短链脂肪酸的生理功能及其在仔猪生产中的应用

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短链脂肪酸的生理功能及其在仔猪生产中的应用
蔡懿鑫1,2,蒋慧姣1,2,孔祥峰1,2*,贺建华1*
(1.湖南农业大学动物科学技术学院,湖南省畜禽安全生产协同创新中心,湖南长沙 410128;2.中国科学院亚热带农业生态研究所,动物营养生理与代谢过程湖南省重点实验室,湖南长沙 410125)摘 要:断奶应激会给养猪生产带来许多问题,抗生素是解决仔猪断奶应激问题的手段之一。

长期使用抗生素会引起耐药菌产生、降低机体免疫力,故我国决定在2020年开始全面禁止抗生素在饲料中的使用。

而短链脂肪酸是一种具有多种生理功能的添加剂,并且没有毒副作用,是一种绿色无污染的抗生素替代品,或将在养猪生产中起到重要作用。

本文综述了短链脂肪酸在动物机体内的吸收代谢过程及其参与能量代谢、改善消化道微生态和提高机体免疫等生理功能,并介绍了部分短链脂肪酸在仔猪生产上的应用效果,旨在响应国家禁抗政策的同时,为生产中提高仔猪生长性能和替代抗生素的使用提供新思路。

关键词:短链脂肪酸;生理功能;断奶应激;仔猪;肠道健康
中图分类号:S828.5 文献标识码:A DOI 编号:10.19556/j.0258-7033.20190131-08
收稿日期:2019-01-31;修回日期:2019-03-31资助项目:长沙市科技计划重大专项(kq1703007)
作者简介:蔡懿鑫(1994-),男,湖南岳阳人,硕士研究生,主要从事单胃动物营养研究,E-mail :782375016@ *通讯作者:孔祥峰,研究员,博士生导师,E-mail :nnkxf@ ;贺建华,教授,博士生导师,E-mail :895732301@
近年来,伴随着抗生素的大量使用,细菌的耐药性及对食品安全的威胁等问题引发人们关注,新型抗生素替代品成为研发热点。

目前使用较多的能部分替代抗生素功能但没有抗生素副作用的产品有酸化剂、酶制剂、微生态制剂和中草药提取物等[1]。

短链脂肪酸(SCFA )具有良好的抑菌抗炎效果,能保护肠道屏障、维持肠道菌群平衡、增强机体免疫功能等,且没有毒副作用,是一种理想的抗生素替代产品[2]。

本文就SCFA 在动物机体内的吸收代谢过程、主要生理功能及其在仔猪生产中的应用进行综述,旨在为生产中提高仔猪生长性能和禁抗替抗提供新思路。

1 SCFA 概述
SCFA 通常是指碳原子数目不超过6的脂肪酸,主要包括甲酸、乙酸、丙酸、异丁酸、丁酸、异戊酸、戊酸和己酸等。

由于其分子结构小且不稳定,也被称为
挥发性脂肪酸。

SCFA 的来源主要有2种途径:一种是动物通过食物直接获取,另一种是碳水化合物等在微生物作用下通过糖酵解和磷酸戊糖途径发酵产生,后者是动物体内最主要的SCFA 来源。

在养殖生产中,由于SCFA 不稳定,通常将其包膜制成微胶囊颗粒或将其制成水剂使用和保存。

SCFA 均具有水溶性,且90%以上以离子形式存在。

对于反刍动物,SCFA 主要在瘤胃和网胃被吸收;而对于非反刍动物,SCFA 主要在结肠中通过脂溶性扩散、SCFA/HCO 3-交换以及转运体主动运输进行转运。

消化道pH 可影响SCFA 的吸收速度,当pH ≥7时,乙酸吸收速度最快,丙酸次之,丁酸最慢;当pH<7时,结果则相反。

动物体内含量最高的SCFA 是乙酸、丙酸和丁酸,它们在反刍动物和非反刍动物体内的代谢存在差异。

在反刍动物中,乙酸、丙酸和丁酸主要被转化成能量物质供机体使用。

而在非反刍动物体中,乙酸是胆固醇的主要来源,可以在肝脏中合成长链脂肪酸、谷氨酰胺、谷氨酸和β-羟基丁酸,也可以被脑、肌肉和心脏等组织器官利用;丙酸主要在肝脏中进行糖异生作用,并且能抑制乙酸生产胆固醇;而丁酸则作为能量底物参与肠道上皮细胞的代谢,维护肠道黏膜的完整性。

还有部分丁酸能进入肝脏,通过产生酮体和三酰甘油等物质参与糖类和脂类的代谢[2]。

2 SCFA的生理功能
2.1 保护肠道黏膜屏障,且丁酸可为结肠上皮细胞提供能量 SCFA中的丙酸和丁酸可修复肠上皮细胞并使肠上皮细胞再生,在维护肠道正常功能方面起到重要作用。

丁酸可通过羟甲基戊二酰辅酶A循环中的β-氧化作用进行能量代谢,是动物肠道黏膜上皮细胞的主要能量来源。

Yan等[3]研究发现,丁酸可作为ATP合成的营养底物调节细胞的能量状态,提高肠上皮紧密连接蛋白的丰度,保护上皮细胞免受脂多糖诱导的屏障完整性损伤。

黏液层是肠道黏膜的第一道防线,而丁酸可以增强黏蛋白和三叶因子(TFF3)等黏液层主要成分的分泌,抵制外来病原入侵。

Gaudier等[4]研究发现,丁酸是HT-29细胞的唯一能量来源,可参与调节多个编码黏蛋白基因(如MUC3、MUC5B、MUC5AC和MUC2等)的表达,在转录水平上影响黏液层的性质和组成,从而增强其保护作用。

2.2 促进胃肠激素分泌,调节糖类和脂类代谢 SCFA 在动物机体的能量代谢调节中起重要作用。

GPR41和GPR43是SCFA的两大主要受体,能通过参与瘦素、酪酪肽(PYY)、胰高血糖素样肽(GLP-1)等胃肠激素的产生对糖类和脂肪的代谢进行调控。

在结肠中,乙酸和丙酸可通过GPR43和GPR41增加PYY和GLP-1的表达。

PYY可增加肌肉和脂肪组织对葡萄糖的吸收,而GLP-1可增加胰腺中胰岛素的分泌、减少胰高血糖素的产生[5]。

在肌肉和肝脏中,SCFA通过增加AMP/ATP比值直接磷酸化和激活腺苷酸活化蛋白激酶(AMPK),并通过白色脂肪组织中的GPR43-leptin 通路间接激活AMPK。

在白色脂肪组织中,SCFA通过GPR43降低胰岛素敏感性,从而减少脂肪的储存。

此外,SCFA与GPR43结合导致Gi/o蛋白释放,继而抑制腺苷酸环化酶,使ATP/cAMP比值升高。

这导致蛋白激酶A(PKA)和激素敏感脂肪酶(HSL)受到抑制,减少脂肪分解并使血浆中游离脂肪酸减少[6]。

SCFA对一些能量代谢相关疾病的防治具有重要作用。

例如,SCFA可有效降低高脂饮食诱导肥胖小鼠的体重,改善血糖、血脂代谢紊乱,并预防脂肪肝的形成[7]。

肥胖和糖尿病的形成与肠道菌群失衡导致SCFA产生紊乱有很大联系,而丁酸可作为一种药物对肥胖和糖尿病起到一定的治疗作用[8]。

2.3 参与机体免疫调节肠黏膜承担着识别各种食物和微生物抗原的功能,因此肠道也是机体中免疫细胞最多的器官。

肠黏膜上皮细胞不仅能识别病原微生物表面的病原体,也可识别一些微生物代谢产物。

肠道微生物代谢产生的SCFA被识别后,通过调节肠道黏膜免疫细胞和非免疫细胞的功能,影响细胞的分化、增殖和凋亡,从而调节肠黏膜免疫应答过程。

Carretta等[9]研究发现,丁酸可诱导Ca2+流动、使p38蛋白激酶(p38 MAPK)和细胞外调节蛋白激酶(ERK1/2)磷酸化、促进中性粒细胞脱颗粒和胞外诱捕网的形成,调节中性粒细胞的功能并影响固有免疫的应答效应。

丁酸可以通过激活GPR109A受体诱导结肠上皮细胞IL-18的分泌,抑制肠道炎症反应,维持肠道上皮的稳定[10]。

GPR109A受体被丁酸激活后,细胞内环磷酸腺苷水平下降,水和电解质的吸收减少,从而降低炎症性肠病(IBD)引起的腹泻发生率[11]。

在丁酸的激活下,GPR109A通过IL-10和Aldh1a1诱导幼稚T细胞向Treg细胞分化,从而增强树突状细胞(DC)和结肠巨噬细胞的抗炎作用[12]。

Lin等[13]报道,SCFAs能通过影响肠上皮细胞TLR5、TLR2/1、TLR4和TLR9激活NF-κB,促进TNFα分泌,抑制MCP-1和IL-8的产生。

SCFA还能通过抑制组蛋白去乙酰化酶(HDAC)调节mTOR通路,增加p70 S6激酶乙酰化和rS6磷酸化水平以及辅助型T细胞1(Th1)、Th17和分泌IL-10的T细胞比例[14]。

另外,Wu等[15]研究发现,乙酸能通过GPR43作用于DC,从而促进小鼠肠道IgA的产生。

2.4 调节肠道菌群平衡大部分肠道病原微生物的适宜生存pH比肠道益生菌高,SCFA可以在一定程度上降低肠道pH从而抑制病原微生物的活力。

这是因为SCFA进入病原微生物细胞内部后解离出H+,而病原微生物通过主动运输方式排出H+会消耗大量能量。

同时,负离子在细胞内的聚积会引起渗透压改变,从而影响病原微生物的代谢[16]。

也有研究报道,SCFA可以通过抑制酶活性和干扰营养物质吸收来影响病原微生物的正常代谢[17]。

另外,SCFA进入大肠杆菌细胞内部后,通过膜损伤和氧化应激影响2种重要代谢蛋白HPr 和PlfB,也可引起细胞代谢功能受损[18]。

综上所述,SCFA可以通过抑制细胞正常代谢来减少肠道病原微生物的定植,维持肠道菌群的平衡。

2.5 抗癌作用癌症通常与慢性炎症和微生物感染有很
大联系。

结肠处于一个食物残渣与微生物共存的复杂环境中,更容易产生癌变。

许多研究已经证实,SCFA可以抑制结肠肿瘤形成,有一定的抗癌作用。

Hansen等[19]研究发现,膳食纤维摄入量减少会增加溃疡性结肠炎和结肠直肠癌的发生风险,这与碳源减少导致的肠道微生物发酵产物SCFA不足有关。

丁酸作为一种可以显著降低HDAC活性的抑制剂,在阻止肿瘤细胞增殖、促进肿瘤细胞凋亡中起到重要作用。

Donohoe等[20]报道,丁酸的浓度积累导致组蛋白一直处于乙酰化状态,使癌细胞染色体不能复制,从而失去增殖能力。

另外,丙酸能通过激活GPR41通路抑制HDAC,从而增加TNF-α的分泌,并显著诱导肝癌细胞的凋亡[21]。

综上所述,SCFA可以通过多个途径灭杀和清除癌细胞,达到抑制肿瘤的效果。

3 SCFA在仔猪生产中的应用
酸化剂可降低消化道pH、提高消化酶活性、杀灭部分致病性微生物、提高仔猪生长性能[22]。

由于SCFA 具有酸性,生产上经常将甲酸、乙酸和丙酸的一种或者多种作为酸化剂补充成分进行使用。

甲酸挥发性高且适口性差,通常只作为补充成分用于酸化剂中。

乙酸常被配成水溶液用于消毒,或直接添加到饮水中。

最新研究表明,非洲猪瘟病毒(ASFV)可以通过饮水传播,但在pH小于4的环境下很难存活[23]。

因此,可以考虑在饮水中添加乙酸或其他SCFA降低pH来防止ASFV的传播。

霉变的饲料会严重影响仔猪的生长发育,甚至可导致仔猪死亡。

丙酸和丙酸盐具有较好的防霉效果,常用作饲料防霉剂[24]。

饲粮中添加适量丙酸可以降低猪的耗料增重比,提高背膘厚[25]。

张亚南等[26]研究发现,丙酸钠可以选择性上调紧密连接蛋白家族相关基因的表达,维护小肠上皮细胞屏障功能的完整性,同时调节细胞炎症反应。

丁酸对仔猪的生长发育和肠道健康有较大影响。

例如,饲粮添加丁酸钠可以促进断奶仔猪免疫器官的发育,提高血清和肠道黏膜免疫球蛋白的含量,增强机体免疫功能[27];饲粮添加0.03%包膜丁酸钠可显著增加仔猪小肠绒毛高度,增加肠道益生菌含量,降低腹泻率,从而提高仔猪的生长性能[28]。

包被丁酸钠的促生长效果更好,主要是因为包被减轻了丁酸钠的气味,提高了适口性,并能使丁酸钠到达后肠发挥生理作用[29]。

王志刚等[30]报道,饲粮添加微囊丁酸钠可以显著提高保育仔猪平均日采食量,降低耗料增重比和腹泻率。

肠道尤其是结肠中的某些益生菌可以通过发酵产生SCFA,因此饲粮添加益生菌和益生元可以间接增加肠道中SCFA产量。

比如,饲粮添加低聚木糖可以显著提高仔猪粪便和肠道内容物中SCFA含量,并改善肠道健康状况、减少腹泻,从而促进生长[31]。

饲粮添加丁酸梭菌可显著增加仔猪肠道丁酸含量,并提高仔猪小肠屏障功能,调节机体免疫和肠道菌群平衡,促进仔猪生长[32];在母猪饲粮中添加枯草芽孢杆菌可增加仔猪肠道内容物SCFA,尤其是乙酸含量,减少肠道中大肠杆菌数量,并调控哺乳仔猪脂代谢和氮代谢相关血浆生化参数,从而改善哺乳仔猪的肠道健康和生长发育[33]。

然而,由于益生菌发酵产物有许多种,故不能确定上述研究中SCFA的作用是否占主导地位,需要进一步研究证明。

4 小结与展望
SCFA是一类具有多种生理功能的微生物代谢产物,对动物肠道健康和机体免疫具有重要影响,并且没有抗生素的副作用。

SCFA可直接为肠道上皮细胞提供能量,维护肠道黏膜屏障的完整性;也可通过相关受体激活某些细胞通路或胃肠激素参与脂肪和糖类的代谢,从而调节机体的能量供给;还可通过激活GPCR受体和抑制HDAC等方式参与调节机体免疫反应,发挥抗炎和抗肿瘤效果。

饲粮添加SCFA可降低断奶仔猪肠道pH,调节肠道微生态平衡,降低腹泻等疾病的发生率,增强机体免疫功能和健康水平,从而提高仔猪的生长性能,起到禁抗替抗作用。

SCFA容易被胃和小肠吸收,因此可以考虑将SCFA以包被形式添加到仔猪日粮来提高生长性能,缓解断奶应激。

同时,也可以通过饲粮添加益生菌和益生元的方式来间接促进仔猪肠道内SCFA的产生。

另外,在某些传染病爆发时,通过在饲料和饮水中添加SCFA 来提高仔猪抗病力,同时降低饮食的pH阻止病原菌的传播,可能是一种值得商榷的防控手段。

参考文献:
[1] 刘军, 喻礼怀, 董丽. 抗生素及其潜在替代物在断奶仔猪上
的应用[J]. 中国饲料, 2018(15): 10-15.
[2] 赵怀宝, 任玉龙. 短链脂肪酸在动物体内的生理特点和功能
[J]. 饲料研究, 2016(3): 29-32.
[3] Yan H, Ajuwon K M. Butyrate modifies intestinal barrier function
in IPEC-J2 cells through a selective upregulation of tight junction proteins and activation of the Akt signaling pathway[J]. PLoS One, 2017, 12(6): e0179586.
[4] Gaudier E, Jarry A, Blottière H M, et al. Butyrate specifically
modulates MUC gene expression in intestinal epithelial goblet cells deprived of glucose[J]. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol, 2004, 287(6): 1168-1174.
[5] Den Besten G, Van Eunen K, Groen A K, et al. The role of short-
chain fatty acids in the interplay between diet, gut microbiota, and host energy metabolism[J]. J Lipid Res, 2013, 54(9): 2325-2340.
[6] Koh A, DeVadder F, Kovatcheva-Datchary P, et al. From
dietary fiber to host physiology: short-chain fatty acids as key bacterial metabolites[J]. Cell, 2016, 165(6): 1332-1345.
[7] 刘倩, 陈成, 辛鑫, 等. 短链脂肪酸对高脂饮食诱导肥胖小
鼠糖脂代谢紊乱的影响[J]. 肝脏, 2018, 23(7): 591-595. [8] Remely M, Haslberger A G. The microbial epigenome in
metabolic syndrome[J]. Mol Aspects Med, 2016, 54: 71-77. [9] Carretta M D, Hidalgo A I, Burgos J, et al. Butyric acid stimulates
bovine neutrophil functions and potentiates the effect of platelet activating factor[J]. Vet Immunol Immunopathol, 2016, 176: 18-27.
[10] 张锦涛, 伊曼, 李志嘉. 丁酸盐在炎症反应中作用机制的研
究进展[J]. 免疫学杂志, 2015(12): 1101-1104.
[11] Chen G X, Ran X, Li B, et al. Sodium butyrate inhibits inflam-
mation and maintains epithelium barrier integrity in a TNBS-induced inflammatory bowel disease mice model[J]. E Bio Med, 2018, 30: 317-325.
[12] Singh N, Gurav A, Sivaprakasam S, et al. Activation of Gpr109a,
receptor for niacin and the commensal metabolite butyrate, suppresses colonic inflammation and carcinogenesis[J]. Immunity, 2014, 40(1): 128-139.
[13] Lin M Y, de Zoete M R, Van Putten J P M, et al. Redirection of
epithelial immune responses by short-chain fatty acids through inhibition of histone deacetylases[J]. Front Immunol, 2015, 6: UNSP554.
[14] Park J, Kim M, Kang S G, et al. Short-chain fatty acids induce
both effector and regulatory T cells by suppression of histone deacetylases and regulation of the mTOR-S6K pathway[J].
Mucosal Immunol, 2015, 8(1): 80-93.
[15] Wu W, Sun M, Chen F, et al. Microbiota metabolite short-
chain fatty acid acetate promotes intestinal IgA response to microbiota which is mediated by GPR43[J]. Mucosal Immunol, 2016, 10(4): 946-956.
[16] 张希, 杨明, 宋飞, 等. 脂肪酸及其衍生物的抑菌活性[J].
浙江大学学报(农业与生命科学版), 2013, 39(2): 155-160. [17] Desbois A P, Smith V J. Antibacterial free fatty acids: activities,
mechanisms of action and biotechnological potential[J]. Appl Microbiol Biotechnol, 2010, 85(6): 1629-1642.[18] Rodríguez-Moyá, María, Gonzalez R. Proteomic analysis of
the response of Escherichia coli to short-chain fatty acids[J]. J Proteomics, 2015, 122: 86-99.
[19] Hansen L, Skeie G, Landberg R, et al. Intake of dietary fiber,
especially from cereal foods, is associated with lower incidence of colon cancer in the HELGA cohort[J]. Int J Cancer, 2012, 131: 469-478.
[20] Donohoe D, Collins L, Wali A, et al. The warburg effect dictates
the mechanism of butyrate-mediated histone acetylationand cell proliferation[J]. Mol Cell, 2012, 48(4): 612-626.
[21] Mamiko K, Daisuke M, Junsuke U, et al. A short-chain fatty
acid, propionate, enhances the cytotoxic effect of cisplatin by modulating GPR41 signaling pathways in HepG2 cells[J].
Oncotarget, 2018, 9(59): 31342-31354.
[22] 张旭晖, 王恬, 冀凤杰, 等. 有机酸化剂对断奶仔猪生长性
能和肠道健康的影响[J]. 动物营养学报, 2012, 24(3): 507-514.
[23] Niederwerder M C, Stoian A M M, Rowland R R R, et al. Infec-
tious dose of African Swine fever virus when consumed naturally in liquid or feed[J]. Emerging Infectious Diseases, 2019, 25(5): 891-987.
[24] 包红朵, 王冉. 两种防霉剂抑制黄曲霉菌及禾谷镰刀菌的生
长和饲料防霉效果研究[J]. 饲料工业, 2011, 32(6): 53-55. [25] 汪仕奎, 蒋宗勇, 林映才, 等. 丙酸对生长育肥猪生长性能、
肉品质和免疫机能的影响研究[A].中国畜牧兽医学会动物营养学分会第十一次全国动物营养学术研讨会论文集[C].
长沙: 中国畜牧兽医学会动物营养学分会, 2012.
[26] 张亚南, 李轩, 陈慧子, 等. 丙酸钠对IPEC-J2细胞紧密
连接及炎症细胞因子的影响[J]. 南京农业大学学报, 2019, 42(1): 137-144.
[27] 李丹丹, 冯国强, 钮海华, 等. 丁酸钠对断奶仔猪生长性能
及免疫功能的影响[J]. 动物营养学报, 2012, 24(2): 307-313.
[28] 李虹瑾, 沙万里, 尹柏双, 等. 包膜丁酸钠对断奶仔猪肠道菌
群及生长性能的影响[J]. 家畜生态学报, 2017, 38(9): 30-34. [29] 陈国顺, 余荣, 冯光彧. 日粮中添加包膜丁酸钠对香猪生产
性能和血液生化指标的影响[J]. 中国畜牧兽医, 2012, 39(6): 98-100.
[30] 王志刚, 章利丰, 侯嘉, 等. 微囊丁酸钠对保育猪生长性能
的影响[J]. 中国饲料, 2013(22): 29-31.
[31] 谭兵兵. 低聚木糖对断奶仔猪生长性能、血浆生化参数和
肠道微生态的影响[D]. 南宁: 广西大学, 2015.
[32] 李玉鹏, 李海花, 王柳懿, 等. 丁酸梭菌对断奶仔猪生长性
能、肠道屏障功能和血清细胞因子含量的影响[J]. 动物营养学报, 2017, 29(8): 2961-2968.
[33] 韩丽, 解培峰, 孔祥峰, 等. 母猪饲粮中添加枯草芽孢杆菌
对哺乳仔猪血浆生化参数、粪便微生物及其代谢产物的影响[J]. 动物营养学报, 2018, 30(4): 1465-1470.
Physiological Function of Short-chain Fatty Acids and Their Application in Piglet Production CAI Yixin1,2, JIANG Huijiao1,2, KONG Xiangfeng1,2*, HE Jianhua1*
畜禽生长发育相关性状的全基因组
关联分析研究进展
陶 林,贺小云,狄 冉,刘秋月,胡文萍,王翔宇,储明星*
(中国农业科学院北京畜牧兽医研究所,农业农村部动物遗传育种与繁殖重点实验室,北京 100193)摘 要:全基因组关联分析(GWAS )是近年兴起的用于分析复杂性状的重要研究方法。

高通量测序技术的成熟发展使得基于全基因组测序技术和基因芯片技术的GWAS 解析畜禽复杂性状成为可能,GWAS 的运用对畜禽经济性状相关的SNP 、QTL 和候选功能基因研究起到关键作用。

本文主要对GWAS 的基本原理和方法、优劣势以及GWAS 在畜禽生长发育相关性状中的应用现状进行综述,并对GWAS 在今后畜禽育种中的应用前景进行展望,以期为GWAS 在畜禽育种中的深入研究提供参考。

关键词:全基因组关联分析;生长发育相关性状;SNP ;候选基因
中图分类号:S831.1 文献标识码:A DOI 编号:10.19556/j.0258-7033.20190218-04
收稿日期:2019-02-18;修回日期:2019-03-15
资助项目:国家自然科学基金项目(31772580);国家肉羊产业技术体系专项(CARS-38);中国农业科学院科技创新工程(ASTIP-IAS13);中央级公益性科研院所基本科研业务费专项(Y2017JC24);农业科研杰出人才及其创新团队项目(农办人[2015]62号);国家万人计划科技创新领军人才项目(W02020274)
作者简介:陶林(1994-),男,重庆黔江人,硕士研究生,研究方向为动物遗传育种,E-mail :taolincanjian@ *通讯作者:储明星(1968-),博士,研究员,博士生导师,主要从事羊优异繁殖性状分子机理研究,E-mail :mxchu@
全基因组关联分析(Genome-wide Association Study ,GWAS )最早应用于人类疾病,是用于解析复杂性状的重要研究手段[1]。

过去十多年中,高通量测序技术的快速发展和测序成本降低使得GWAS 用于畜禽相关经济性
状研究成为可能,尤其是各种商用畜禽基因芯片的成功研发极大推动了GWAS 的发展。

在全基因组选择育种时代,GWAS 是预测畜禽生产性能和评价畜禽遗传资源的有力工具。

本文综述了GWAS 的基本原理、方法、优劣势以及GWAS 在畜禽生长发育相关性状中的应用现状,并对GWAS 在今后畜禽育种中的应用前景进行展望,以期为GWAS 在畜禽育种中的深入研究提供参考。

1 GWAS 的基本原理与方法
1.1 GW AS 的基本原理 GW AS 依赖于连锁不平衡(Linkage Disequilibrium ,LD )检测群体的遗传变异(主要是SNP )与性状之间的关联,然后通过统计基因型和表型的关联性大小筛选出影响显著的遗传变异。

因此,GWAS 通过分析遗传变异和表型变异的关联性,定位影响表型性状
(1.College of Animal Science and Technology, Hunan Co-Innovation Center of Animal Production Safety, Hunan Agricultural
University, Hunan Changsha 410128, China; 2.Hunan Provincial Key Laboratory of Animal Nutrition Physiology and Metabolism Process, Institute of Subtropical Agriculture, Chinese Academy of Sciences, Hunan Changsha 410125, China)Abstract: Weaning stress can cause many problems in pig production. Dietary supplementation with antibiotics is one of the means to solve these problems in piglets. Long-term use of antibiotics can cause drug-resistant bacteria and reduce immunity, while short-chain fatty acids (SCFAs) have no toxic side effects and present various physiological functions, which can partially replace the antibiotics. This paper reviews the absorption and metabolism of SCFA in animals, and their physiological functions, such as energy metabolism, improvement of gut microecology and enhancement of body immunity, as well as the application effects of several SCFAs in piglet production. The aim is to provide new ideas for improving the growth performance of piglets and reducing the use of antibiotics in swine production.
Keywords: Short-chain fatty acids; Physiological function; Weaning stress; Piglets; Intestine health
(责任编辑:郑本艳)。

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