临床微生物标本采集与送检规范(试行)

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临床微生物标本规范化采集和送检

临床微生物标本规范化采集和送检

注意事项
✓ 虽粪便含有多种杂菌,但应尽量采用 无菌容器。
✓ 为提高检出率,要采集新鲜粪便作培 养,且应挑取其脓血、 粘液部分。
四、痰及上呼吸道标本的采集
采集痰标本作细菌培养,或涂 片后经特殊染色以检查细菌、真 菌或抗酸杆菌等,以助诊断;从 咽部及扁桃体采取分泌物作细菌 培养或病毒分离
痰及上呼吸道标本
尿液标本
➢ 采集时间: 一般原则 通常应采集晨起第一次尿 液送检。原则上应选择在抗菌药物应 用之前采集尿液。
尿液标本的采集时间
A. 结核分枝杆菌感染 留取晨尿或24小时 尿的沉渣部分10-15ml作涂片检查,若为 培养,患者应停药1-2天后再采样,以提 高阳性率
B. 沙门菌、钩端螺旋体感染 感染后2周左 右采集
采集方法
➢ 自然排便采集法 自然排便后,挑取其脓血、 粘液部分2-3g,液状粪便取絮状物2-3ml, 盛于灭菌容器内或保存液中送检
➢ 直肠拭子方法 如不易获得粪便时,或排 泄困难的患者及婴儿,可用直肠拭子采取, 即以无菌棉拭子用生理盐水湿润后,插入肛 门内4-5cm(幼儿2-3cm)轻轻转动取出, 插入无菌试管内送检。
标本采集--保留导管
• 经由导管抽取5-10ml血液, 进行血培养;
• 再由静脉端抽血进行另外 一套血培养。
标本采集--决定拔除导管 • 从2个独立的外周静脉部 位,无菌采集2套血培养, 同时无菌操作取出导管并 剪下5cm导管末梢送实验 室培养。
血培养标本采集与送检要求--4
2. 未留置深静脉导管者: (1)怀疑血流感染时,从2个不同的外周静脉穿刺部位无
➢ ④尽可能采集更多的液体,至少1ml
手术切口分泌物标本采集
➢ 1、涂片:常规检查+革兰染色 ➢ 先用无菌生理盐水擦拭切口2遍,再用含生

临床微生物标本规范化采集和送检中国专家共识

临床微生物标本规范化采集和送检中国专家共识

临床微生物标本规范化采集和送检中国专家共识牵头专家:胡必杰、倪语星、马小军、肖永红编写专家(按首字母拼音排序):蔡绍曦、陈佰义、褚云卓、高晓东、顾兵、黄勋、李光辉、李卫光、刘思远、刘运喜、陆群、卢晓阳、吕媛、孙自镛、索瑶、汤灵玲、王辉、王明贵、王选锭、吴安华、徐英春、颜青、俞云松、战榕、张卫红、宗志勇中华预防医学会医院感染控制分会2017年1月目录总则 (3)第一节:血培养标本 (5)第二节:呼吸道标本 (8)第三节:尿液标本 (13)第四节:其它无菌体液标本 (15)第五节:胃肠道标本: (20)第六节:生殖道标本 (24)第七节:皮肤、软组织标本 (27)总则感染性疾病的正确诊治需要以正确的病原学检测作为指导,而正确的病原学检测其前提是采集和送检合格标本。

因此,必须规范微生物标本的采集和运送,避免因标本的不合格,产生错误的病原学检测结果而误导临床治疗。

一、微生物标本采集的基本原则1.在抗菌药物使用前采集标本。

临床疑似感染的患者,必须先采集微生物标本送检,再使用抗菌药物进行治疗。

2.无菌部位的标本更具有临床价值,有菌部位采集的标本需要清除正常菌群和定植细菌才有意义。

应尽量送检无菌部位的标本,尤其是血培养。

有菌部位标本应避免“正常菌群导致标本的污染”。

人体很多部位,如下呼吸道(痰液标本)、鼻窦、皮肤伤口等处的正常菌群极易污染标本。

因此,从这些部位采集标本,要尽可能降低这些部位正常菌群或定植细菌对标本污染的可能性。

有菌部位的标本不是最理想的微生物标本。

3.标本的标签和申请单信息要完整。

对于每一份标本,实验室都需要了解该患者和标本的详细信息以及医生的送检目的。

事实上,实验室对于标本所做的所有分析,都必须基于这些信息。

申请单的内容应包括:1)患者信息:姓名、性别、年龄、患者唯一编码(如住院号)等;2)申请科室或病区、申请医生;3)标本信息:标本类型、采集日期及时间、采集部位、采集方法;4)临床诊断;5)检测目的,尤其是一些特殊检测项目;6)是否已使用抗菌药物。

临床微生物标本的规范采集和送检

临床微生物标本的规范采集和送检
之前采血培养(稀释,吸附)
采血套数
➢ CLSI M47-A:每位患者采集2~3套血培养(40~60ml) ➢ 1套:一个穿刺点,通常为1个需氧+1个厌氧 ➢ 成人瓶:8~10ml;儿童瓶: 1~3ml;婴幼儿:<总血量 1% ➢ 明显地提高阳性率 ➢ 判断是否污染 ➢ 指南强调:初期诊断时不允许只采集一套血培养
➢ 如果采血量不足,应优先将血液注入需氧瓶,剩余血液注 入厌氧瓶,因为大部分需氧菌、兼性厌氧菌、酵母菌可以 在需氧瓶中生长
采血量是影响血培养阳性率的独立相关因素
采血量与检出率
% Relative Yield
100
80
60
40
20
0 5
15
25
35
45
55
血培养物每增加m一l 毫升,
成年人菌血症微生物的检出率增加3%
临床微生物标本的规范采集和送检
检验二科 刘 玲
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临床标本微生物检验流程
标本质量
临床信息? 标本质量?
标本采集
标本检验
临床意义? 结合临床症状、体征、影像、 其它检查等
检验报告
报告解读
采集部位 采集方法 送检要求
涂片镜检 培养鉴定 药敏试验
涂片报告 培养报告 药敏报告
诊断 治疗 评估
如何提高微生物检验的诊疗价值?
所以要最先采集血培养标本。 污染率的指标是 < 3%
(100份标本里只能有不到3个标本出现污染)
采血前质量保证:培养瓶消毒
选定采血点后,先对培养瓶进行消毒
弃去培养瓶金属盖 75%酒精消毒血培养瓶橡皮塞,待干60秒
颠倒混匀标本与肉汤,以避免血液凝集。
(儿童采血量少,更应注意颠倒混匀)

微生物标本采集与送检

微生物标本采集与送检

微生物标本的采集与送检一、血液培养1、血液培养的送检指征:⑴症状指征:发热(≥38℃)、皮疹、肝脾肿大、关节疼痛、神志不清、昏迷或休克。

⑵疾病指征:化脓性病灶或损害、粘膜损伤性疾病、肝脏疾病、糖尿病、血液疾病及恶性肿瘤、艾滋病、呼吸道感染或呼吸衰竭、长期输液或导管介入疾病、血液透析患者。

2、采集流程:⑴培养瓶消毒程序:75%酒精擦拭橡皮塞,作用60秒后,用无菌棉签清除橡皮塞表面残余酒精;⑵皮肤消毒程序:75%酒精擦拭静脉穿刺部位,从穿刺点向外花圈消毒,至消毒区域直径3cm以上,作用60秒,待酒精挥发干燥后采血;⑵静脉穿刺和培养瓶接种程序:用注射器无菌穿刺取血(成人:5-10ml,婴幼儿1-2ml),直接注入血培养瓶后,轻轻颠倒混匀并立即送检。

3、注意事项:⑴血培养采血最好不要和其他检验项目采血同时进行,否则应先采血培养标本;⑵切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血;⑶不宜从静脉导管或静脉留置口取血;⑷建议在患者出现寒战、体温升高前采血。

如患者有明显的发热前期症状,在患者寒战前或寒战后1h内采血可提高阳性率;⑸应同时在不同部位或在不同时间段内采集2次以上标本,只采集一瓶的血培养标本是不允许的,因为一瓶血培养标本的培养结果很难解释是致病菌还是污染菌。

⑹一般情况下(怀疑为持续性菌血症者除外),在采血后的2-5天内,无需重复采血培养标本。

二、脑脊液培养1、脑脊液培养的送检指征:⑴症状指征:发热等感染性全身性症状、颅内压升高症状、脑膜刺激症状等。

⑵疾病指征:化脓性、非化脓性脑膜炎。

2、采集方法:检查和细胞计数、⑵经脑室导管采集:无菌操作采集脑部脓肿或活检标本的抽吸物,立即送检。

3、注意事项:⑴如果只采集了一管脑脊液,应首先送到细菌室;⑵做脑脊液培养的同时,建议同时做血培养。

三、胸腹水培养1、胸水培养的送检指征:⑴症状指征:多伴有胸痛、发热、胸腔积液。

⑵疾病指征:细菌性肺炎引起的胸膜炎、真菌感染引起的胸腔积液。

2、腹水培养的送检指征:⑴症状指征:腹部有积液伴腹痛、呕吐、肌紧张、肠鸣音弱或消失等。

临床微生物标本采集与运送SOP

临床微生物标本采集与运送SOP

临床微生物标本采集与运送SOP手术部位感染标本采集及运送标准操作规程一、一般原则1.在抗菌药物使用前,且仅在有临床感染症状或伤口恶化或长期不能愈合时采集标本。

2 皮肤或粘膜表面的清洁。

(1)闭合伤口和穿刺物标本:消毒方法同血培养标本的皮肤消毒。

(2)开放伤口:无菌生理盐水充分冲洗伤口部位。

不可以用消毒剂。

3 采集新鲜的感染组织,避免采集浅表的组织碎屑。

4 若可以采集穿刺物或活检标本,应避免拭子标本。

二、容器1 较大的标本:含有少量生理盐水的带螺纹口的无菌塑料容器。

2 标本较小或拭子标本:MW&E TRANSWAB运输培养基,适用于需氧和厌氧菌。

三、采集方法(一)封闭性脓肿1 注射器穿刺抽取脓液。

2 若无法抽到脓液,应先皮下注射少量无菌生理盐水,再次穿刺抽吸脓液:若脓液过多,应先切开引流,在基底部或脓肿壁采集标本。

脓液的量以大于1ml 为宜。

3 排除注射器内部及针头的气体,用无菌橡皮塞封闭针头送检:或直接打入血培养瓶中。

若为厌氧菌,应迅速将脓液打入厌氧血培养瓶中。

(二)组织和活检标本1 采集足够大的组织,体积以1立方毫米为宜,避免在坏死区域采集。

2 将小块的组织放在运输培养基内,较大的放在无菌容器中,并加入少量无菌生理盐水。

(三)开放伤口1 无菌生理盐水彻底冲洗浅表部位,去除表面的渗出物和碎屑。

2 用拭子深入伤口的基底部或伤口-正常组织边缘部采集两个标本,分别用于培养和革兰氏染色。

四、标本的标识填写患者信息、标本类型(深部组织、表浅组织、脓肿和穿刺物等)、标本的来源(腹腔、腿和上臂等)、记录标本采集的日期和时间及是否在使用抗菌药物前采集,选择检查项目(需氧培养或厌氧培养)。

五、标本的送检为了更好的分离病源菌,标本应在采集后的30分钟内送到实验室。

送检时应保持标本的湿润(尽量采用运输培养基,组织可以放在生理盐水中)。

在送检前或运输过程中,禁止将标本放于冰箱。

若不能及时送检,运输培养基中标本应室温保存。

【VIP专享】临床微生物标本采集与送检规范(试行)

【VIP专享】临床微生物标本采集与送检规范(试行)

临床微生物标本采集与送检规范(试行)临床微生物标本采集与送检是目前临床实验室诊断质量保证中较为薄弱的环节,严重影响临床微生物学实验室对感染样本中致病菌的分离培养的阳性率和医院感染病原体监控,也影响临床诊断,合理选用抗菌药物,降低耐药菌的产生和提高感染的治愈率,而且对预测或及时发现医院感染的暴发流行、杜绝感染蔓延、研究医院感染的发病机制和环节、制定有效的医院感染控制措施等,均具有十分重要的意义。

严格实施正确的微生物标本送检和检验方法,是做好医院感染病原体监测的关键。

鉴此,希望临床各科能按照本操作规范采样送检。

一、医院感染标本的采集和运送基本原则1.发现医院感染应及时采集微生物标本作病原学检查,我院总的医院微生物标本送检率应不低于40%。

2.尽量在抗菌药物使用前采集标本。

3.标本采集时应严格执行无菌操作,减少或避免机体正常菌群及其他杂菌污染。

4.标本采集后立即送至实验室,床旁接种可提高病原菌检出率。

5.以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭子或伤口拭子,应立即送检。

6.盛标本容器须经灭菌处理,但不得使用消毒剂。

7.送检标本应注明来源和检验目的,使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境,必要时应注明选用何种抗菌药物。

二、常见医院感染标本送检方法1.血液与骨髓①通常采血部位为肘静脉。

疑似细菌性心内膜炎时,以肘动脉或股动脉采血为宜。

切忌在静脉点滴抗菌药物的静脉处采取血标本。

②采血部位的局部皮肤应严格消毒。

将采集的血液注入血培养基前,应更换针头或过火消毒针头。

血培养瓶应在避光室温中保存,不必置冰箱保存。

③每次采血量成人5~10ml,婴幼儿l~5ml,培养基与血液之比以lO:1为宜,以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。

④怀疑菌血症应尽早采血,体温上升阶段采血可提高阳性率,但要防止因等待而延误时机。

对已用抗菌药物而又不能停药者,可在下次用药前采血。

⑤每例病人至少采血两次,间隔0.5~lh,以利于提高阳性率和区分感染菌与皮肤污染菌。

临床微生物标本规范化采集和送检

临床微生物标本规范化采集和送检

临床微生物标本规范化采集和送检临床微生物标本规范化采集和送检是确保实验室检测结果准确性和可靠性的关键步骤。

在临床诊断和治疗过程中,微生物标本的采集和送检必须严格按照规范进行,以保证检测结果的科学性和临床应用的有效性。

本文将对临床微生物标本规范化采集和送检的相关问题进行详细讨论。

一、微生物标本的采集1. 采集工具采集微生物标本时,应使用无菌采集工具,如无菌棉签、无菌注射器、无菌拭子等。

采集工具应一次性使用,避免交叉感染。

2. 采集方法(1)棉签采集法:适用于采集分泌物、排泄物等标本。

将无菌棉签蘸取适量标本,轻轻涂抹于无菌培养基表面,注意避免棉签与培养基接触过紧,以免污染。

(2)拭子采集法:适用于采集皮肤、黏膜等表面标本。

将无菌拭子轻轻擦拭采集部位,将拭子置于无菌培养基中,轻轻按压使标本附着于培养基表面。

(3)注射器采集法:适用于采集深部组织、关节液等标本。

将无菌注射器刺入采集部位,抽取适量标本后,将注射器置于无菌培养基中,拔出活塞使标本流出。

3. 采集注意事项(1)严格遵守无菌操作原则,防止标本污染。

(2)采集标本时,应尽量减少对标本的挤压,避免细胞破裂、毒素释放等现象。

(3)采集标本后,应尽快送检,避免长时间存放导致病原体死亡或变异。

二、微生物标本的送检1. 送检时间微生物标本采集后,应尽快送检,一般不超过2小时。

如无法及时送检,应将标本置于4℃冷藏保存,并在24小时内送检。

2. 送检途径微生物标本应采用专用运送容器,避免与其他物品接触。

标本运送过程中,应注意保持容器密封,防止标本污染。

3. 标本接收实验室接收微生物标本时,应详细核对标本信息,包括患者姓名、性别、年龄、采集部位、采集时间等。

如发现标本不符合要求,应立即与临床工作人员沟通,重新采集标本。

4. 标本处理实验室接收标本后,应按照实验室规程进行对标本的处理,包括开盖、分区、接种、培养等。

在处理过程中,严格遵守无菌操作原则,防止标本污染。

临床微生物标本采集规范

临床微生物标本采集规范

6.血培养标本的运送
要求:(1)采集后的血培养瓶应在1小时之内 送往实验室。
(2)血培养瓶在接种前和接种后均不得冷藏和 冷冻。
说明:血培养瓶冷藏或冷冻会将一些微生物杀 灭,将装着液体的容器冰冻也会使容器破裂。
7.血培养的培养周期
要求:自动化血培养仪的标准血培养周期为5天。
说明:有研究表明,95%-97%的有临床价值的 细菌会在3-4天内被自动血培养系统检出,目 前仍推荐5天的培养周期。特殊情况可适当延 长培养时间。如临床怀疑布鲁菌感染,可延 长培养至28天等。
我国痰培养现状
❖ 标本送检率低 ❖ 苛养菌检出率极低 ❖ 结果重复性差 ❖ 报告速度慢 ❖ 感染菌与污染菌不易区分 ❖ 药敏结果与治疗反应存在差距
❖ 标本采集方法
咳痰标本
医师或护士直视下采集标本
病人先漱口,去除表面的菌群
教育病人深咳,收集从下呼吸道咳出的痰液
❖ 临床上约半数咳痰标本不合格!
咳痰途经口咽部 不可避免地受到污染
✓ 由于婴幼儿患者厌氧菌所致菌血症比较罕见, 婴幼儿血培养可以仅用需氧瓶,为提高检出 率、区分污染菌,应采用两只需氧瓶为一组 血培养。仍然采用双侧双瓶的采血方式。
✓ 真菌血培养采用需氧血培养瓶采集标本。采 用中和/灭活抗菌药物的血培养瓶可提高真菌 的检出率。自动化血培养系统不能用于双相 真菌的检测。
国内微生物标本的采集目前存在的问题 :
标本送检率低 从全国来看,抗感染治疗 前,送检相关标本可能只占应送标本的一半 左右,与抗菌药物应用率之高形成鲜明的反 差。一些医师在经验性治疗受挫后方送标本, 此时已失去阳性培养的机会。
标本有缺陷 正确收集各种临床标本, 关注特检标本采样与送检的方法和条件,是 完成病原学诊断的先决条件。

临床微生物标本采集和送检指南

临床微生物标本采集和送检指南

二、临床微生物标本采集和送检的挑战
在临床微生物标本采集和送检过程中,可能会遇到以下挑战和问题: 1、如何正确采集微生物标本
二、临床微生物标本采集和送检的挑战
2、如何妥善保存标本,避免污染和交叉感染 3、如何及时、安全地将标本运送至实验室 4、如何与实验室保持密切,确保检测结果的准确性
三、临床微生物标本采集和送检 的具体方法和步骤
三、标本运送
2、防止污染:在运送过程中,应确保标本不受污染。使用清洁、干燥的容器 存放标本,并封闭容器以防止细菌、病毒等微生物的侵入。
三、标本运送
3、及时送达:标本应在采集后尽快送至实验室进行检测,以确保检测结果的 准确性。如有特殊情况需延迟送检,应告知实验室技术人员并妥善保存标本。
三、标本运送
四、临床微生物标本采集和送检的建议
3、建立有效的沟通渠道,加强与实验室、医生之间的协作和信息共享,及时 调整治疗方案。
四、临床微生物标本采集和送检的建议
4、针对具有传染性的标本,应严格遵守相关规定,确保运输、处理等过程的 安全性。
5、借助信息化手段,如电子病历、远程诊断等,提高临床微生物标本采集和 送检的效率和质量。
4、记录信息:在运送过程中,应记录标本的相关信息,包括采集时间、送检 时间、接收人员等,以便实验室技术人员对标本进行跟踪和管理。
四、常见问题及处理方法
四、常见问题及处理方法
1、采血困难:如遇采血困难,可适当调整采血部位或改变采血方式,如更换 采血针或调整患者体位。如仍无法采血,可咨询医生或实验室技术人员寻求帮助。
四、常见问题及处理方法
4、标识错误:如遇标识错误,应立即纠正并重新标识标本。同时,对可能造 成标识错误的原因进行分析和总结,以避免类似错误再次发生。

临床微生物标本采集与送检规范(试行)

临床微生物标本采集与送检规范(试行)

临床微生物标本采集与送检规范(试行)临床微生物标本采集与送检是临床实验室诊断质量保证中的关键环节,影响着感染样本中致病菌的分离培养的阳性率和医院感染病原体监控。

正确的微生物标本送检和检验方法对于合理选用抗菌药物、降低耐药菌的产生、提高感染的治愈率以及预测和及时发现医院感染的暴发流行等都具有十分重要的意义。

因此,希望临床各科能按照本操作规范采样送检。

在医院感染标本的采集和运送中,应遵循以下原则:1.发现医院感染应及时采集微生物标本作病原学检查,我院总的医院微生物标本送检率应不低于40%。

2.尽量在抗菌药物使用前采集标本。

3.采集标本时应严格执行无菌操作,减少或避免机体正常菌群及其他杂菌污染。

4.采集标本后应立即送至实验室,床旁接种可提高病原菌检出率。

5.以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭子或伤口拭子,应立即送检。

6.盛标本须经灭菌处理,但不得使用消毒剂。

7.送检标本应注明来源和检验目的,使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境,必要时应注明选用何种抗菌药物。

常见的医院感染标本送检方法包括:1.血液与骨髓:通常采血部位为肘静脉,但疑似细菌性心内膜炎时,以肘动脉或股动脉采血为宜。

采血前应严格消毒,每次采血量应控制在一定范围内,采血后应立即送至实验室。

2.尿液:采集中段尿时,女性应先冲洗外阴部及尿道口,男性须翻转包皮冲洗,采集前应用消毒液消毒尿道口。

灭菌纱布擦干后收集标本。

以上是临床微生物标本采集与送检的一些基本规范和方法,希望医务人员能够严格按照操作规范执行,以提高微生物检测的准确性和有效性,为临床诊断和治疗提供更加可靠的依据。

导尿管导尿采样是减少污染的有效方法。

对于留置导尿者,可以用碘酒消毒尿道口处的导尿管壁,用空针细针头斜穿管壁抽吸尿液。

或消毒后解开接口,弃去导尿管前段尿液,留无污染的膀胱内尿液数毫升送检。

不可从集尿袋的下端管口留取标本。

对于尿厌氧菌培养、婴幼儿中段尿采集困难或培养结果与病情不符的情况,可以经耻骨上皮肤穿刺采集无污染的膀胱内尿液。

临床微生物标本规范化采集和送检

临床微生物标本规范化采集和送检

四)标签及申请单
每份标本都应贴上标签并标明必要信息,在检验申请单上填写足够的有关 临床资料。包括病人情况(病区、病人姓名、住院号)、标本情况(标本类 型、检验目的、采集部位、采集方法、采集时间等)和病人用药等信息。
五)标本运输
标本应在室温下15分钟内送到检验科。如果超过2小时送达,冷藏保存。
六)实验室拒收标准
烧伤患者的创面、组织活检、血培养等的细菌学检测结果对临床医生进行烧伤感染的诊断和治 疗十分重要。创面的拭子标本或组织活检标本都可以进行细菌定量培养。出现全身感染症状时,应 同时采集血培养标本。在采集表面拭子或组织活检标本之前,应对创面彻底清洁,且未局部应用抗 菌药物。
一)临床采样指征:
由于烧伤的早期创面无菌,烧伤后12小时勿采集标本。当患者出现发热、创面恶化时, 考虑采样。
二)采样要求 1.病原体培养应在抗菌药物应用前或停药一周后采集标本。 2.生殖器是开放性器官,标本采集过程中应遵循无菌操作以减少杂菌 污染。 3.阴道内有大量正常菌群存在,采取宫颈标本应避免触及阴道壁。 4.沙眼衣原体在宿主细胞内繁殖,采集时尽可能多的取上皮细胞。
尿道分泌物
三)采集方法
(1)男性:取样前至少1小时内不要小便。 用无菌生理盐水清洗尿道口,用灭菌纱布 或棉球擦干,用男性拭子采取从尿道口溢 出的脓性分泌物或将男性拭子插入尿道内 2~4厘米取分泌物,置无菌试管中。如无 脓液溢出,可从阴茎的腹面向龟头方向按 摩,促使分泌物溢出。
应尽量送检无菌部位的标本,尤其是血培养。有菌部位标本应避免“正常菌群导致 标本的污染”。人体很多部位,如下呼吸道(痰液标本)、鼻窦、皮肤伤口等处的正常 菌群极易污染标本。因此,从这些部位采集标本,要尽可能降低这些部位正常菌群或定 植细菌对标本污染的可能性。有菌部位的标本不是最理想的微生物标本。

医院感染临床微生物检查标本采集与送检规范

医院感染临床微生物检查标本采集与送检规范
号) 不明原因的发热,无其他局部症状 留置导尿管时间超过48h的患者出现发热 膀胱排空功能受损 泌尿系统疾病手术前。
• •
• •

排回
排分
尿
出 几
缩 包

尿
出 几
开 阴
向收 后集


的口 中的弃

毫皮性
毫 唇 仔标 性 细 段细去 量
升并病
升 , 细本 病 告 尿菌开 取
后清人
后 开 擦前 人 知
• 血液培养 • 脑脊液培养 • 胆汁培养 • 胸腹水培养 • 关节液 • 其他无菌体液或分泌液
我国血培养现状—阳性 检出率低<10%(国外 约为15%)
原因何在??? ? ? 血流中含菌量低 ? ? 血液中抗菌物质 ? ? 抗生素的应用 ? ? 培养条件限制 总而言之: 血培养的临床实践欠规范!!
手术切口与软第 一组部织分感染标本采 集与运送
采集方法
• 未破裂脓肿:不能用拭子。消毒覆于脓肿表面的皮肤, 用注射器将脓肿内容物吸出。然后切开脓肿、引流,取 部分脓肿壁送检。用于厌氧培养。
标本运送 间不得超过24h。
粪便培养标本采集与运送
采集指征:
粪便标本的 采集方法
• 自然排便采集标本时,取有脓血、粘液、组织 碎片部份的粪便1~3g(花生米大小)。
• 液体粪便则取絮状物,一般取1~3ml,直接装 入粪便容器或运送培养基中送检。
• 直肠拭子采集粪便标本:先以肥皂、水和75% 酒精,将肛门周围洗净,然后用经无菌盐水湿润 的棉拭子插入肛门超越肛门括约肌约2-4cm,与 直肠粘膜表面接触,轻轻旋转,必须将棉拭子置 于运送培养基中送检。
注意:一次穿刺采血,算 “ 一套 ” ,采集第二套应从 另一个穿刺点获得。

临床微生物标本采集和运送规范

临床微生物标本采集和运送规范
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脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
❖ 本卷须知 ❖ 迅速送往实验室,1小时内不能培养应将标本冷藏。 ❖ 皮肤消毒对培养结果至关重要。 ❖ 不要仅送检脓液。脓液不能代表伤口特点,应在病灶
活动区域或基底部采集标本。 ❖ 除非有渗出物,枯燥、结痂伤口一般不做培养 ❖ 标记:不要只写“伤口〞标记标本,应有专门的描述
5
二、临床各类标本的采集、 运送及保存标准
6
血培养的采集、运送标准
❖ 采集程序: ❖ 皮肤消毒程序:推荐三步法 〔酒精→碘伏→酒精〕 ❖ 培养瓶消毒程序:75%酒精消毒 ❖ 静脉穿刺和培养瓶接种程序
❖ 采血量:成人8-10ml,儿童1-3ml。 骨髓采集量1-2ml ❖ 采血时间和数量: ❖ 采血时间:在寒战或体温顶峰到来之前0.5-1h,或于寒战
储存 环境
标本来源
4℃冰 箱
痰、尿液、粪便、气管冲洗物、导尿管、静脉导管、脓液和伤口分泌物 细菌或真菌培养;无菌体液(胸腹水、心包液、关节液、鞘膜积液、胆 汁)真菌培养;支原体培养;衣原体检查;血清学检查(包括ASO、RF、 肥达反应)
室温 脑脊液、生殖道、眼、耳、鼻、喉、血培养、血管导管尖、活检组织细
❖ 注意:从静脉取血;不要与血气和血沉标本一起采血; 不推荐血入瓶前换针头;不推荐静脉血直接入瓶;不宜 在静脉导管或静脉留置口采血〔除非疑心导管相关性血 流感染〕。
8
血培养的采血量
❖ 成人采血量5-10ml〔最好8-10ml〕,儿童采血量1-3ml 〔不超过总血量的1%〕。血液和肉汤之比为1:5~1: 10。骨髓采集量1-2ml。
❖ 应注明具体标本来源如眼标本注明是眼睑、结膜 还是角膜,并注明左眼还是右眼。
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脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准

2024版临床微生物标本采集规范

2024版临床微生物标本采集规范

临床微生物标本采集规范•微生物标本采集意义与原则•临床常见微生物标本采集方法•微生物标本采集注意事项与操作规范•微生物标本运输、保存和处理流程目录•临床微生物实验室检测技术应用与进展•总结回顾与拓展思考01微生物标本采集意义与原则准确诊断指导治疗监测病情变化预防和控制感染通过采集微生物标本,可以对病原体进行准确鉴定和分类,为医生提供准确的诊断依据。

通过对微生物标本的连续检测,可以及时了解患者病情的变化情况,为医生调整治疗方案提供依据。

根据微生物标本的检测结果,医生可以选择针对性的治疗药物和方法,提高治疗效果。

通过对微生物标本的检测和分析,可以及时发现和控制感染源,防止感染的扩散和传播。

无菌操作正确选择采集部位采集足量标本及时送检01020304在采集微生物标本时,必须严格遵守无菌操作原则,避免污染标本和引入外源性微生物。

根据不同的病原体和感染类型,选择正确的采集部位,以提高标本的阳性率和准确性。

采集足够量的标本,以保证检测的准确性和可靠性。

采集后的微生物标本应及时送检,避免延误诊断和治疗。

血液标本通过静脉采血或末梢采血获得,用于检测血液中的病原体和抗体等。

尿液标本通过患者自行排尿或导尿获得,用于检测泌尿系统感染等。

粪便标本通过患者自行排便或灌肠获得,用于检测肠道感染和寄生虫病等。

呼吸道标本通过鼻咽拭子、喉拭子、痰液等获得,用于检测呼吸道感染和肺部感染等。

生殖道标本通过阴道分泌物、宫颈分泌物、前列腺液等获得,用于检测生殖道感染和性传播疾病等。

其他标本如脑脊液、穿刺液、组织活检等,用于检测相应部位的感染和病变情况。

微生物标本类型及来源02临床常见微生物标本采集方法血液及骨髓标本采集建议在患者寒战或发热初起时采集,同时在使用抗生素之前采集。

成人一般选择肘静脉,新生儿和婴儿选择颈静脉或股静脉。

成人一般采集8-10ml,儿童采集3-5ml,婴儿采集1-2ml。

严格无菌操作,避免污染,同时防止溶血。

采集时间采集部位采集量注意事项一般建议清晨第一次尿,即晨尿。

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临床微生物标本采集与送检规范(试行)临床微生物标本采集与送检是目前临床实验室诊断质量保证中
较为薄弱的环节,严重影响临床微生物学实验室对感染样本中致病菌的分离培养的阳性率和医院感染病原体监控,也影响临床诊断,合理选用抗菌药物,降低耐药菌的产生和提高感染的治愈率,而且对预测或及时发现医院感染的暴发流行、杜绝感染蔓延、研究医院感染的发病机制和环节、制定有效的医院感染控制措施等,均具有十分重要的意义。

严格实施正确的微生物标本送检和检验方法,是做好医院感染病原体监测的关键。

鉴此,希望临床各科能按照本操作规范采样送检。

一、医院感染标本的采集和运送基本原则
1.发现医院感染应及时采集微生物标本作病原学检查,我院总的医院微生物标本送检率应不低于40%。

2.尽量在抗菌药物使用前采集标本。

3.标本采集时应严格执行无菌操作,减少或避免机体正常菌群及其他杂菌污染。

4.标本采集后立即送至实验室,床旁接种可提高病原菌检出率。

5.以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭子或伤口拭子,应立即送检。

6.盛标本容器须经灭菌处理,但不得使用消毒剂。

7.送检标本应注明来源和检验目的,使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境,必要时应注明选用何种抗菌药物。

二、常见医院感染标本送检方法
1.血液与骨髓
①通常采血部位为肘静脉。

疑似细菌性心内膜炎时,以肘动脉或股动脉采血为宜。

切忌在静脉点滴抗菌药物的静脉处采取血标本。

②采血部位的局部皮肤应严格消毒。

将采集的血液注入血培养基前,应更换针头或过火消毒针头。

血培养瓶应在避光室温中保存,不必置冰箱保存。

③每次采血量成人5~10ml,婴幼儿l~5ml,培养基与血液之比以lO:1为宜,以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。

④怀疑菌血症应尽早采血,体温上升阶段采血可提高阳性率,但要防止因等待而延误时机。

对已用抗菌药物而又不能停药者,可在下次用药前采血。

⑤每例病人至少采血两次,间隔0.5~lh,以利于提高阳性率和区分感染菌与皮肤污染菌。

⑥对疑为细菌性骨髓炎或伤寒病人,在病灶部位或髂前(后)上棘处严格消毒后抽取骨髓lml作增菌培养。

2.尿液
①中段尿:女性采样前应先用肥皂水或0.1%高锰酸钾溶液冲洗外阴部及尿道口;男性须翻转包皮冲洗,用O.1%新洁尔灭消毒尿道口.灭菌纱布擦干后收集标本。

②导尿管导尿采样可减少污染。

对留置导尿者,可用碘酒消毒尿道口处的导尿管壁,用空针细针头斜穿管壁抽吸尿液。

或消毒后解开接口,弃去导尿管前段尿液、留无污染的膀胱内尿液数毫升送检。

不可从集尿袋的下端管口留取标本。

③尿厌氧菌培养,或婴幼儿中段尿采集困难,或培养结果与病情不符时,可经耻骨上皮肤穿刺采集无污染的膀胱内尿液。

④送检标本以早晨第一次尿液为佳。

⑤室温下尿标本耽搁稍久,可致尿内细菌浓度明显增加而影响病原菌与污染菌的区分。

不能立即送检者,可暂存4℃冰箱。

3.痰液
①咳痰:清水反复漱口后用力咳嗽,从呼吸道深部咳出新鲜痰液于无菌容器送检。

痰量极少者可用45℃的lO%氯化钠溶液雾化吸入导痰。

②对咳嗽乏力或昏迷病人,可用吸痰管经鼻腔或口腔抵达气管腔内吸引痰液。

用纤维支气管镜可直接在病灶部位采集高浓度的感染病原菌,但不能完全避免咽喉部正常菌群污染。

③双侧肺部感染伴人工气道如气管切开或气管插管患者,可用吸痰管经人工气道插至肺支气管水平吸引痰液。

④对重症、难治、或伴免疫抑制、或疑似厌氧菌引起的医院内肺部感染,可采用环甲膜穿刺经气管吸引(TTA)、经胸壁穿刺肺吸引(LA)、经纤维支气管镜或人工气道作防污染双套管毛刷(PSB)或防污染支气管肺泡灌洗(PBAL)采集无口咽部菌群污染的痰液,进行感染病原学诊断。

⑤痰标本不能及时送检者,可暂存4℃冰箱。

如果室温下延搁数小时,定植于口咽部的非致病菌可呈过度生长,而肺炎球菌、葡萄球菌和流感杆菌检出率则明显下降。

4.伤口、烧伤创面与脓液
①用无菌生理盐水擦洗病灶表面后,用棉拭于取病灶深部的脓液和分泌物,置运送培养基内送检。

②对未渍破的脓肿宜用碘酒、酒精消毒皮肤后,以无菌注射器抽取脓液送检:也可于切开排脓时用无菌棉拭子采样。

5.粪便
①排便后,挑取有脓血、粘液部分的粪便约2~3g(液状粪便则取絮状物),盛于灭菌广口瓶或蜡纸盒送检。

用棉拭子挑取粪便插入Cnry—BLair运送培养基或PH7.0的磷酸盐甘油中送检,可提高病原菌检出率.
②对不易获取粪便者或婴幼儿,可用直肠拭于(又称肛拭)采集。

将拭子前端用无菌甘油水湿润,然后插入肛门约4~5cm(幼儿约2—3cm)处,轻轻旋转擦取直肠表面粘液后退出置运送培养基内送检。

6.咽拭、口腔拭子
①病人清水嗽口后.由检查者将其舌外拉使悬雍垂尽可能向外牵引,棉拭子越过舌根到咽后壁或悬雍垂的后侧,反复擦拭数次,插入运送培养基。

棉拭子应避免触及舌、口腔粘膜和唾液。

②对化脓性扁桃体炎或口腔念珠菌病,用棉拭子在病灶部位擦拭数次即可。

7.浆膜腔积液、脑脊液
①浆膜腔积液包括胸水、腹水如心包液、关节液和鞘膜液等.以严格无菌操作抽取数毫升液体置无菌试管或小瓶送检。

对易自凝的标本可添加抗凝剂。

②严格无菌操作下采取脑脊液数毫升置于无菌试管。

标本采集后应立即送检,以防细菌死亡。

疑似有脑膜炎奈瑟菌时,应注意保暖,不可置冰箱保存。

8.生殖道标本
①根据不同感染种类和病变特征采集不同的标本。

采集尿道标本时,应先用生理盐水局部清洗,以无菌棉拭子插入尿道口 l~2cm停留十余秒钟。

轻轻旋转拭子后退出.
②对外阴部糜烂、溃疡者,经生理盐水清洗后用棉拭子擦取病灶边缘的分泌物。

③阴道和官颈口分泌物须在窥阴器下用长棉拭子采集。

④子宫内分泌物需用无菌导管抽取.导管外套一层保护膜,插入子宫后再刺穿该膜予负压吸引,可减少阴道菌群污染。

⑤女性盆腔脓肿,应在阴道局部消毒后,由直肠子宫凹陷处进针抽取。

⑥前列腺液需进行前列腺按摩获取。

9.组织标本
①表浅的感染组织和各种窦道标本可用棉签擦拭、小刀刮取、穿刺抽吸或手术切除。

对窦道和痰管应深部刮取管壁组织。

②深部组织标本可经皮肤穿刺采集或手术切取。

标本置无菌容器并加少量生理盐水以保湿度,或置肉汤增菌液,或置血平皿送检。

③尸检标本应于死后20h内采取,以防肠道等菌群侵入引起污染。

④作病原体分离的组织标本,不可用福尔马林固定。

疑有污染的较大组织块,可用烧红的烙铁烧灼其表面或置沸水中5~10秒钟使表面变白消除污染后,再用无菌器械切开组织,取中央部位组织送检。

10.静脉导管
从病人体内拔出静脉插管,用无菌技术剪去导管体外部分。

体内段导管立即置血平皿上作滚动涂布接种。

不能作床旁接种者,将导管置含有少量生理盐水的无菌试管内送检。

也可将剪下的导管体内段置肉汤增菌液或置于血培养液内,但不能区分导管感染菌与少量的定植菌。

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