11级生物技术1班发酵工程实验计划方案

生物技术一班发酵工程实验计划方案
一、实验日程表
序号实验项目时间实验内容安排
1 培养基制
备与灭菌
预计8学
时
1、固体培养基配制500mL/组，分装2瓶；
2、培养皿清洗及包扎10副/组；无菌水90mL/瓶，9 mL/试管
共6支；
3、1 mL or2 mL吸管包扎8支/组；
4、液体培养基制备：500ml/组，分装8瓶，灭菌0.1MPa,20min.
2 菌种分离预计4学
时
1、菌种的分离纯化:超净工作台消毒（UV照射20min）→75%乙
醇擦拭台面；分离样品→无菌水溶解(稀释10-2倍)→涡旋震荡
5min；倒平板(10副平皿/组)→平板划线分离→30℃倒置培养→
目标菌株获得→制片及观察（显微摄影）。

3 种子制备预计4学
时
1、接种准备工作：超净工作台消毒（UV照射20min）→75%乙醇
擦拭台面。

2、纯种培养接种：平板单一菌落→种子培养基（2环/瓶）→涡
旋震荡3-5min；
3、摇瓶培养：摇床设置及调节（30℃，200r/m）→摇瓶固定→
启动培养。

4
发酵罐结
构认识、操
作规程及
分批发酵
操作
预计8学
时
1、发酵培养基配制：20Lor35L。

2、发酵罐操作培训：发酵罐初始状态检查及调节→清洗（清水
冲洗2-3遍）→发酵罐运行启动→发酵罐运行参数设置→空
罐灭菌（0.15MPa,20min）→进料→实罐灭菌（0.1MPa维持
30min）→冷却→火焰封口接种→发酵参数稳定状态调节与
维持。

3、发酵取样：取样管灭菌→取样→再灭菌；
4、发酵中间过程分析（0 hour）： pH测定（pH计or精密试纸）；
酸度（中和法）；酶浓度测定（福林酚法）；菌体浓度测定（A600
光密度法）
5、中间取样：每间隔4h, 取样管灭菌→取样→再灭菌.共计
4-6次；
6、发酵结束工作：器皿、设备还原，环境清洁
二、实验分组
第一组：薛盛、张川、周宁、殷清玉宇、周辰栋、杨朝伟、吴迪、刘洋、刘丽婷（负责人：吴迪）
第二组：张怡、沈飞、徐依依、陆佳桦、吴冰燕、王芸清鉴、叶晨、汪素红、刘杏、刘文跃（负责人：沈飞）
第三组：田玉寒、闻宁、林飞敏、李林棋、丁铭、周欣欣、罗斯、蒋秋艳、刘宇霞（负责人：田玉寒）
三、时间分配
前三周的周二晚发酵理论课照上，因此各组的固定实验时间如下：第一组固定实验时间：周一下午、周三晚上
第二组固定实验时间：周二中午、周四上午
第三组固定实验时间：周五下午、周五晚上
后三周的周二晚无理论课，各组集中在周二晚实验
前三周每周安排两次实验，以获取更多的实验数据，后三周每周一次集体实验
几个重要时间节点为：第10周正式进入实验程序；
第13周获得目标菌株1株；
第14周完成种子的摇瓶培养；
第15周分别完成上罐发酵；
第16周实验收尾工作。

四、实验内容
实验一产蛋白酶微生物菌株的分离
【实验材料】
1、采样样品
食堂泔脚等残存蛋白质丰富的环境周围的土壤或其它蛋白质腐败材料。

2、培养基
（1）增殖培养基：蛋白胨10 g/L，牛肉膏3 g/L，氯化钠5 g/L，pH 7.0～7.2，0.1MPa，灭菌20min。

（2）分离纯化培养基：酪蛋白10 g/L，Na2HPO4 6 g/L，KH2PO4 3 g/L，NaCl 0.5 g/L，NH4Cl 1 g/L，FeSO4 0.025 g/L，酵母膏0.2 g/L，MgSO4 0.24 g/L，CaCl2 0.011 g/L，溴百里香酚兰0.05 g/L，琼脂20 g/L，pH 7.0～7.2，0.1MPa，灭菌20min。

（3）菌种保存培养基：蛋白胨10g/L，牛肉膏3 g/L， NaCl 5g/L，琼脂 20g/L，pH 7.0～7.2，0.1MPa, 灭菌20min。

（4）无菌水：90 mL无菌水/250 mL三角瓶; 9 mL无菌水/试管6支。

3、实验器材
刮铲、一次性手套、无菌小塑料袋、试管、三角瓶、培养皿、吸管、接种环和涂布棒等。

4、实验设备
涡旋振荡器、超净工作台、高压灭菌锅、振荡培养箱、恒温培养箱、（数码）显微镜。

【实验步骤】
1、采样
分别取食堂泔脚池周边土壤，腐烂基质或其它可能含有蛋白酶生产菌的生物制剂10g装入无菌小塑料袋，在超净工作台上将样品混合均匀从中称取1g作为待增殖的采样样品。

2、增殖培养
1g待增殖的采样样品加入50 mL增殖培养基/250 mL三角瓶中，涡旋振荡器上振荡5min，可设置3组平行。

混匀的液体置于30℃，180 r/min振荡培养箱中摇瓶培养36 h。

增殖后的培养液置于80℃水浴中加热10 min去除营养体细胞，迅速取出冷却至常温，待用。

平行样可以在加热处理后再合并成一个样作为增殖培养液。

3、增殖液梯度稀释
在超净工作台中取增殖培养液10 mL加入装有90 mL无菌水的250 mL 三角瓶中，静置5 min后用涡旋振荡器上振荡5 min，制成10-1稀释菌液。

用无菌吸管吸取1 mL 10-1稀释菌液加入9 mL无菌水试管中，涡旋振荡器1 min制成10-2稀释菌液，再依次用无菌吸管吸取1 mL稀释菌液加入9 mL无菌水试管中梯度稀释成10-3、10-4、10-5、10-6、10-7倍稀释菌液。

4、平板涂布
分别取0.1mL 10-6、10-7稀释菌液于分离培养基平板上，用无菌涂布棒分别涂布均匀，每一稀释度重复5个平行。

5、培养
将涂布好的平板放入30℃微生物恒温培养箱中倒置培养36 h 后，观察培养结果，统计总菌数、菌落种类及各自比例。

6、菌株鉴别及纯化
挑取菌落周围培养基变蓝色的典型菌落，在保存培养基平板上划线纯化至单一菌落。

显微观察菌体形态。

纯化后的纯菌落作斜面菌种保藏作为后续实验的备用菌种。

【实验结果】 1、菌落总数M
M =
)/(101.0ml cfu N
n
N n =⨯⨯ （1.1）
2、目标菌株比例P
P=(%)100⨯M
m （1.2）
式中：n 为平板上菌落数（个），以出现30-300个菌落的平板计数为宜，0.1为涂布稀释液加量（mL ），10为量取的增殖培养液量（mL ）, m 为变色菌落数，N 为所计数平板的稀释倍数。

3、显微观察典型目标菌落及细胞形态。

实验二蛋白酶生产菌种的筛选
【实验材料】
1.待选菌种
取“实验1”分离出的待选菌株3~5株，或以枯草芽孢杆菌（Bacillus subtilis）和地衣芽孢杆菌(Bacillus lichenifornis)等不同产蛋白酶性状的菌株5~7株。

2.培养基
（1）鉴别培养基：酪蛋白10 g/L，Na2HPO4 6 g/L，KH2PO4 3 g/L，NaCl 0.5 g/L，NH4Cl 1 g/L，FeSO4 0.025 g/L，酵母膏0.2 g/L，MgSO4 0.24 g/L，CaCl2 0.011 g/L，溴百里酚蓝0.05 g/L，琼脂20 g/L，pH 7.0～7.2，0.1MPa，灭菌20min。

（2）验证培养基：可溶性淀粉10 g/L，蛋白胨5 g/L，酵母膏0.25 g/L， KH2PO4 3 g/L，NaCl 0.5 g/L，MgSO4 0.24 g/L，pH 7.0～7.2，分装成50mL培养基/250mL三角瓶，0.1MPa，灭菌20min。

3.实验器材
游标卡尺、无菌移液管、无菌培养皿、三角瓶、吸管和涂布棒等。

4.实验设备
恒温水浴锅、涡旋振荡器、超净工作台、高压蒸汽灭菌锅、恒温培养
箱、振荡培养箱、紫外可见分光光度计、显微镜等。

【实验步骤】
1.倒平板
将已经灭菌的鉴别培养基自然冷却至50℃左右（即未凝固之前。

可以将装有融化状态培养基的三角瓶放在50℃恒温水浴锅中保持。

注意倒平板时培养温度过高，培养皿盖上易产生较多的冷凝水，影响菌落形成的自然形态），在超净工作台上无菌操作倒平板，培养基凝固后待用。

2.点种接种
无菌操作用接种环从待选菌株斜面上取一环菌苔点种在鉴别培养基平板上，每平板上选取分布合适的三个点以点种接种方式接入菌体，在平板培养皿上标记各菌株代号。

不同菌株分别接种在不同平板上，各菌株分别做3组平行试验。

3.培养
接种后的平板置于30～32℃下恒温培养箱中培养36 h。

4.变色圈测量
分别在培养12h、24 h和36h时用游标卡尺从平板培养皿背面分别测定各菌的变色圈直径（mm）与菌落直径（mm），计算其直径比值。

5.验证性培养
选取变色圈直径与菌落直径比值最大的菌株与最小的菌株用接种环分别接入2环菌体于验证液体培养基中，30~32℃，180r/min振荡培养箱中摇瓶培养48 h，将发酵液过滤或离心，取清夜检测其中的蛋白酶产量(U)。

6.蛋白酶活力测定
参照附件Ⅸ“蛋白酶活力测定方法”。

【实验结果】
1、蛋白酶生产菌种的筛选
表1-1 蛋白酶生产菌种的筛选
培养时间平均直径菌株1 菌株2 菌株3 菌株4 菌株5
12h 变色圈直径/mm 菌落直径/mm 直径比值
24h 变色圈直径/mm 菌落直径/mm 直径比值
36h 变色圈直径/mm 菌落直径/mm 直径比值
平均变色速率/(mm/h)
注：平均变色速率为单位时间内菌落周围蓝色变色圈直径增加的程度，用mm/h表示。

2、筛选菌株产酶活性
表1-2 菌株产蛋白酶结果验证
菌株编号培养液
（mL）
24h酶浓度
（U/mL）
36h酶浓度
（U/mL）
对照菌株
总酶活（U）
高产菌株
总酶活（U）
注：总酶活（U）=培养液中酶浓度（U/mL）×培养液总体积（mL）。

实验二十一发酵菌种制备
【实验材料】
1、菌种
实验选育产蛋白酶菌株，或枯草芽孢杆菌等其它产蛋白酶菌株。

2、培养基
（1）斜面培养基：牛肉膏蛋白胨琼脂培养基（配方参照附录六“常用培养基”）
（2）种子培养基：可溶性淀粉5g/L，牛肉膏 5g/L ，蛋白胨 10g/L，NaCl 5g/L，0.1MPa，灭菌20min。

3、实验器材
三角瓶、容量瓶、吸管（1mL,5mL,25mL）、烘箱、试管架。

5、实验仪器
超净工作台、恒温培养箱、振荡培养箱、高压蒸汽灭菌器、显微镜、分光光度计等。

【实验步骤】
1、菌种活化
将实验菌种转接到牛肉膏蛋白胨琼脂培养基平板上，37℃倒置培养22~24 h活化。

2、接种培养
将活化菌种无菌操作接入装入50mL种子培养基/250mL三角瓶中，每瓶接2环菌苔。

接种后的培养液用蜗旋振荡均匀，32℃，180r/min 摇瓶培养18~22 h，作为一级种子。

将一级种子按20%的接种量接入250 mL种子培养基/1000mL三角瓶中，32℃，150r/min摇瓶培养16~18 h，作为二级种子。

3、种子质量检查
培养后的种子培养液无菌操作取样5mL，分别作显微镜涂片染色检验细胞形态，测定培养中的菌体浓度（OD600）和蛋白酶浓度（U/mL）。

4、检测方法
菌体浓度和蛋白酶含量检测参照附录九“菌体浓度检测方法”和“蛋白酶含量测定方法”。

【实验结果】
1、种子液中菌种细胞形态图。

2、种子质量指标
表1 种子质量指标
检测项目实测值参考指标备注
菌体浓度（OD600）净增加值>1.0
产物浓度(U/mL) <10
菌体形态短杆菌，芽孢形成率60-70%
杂菌污染阴性结论
实验二十二发酵罐结构认识及使用操作规程
【实验目的】
了解发酵系统的基本组成，认识典型机械搅拌通气式发酵罐的基本结构，学习发酵罐工作的一般原理，学会发酵罐使用的操作规程。

【实验内容】
1、发酵罐基本结构组成
（1）罐体系统：罐体、夹套、搅拌器、挡板、进料口、接种口、放料口、排气管、进气管、取样管、照明灯等。

（2）灭菌系统：蒸汽发生器、蒸汽分配管、夹套加热装置、放料口灭菌装置、通气管取样管灭菌装置、空气过滤系统灭菌装置。

（3）温度控制系统：罐内温度传感器（电极）、水箱温度传感器（电极）、恒温水箱、恒温水循环管路。

（4）无菌空气制备系统：空气压缩机、气液分离器、气体流量计、气流调节器、空气粗过滤器和空气精过滤器等。

（5）控制系统：电源开关、操作显示屏、控制器触摸开关、参数设置转换调节屏。

2、发酵罐操作规程
（1）发酵罐工艺操作条件设置
温度：10～50℃。

压力：0～0.3MPa(表压)。

灭菌条件；温度120～
125℃，压力0～0.3MPa (表压)。

通气量：0.3～2 V/V/M。

功率消耗：0.5～4kW/m3。

发酵热量：5，000～20，000 kcal/m3．h。

（2）清洗工作
清洗前应取出pH、DO电极。

清洗罐内可配合进水、进气、电机搅拌、加温一起进行。

清洗后安装要注意罐内密封圈、硅胶垫就位情况。

注意罐与罐座间隙均衡。

（3）试车
将电极、电机、电缆、进出气软管、冷凝器进出水接头安装就位；安装完毕后要对罐体内通气（0.2MPa）作密封性试验。

方法如下：关闭阀门；旋紧罐体上每一个接口、堵头、电极紧固帽；打开空压机，调节气阀，使罐压保持0.2MPa左右；对系统进行2~3小时试运行，如有问题作相应处理后，方可正式使用。

（4）发酵罐使用准备
如果短期内需再次培养发酵，应对其进行2~3次清水清洗待用。

如准备长期停用，则应对其进行灭菌，然后放去水箱与罐内存水，放松罐盖紧固螺丝，取出电极保养储存好，将罐、各管道余水放净，关闭所有阀门，电源，盖上防尘罩。

发酵罐操作开始前，先关闭所有出料口、取样口和进气口，打开出气阀；打开进料口螺盖加入发酵培养基，装注完成后旋上进料口螺盖，稍留空隙待灭菌升温至100℃前喷出蒸汽对螺盖灭菌处理。

（5）灭菌
启动蒸汽发生器，待气压达到0.2~0.3Mpa以上时：
a. 开启发酵罐出气阀，开启高压蒸汽阀将高压蒸汽通过进气阀引入夹套，打开夹套排水阀，排除蒸汽冷凝水，控制阀门开量，保持微弱出汽；
b. 同时通过蒸汽分配管将蒸汽引入空气过滤系统（注意：蒸汽引入前关闭通向电器控制柜的空气阀门），使蒸汽通过一级和二级空气过滤器并顺利进入取样口出口，保持取样放出口微弱出汽；
c. 另一路蒸汽通过蒸汽阀发酵罐放料口，并保持放料口微弱出汽；
d.等到罐内培养基温度达到80℃时，开启与罐直接相连的通气阀，将高压蒸汽直接接入罐内加热培养基，并对与罐相连的管道灭菌。

e. 直到罐内培养基开始沸腾后，关闭排气阀，使罐内升压至0.1Mpa （或灭菌温度121℃），维持温度0.5-1.0小时。

f. 关闭蒸汽进气阀，开启冷却水管路系统，通过夹套冷却发酵培养基，当罐内压力接近常压前向罐内通入无菌空气，保持罐内空气压力
0.03MPa上下，至发酵温度关闭冷却水系统。

g.启动空气压缩机，开启进气阀、使压缩空气通过旋风分离器及空气过滤器，从进气阀进入发酵罐，使溶解氧浓度达到发酵初始水平。

（6）接种：火焰接种法
在接种口用酒精火圈维持加料口的无菌状态，然后打开接种口盖，迅速将接种液倒入罐内，在把盖拧紧。

（7）发酵状态调节
a.罐压：发酵过程中须手动控制罐压，即用出口阀控制罐内压力。

调节空气流量的，须同时调节出口阀，应保持罐内压力恒定大于
0.03Mpa。

b. 溶解氧（DO）的测量和控制：溶解氧的标定：在接种前，在恒定的发酵温度下，将转速及空气量开到最大值时的溶解氧DO值作为100%。

发酵过程的溶解氧DO测量和控制：DO的控制可采用调节空气流量和调节转速来达到。

最简单是转速和溶氧的关联控制。

其次则必须同时调节进气量（手动）控制。

有时需要通入纯氧（如在某些基因工程菌的高密度培养中）才能达到要求的DO值。

c. pH的测量与控制：在灭菌前应对pH电极进行pH值的校正。

在发酵过程中pH值的控制使用蠕动泵的加酸加碱来达到的，酸瓶或碱瓶须先在灭菌锅中灭菌。

旋松进料口螺旋盖，在进料口环槽中加入适量酒精棉，点燃酒精，打开进料口螺旋盖，将种子三角瓶菌液接入发酵罐。

搅拌均匀后，开始发酵控制。

（8）取样：间隔8 h，开启取样阀取样300-500mL发酵液分别测定残糖、菌浓、酸度等数值。

发酵参数到达放罐指标时，发酵结束。

（9）放料：打开放料阀，将发酵液全部排出；
（10）清洗：放罐后用水清洗发酵罐2-3次，洗净后通蒸汽消毒15min。

培养后用干净抹布要清除电器箱、电缆等接头和其他罐体部件上的物体。

实验二十三发酵培养基配制及发酵罐原位灭菌
【实验材料】
1、材料
可溶性淀粉，蛋白胨，酪蛋白，牛肉膏，酵母浸出膏，NH4Cl，消泡剂，pH试纸；NaOH；HCl；
2、发酵培养基
可溶性淀粉 10 g/L，蛋白胨8 g/L，NH4Cl 2.5 g/L，KH2PO4 3 g/L，FeSO4 0.025 g/L， MgSO4 0.24 g/L，酵母浸出膏0.5g/L，消泡剂0.1 g/L， pH 7.0～7.2。

3、实验器材
三角瓶、容量瓶、吸管（1mL,5mL,25mL）、烘箱、试管架。

4、实验仪器
电子天平；50L机械搅拌式通气式发酵罐、空气压缩机、贮气罐、分水器、空气粗滤器、空气精滤器、蒸汽发生器等。

【实验步骤】
1、培养基原料计算
计算发酵罐装料系数为0.75时的培养基总量，按发酵培养基配方组成计算各营养物质的用量。

2、原料称量
用电子天平准确称量各物质，对于微量物料的衡量应先配制10倍或100倍的母液再减量添加。

3、培养基原料溶解
将培养基的组分分别加入到带一定体积水的5L大烧杯或桶中，搅拌溶解，添加一种原料溶解一种，直到全部加完。

4、培养基装料
用塑料勺通过漏斗将配制好的发酵培养基从发酵罐顶部的装料口加入发酵罐，水加量比计算体积减少约1L以抵充在发酵罐管道灭菌时蒸汽直接通往发酵罐内形成冷凝水对培养的的稀释作用。

5、培养基调pH值
用0.1mol/LHCl或0.1mol/L NaOH从加料口滴入发酵罐，边滴入边搅拌，不断从放料口取样测定发酵培养基pH，直到调节培养基pH值至配方要求的pH值为止。

6、原位灭菌
打开发酵罐待用状态时的夹套进汽阀门，小开放夹套排汽阀门，开启发酵罐搅拌器，边搅拌边加热，至发酵培养基温度达到80℃时同时开启放料口灭菌蒸汽阀门和放料阀门，将蒸汽引入发酵罐内，对放料口及其附属管道灭菌；开启进气管阀门对通气生产关系进行灭菌。

直到培养基温度大于100℃时通过排气阀排尽罐内空气后关闭排气阀、放料阀和进气阀，通过夹套继续升温至设定的培养基灭菌温度，并在此温度下维持设定的灭菌时间。

7、培养基降温
关闭夹套进汽阀，切换发酵罐冷却系统，将冷却介质（通常为自来水）从夹套引入对高温培养基进行冷却，当罐内压力接近常压（表压为0 MPa）时开启进气阀门向罐内引入无菌空气，并始终维持罐内表压为0.02-0.03 MPa，直到到达设定的发酵温度，发酵罐实施自动恒温发酵控制。

8、无菌检查
从取样口取出少量无菌培养基作无菌检测用，取样后用高压蒸汽对取样口消毒5min。

样品按“细菌稀释计数法”进行杂菌残留检测。

【实验结果】
1、培养基灭菌后无菌效果检测
表1 培养基灭菌后无菌效果检测报告
检测项目实测值备注
杂菌体形态
杂菌数量
（cfu/mL）
结论
实验三十一发酵过程残糖分析
【实验材料】
1、测试样品
蛋白酶发酵过程中的含糖或淀粉的发酵基质。

2、试剂
（1）斐林试剂
甲液：称取35克硫酸铜(CuSO4·5H20)，0.05克次甲基蓝，用水溶解并稀释至1000mL，如有不溶物可用滤纸过滤。

乙液；称取117克酒石酸钾钠，126.4克氢氧化钠，9.4克亚铁氰化钾，用水稀释至1000mL。

（2）0.10%标准葡萄糖溶液：精密称取1.000g经95~105℃烘干的无水葡萄糖,用少量水溶解,移入1000mL容量瓶中,加入5mL盐酸,用水稀释到刻度,摇匀.
3、实验器材
滴定管、电炉、锥形瓶、分光光度计、分析天平（0.1mg）、水浴锅、具塞刻度试管、刻度吸管、容量瓶和离心机等。

【实验步骤】
1、样品溶液的配备
称取发酵样品1g,稀释后在100mL容量瓶定容。

将容量瓶置于80℃的
恒温水浴中保温30 min，其间摇动数次，以便将还原糖充分提取出来。

对含蛋白质较多的样品，此间可加10％Pb(AC)2，除去蛋白质，至不再产生白色絮状沉淀时，加饱和Na2SO4除去多余的铅离子。

30min后取出冷却，定容至刻度，摇匀后过滤待测。

2、斐林试剂的标定
吸取斐林试剂甲、乙液各5mL，置入250mL三角瓶中，加10mL水，并从滴定管中预先加入约20mL0.1％标准葡萄糖溶液(其量控制在后滴定时消耗0.1％标致准葡萄糖溶液1mL以内)，摇匀，于电炉上加热至沸，立即以4—5秒钟1滴的速度继续用0.1％标准葡萄糖溶液滴定至蓝色消失，此滴定操作需在1分钟内完成，总耗糖量为V。

mL。

3、定糖
预备试验：吸取斐林试剂甲、乙液各5mL，置入250mL三角瓶中，加入VlmL试样稀释液(含葡萄糖量约为5—15mg)及适量的0.1%标准葡萄糖溶液，摇匀，以下同标定时操作，总耗糖量为V2mL。

4、正式试验
吸取斐林试剂甲、乙液各5mL，置入250mL三角瓶中，加VlmL试样稀释液和(V2-1) mL 0.1％标准葡萄糖溶液，补加((Vo+10)-(Vl+V2)) mL水，摇匀，以下伺标定时操作，总耗糖量为V mL。

5、计算
还原糖(以葡萄糖计％)=(V0—V)×C×n×1/V1×100％（6.1）
【实验结果】
残糖测定过程数据记录表1 斐林试剂的标定
次数/数据记录预加量
（mL）
后滴定
（mL）
总体积Vo
（mL）
1
2
3
表2 样品溶液含糖量的测定
次数/数据记录预加量
（mL）
后滴定
（mL）
总体积V1
（mL）
1 2 3。