛋白（GFP）表达阳性；3. 目的蛋白表达：Western blot检测结果显示，转染细胞中目的蛋白表达水平显著高于未转染细胞；4. 细胞功能分析：通过细胞实验发现，目的基因的过表达对细胞增殖、细胞凋亡等生物学功能有显著影响。
1. 本实验成功构建了目的基因表达载体，并通过脂质体转染技术将目的基因导入细胞内；2. 目的基因在细胞内得到了有效表达，且表达水平显著高于未转染细胞；3. 目的基因的过表达对细胞增殖、细胞凋亡等生物学功能有显著影响，表明该基因在细胞中具有一定的生物学功能。
本实验结果表明，细胞转染技术是研究目的基因在细胞中表达和生物学功能的有效手段。
在今后的研究中，我们将进一步探讨目的基因在细胞中的具体作用机制，为相关疾病的诊断和治疗提供理论依据。
以下是对实验结果的详细分析：1. 成功构建目的基因表达载体：在实验过程中，我们通过PCR扩增目的基因，并克隆至载体pEGFP-C1中。
测定细胞转染率的方法
测定细胞转染率的方法测定细胞转染率的方法包括但不限于以下几种：1. 流式细胞术：使用流式细胞仪检测细胞中转染的荧光酶或核酸基因编码蛋白，从而估计出转染效率。
2. 西方印迹：使用含有转染基因的质粒和拷贝上载到细胞中，然后浸泡混合物在Tris-HCL液中，用十种或十种以上的底物H2O2转染，在光面板之前通过特殊仪器识别和检测，从而使得转染成功的拷贝被荧光染料打上标签，最终通过流式细胞术的仪器实现图像计数的方式，从而得出细胞转染效率。
3. Smoke一次实验：将带有“正向和反向质粒”备份体系（也称为插入串）转染到细胞中，每个细胞同时转染2-4种质粒，用特殊的染料标记每一次转染，通过流式细胞技术检测和图像分析仪识别和计数，结合正反质粒的表达情况，加以计算得出转染效率。
4. 对比序列分析法：在转染前后对某个区域的DNA序列进行对比，如果DNA片段数量较大，说明转染效率也就相对较高。
5. 实时定量PCR检测：实时荧光定量PCR (Quantitative Real-time PCR)是一种在DNA扩增反应中,以荧光化学物质测每次聚合酶链式反应(PCR)循环后产物总量的方法。
通过内参或者外参法对待测样品中的特定DNA序列进行定量分析的方法。
Real-time PCR是在PCR扩增过程中,通过荧光信号,对PCR进程进行实时检测。
由于在PCR扩增的指数时期,模板的Ct值和该模板的起始拷贝数存在线性关系,所以成为定量的依据。
但是,荧光定量PCR 所检测的是转染后细胞中待测基因的mRNA的表达水平,对于目的基因的蛋白表达水平不能够检测。
6. Wester Blot检测：Western Blot又称蛋白质免疫印迹(免疫印迹实验),其基本原理是通过特异性抗体对凝胶电泳处理过的细胞或者生物组织样品进行着色,并通过分析着色的位置和着色的深度获得特定蛋白在所分析的细胞或者组织中表达情况的信息。
以上方法仅供参考，具体操作请根据实际情况调整。
细胞转染原理
细胞转染原理细胞转染是一种常见的实验技术，用于将外源DNA、RNA或蛋白质引入细胞内，以实现基因表达、功能研究或治疗目的。
细胞转染的原理主要包括细胞膜穿透、内吞作用和内源转录等过程。
本文将对细胞转染的原理进行详细介绍，以帮助读者更好地理解和应用这一技术。
细胞膜穿透是细胞转染的第一步，其主要机制包括物理法、化学法和生物法。
物理法主要通过电穿孔、微注射和基因枪等手段，直接破坏细胞膜结构，使外源物质进入细胞内。
化学法则是利用阳离子聚合物、脂质体和高分子聚合物等化学试剂，通过与细胞膜相互作用，改变细胞膜的通透性，促进外源物质的进入。
生物法则是利用病毒载体，将外源DNA或RNA包裹在病毒颗粒内，通过感染细胞，将外源物质引入细胞内。
内吞作用是细胞转染的第二步，其主要包括胞吞作用和胞吐作用。
胞吞作用是指细胞将外界颗粒或液滴包围成囊泡，形成内吞体，然后将其引入细胞内部。
胞吐作用则是指细胞内的物质通过囊泡融合并释放到细胞外。
这两种作用是细胞对外界物质进行摄取和排泄的重要方式，也是细胞转染的重要环节。
内源转录是细胞转染的最后一步，其主要包括DNA转录、RNA翻译和蛋白质合成。
外源DNA进入细胞后，会被细胞核内的RNA聚合酶复制成mRNA，然后mRNA通过核孔进入细胞质，在核糖体上翻译成蛋白质。
这一过程是细胞基因表达和功能发挥的关键环节，也是细胞转染最终实现外源基因表达的重要步骤。
总的来说，细胞转染是一种通过改变细胞膜通透性，促进外源物质进入细胞内，然后通过内吞作用和内源转录等过程，实现外源基因表达和功能研究的技术。
掌握细胞转染的原理，对于开展基因转染、蛋白质表达、细胞治疗等研究具有重要意义，也有助于更好地理解细胞生物学和分子生物学的基本原理。
希望本文的介绍能够帮助读者更好地理解细胞转染的原理和应用。
细胞转染技术的不断发展，为科研工作者提供了更多的可能性，也推动了生命科学领域的进步。
相信随着对细胞转染原理的深入研究和技术的不断完善，细胞转染技术将在基础研究和临床应用中发挥更加重要的作用。
质粒转化细胞转染步骤
质粒转化细胞转染步骤质粒转化和细胞转染是两种常用的实验技术，用于将外源DNA引入到细胞中。
一般情况下，质粒转化用于细菌细胞，而细胞转染适用于非细菌的真核细胞。
以下将详细介绍质粒转化和细胞转染的步骤。
一、质粒转化质粒转化是将外源质粒DNA转移到细菌细胞中。
它通常与革兰氏阴性细菌（如大肠杆菌）一起使用，并且可以通过化学法、热冲击法或电穿孔法进行。
1.预处理细菌细胞：将细菌单克隆培养在含有抗生素的培养基中，以筛选出含有质粒的细胞。
通常使用革兰氏阴性细菌如大肠杆菌。
2.质粒DNA处理：将质粒DNA与细菌细胞一起孵育，以促进质粒与细菌细胞的结合。
孵育时间和孵育条件取决于所使用的方法。
3.转化：将孵育混合物涂布在含有适当营养物和抗生素的琼脂平板上，使质粒转移到接收细胞中。
4.筛选和鉴定：根据在琼脂平板上形成的菌落的形态、大小、颜色等特征进行筛选。
同时，还可以通过PCR、限制性酶切、测序等方法鉴定是否成功转化。
二、细胞转染细胞转染是将外源DNA引入到真核细胞中。
常见的方法包括化学转染、电穿孔转染和病毒载体转染。
1.预处理细胞：将目标细胞培养在适当的培养基中，使其达到适宜的生长状态。
2.DNA和转染试剂处理：将外源DNA与转染试剂（如转染剂、细胞渗透剂等）共同孵育，以增加DNA进入细胞的效率。
3.转染：将DNA和转染试剂的混合物加入到细胞培养物中，启动转染过程。
不同的转染方法有不同的具体操作步骤，如化学转染通过溶液浸泡法将DNA引入细胞，电穿孔转染通过电脉冲打开细胞膜孔，病毒载体转染通过病毒感染细胞等。
4.培养和筛选：将转染后的细胞培养在适宜的培养条件下，保证其正常生长。
根据转移的DNA携带的标记或筛选标志基因，使用特定的培养基或抗生素进行筛选。
5.鉴定：通过PCR、蛋白质表达分析、荧光染色等方法检测外源DNA 是否成功进入细胞，并得到所需的表达或功能。
综上所述，质粒转化和细胞转染是两种将外源DNA引入到细胞中的常见方法。
细胞转染实验步骤
细胞转染实验步骤嘿，你问细胞转染实验步骤？那咱就来好好聊聊。
做细胞转染实验啊，首先得准备好各种东西。
要有要转染的细胞，就像你要做饭得有食材一样。
然后得有转染试剂，这可是关键的玩意儿。
还有培养细胞的瓶子、培养基啥的。
不能少了这些家伙事儿。
接着呢，把细胞培养好。
把细胞放到合适的瓶子里，加上培养基，放在温暖的地方让它们好好生长。
就像你养小动物，得给它们一个舒服的地方。
得看着细胞长得差不多了才能进行下一步。
然后就是准备转染试剂啦。
按照说明书，把转染试剂弄好，不能弄错了比例啥的。
这就像你调饮料，比例不对味道可就不好了。
再把转染试剂和要转染的东西混合在一起。
可以是DNA 啊、RNA 啊啥的。
混合的时候要轻轻搅拌，不能太用力，不然会把细胞弄坏。
就像你搅拌鸡蛋，不能太猛了把鸡蛋弄破。
接着把混合好的东西加到细胞里。
要小心点，不能洒出来。
就像你给花浇水，不能浇得满地都是。
加完之后轻轻晃一晃瓶子，让它们混合均匀。
然后就是等待啦。
让细胞和转染的东西在一起待一段时间，让它们好好反应。
这时候可不能着急，不能老是去动瓶子。
就像你等蛋糕烤熟，不能老是打开烤箱看。
最后看看转染的效果怎么样。
可以用显微镜看看细胞有没有变化，或者做一些检测。
要是效果不好，就得找找原因，下次改进。
就像你做的菜不好吃，得想想是哪里出了问题。
我给你讲个事儿吧。
我有个同学，他做细胞转染实验。
一开始他手忙脚乱的，不是忘了这个就是弄错了那个。
后来他仔细按照步骤来，一步一步做好。
哇，最后转染成功了，他可高兴了。
从那以后，他做实验就更认真了。
所以啊，细胞转染实验要准备好东西，培养细胞，准备转染试剂，混合，加到细胞里，等待，最后看看效果。
只要你认真做，就能做好这个实验。
加油吧！。
细胞转染 Protocol
细胞转染是一种常用的生物技术，用于将外源基因或药物引入细胞中。
下面是细胞转染的实验原理、所需试剂和耗材、实验仪器、准备工作、实验方法、注意事项、常见问题及解决方法。
一、实验原理细胞转染是利用细胞膜的通透性，将带有特定基因或药物的载体分子导入细胞内。
常用的载体分子包括病毒载体和非病毒载体。
病毒载体如腺病毒、逆转录病毒等，能将外源基因高效地导入细胞中，但可能对细胞产生一定毒性。
非病毒载体如脂质体、阳离子聚合物等，相对安全，但导入效率较低。
通过细胞转染，可以实现对基因的表达调控，探索基因功能和药物筛选等研究。
二、所需试剂和耗材1.试剂：o培养基：如DMEM、F12等，用于细胞培养。
o血清：如胎牛血清，提供细胞生长所需的营养物质。
o抗生素：如青霉素、链霉素等，用于防止细胞污染。
o转染试剂：如Lipofectamine、Effectene等，用于细胞转染。
o DNA或RNA：携带目的基因的质粒或寡核苷酸。
2.耗材：o细胞培养瓶、板：用于细胞培养。
o离心管：用于细胞转染后洗涤和离心。
o移液器及枪头：用于精确加样。
o过滤器：用于过滤溶液中的杂质。
o无菌水：用于稀释和配制溶液。
三、实验仪器1.实验室搅拌器：用于混合溶液。
2.高速冷冻离心机：用于离心和分离细胞。
3.水浴锅：用于加热溶液。
4.无菌工作台或超净工作台：用于进行无菌操作。
5.分光光度计：用于测量细胞生长状况和转染效率。
6.荧光显微镜：用于观察细胞转染后荧光蛋白的表达情况。
7.CO2培养箱：提供细胞培养所需的气体环境。
四、准备工作1.仔细阅读实验步骤和注意事项，了解所需的试剂和耗材及其使用方法。
2.准备好所需的试剂和耗材，并确保它们处于保质期内。
3.检查实验室内是否具备上述实验仪器，并确保其正常运行。
4.用70%乙醇擦拭实验台面，以确保无菌环境。
5.用高压蒸汽灭菌法灭菌所有的实验器具，包括离心管、移液器等，需在适当的压力和温度下进行灭菌处理，以消除所有潜在的污染源。
详细描述细胞转染步骤
详细描述细胞转染步骤细胞转染是指将外源DNA或RNA引入细胞内，使其表达或干扰靶基因的过程。
该技术在基因工程、药物筛选和疾病研究中发挥着重要作用。
下面将详细介绍细胞转染的步骤。
1. 细胞培养准备在进行细胞转染之前，首先需要准备好细胞培养基和细胞。
常用的细胞包括哺乳动物细胞（如HEK293细胞、HeLa细胞等）和昆虫细胞（如Sf9细胞、S2细胞等）。
细胞应保持在良好的生长状态，通常需要在无菌条件下培养，并在适当的培养基中维持其生长。
2. DNA/RNA准备在进行细胞转染之前，需要准备好要转染的DNA或RNA。
DNA可以是质粒DNA、线性DNA或合成DNA，而RNA可以是mRNA或siRNA。
这些外源DNA/RNA应在实验室中进行合成或提取，并经过纯化、测序等步骤进行质检。
3. 转染试剂选择根据实验需要和细胞类型的特点，选择合适的转染试剂。
常用的转染试剂包括离子脂质体、阳离子聚合物和电穿孔等。
离子脂质体适用于多种细胞类型，而阳离子聚合物则更适用于特定细胞类型。
电穿孔则可用于绝大多数细胞类型。
4. 转染操作将细胞用适当的细胞培养基进行洗涤，以去除残留的培养基和细胞代谢物。
然后将细胞转移到新的培养基中，并使其适应新的培养条件。
接下来，将转染试剂与DNA/RNA混合，并在室温下孵育一段时间，以使其形成复合物。
然后将复合物加入到细胞培养基中，与细胞进行共培养。
5. 转染后处理转染后，细胞需要在适当的培养条件下继续培养，以使其表达或干扰靶基因。
在此期间，可以根据实验需要添加适当的选择抗生素或标记物，以筛选或鉴定转染细胞。
同时，还可以通过荧光显微镜观察转染效率，并进行定量分析。
6. 细胞检测和分析在转染后的一段时间内，可以通过PCR、RT-PCR、Western blot等方法，检测和分析靶基因的表达或干扰效果。
此外，还可以通过细胞增殖、凋亡、迁移等实验，研究转染对细胞生物学行为的影响。
7. 数据分析和结果解读根据实验结果，进行数据分析和结果解读。
细胞转染原理
细胞转染原理细胞转染是一种常用的实验技术，用于将外源DNA、RNA或蛋白质等分子引入细胞内，以实现基因敲除、过表达、信号转导研究等目的。
细胞转染技术的原理是利用化学、物理或生物学方法，使外源分子穿过细胞膜，进入细胞内部。
本文将介绍细胞转染的原理及常用的转染方法。
细胞转染的原理主要包括细胞膜渗透性增加、内吞作用和融合作用。
首先，细胞膜渗透性增加是指通过物理或化学手段使细胞膜通透性增加，使外源分子能够穿过细胞膜进入细胞内。
其次，内吞作用是指细胞通过吞噬囊泡将外源分子包裹起来，形成内吞泡，然后将其输送到细胞内部。
最后，融合作用是指外源分子与细胞膜融合，直接进入细胞内。
常用的细胞转染方法包括化学转染、电穿孔法、基因枪法和病毒载体法。
化学转染是利用化学试剂（如聚乙烯亚胺、脂质体等）破坏细胞膜，使外源分子进入细胞内。
电穿孔法是利用电场作用使细胞膜通透性增加，使外源分子进入细胞内。
基因枪法是将外源分子包裹在微粒上，通过高速射击使其穿过细胞膜进入细胞内。
病毒载体法是利用病毒载体将外源分子转染入细胞内。
细胞转染技术在基因工程、细胞治疗、药物筛选等领域具有广泛的应用。
通过转染技术，可以实现基因敲除、外源基因表达、蛋白质功能研究等多种实验目的。
在细胞治疗领域，细胞转染技术可以用于将修饰后的细胞注入患者体内，治疗一些遗传性疾病或癌症。
在药物筛选领域，细胞转染技术可以用于快速筛选药物的活性和毒性，加快新药研发的速度。
总之，细胞转染技术是一种重要的实验手段，可以帮助科研人员进行基因功能研究、新药筛选和细胞治疗等工作。
通过深入了解细胞转染的原理和常用方法，可以更好地应用这一技术，推动科学研究和医学进步。
细胞转染的方法和基本原理
细胞转染的方法和基本原理细胞转染是生物学研究中常用的实验技术，用于将外源DNA、RNA或蛋白质引入到靶细胞中。
本文将介绍细胞转染的方法和基本原理。
一、细胞转染的方法1. 化学法转染：化学法转染是最常用的细胞转染方法之一。
通过利用化学物质如聚乙烯亚胺（PEI）或脂质体等，将外源DNA或RNA 包裹成复合物，与细胞膜结合后进入细胞。
这种方法操作简单、成本低廉，适用于多种细胞类型。
但转染效率较低，对细胞有一定毒性。
2. 病毒载体转染：病毒载体转染是一种高效的细胞转染方法。
病毒载体可以将外源基因嵌入病毒基因组中，然后通过感染细胞的方式将基因导入细胞内。
常用的病毒载体有腺病毒、逆转录病毒等。
这种方法转染效率高，适用于多种细胞类型，但需要特殊设备和技术，同时也有一定的生物安全风险。
3. 电穿孔法转染：电穿孔法利用高压脉冲作用于细胞膜，破坏细胞膜结构，从而使外源DNA或RNA进入细胞。
这种方法操作简单，转染效率较高，但对细胞有一定的毒性，并且只适用于某些特定的细胞类型。
4. 基因枪法转染：基因枪法是一种生理穿孔法，通过利用高压气体或火药驱动基因枪，将外源DNA或RNA以微粒形式直接射入细胞。
这种方法适用于多种细胞类型，转染效率较高，但需要特殊设备和技术，并且对细胞有一定的毒性。
二、细胞转染的基本原理细胞转染的基本原理是通过一定的方法将外源DNA、RNA或蛋白质引入靶细胞，使其在细胞内表达或功能发挥。
转染后的细胞可以用于研究基因功能、蛋白质表达及相互作用等。
细胞转染的基本原理可以分为三个步骤：吸附、内化和表达。
1. 吸附：在化学法转染中，外源DNA或RNA会与载体相结合形成复合物，通过静电作用与细胞膜结合。
在病毒载体转染中，病毒载体会与细胞膜表面的受体结合。
吸附是转染的第一步，直接影响转染效率。
2. 内化：吸附后，外源DNA、RNA或蛋白质需要进入细胞内部。
在化学法转染中，复合物通过细胞膜的内吞作用或直接渗透进入细胞质。
细胞转染流程
细胞转染流程细胞转染就像是给细胞送一份特殊的“快递”，这个“快递”里装着我们想要细胞接受的东西，比如说新的基因之类的。
那咱们就开始这细胞转染之旅吧。
在做细胞转染之前，你得先把细胞照顾好。
细胞就像娇嫩的小宝贝，要给它们一个舒适的“家”，这个“家”就是培养皿啦。
得把细胞在合适的培养基里养着，温度要刚刚好，就像人住在温度适宜的房子里一样舒服。
要是温度不合适，细胞就会闹脾气，就像人在过热或者过冷的环境里会不舒服一样。
而且培养基里的营养成分得充足，就好比给孩子的饭菜得营养全面，这样细胞才能长得壮壮的，有精力来接受我们要给它的“快递”。
接下来就是准备转染试剂和要转染的核酸啦。
这转染试剂就像是专门的快递员，它的任务就是把核酸这个“包裹”送到细胞里面去。
核酸呢，可以是DNA，也可以是RNA，这就看你想让细胞做什么了。
你得按照说明书，精确地量取转染试剂和核酸的量。
这就好比做菜的时候，盐放多了或者放少了都不行，得恰到好处。
要是转染试剂或者核酸的量不对，那这个“快递”可能就送不好，细胞可能就接收不到正确的“包裹”。
然后就是把转染试剂和核酸混合在一起。
这时候就像是快递员把包裹打包好一样，要轻柔地操作。
不能太粗暴，不然可能会把“包裹”弄破或者弄乱了。
混合好之后，还得让它们静静地待一会儿，就像给快递员一点时间整理一下包裹，确保一切都准备妥当。
再把这个混合好的东西加到细胞培养皿里。
这就像是把打包好的快递送到细胞的“家门口”了。
细胞看到这个“快递”，就会想办法把它“拿”进去。
这个过程有点像细胞在门口迎接快递员，然后把包裹拿进自己的家里。
不过细胞拿这个“包裹”进家可不容易，有时候可能会失败，就像快递员有时候会送错地址一样。
在细胞接收这个“快递”的过程中，我们得在旁边静静地看着。
就像等着孩子拆礼物一样，充满期待又有点小紧张。
我们得观察细胞的状态，看看它们有没有什么不良反应。
如果细胞开始变得无精打采，或者形态变得奇怪，那就可能是转染出问题了。
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磷酸钙法
即磷酸钙共沉淀转染法，先将DNA和氯化钙混合， 然后加入到PBS中慢慢形成DNA磷酸钙沉淀，最 后把含有沉沉淀的混悬液加到培养的细胞上， 通过细胞胞膜的内吞作用摄入DNA。磷酸钙似乎 还通过抑制血清中和细胞内的核酸酶活性而保 护外源DNA免受降解。
磷酸钙法
核酸以磷酸钙-DNA共沉淀物的形式出现时，可 使DNA附在细胞表面，利于细胞吞入摄取，或通 过细胞膜脂相收缩时裂开的空隙进入细胞内， 进入细胞的DNA仅有1%～5%可以进入细胞核中， 其中仅有不到1%的DNA可以与细胞DNA整合，在 细胞中进行稳定表达，基因转导的频率大约为 10-4，这项技术能用于任何DNA导入哺乳类动物 进行暂时性表达或长期转化的研究。此方法对 于贴壁细胞转染是最常用并首选的方法。
脂质体转染法
阳离子脂质体表面带正电荷，能与核酸的磷酸 根通过静电作用，将DNA分子包裹入内，形成 DNA脂复合物，也能被表面带负电的细胞膜吸附， 再通过融合或细胞内吞进入细胞。
脂质体转染法
脂质体转染法
1. 脂质体转染适用于把DNA转染入悬浮或贴壁培养 细胞，可用于瞬时转染和稳定转染。 2. 转染效率高，比磷酸钙法高5-100倍。 3. 能够把DNA和RNA转染到各种细胞。 4. 转染的稳定性好，可重复性高。 5. 转染时最好不加血清和抗生素。 6. 阳离子脂质体细胞毒性相对较高，对部分细胞可 能会干扰细胞的代谢。由于脂质体对细胞有一定 的毒性，所以转染时间一般不超过24小时。 7. 常用细胞类型：cos-7 、BHK、NIH3T3 、Hela等。
理想的细胞转染
转染效率高，不影响细胞正常生理活动 细胞毒性 重复性好 安全 方法简单 省时、经济
报告基因
一种编码可被检测的蛋白质或 酶的基因，是一个其表达产物 非常容易被鉴定的基因。把它 的编码序列和基因表达调节序 列相融合形成嵌合基因，或与 其它目的基因相融合，在调控 序列控制下进行表达，从而利 用它的表达产物来标定目的基 因的表达调控。
病毒介导的转染
以病毒作为载体，通过病毒感染的方式将外源 DNA导入到细胞中，其中以逆转录病毒及腺病毒 转染系统最为常用。
病毒介导的转染
对于脂质体转染与电穿孔转染都无法成功转染 的细胞系建议用病毒感染，此法可以快速100% 感染，检测成功率高。 病毒介导的转染技术，是目前转染效率最高的 方法，同时具有细胞毒性很低的优势。但是， 病毒转染方法的准备程序复杂，常常对细胞类 型有很强的选择性，在一般实验室中很难普及。
稳定转染
稳定转染分析方法的主要优点：进行分析的调控区 及报道基因通常位于近乎天然的染色质构象中，具 有近乎天然的拷贝数，这些特点使调控区能更精确 地模拟正常功能。在稳定转染分析中，因对转染的 细胞进行了选择性扩增，所以克服子了瞬转细胞吸 收DNA少的缺点。稳定转染分析的另一个特点是对随 后的转录分析没有时间限制。因此，稳定转染对所 需时间相对较长的研究非常有用。 稳定转染分析的缺点是因为要进行药物筛选和细胞 扩增，因此操作难度较大，需要的时间较长。
绿色荧光蛋白（GFP）
其基因所产生的蛋白质，在 蓝色波长范围的光线激发下， 会发出绿色萤光。转染后的 细胞可在活细胞工作站或流 式细胞仪(FACS)中直接观察 或检测基因的表达。
GFP的特点
可溶性蛋白，性质稳定。 荧光基因相对明亮。 荧光在活细胞中即可观察，不需要固定和组织 加工。 GFP基因和目的基因做成融合蛋白后，可以通过 转染的方法在细胞中稳定表达。
作为报告基因必须具备的条件
全序列已测定。 表达产物在受体细胞中不存在，即无背景，在 被转染的细胞中无相似的内源性表达产物。 其表达产物能进行定量测定。
常用的报告基因系统
半乳糖苷酶报告系统 荧光素酶报告系统 荧光蛋白报告系统
绿色荧光蛋白（GFP） EBFP Vectors (Blue Fluorescent Protein) ECFP Vectors（Cyan Fluorescent Protein） EYFP Vectors (Yellow Fluorescent Protein)
细胞转染途径
物理介导 电穿孔法（瞬时转染、稳定转染、所有细胞） 显微注射（瞬时转染、稳定转染） 基因枪（瞬时转染） 化学介导 DEAE-葡聚糖法（瞬时转染） 磷酸钙法(瞬时转染、稳定转染) 脂质体转染法（瞬时转染、稳定转染、所有细胞） 生物介导-病毒介导法 逆转入病毒介导的转染（稳定转染特定宿主细胞） 腺病毒介导的转染（瞬时转染特定宿主细胞）
影响转染效率的主要因素
抗生素：细胞培养过程中往往会添加抗生素来 防止污染，但是这些添加剂可能对转染造成影 响。 氮磷（N/P）比：在一定比例范围内转染效率随 N/P 比成比例增高，但毒性也随之而增加。 DNA 质量：对转染效率影响非常大。 载体构建：不同病毒载体有其特定的宿主。
影响转染效率的主要因素
转染试剂 在转染实验前应根据实验要求和细胞特性选择 适合的转染试剂。 细胞状态 最适合转染的细胞是经过几次传代后达到指数 生长期的细胞，细胞生长旺盛，最容易转染。
影响转染效率的主要因素
转染方法 细胞培养物:健康的细胞培养物是成功转染的基 础。一定要避免细菌，支原体或真菌的污染。 细胞密度:转染时过高或者过低的细胞密度会导 致转染效率降低，乃至表达水平偏低。 血清:血清是一种包含生长因子及其它辅助因子 的不确切成分的添加物。血清质量的变化直接 影响细胞生长，因此也会影响转染效率。
瞬时转染
该方法是通过一定的转染程序将含目的调控区的质粒导人培 养细胞。在典型情况下，调控区调控“报告基因”的转录。 报告基因是在mRNA和蛋白质的水平上都易于被正确检测到的 基因。产生的质粒在培养细胞中转录后，在特定时刻测定从 报告基因上合成的mRNA或蛋白质，以评价调控区的活性。人 们将这种分析方法称为瞬时转染分析。 此时质粒仍然以附加的形式存在，很少整合进宿主基因组。 因此，mRNA或蛋白质产物必须在短时间内(1～3天)进行测定， 否则随着细胞的生长和分裂，质粒会被降解或稀释。 虽然瞬时转染分析法具有多种局限性，但该方法仍然常用于 对顺式作用DNA序列和调控基因表达的反式因子进行初步分析。
瞬时转染
优点：瞬时转染分析法快捷、简单，易于对结果定 量，因此成为启动子功能分析的首选方法。 瞬时转染分析法也有两个主要局限性：首先在被转 染的细胞中，质粒的人工构象和拷贝数可能会导致 特异性调控元件失活或具有特异功能；其次，瞬时 转染分析法不能用于检测那些需诱导或分化时间超 过48～72小时时间期限的研究。
电穿孔法
细胞电穿孔
DNA进入细胞
电穿孔法
缺点： 需要昂贵的仪器（电穿孔 仪）。 每种细胞电转的条件都需要 进行多次优化：电脉冲和场 强的优化对于成功的转染非 常重要，因为过高的场强和 过长的电脉冲时间会不可逆 地伤害细胞膜而裂解细胞。 一般情况下，高电场强度会 杀死50%-70%的细胞。
显微注射
借助显微注射器 直接把DNA注射入 核内，使之发生 整合入受体细胞 基因组中的技术。
显微注射
优点：转染效率较高，可用于稳定转染和瞬时 转染。 缺点：在导入DNA时需要一个细胞一个细胞地注 射，不适合大量转染细胞研究的需要。 适用范围：适用于制备转基因动物。
基因枪
依靠携带了核酸的高速离子而将核酸导入细胞 内。 可以将大分子导入细胞。
细胞转染
细胞转染技术：指将外源分子如DNA、
RNA等导入真核细胞的技术。它是研究基因 表达调控、突变分析、蛋白质生产等的常规 工具。
常规转染技术可分为瞬时转染和稳定转染两大类。
瞬时转染：
指外源基因进入受体细胞后，存在于 游离的载体上，不整合在细胞的染色 体上。
稳定转染：
DNA整合到宿主细胞的染色体中。
稳定转染
将含有报告基因和抗药性基因 的质粒转染培养细胞，培养基 中加入能杀死不稳定表达抗药 性基因细胞的药物，部分质粒 被稳定地整合到染色体上。多 数情况下，在细胞中多个质粒 分子彼此相连形成多联体，多 联体随机整合到多联体基因组 中，因此每个被稳定转染的细 胞都具有独特的整合位点。然 后通过测定被稳定转染细胞中 报道基因的活性，来确定目的 调控区的活性。
DEAE-葡聚糖法
DEAE-葡聚糖是最早应用哺乳动物细胞转染试剂之 一，DEAE-葡聚糖是阳离子多聚物，它与带负电的 核酸结合后接近细胞膜而被摄取，用DEAE-葡聚糖 转染成功地应用于瞬时的研究，但用于稳定转染 却不是十分可靠。可以将大分子导入细胞。 转染效率与DEAE-葡聚糖浓度以及细胞与 DNA/DEAE-葡聚糖混合液接触时间的长短很有关系。
电穿孔法
电流能够可逆地击穿细胞膜形成瞬时的水通路 或膜上小孔促使DNA分子进入胞内，这种方法就 是电穿孔。 本法需要用特殊设置（电穿孔仪），把悬浮状 态的受体细胞和供体DNA共同放入皿中（或杯 中），再施以高压电脉冲，能够促进DNA通过细 胞膜而进入胞内，并可整合到细胞DNA中，使细 胞发生转化。