免疫荧光技术实验步骤及方法

免疫荧光技术实验步骤及方法
免疫荧光是标记免疫技术发展最早的一种，它是在免疫学、生物化学和显微镜技术的基础上建立起来的一项技术，通过将抗体与一些示踪物质结合，利用抗原抗体反应进行组织或细胞内抗原物质的定位。

10个关键点
免疫荧光步骤包括，细胞固定和通透，封闭，孵育一抗，二抗等。

除了这些基本步骤，以下建议可以帮助您获得更好的实验结果。

1、选择合适的细胞种板密度
细胞数过多时，生长过密，细胞结构不清，易导致染色背景深，细胞数过少时，会使贴壁贴壁不佳，状态不好，一般以六孔板为例，（1-5）×100000比较适宜。

2、细胞固定和通透
为达到最佳的检测效果，细胞需要经过固定和通透。

这些步骤非常关键，细胞和抗原需要保证最佳的结构，并利于抗体与抗原结合。

现在固定液选择比较多，有4%多聚甲醛、甲醇、乙醇、丙酮以及丙酮和甲醇混合液（1：1），但效果最好的应用最多的还是推荐4%多聚甲醛。

之后用0.1%皂角苷或0.02%的Triton X-100进行通透。

前者是比较温柔的处理，但是对于核内抗原可能无效，需要用到Triton。

使用皂角苷进行通透时，要注意它会引起细胞膜的可逆性通透，也就是除了在通透初期，在每个抗体孵育环节都需要进行通透。

另外，细胞可以用冰甲醇进行同时固定和通透，可以避免去垢剂的使用。

3、抗体特异性
免疫荧光需要用到特异性非常强的抗体，可以避免高背景和不理想的蛋白定位结果。

在大多数情况下，纯化抗体的效果很好，但是正确的对照可以帮助精准定位抗原。

使用只有二抗染色的片子作为阴性对照，有利于减少降低背景干扰。

4、合适的抗体稀释比例
通过优化抗体稀释比例来优化染色，通常情况下1ug/ml的纯化抗体或者1:100-1:1000的抗血清足够达到特异性染色的结果。

但在能保
证低背景染色的前提下，可以通过增加浓度来提高信号强度。

如果是第一次使用该抗体或测定某抗原，强烈建议浓度梯度实验。

5、优化缓冲液和封闭剂
尽管很多抗原在常见的Buffer如PBS中可以很好的被染色，但是对于某些目的抗原，更换一下含有不同离子的缓冲液，比如钙、镁、钾等，可以带来很大程度上的改善。

Rockland可提供优化过的IHC用封闭缓冲液，同样适用于荧光染色实验。

6、选择正确的二抗
如果您需要做免疫实验，我们强烈建议您选择进行过预吸附的二抗进行单染实验；如果是双重甚至是多重染色，那么必须使用预吸附的二抗。

同时，请优先选择来自同一物种的二抗。

7、洗涤也要重视
为了防止一抗、二抗等试剂残留而引起非特异性染色，所以适当地加强清洗（延长时间和增多次数）尤为重要，一般在一抗的清洗是5 min*3次；
注意：
（1）单独冲洗，防止交叉反应造成污染。

（2）温柔冲洗，防止切片的脱落；
（3）冲洗的时间要足够，才能彻底洗去结合的物质。

（4）PBS的PH和离子强度的使用和要求，建议PH在7.4-7.6浓度是0.01M。

（中性及弱硷性条件（PH7-8）有利于免疫复合物的形成，而酸性条件则有利于分解；低离子强度有利于免疫复合物的形成，而高离子强度则有利于分解）
8、降低背景
高背景是免疫荧光常见的问题，解决此问题可以用二抗来源的正常血清代替BSA做封闭液，降低抗体浓度，增加洗涤次数，洗涤至少三次，每次五分钟，推荐洗涤液为PBS+0.05%Tween。

9、多重染色
复染的目的是形成细胞轮廓，从而更好地对目标蛋白进行定位（一般常用DAPI复染）。

对同一样本进行两个不同抗原的检测时，可
以用各自的抗体进行同时染色，但要求两个一抗的种属来源不同，标记物不同，而二抗的种属来源需保持一致。

10、封片和数据分析
作为免疫荧光的最后一步，可以提高折射率，保护样品，为了长期保存，我们一般用缓冲甘油等封片，同时还要注意避免产生气泡。

经荧光染色的标本最好在当天观察，随着时间的延长，荧光强度会逐渐下降。

观察整体样片时，选择具有代表性的细胞进行数据获取与分析。