囊胚滋养层细胞活检技术的优势及操作解析

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胚胎植入前遗传学诊断

胚胎植入前遗传学诊断

胚胎植入前遗传学诊断(Preimplantation Genetic Diagnosis ,PGD)一、定义胚胎种植前遗传学诊断(PGD)就是指在体外受精过程中,对具有遗传风险患者得胚胎进行种植前活检与遗传学分析,以选择无遗传学疾病得胚胎植入宫腔,从而获得正常胎儿得诊断方法,可有效地防止有遗传疾病患儿得出生。

植入前遗传学诊断就是随着人类辅助生殖技术,即“试管婴儿”技术发展而开展起来得一种新技术,它就是产前诊断得延伸,遗传学诊断得又一更有希望得新技术。

二、意义(一) 对高龄孕妇与高危妇女进行PGD可以有效地避免遗传病患儿得出生。

(二) 可以有效地避免传统得产前诊断技术,对异常胚胎进行治疗性流产,避免中期妊娠遗传诊断及终止妊娠所致得危险及痛苦。

(三) PGD技术得产生与完善可以排除遗传病携带者胚胎,阻断致病基因得纵向传递,从而降低人类遗传负荷。

三、适应征理论上只要有足够得序列信息,PGD能针对任何遗传条件进行诊断,即凡就是能够被诊断得遗传病都可以通过PGD来防止其患儿出生。

进行PGD得主要对象就是可能有遗传异常或高危遗传因素,需要产前诊断得病例,尤其就是可能同时具有两种以上不同得遗传异常情况。

PGD现已用于一些单基因缺陷得特殊诊断,包括Duchenne型肌营养不良、脆性X综合征、黑朦性白痴(Tay Sachsdiseade)、囊性纤维病(cysticfibrosis)、Rh血型、甲型血友病、镰型细胞贫血与地中海贫血、进行性营养不良、新生儿溶血、21抗蛋白缺乏症,、粘多糖贮积症(MPS)、韦霍二氏脊髓性肌萎缩(Werding Hoffman disease),还有染色体异常如Down’S综合征、18三体,罗氏易位等。

四、植入前遗传学诊断得取材可从胚胎着床前各个阶段活检取样,获取其遗传物质信息进行诊断。

目前多采用激光打孔、机械切割或Tyrode酸化打孔后吸出细胞得方法取材。

(一)极体极体细胞可以使用第一极体或第二极体,它们在胚胎发育与合子形成中就是非必须得,因而不影响卵子受精与正常发育,且不会引起伦理学上得争议。

2020届高考生物复习之大题精做15 胚胎工程 教师版

2020届高考生物复习之大题精做15  胚胎工程  教师版

例1.研究人员将能编码绿色荧光蛋白(GFP )的基因嵌入长尾猕猴的卵子中,然后再让其受精,最终生下来的小猴身上就有这种能编码绿色荧光蛋白的基因。

研究人员希望利用这种转基因猴来研究人类疾病,例如假若能将编码荧光蛋白的基因和一些疾病的致病基因一起嵌入猴子的受精卵,可能有助于发现人类某些疾病的发病机制,进而开发新疗法。

请回答下列有关问题:(1)为了使绿色荧光蛋白基因成功表达,需要把该基因片段正确插入表达载体的 与 之间。

如要扩增该基因,需要借助PCR 技术,该技术离不开 酶的催化。

(2)科研人员欲将能发出绿光的长尾猕猴的早期胚胎进行分割,应选择发育良好、形态正常的 胚。

尽管胚胎分割技术已在多种动物中取得成功,但仍存在一些问题,如 (要求答出两点)等。

(3)长尾猕猴的受精过程主要包括: ,进入卵细胞膜, 。

【答案】(1)启动子 终止子 热稳定DNA 聚合(或Taq )(2)桑椹胚或囊 刚出生的动物体重偏低,毛色和斑纹上还存在差异(3)精子穿越放射冠和透明带 原核形成和融合【解析】(1)为了使绿色荧光蛋白基因成功表达,需要把该基因片段正确插入表达载体的启动子与终止子之间。

PCR 技术中,需要用到热稳定DNA 聚合酶(Taq 酶)。

(2)进行胚胎分割时,应选择发育良好、形态正常的桑椹胚或囊胚。

胚胎分割技术存在的问题有:刚出生的动物体重偏低,毛色和斑纹上还存在差异等。

(3)哺乳动物的受精过程主要包括:精子穿越放射冠和透明带,进入卵细胞膜,原核形成和融合。

例2.为了预防线粒体缺陷可能导致的先天性心脏病、失明、肝衰竭等多种疾病,医生利用基因工程技术对受精卵实施基因改造,在实施这些新技术时,医生将捐献者卵子的细胞核DNA 移走,再将母亲卵子的细胞核DNA 移入捐献者的卵子中。

从基因角度看,以新技术孕育的试管婴儿将有一位父亲和两位母亲,即所谓的“三亲试管婴儿”。

如图为某男婴孕育过程,回答下列问题:(1)图示过程中代表该男婴母亲卵母细胞的是____________,由于女性的自然周期产生的卵子太少,故卵精选大题 胚胎工程大题精做十五母细胞捐献者在取卵前通常要注射________激素,促使一次有更多的卵泡发育。

PGT-A嵌合型胚胎的遗传咨询与移植策略中国专家共识

PGT-A嵌合型胚胎的遗传咨询与移植策略中国专家共识

PGT-A嵌合型胚胎的遗传咨询与移植策略中国专家共识摘要随着高通量遗传学检测技术在胚胎着床前非整倍体遗传学检测(PGT-A)领域的广泛应用,PGT-A中嵌合型胚胎的实验室检测标准、诊断阈值标准、筛选取舍原则、移植前和移植后妊娠期相关遗传咨询等问题,给临床工作带来了较大挑战。

为了更好地规范和指导PGT-A 中嵌合型胚胎的临床处理,由中国医师协会生殖医学专业委员会、中华医学会生殖医学分会牵头,组织国内27个省、自治区、直辖市的多位生殖医学专家和PGT专业技术人员,结合现有的循证医学证据并参考国际同行的相关意见,针对嵌合型胚胎的发生机制、检出的相关因素、分类、PGT-A技术平台的质量控制、报告原则以及嵌合型胚胎的遗传咨询、移植策略、妊娠后产前检查及随访等方面进行深入讨论,制定本共识,提供关于PGT-A嵌合型胚胎移植的遗传咨询及移植策略的指导建议以及嵌合型胚胎临床处理的参考建议,供生殖临床及PGT 实验室参考。

嵌合型胚胎是指包含两种及两种以上遗传学不同的细胞系的胚胎,在植入前的胚胎中较为常见,占囊胚期胚胎的5%~15%[1,2,3]。

近年,随着囊胚滋养层细胞活检(trophectoderm biopsy)以及高通量遗传学检测技术如微阵列比较基因组杂交(array-based comparative genomic hybridization,aCGH)、单核苷酸多态性微阵列(single nucleotide polymorphism array,SNP array)、基因组拷贝数变异测序(copy number variant sequencing,CNV-Seq)等在胚胎着床前遗传学检测(preimplantation genetic testing,PGT)中的广泛使用,通过对体外受精(in vitro fertilization,IVF)胚胎的囊胚滋养层细胞活检所获得的数个细胞进行全基因组扩增及高通量遗传学检测分析,当检测到有染色体中间拷贝数异常,提示其可能为嵌合型胚胎[4,5,6]。

浅谈滋养层细胞在胚胎植入中的作用

浅谈滋养层细胞在胚胎植入中的作用

题目:浅谈滋养层细胞在胚胎植入中的作用院-系:生命科学与技术学院专业:08生科姓名:学号:上课时段:周二(10、11)浅谈滋养层细胞在胚胎植入中的作用摘要:胚胎植入是哺乳动物生殖的关键环节, 是一个非常复杂的过程。

本文通过滋养层细胞的来源、生长、功能分化对滋养层细胞进行了概要的叙述,并对滋养层细胞在胚胎植入中的作用的阐述,为进一步阐明胚胎植入的分子机制提供思路。

关键词:胚胎植入;滋养层细胞Abstract:Embryo implantation is an important and complicated physiological process in mammalian reproduction.The paper introduce embryo implantation by elaborating the origin growth, functional differentiation of trophoblast cells .The aim of the review is to suppor t some idea oft he molecule mechanism in the embryo implantat ion by expatiating the role of embryonic tr ophocytes in imbedding.Key words: trophcyte; embryo implantation;胚胎植入(emb ryo imp lan tat ion) 是指从卵子受精到胚泡着床的一系列细胞或分子生物学事件, 主要包括游离胚泡(f ree b lastocyst)、粘附和穿透(at tachmen t and penet rat ion)以及胎盘形成(p lacen tat ion) 。

这一过程受许多因素的精确调节。

激素、细胞因子、生长因子、粘附分子和细胞外基质均参与调节哺乳动物胚胎植人过程。

胚胎植入前遗传学诊断名词解释

胚胎植入前遗传学诊断名词解释

胚胎植入前遗传学诊断名词解释胚胎植入前遗传学诊断简介胚胎植入前遗传学诊断(Preimplantation Genetic Diagnosis,PGD)是一种常用于辅助生殖技术的遗传学检测方法。

它通过对胚胎进行基因检测,以筛查或诊断可能携带某种遗传疾病的胚胎,并选择健康的胚胎进行植入到母体子宫内,从而降低将遗传疾病传递给后代的风险。

胚胎植入前遗传学诊断的步骤1.体外受精(In Vitro Fertilization,IVF):通过促排卵药物促进卵巢发育并采集女性多个成熟卵子,然后将卵子与精子在实验室中结合,使其受精形成受精卵。

2.胚胎培养:受精卵在实验室中进行培养,通常持续3-5天。

在此期间,受精卵会发育为多个细胞的团块,称为胚胎。

3.胚胎细胞取样:在胚胎培养的特定时间点,通过取样技术,如取卵细胞进行基因检测。

通常有两种主要的取样方法:细胞外囊胚活检(BlastomereBiopsy)和滋养层细胞活检(Trophectoderm Biopsy)。

–细胞外囊胚活检:在第三天的8-10个细胞阶段,通过取一个或多个细胞来进行基因检测。

–滋养层细胞活检:在第五天的100-150个细胞阶段,通过取一部分滋养层细胞来进行基因检测。

4.基因检测:从取样的胚胎细胞中提取DNA,并进行遗传学分析。

常用的遗传学分析方法包括:–多态性位点分析(Polymorphic Marker Analysis):通过分析特定位点上的多态性标记来确定是否携带某种遗传疾病。

–针对特定突变位点的PCR扩增(Polymerase Chain Reaction,PCR):通过PCR扩增特定突变位点的DNA片段,并进行序列分析来确定是否携带某种遗传疾病。

–数字PCR(Digital PCR):通过将DNA分子分隔成数百万个微小的反应室,并计算每个反应室中的DNA分子数量,来检测特定突变位点的存在。

–着丝粒染色体检测(Fluorescence In Situ Hybridization,FISH):通过使用荧光探针标记染色体特定区域的DNA序列,来检测染色体异常。

囊胚滋养层和内细胞团的分离

囊胚滋养层和内细胞团的分离

囊胚滋养层和内细胞团的分离囊胚滋养层和内细胞团的分离是一项重要的技术,它在胚胎移植和生殖医学研究中扮演着重要的角色。

囊胚滋养层是胚胎发育的外层细胞群,它提供了胚胎所需的营养和支持,并起到保护胚胎的作用。

内细胞团是发育为胚胎本体的细胞群,它具有胚胎干细胞的潜能,可以分化为各种类型的细胞。

囊胚滋养层和内细胞团的分离是在体外培养胚胎的过程中进行的。

首先,需要获得一批早期胚胎,这些胚胎可以是通过体外受精得到的,也可以是通过体外受精后进行胚胎激活得到的。

然后,利用显微镜和胚胎操作技术,将囊胚滋养层和内细胞团分离开来。

具体操作过程如下:首先,将胚胎置于培养皿中,并加入一定浓度的胰蛋白酶或胰蛋白酶溶液。

胰蛋白酶可以降解细胞间的粘附物质,从而使细胞易于分离。

然后,利用显微镜下的吸管或显微针,轻轻地将囊胚滋养层和内细胞团分离开来。

在分离过程中,需要注意操作的轻柔和准确,以避免对胚胎造成伤害。

分离后的囊胚滋养层和内细胞团可以用于不同的研究目的。

囊胚滋养层可以用于评估胚胎发育的质量和健康状况,也可以用于检测基因突变和染色体异常。

内细胞团则可以用于胚胎干细胞的培养和研究,以及胚胎发育的分子机制和调控机制的研究。

囊胚滋养层和内细胞团的分离技术在生殖医学领域具有广泛的应用前景。

它可以为胚胎移植提供更准确的评估和选择标准,提高移植成功率。

同时,通过研究囊胚滋养层和内细胞团的分离,可以深入了解胚胎发育的分子机制和调控机制,为人类生殖健康问题的研究提供重要的理论和实验基础。

然而,囊胚滋养层和内细胞团的分离技术仍然存在一些挑战和难点。

首先,分离过程中需要非常精确的操作技术和仪器设备,以避免对胚胎造成伤害。

其次,分离后的细胞需要进行进一步的培养和鉴定,以确保其质量和纯度。

最后,分离技术的标准化和规范化仍然需要进一步的研究和探索。

总之,囊胚滋养层和内细胞团的分离是一项重要的技术,它在胚胎移植和生殖医学研究中具有广泛的应用前景。

通过分离囊胚滋养层和内细胞团,可以评估胚胎的质量和健康状况,研究胚胎发育的调控机制,以及培养和应用胚胎干细胞。

原代滋养层细胞的分离培养及鉴定

原代滋养层细胞的分离培养及鉴定

一、概述原代细胞是从组织或器官中分离得到的未经过传代培养的细胞,通常被用于研究细胞的特性和生物学行为。

在细胞生物学研究中,原代细胞的分离、培养及鉴定是非常重要的步骤,它们可以为科学家提供更加真实的细胞生理功能和反应。

本文将讨论原代滋养层细胞的分离培养及鉴定方法。

二、原代滋养层细胞的分离1. 准备工作在进行原代滋养层细胞的分离前,先准备必要的材料和试剂,包括消毒器械、胰酶、培养基和培养皿等。

2. 组织样本的处理将所需的组织样本取出并进行消毒处理,然后用无菌工具将其切割成小块。

3. 酶解和分离将组织样本块放入含有适量胰酶的培养基中,进行酶解和振荡分离,以获得细胞悬浮液。

4. 细胞分离通过离心等方法,将细胞悬浮液离心沉淀,然后将上清液中的细胞转移到新的培养皿中。

三、原代滋养层细胞的培养1. 培养基的准备根据原代滋养层细胞的类型和特性,选择适当的培养基,并添加相应的生长因子和营养成分。

2. 细胞的培养条件将分离得到的原代滋养层细胞接种于含有培养基的培养皿中,放置在恒温培养箱内,保持适当的温度和湿度条件,定期更换培养基。

3. 细胞的观察和维护利用显微镜观察细胞的生长情况和形态特征,定期对细胞进行传代培养,确保细胞的健康和稳定生长。

四、原代滋养层细胞的鉴定1. 形态学鉴定采用显微镜观察细胞的形态特征,包括大小、形状、胞浆及核的结构等,与已知的细胞形态进行比对鉴定。

2. 免疫细胞化学鉴定利用免疫细胞化学染色技术,检测细胞内特定蛋白的表达情况,例如细胞信号分子或细胞骨架蛋白等,来确定细胞的类型和特性。

3. 分子生物学鉴定通过PCR、Western blot等分子生物学技术,检测细胞内特定基因的表达情况,以确定细胞的遗传特性和分子水平特征。

五、结论原代滋养层细胞的分离培养及鉴定是细胞生物学研究中的重要环节,操作规范和技术熟练对于获得高质量的原代细胞至关重要。

只有通过严格的分离和培养条件,并结合形态学、免疫细胞化学及分子生物学鉴定等手段,才能得到真实、可靠的实验结果,并为细胞生物学研究提供可靠的资料。

新高考生物第十三单元 细胞工程(B卷能力提升练)(解析版)

新高考生物第十三单元 细胞工程(B卷能力提升练)(解析版)

第十三单元细胞工程B卷能力提升练中,只有一项是符合题目要求的。

1.成纤维细胞生长因子(FGF20)会在肺癌、胃癌及结肠癌细胞中过量表达,可作为潜在的肿瘤标志物。

因此抗FCF20抗体可以用于癌症早期诊断筛查及预后评估。

研究者设计如下流程制备抗FCF20单克隆抗体。

下列叙述错误的是()A.①过程可用胰蛋白酶处理剪碎后的小鼠脾脏B.①过程应先用聚乙二醇或灭活病毒诱导细胞融合C.①①过程筛选相关细胞时都需用选择培养基D.①过程可将细胞注射到小鼠腹腔内或体外培养【答案】C【解析】A、①过程可用胰蛋白酶或胶原蛋白酶处理剪碎后的小鼠脾脏,获得分散的细胞,A正确;B、①过程属于动物细胞融合,诱导动物细胞融合的方法包括化学法(聚乙二醇)和生物法(灭活的病毒),B正确;C、①过程属于第一次筛选,需要用选择培养基筛选出杂交瘤细胞,①过程需要进行抗体阳性检测,无需选择培养基,C错误;D、①过程属于单克隆抗体扩增,可将细胞注射到小鼠腹腔内或体外培养,从而获得大量单克隆抗体,D正确。

故答案为:C。

2.为了研究治疗A型流感病毒感染引发肺部炎性损伤的方法,科研人员以免疫小鼠的B 淋巴细胞和骨髓瘤细胞为材料,制备了抗PA-X蛋白(PA-X蛋白是A型流感病毒复制需要的一种蛋白)的单克隆抗体。

下列有关叙述错误的是()A.制备过程需要用到细胞融合、克隆培养法等技术B.细胞培养液中可加入胰岛素等物质促进细胞克隆C.制备过程中几次筛选都只获得产生目标抗体的杂交瘤细胞D.制备过程可用胰蛋白酶处理使杂交瘤细胞脱落,随后稀释【答案】C【解析】A、单克隆抗体的制备需要将B细胞与骨髓瘤细胞进行细胞融合,且对杂交瘤细胞进行筛选,最后对能产生单抗的细胞进行克隆培养,A正确;B、胰岛素可以促进葡萄糖进入细胞,为细胞呼吸提供底物,为细胞分裂提供更多的能量,B正确;C、第一次筛选是用HAT培养基获得杂交瘤细胞(B细胞和骨髓瘤细胞的融合细胞),两次抗体筛选:第一次是筛选能针对PA-X蛋白的杂交瘤细胞,第二次筛选是筛选针对PA-X蛋白特定部位(通常为5-6个氨基酸残基,为抗原决定簇),因此第一次筛选(HAT培养基)得到的有含有目标抗体的杂交瘤细胞,是混合细胞,也有能产生非目标抗体的细胞,C错误;D、胰蛋白酶可以水解细胞间的蛋白质,使杂交瘤细胞脱落,更换新的培养液,D正确。

囊胚培养液中游离DNA的重要染色体整倍性研究

囊胚培养液中游离DNA的重要染色体整倍性研究

·长篇论著·囊胚培养液中游离DNA的重要染色体整倍性研究黄锦 加加林 姚雅馨 陆思嘉 党玉姣 乔杰 刘平基金项目:国家重点研发计划(2018YFC1003104);国家自然科学基金(82071721);北京大学第三医院院临床重点项目(BYSY2018015)作者单位:100191,北京大学第三医院妇产科(黄锦,加加林,党玉姣,乔杰,刘平);国家妇产疾病临床医学研究中心(北京大学第三医院)(黄锦,加加林,党玉姣,乔杰,刘平);亿康基因科技有限公司(姚雅馨,陆思嘉)通信作者:刘平(pingliu7703@sina.com)【摘要】 目的 探讨利用培养液中游离DNA检测对应囊胚的13、15、16、18、21、22号染色体整倍性的效率。

方法本研究共纳入239枚囊胚,所有的胚胎均来源于PGT A周期。

囊胚活检的滋养层细胞采用SNP芯片检测胚胎的整倍性;培养液游离DNA采用无创胚胎染色体筛查(NICS)方法检测整倍性;采用盲法比较两者的结果。

计算NICS在检测13、15、16、18、21、22号染色体整倍性的敏感性、特异性、诊断效率、阳性预测值和阴性预测值。

结果239枚囊胚中的209枚有NICS结果,NICS检出率为87 5%(209/239)。

NICS方法在检测13、15、16、18、21、22号染色体的特异性、效率比较高,均>90%,NICS结果的阴性预测值超过97%;但是敏感性波动较大(33%~100%),阳性预测值较低(<50%)。

结论NICS方法可以检测囊胚整倍性。

当NICS结果显示这些重要染色体(13、15、16、18、21、22号染色体)为整倍体时,对应囊胚该条染色体整倍性几率高;但是当NICS结果显示这些重要染色体为非整倍体时,对应胚胎并不一定为非整倍体。

【关键词】 游离DNA; 非整倍体; 囊胚; 胚胎无创染色体筛查技术; 胚胎植入前遗传学检测【中图分类号】 R71StudyontheimportantchromosomeeuploidyofcellfreeDNAinblastocystculturemediumHUANGJin,JIAJialin,YAOYaxin,LUSijia,DANGYujiao,QIAOJie,LIUPing.DepartmentofObstetricsandGynecology,PekingUniversityThirdHospital,Beijing100191,China[Abstract] Objective ToexploretheefficiencyofcellfreeDNAinculturemediatodetectchromosome13,15,16,18,21and22aneuploidyoftheblastocysts.MethodsAtotalof239blastocystswereincludedinthisstudy,andallwerederivedfromPGT Acycles.SNParraywasusedtodetecttheaneuploidyoftrophoblastcellsofblastocystbiopsy.NICSwasusedtodetecttheaneuploidyofcellfreeDNAinculturemedia.Wecomparedtheresultsofthetwomethodsusingblind.Wealsocalculatedthesensitivity,specificity,diagnosticefficiency,positivepredictivevalueandnegativepredictivevalueofNICSinthedetectionofchromosomes13,15,16,18,21and22aneuploidy.ResultsAmong239blastocystsincludedinthisstudy,209blastocystshadNICSresults,andthedetectionrateofNICSwas87 5%(209/239).ThespecificityandefficiencyofNICSinthedetectionofchromosomes13,15,16,18,21and22werehigherthan90%,andthenegativepredictivevalueofNICSwasover97%.However,thesensitivityfluctuatedgreatly(33%~100%),andthepositivepredictivevaluewaslowerthan50%.ConclusionNICScandetectblastocystaneuploidy.Whenthechromosomes13,15,16,18,21,22areeuploid,theprobabilityishigh.Theembryoisnotnecessarilyaneuploidwhenthechromosomesareaneuploid.[Keywords] cellfreeDNA; aneuploidy; blastocyst; noninvasivechromosomescreening(NICS); preimplantationgenetictesting 近年来胚胎培养液中存在游离DNA(cellfreeDNA,cfDNA)已经在生殖领域引起了越来越多的关注[1]。

(整理)胚胎植入前遗传学诊断

(整理)胚胎植入前遗传学诊断

胚胎植入前遗传学诊断(Preimplantation Genetic Diagnosis ,PGD)一、定义胚胎种植前遗传学诊断(PGD)是指在体外受精过程中,对具有遗传风险患者的胚胎进行种植前活检和遗传学分析,以选择无遗传学疾病的胚胎植入宫腔,从而获得正常胎儿的诊断方法,可有效地防止有遗传疾病患儿的出生。

植入前遗传学诊断是随着人类辅助生殖技术,即“试管婴儿”技术发展而开展起来的一种新技术,它是产前诊断的延伸,遗传学诊断的又一更有希望的新技术。

二、意义(一)对高龄孕妇和高危妇女进行PGD可以有效地避免遗传病患儿的出生。

(二)可以有效地避免传统的产前诊断技术,对异常胚胎进行治疗性流产,避免中期妊娠遗传诊断及终止妊娠所致的危险及痛苦。

(三)PGD技术的产生与完善可以排除遗传病携带者胚胎,阻断致病基因的纵向传递,从而降低人类遗传负荷。

三、适应征理论上只要有足够的序列信息,PGD能针对任何遗传条件进行诊断,即凡是能够被诊断的遗传病都可以通过PGD来防止其患儿出生。

进行PGD的主要对象是可能有遗传异常或高危遗传因素,需要产前诊断的病例,尤其是可能同时具有两种以上不同的遗传异常情况。

PGD现已用于一些单基因缺陷的特殊诊断,包括Duchenne型肌营养不良、脆性X综合征、黑朦性白痴(Tay Sachsdiseade)、囊性纤维病(cysticfibrosis)、Rh血型、甲型血友病、镰型细胞贫血和地中海贫血、进行性营养不良、新生儿溶血、21抗蛋白缺乏症,、粘多糖贮积症(MPS)、韦霍二氏脊髓性肌萎缩(Werding Hoffman disease),还有染色体异常如Down’S 综合征、18三体,罗氏易位等。

四、植入前遗传学诊断的取材可从胚胎着床前各个阶段活检取样,获取其遗传物质信息进行诊断。

目前多采用激光打孔、机械切割或Tyrode酸化打孔后吸出细胞的方法取材。

(一)极体极体细胞可以使用第一极体或第二极体,它们在胚胎发育和合子形成中是非必须的,因而不影响卵子受精和正常发育,且不会引起伦理学上的争议。

囊胚活检的操作步骤

囊胚活检的操作步骤

囊胚活检的操作步骤
首先,囊胚活检通常在胚胎发育到囊胚阶段进行,这一阶段大约是受精后5-7天。

囊胚是指受精卵在分裂后发育成的一种胚胎形态,此时胚胎已经形成了囊胚腔,细胞数量也相对较多。

囊胚活检的操作步骤如下:
1. 体外受精(IVF),首先,需要进行体外受精过程,即将卵子和精子在实验室中结合,培养成囊胚阶段的胚胎。

2. 囊胚培养,在体外受精后,胚胎会在培养皿中进行培养,直到发育到囊胚阶段。

这个过程通常需要5-7天的时间。

3. 囊胚活检准备,一旦胚胎发育到囊胚阶段,医生会准备进行囊胚活检。

这包括准备显微镜、激光设备和其他必要的器械。

4. 囊胚定位,医生使用显微镜观察囊胚的位置,并确定需要进行活检的细胞。

5. 激光切割,医生使用激光设备对囊胚进行切割,以获取细胞
样本用于遗传学分析。

这个过程需要非常精确的操作,以确保不损
害胚胎的其他部分。

6. 细胞样本收集,一旦切割完成,医生会收集细胞样本,并将
其送往实验室进行遗传学分析,以检测携带遗传病风险的基因。

7. 胚胎冷冻或移植,在进行囊胚活检的过程中,胚胎可能会被
冷冻保存,以等待遗传学分析结果。

如果胚胎没有携带遗传病风险,它可以被移植回母体,继续发育成为婴儿。

总的来说,囊胚活检是一项复杂而精密的操作,需要经验丰富
的医生和先进的设备。

通过囊胚活检,可以帮助患有遗传病风险的
夫妇筛查出健康的胚胎,提高生育健康宝宝的机会。

胚胎植入前遗传学诊断

胚胎植入前遗传学诊断

胚胎植入前遗传学诊断(Preimplantation Genetic Diagnosis ,PGD)一、定义胚胎种植前遗传学诊断(PGD)是指在体外受精过程中,对具有遗传风险患者的胚胎进行种植前活检和遗传学分析,以选择无遗传学疾病的胚胎植入宫腔,从而获得正常胎儿的诊断方法,可有效地防止有遗传疾病患儿的出生。

植入前遗传学诊断是随着人类辅助生殖技术,即“试管婴儿”技术发展而开展起来的一种新技术,它是产前诊断的延伸,遗传学诊断的又一更有希望的新技术。

二、意义(一)对高龄孕妇和高危妇女进行PGD可以有效地避免遗传病患儿的出生。

(二)可以有效地避免传统的产前诊断技术,对异常胚胎进行治疗性流产,避免中期妊娠遗传诊断及终止妊娠所致的危险及痛苦。

(三)PGD技术的产生与完善可以排除遗传病携带者胚胎,阻断致病基因的纵向传递,从而降低人类遗传负荷。

三、适应征理论上只要有足够的序列信息,PGD能针对任何遗传条件进行诊断,即凡是能够被诊断的遗传病都可以通过PGD来防止其患儿出生。

进行PGD的主要对象是可能有遗传异常或高危遗传因素,需要产前诊断的病例,尤其是可能同时具有两种以上不同的遗传异常情况。

PGD现已用于一些单基因缺陷的特殊诊断,包括Duchenne型肌营养不良、脆性X综合征、黑朦性白痴(Tay Sachsdiseade)、囊性纤维病(cysticfibrosis)、Rh血型、甲型血友病、镰型细胞贫血和地中海贫血、进行性营养不良、新生儿溶血、21抗蛋白缺乏症,、粘多糖贮积症(MPS)、韦霍二氏脊髓性肌萎缩(Werding Hoffman disease),还有染色体异常如Down’S 综合征、18三体,罗氏易位等。

四、植入前遗传学诊断的取材可从胚胎着床前各个阶段活检取样,获取其遗传物质信息进行诊断。

目前多采用激光打孔、机械切割或Tyrode酸化打孔后吸出细胞的方法取材。

(一)极体极体细胞可以使用第一极体或第二极体,它们在胚胎发育和合子形成中是非必须的,因而不影响卵子受精和正常发育,且不会引起伦理学上的争议。

胚胎工程技术及其应用——高二生物学人教版(2019)选择性必修三洞悉课后习题(有解析)

胚胎工程技术及其应用——高二生物学人教版(2019)选择性必修三洞悉课后习题(有解析)

2.3.2胚胎工程技术及其应用【教材课后习题】1.体外受精和胚胎移植都是在医学和农业生产上应用较多的胚胎工程技术。

判断下列 相关表述是否正确。

(1)采集来的卵母细胞和精子可以直接用于体外受精。

()(2)经胚胎移植产生的后代,其遗传特性与受体保持一致。

()(3)进行胚胎移植前,要对供体和受体进行免疫检查,以防止发生免疫排斥反应。

()2.杜泊羊以其生长速度快、肉质好等优点,成为受广大消费者喜欢的绵羊品种。

科研 工作者通过胚胎工程快速繁殖杜泊羊的流程如下图所示。

(1)请将图中括号内的内容补充完整。

(2)为了获得数量较多的卵母细胞,可以对雌性杜泊羊进行怎样的处理?(3)在进行体外受精操作之前,还要对获得的卵母细胞和精子进行怎样的处理?3.北方白犀牛曾经广泛分布于非洲中部等地,但由于猖獗的盗猎和自然栖息地的丧失, 它们的数量不断减少。

2018年3月,世界上最后一头雄性北方白犀牛去世,该物种仅 剩下两头雌性。

在此之前,研究人员设法保存了北方白犀牛的精子。

请回答下列问题。

(1)我们可以使用哪些现代生物技术来人工繁育北方白犀牛?运用这些技术一定能繁 育成功吗?请说出你的理由。

(2)如果繁育成功,这样人工繁育的种群与野生种群相比,有什么区别?(3)如果繁育不成功,这一物种将永远从地球上消失,从中我们能得到怎样的教训?【定点变式训练】4.哺乳动物体外受精的过程是()①采卵②收集精子体外受精( )当地普通绑羊( ) 基期胚胎采集采集分娩③卵母细胞的人工培养④精子获能处理⑤精子和成熟卵子在受精溶液中共同培养⑥精子用CaCl₂处理⑦卵母细胞用一定浓度肝素溶液处理⑧体外受精⑨受精卵培养C.5.下列有关体外受精的说法错误的是()A.可以借助工具直接从活体动物的卵巢中吸取卵母细胞B.采集精子的方法有培养法和化学诱导法C.在体外受精前,必须对精子进行获能处理D.获能的精子和培养成熟的卵子,一般要放在培养液小滴内共同培养一段时间才能完成受精6.为了加快优良种牛的繁殖速度,科学家常采用胚胎移植的方法,下列与胚胎移植相关的叙述合理的是()A.试管牛的培育过程中需用到胚胎移植技术,而克隆牛不需要B.用来促进供体母牛超数排卵的是下丘脑分泌的促性腺激素C.胚胎移植时应选用发育到原肠胚期或囊胚期的胚胎D.采取胚胎分割和胚胎移植技术可同时获得多个基因型相同的家畜个体7.下列关于胚胎移植生理学基础的叙述,不正确的是()A.同种动物之间的生理特征相近,进行胚胎移植易于成功B.早期胚胎在一定时间内是独立存在的,未与子宫建立实质性联系C.一般来说,同一物种的受体母畜对于具有外来抗原性质的胚胎并没有免疫排斥现象D.移植的胚胎依靠自身储存的营养物质继续完成胚胎发育8.胚胎分割技术是提高家畜胚胎利用率的手段之一。

_试管婴儿_技术30年_回顾和展望

_试管婴儿_技术30年_回顾和展望
收稿日期:2010-12-16 基金项目:国家重点基础研究发展计划(“973 ”计划) (2007CB948103) *通讯作者:E-mail: lgxdirector@yahoo.com.cn
第 12 期
林 戈,等:“试管婴儿”技术 3 0 年——回顾和展望
1201
国著名的产科医生及腹腔镜先驱Patrick Steptoe合 作,开始了 IVF 技术的临床应用。经历了百余次尝 试的失败后, 世界首例试管婴儿Louis Brown于1978 年顺利降生。此后 30 余年来,I V F 技术不断的成 熟和发展,并在全世界范围内广泛的应用,成为治 疗不孕的一项重要的常规手段。时至今日,全球已 有超过 400 万试管婴儿的降生,并且长期的流行病 学调查研究显示 IVF 技术是基本安全的。此外,基 于 I V F 技术发展起来的治疗手段也层出不穷,例 如:单精子胞浆内注射(intracytoplasmic sperm injection, ICSI)为男性不育治疗提供了的新手段; IVF技术与遗传学和现代分子生物学手段的结合促成 了植入前遗传学诊断(preimplantation genetic diagnosis, P G D ) 的开展,为避免遗传性疾病的子代传递提供 了可能; 冷冻技术的进展使人们可以在配子到胚胎的 不同时期进行生殖保险,等等。而不孕症有关的研 究正逐渐演变成为包括胚胎学、遗传学、生殖内分 泌学、妇产科学和免疫学等多学科交叉的新兴学科 ——生殖医学。以上这些都离不开早期人类 IVF 技 术的开创性研究,它不仅给无数不孕患者带来希 望,也给医学界带来了巨大影响。因此,2010 年 度的诺贝尔生理学与医学奖被当之无愧地授予了试 管婴儿技术的先驱 Robert Edwards[1],这不仅是对 其个人在人类 IVF 研究领域贡献的肯定,也是对在 IVF基础上发展起来的辅助生殖技术(assisted repro- duction technology, ART)近30多年临床贡献的充分 肯定。
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囊胚滋养层细胞活检技术的优势及操作解析【引用本文】高英卓,杨大磊,冯迪,等.囊胚滋养层细胞活检技术的优势及操作解析[J].中国实用妇科与产科杂志,2020,36(9):884-887.作者:高英卓,杨大磊,冯迪,王秀霞,李达1990年Handyside团队首次对携带不同X-连锁隐性遗传病基因的两对夫妇的胚胎进行了检测,筛选合适的胚胎性别并种植后顺利妊娠。

如今植入前遗传学检测(PGT)技术已广泛应用于全世界的生殖中心并得到了迅速的发展。

PGT技术是指在体外受精-胚胎移植技术的基础上,通过对配子或胚胎进行活检,获取部分遗传学物质进行染色体和(或)基因学检测,诊断其是否存在单基因缺陷、非整倍体或染色体拷贝数异常等,选择正常胚胎植入子宫,从而获得健康的子代。

PGT技术的成功实施需要依赖可靠的活检技术获取可用于检测的胚胎遗传物质,而活检的过程对胚胎而言是一项侵入性的操作,活检是否成功将直接影响到PGT 的最终结局。

随着分子生物学技术的不断发展,虽然部分检测已经可以使用无创或微创的方式进行遗传物质的获取,但其检测结果的准确性尚存争议。

因此,目前仍以有创方式获取遗传物质为主,即活检技术。

PGT活检技术根据活检时间可分为极体活检、卵裂球活检与囊胚滋养层细胞活检:极体活检是在取卵当天(或受精后第1天)获取极体用于遗传学检测,可以检测母源性的染色体非整倍体和易位,但无法检测父源性遗传缺陷;卵裂球活检则是在受精后第3天(6~8个细胞阶段),获取1~2个细胞进行遗传学检测;囊胚滋养层细胞活检是在受精后第5天或第6天,胚胎发育至囊胚阶段时,获取5~10个滋养层细胞用于遗传学检测。

1 囊胚滋养层细胞活检技术的优势1.1 胚胎损伤小卵裂球活检是从6~8个细胞中抽取1~2个细胞用于遗传学检测,而囊胚滋养层细胞活检则是在数百个细胞中抽取5~10个滋养层细胞用于检测。

已有证据表明,卵裂球活检可能会损害胚胎的发育潜能及种植能力。

此外,卵裂球活检时,为了使卵裂球之间连接变得松散,需要利用无Ca2+/Mg2+的缓冲液处理胚胎,利用时差显微培养系统观察发现这一操作会延迟胚胎致密化和成囊过程,并降低种植率。

滋养层细胞将来会发育成胎盘或胎膜,不直接参与胎儿形成。

因此,滋养层细胞活检可有效避免损伤内细胞团,进而减小活检操作对胚胎发育的影响。

1.2 诊断准确性高囊胚滋养层细胞活检用于遗传学检测的细胞数量(5~10个)远多于卵裂球活检(1~2个),提高了诊断准确性,降低了扩增失败的风险。

由于滋养层细胞活检技术自身的显著优势以及极体活检和卵裂球活检技术自身的局限性,结合近些年囊胚培养和囊胚冷冻技术的逐渐成熟,滋养层细胞活检技术已成为目前应用最为广泛的活检技术。

2 囊胚滋养层细胞活检技术的操作解析根据活检策略不同,囊胚滋养层细胞活检技术可分为第3天胚胎孵化后活检方案、桑葚胚孵化后活检方案、囊胚当天孵化后活检方案和囊胚即时孵化后活检方案(图1)。

图1囊胚滋养层细胞活检策略2.1 第3天胚胎孵化后活检方案2004年,de Boer等首次详细阐述了第3天胚胎孵化后活检方案(图1A)。

胚胎培养至受精后第3天进行辅助孵化,使透明带形成开口,用来减弱透明带对胚胎的束缚作用,使胚胎更易于孵出。

透明带开口位置应位于透明带与卵裂球之间存在间隙处或碎片处,避免损伤卵裂球。

随后将胚胎继续培养至第5天或第6天,待部分滋养层细胞孵出后进行活检。

透明带开口主要有3种方法:化学法、机械法和激光法。

化学法是利用酸性台式液(pH值2.2~2.6)溶解透明带。

将装满酸性台式液的显微操作针对准透明带,通过喷洒台式液溶解透明带,使透明带形成开口。

操作动作应熟练迅速,当透明带形成开口后,立即停止喷洒台式液,避免损伤卵裂球。

机械法透明带开口是利用尖头的显微操作针刺破透明带。

胚胎在持卵针固定下,操控显微操作针沿着透明带切线方向刺破并穿过透明带,随后松开持卵针,借助持卵针和显微操作针之间的摩擦使透明带开口。

机械法操作快捷,然而其开口的大小具有不确定性。

激光法是利用非接触式红外线(1.48μm)二极管产生的激光,将其对准并击打目标区域,使透明带形成开口。

激光开口的大小和位置可以实现精确控制,且具有较强的可操作性和重复性,是目前最常用的透明带开口方法。

第3天胚胎孵化后活检方案实施起来相对容易,易于掌握,然而其也存在诸多弊端,例如:在受精后第3天实施辅助孵化后,由于透明带存在开口,破坏了囊胚腔扩张、透明带变薄这一正常发育过程,其对囊胚发育潜能的影响存在争议,有证据表明,卵裂期激光开口有可能降低胚胎发育潜能,改变胚胎表观遗传修饰;囊胚的孵出位置具有不确定性,如果内细胞团孵出,为避免活检损伤内细胞团,只能等到囊胚完全孵出再进行活检操作;在等待囊胚孵出过程中,需要反复观察胚胎状态,增加了对胚胎发育的干扰;如果第3天打孔的卵裂期胚胎未形成囊胚,那么之前的辅助孵化操作便成为徒劳。

2.2 桑葚胚孵化后活检方案桑葚胚孵化后活检方案是指在受精后第4天,以透明带开口的方式对桑葚胚进行辅助孵化,随后胚胎继续培养至第5天或第6天,待囊胚孵出后,对孵出的滋养层细胞进行活检(图1A)。

与第3天胚胎孵化后活检方案相比,其优势在于胚胎发生致密化之后,其形成囊胚的概率大大增加,可以明显减少活检人员实施辅助孵化的胚胎数量。

如果胚胎发育速度较快,在取卵后第4天即可发育至早囊阶段,内细胞团的位置隐约可见,辅助孵化时可以避开内细胞团。

然而,大多数情况下,此方法可能面临内细胞团孵出的风险,且仍需在培养过程中多次观察胚胎的发育状态。

2.3 囊胚当天孵化后活检方案囊胚当天孵化后活检方案是在受精后第5天或第6天早晨,对囊胚进行辅助孵化(透明带开口),随后将囊胚放回培养箱继续培养,期间需要反复观察囊胚发育状态,直到囊胚孵出再进行活检(图1A)。

此方案优点在于:策略相对简单,对活检人员要求较低。

然而,由于辅助孵化后,囊胚孵出所需时间不确定,活检人员需要反复观察囊胚状态,大大增加工作量,尤其是对于工作量较大的胚胎实验室,显著降低了工作效率。

另外,由于各个囊胚的孵出速度不同,活检人员可能需要分批次进行活检。

然而,与第3天/桑葚胚孵化后活检方案相比,第5天或第6天的囊胚可以明确判断内细胞团的位置,实现有效控制辅助孵化的位置,避开内细胞团。

2.4 囊胚即时孵化后活检方案囊胚即时孵化后活检方案是指受精后第5天或第6天,对完全扩张期囊胚进行透明带打孔,使透明带形成一个狭窄的孔道,随后立即用活检针沿透明带孔道吸取5~10个滋养层细胞用于遗传学检测(图1B~F)。

已有证据表明,囊胚即时孵化后活检方案可取得更好的临床结局,其囊胚冷冻率、解冻复苏率、临床妊娠率均高于第3天胚胎孵化后活检方案。

与囊胚当天孵化后活检方案相比,囊胚即时孵化后活检方案的优势在于无需提前辅助孵化,当囊胚发育至完全扩张的4期之后,可以随时在透明带打孔并立即进行活检,既能简化工作流程,又能节约时间。

然而,由于囊胚的发育速度参差不齐,根据囊胚的不同特征,需要采取不同的活检方法,对活检人员提出了更高的要求。

近期,Yang等对不同特征的囊胚活检方法进行了全面、系统地总结,为囊胚即时孵化后活检方案的广泛应用提供了方法学基础。

4期囊胚的活检:首先对囊胚进行人工皱缩,根据囊胚随后的皱缩状态(塌陷或未塌陷),采用不同的活检方法。

如果人工皱缩后囊胚明显塌陷,在滋养层细胞与透明带剥离处(远离内细胞团),使用激光进行透明带打孔,利用活检针经孔道吸取5~10个滋养层细胞,随后将滋养层细胞切割下来(图1B)。

如果囊胚未塌陷,可借助活检针经孔道向透明带内注入培养基,促使滋养层细胞与透明带剥离,后续操作与塌陷囊胚相同。

5期囊胚根据形态可分为“花生形”和“8字形”。

“花生形”囊胚的活检方式:首先在孵出区域的滋养层细胞连接处用激光击打使其皱缩,待囊胚皱缩回透明带后,持卵针控制住胚胎,在持卵针对侧的透明带进行人工打孔,经孔道用活检针吸取滋养层细胞(图1C)。

“8字形”囊胚的活检方法相对简单,可直接吸取孵出滋养层细胞用于活检,后续操作参考4期囊胚。

如果“8字形”囊胚的内细胞团孵出,先对位于透明带内部的滋养层细胞进行人工皱缩,之后的活检方法可参考4期囊胚(图1D)。

6期囊胚的活检:直接利用持卵针固定囊胚(避免吸住内细胞团),利用活检针吸取滋养层细胞。

需注意的是,活检之前转移6期囊胚时,应使用孔径较大的巴氏德吸管,避免挤压引起囊胚塌陷(图1E)。

一旦囊胚塌陷,一方面细胞皱缩在一起,滋养层细胞不易被吸进活检针,增加了操作难度;另一方面,内细胞团与滋养层细胞紧紧包裹在一起,使得内细胞团的位置不易辨别,有可能在活检过程中误伤内细胞团。

另外,对于接近完全孵出的囊胚,即只有小部分滋养层细胞残留在透明带里,应先将囊胚拽出透明带,随后的活检方法参考6期囊胚(图1F)。

滋养层细胞的切割方法有激光法和机械法:激光法是利用激光击打使滋养层细胞离断。

滋养层细胞被吸进活检针里之后,一边牵拉滋养层细胞,一边用激光击打细胞,约3~5次激光击打之后,可离断滋养层细胞;机械法是利用活检针与持卵针之间的摩擦离断滋养层细胞。

滋养层细胞被吸进活检针后,松开持卵针,将活检针移至持卵针的上缘,迅速向下移动活检针,即可离断滋养层细胞。

近期,Yang等提出的“微激光-钝性切割方法”是将激光法与机械法有机结合,活检针吸取滋养层细胞并向外牵拉使其伸长,激光击打位于透明带外缘的滋养层细胞1~2次,随后利用机械法离断滋养层细胞,1~2次的激光击打有助于后续机械法切割滋养层细胞(图2)。

此方法有效减少了激光击打次数,减小了激光带来的热损伤。

图2 “微激光-钝性切割方法”技术要点3 囊胚滋养层细胞活检技术的争议无论是通过IVF还是自然受孕,胚胎均可能出现嵌合体。

嵌合体是指胚胎包含2种及以上的遗传学不同的细胞系,文献报道的嵌合体发生率从30%~90%不等。

各个IVF实验室嵌合体发生率的差异受多个因素的影响,例如遗传学检测技术、非整倍体的界定标准、活检取材部位的选择以及实验室培养环境等。

因此,关于囊胚滋养层细胞活检可靠性的争议,主要在于滋养层细胞的核型是否可以代表内细胞团的核型。

诸多研究讨论了滋养层细胞活检和内细胞团活检诊断一致性的问题,诊断一致率为96.1%~100%。

就目前的发展现状来说,囊胚滋养层细胞活检仍是最可靠的遗传学检测方法。

另外,囊胚滋养层细胞活检技术的争议还包括部分PGT治疗周期患者可能由于无囊胚形成而取消周期。

但随着IVF实验室培养技术的不断改进和完善,囊胚形成率也有所提高。

胚胎经过自然淘汰所形成的囊胚数量虽然相对少,但更具发育潜能,并且在避免“无效”胚胎检测的同时也减轻了患者的经济负担。

综上所述,囊胚滋养层细胞活检技术是目前应用最广泛的活检技术。

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