非洲猪瘟时期猪场伪狂犬病的防控

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我国是世界第一养猪大国，但是并不是强国，2018年不期而至的非洲猪瘟疫情给养猪业带来了灾难性的打击。

在做好非洲猪瘟防控的同时，也要加强一些基础疾病的防控，其中猪伪狂犬病（PR）是当下危害猪群非常严重的一个基础病。

猪伪狂犬病又称奇痒症、奥尔斯基病，是由伪狂犬病病毒（PRV）引起的多种家畜和多种野生动物感染发病的一种急性传染病。

1 PRV的形态学及理化特性
PRV属于疱疹病毒科，甲型疱疹病毒亚科，水泡病毒属的猪疱疹病毒Ⅰ型，为DNA病毒。

PRV是由囊膜、衣壳、核心组成，外形为椭圆形或圆形。

PRV只有一个血清型，毒株分为Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ型，我国流行毒株为Ⅳ型。

PRV能够表达产生11种调控蛋白：其中gG为分泌型糖蛋白，gM、gE、gH、gL、gK、gI、gC、gB、gD、gN为病毒囊膜蛋白。

其中，gH、gL、gK、gB、gD是必需糖蛋白，是PRV复制过程中不可或缺的基因；gM、gE、gG、gI、gC、gN是PRV复制所非必需的基因，又称为非必需糖蛋白。

gB蛋白在PRV侵染靶细胞过程中起关键作用，直接影响病毒与靶细胞的融合能力。

同时，其在免疫学方面也有重要意义，自然感染情况下，免疫反应产生较多的是针对gB空间构象依赖性抗原表位而产生的抗体。

此外，Siklodi B等1998年发现动物感染PRV后，只有优势性构象依赖抗原表位才能够刺激机体，使之产生较高水平的免疫应答反应，所以gB糖蛋白是PRV的主要免疫原。

gE基因是PRV的主要毒力因子，其作用是促进病毒跨神经元传播。

gE基因缺失后，病毒毒力会大大降低，但是病毒的其他特性不会受到影响，此类毒株有良好的免疫原性和安全性。

所以，gE基因缺失的毒株常被作为制备疫苗来使用。

gI基因也是PRV的主要毒力基因，其产物gI 糖蛋白与其他的糖蛋白一起增强病毒的侵袭力与感染力。

TK基因在病毒复制过程中促进DNA合成其他物质，TK的缺失可以使得PRV在细胞中的复制能力下降，其在大脑组织中的传播能力和引起致死性化脓性脑膜炎的能力也大大下降。

TK缺失的PRV毒株也可以用来制备弱毒疫苗来防控PR。

文 ⊙ 王林安 沈阳伟嘉牧业技术有限公司
2018年不期而至的非洲猪瘟疫情给养猪业带来了灾难性的打击。

在做好非洲猪瘟疫情的同时，也要加强一些基础疾病的防控，其中猪伪狂犬病（PR）是当下危害猪群非常严重的一个基础病。

本文介绍了非洲猪瘟背景下，猪场伪狂犬病的防控措施。

非洲猪瘟时期猪场伪狂犬病的防控
PRV的生命力很顽强。

4℃环境下可以存活300d以上，在pH值为4.0～12的条件下很稳定。

在55～60℃环境下可存活30～50min，80℃下3min才能被灭活。

除了对高温敏感，PRV对紫外线也非常敏感，酒精、氯仿、乙醚、次氯酸钠均能很好地灭活PRV。

2 PR的流行情况
2.1 国外流行情况
PR是由匈牙利兽医Aujeszky在1902年从患病的牛和犬身上发现的，1910年科学家证实该病是一种病毒病。

1931年后，欧洲、非洲、东南亚的40多个国家报道了PR的发生。

1931年丹麦报道该国牛群感染了PRV，直到1964年丹麦国内才报道了猪感染PRV的病例。

1978年后，猪伪狂犬病在丹麦暴发流行。

1952年，希腊报道在牛群中发生了伪狂犬病，之后几年在绵羊、山羊、水貂等动物中发生了伪狂犬病。

在1978年该国报道了猪感染PRV的病例，此后猪伪狂犬病在希腊呈现暴发态势。

1953年，PRV传入英国，1971年后，PR在该国蔓延传播。

相关文献记载，1974-1984年，美国猪伪狂犬病的发病率增加了15倍，猪群血清阳性率逐年增加，该病在美国也呈现暴发态势。

2.2 PR在我国流行情况
1947年，刘永纯教授等发现我国的猫感染了PRV，确认我国存在伪狂犬病；之后在猪和牛体内也检测到了P R V。

1980年，通过调查发现我国至少有18个省市的猫、狗、牛、羊等多种动物感染伪狂犬病，但主要还是集中在猪上发病。

此后，猪伪狂犬病在我国发病率逐年上升。

为了控制PR，我国在1979年引进了Bartha-K61株疫苗，PR的发病势头得到抑制。

由于疫苗的免疫保护作用，新生仔猪感染率和死亡率均低于10%。

2011年，科研人员发现PRV在我国发生了变异，即便免疫了Bartha-K61株疫苗的猪场仍然有发病的报道。

2019年，华中农大杨焕春院士团队对来自全国的33299份血清样本的PRV-gE抗体检测结果显示阳性率为23%，病原检出率为3.08%。

由此可见，猪伪狂犬病在我国仍然呈现上升的感染趋势。

3 PR的流行病学
3.1 传染源
病猪、带毒猪、带毒的鼠类是PR的主要传染源，猪是PRV的主要贮存宿主和传播宿主。

猪只感染PRV后会通过唾液、鼻分泌物、乳汁、尿液、粪便向外界排毒，感染健康的猪只。

成年猪多呈隐性感染，但可长期带毒、排毒，使得猪群的感染面扩大。

3.2 传播途径
PR的传播途径非常广泛，可以通过呼吸道、消化道、自然接触、配种、被污染的环境等多种方式传播。

研究证明，养猪业中PRV主要的传播方式是由鼻腔分泌物进行传播，经精液和乳汁也能够传播。

另外，空气作为一种介质，也能够传播该病，研究证实，被PRV污染的空气能够随风传到9km甚至更远的地方，从而感染健康的猪群。

3.3 易感群体
PRV在自然条件下能够感染多种动物，猪、牛、羊、犬、猫、鼠类、水貂、狐狸、兔子均可感染发病。

通过实验证实，家兔对伪狂犬病最敏感。

近年来的研究证实，人也可以被PRV感染而发病。

1914-1983年，有疑似人感染病例的报道，但缺乏确诊依据，所以争议很大。

但在2018年，Ai等首次在基因水平上确诊人感染伪狂犬病例，并且感染毒株与我国近年来流行的高毒力变异株具有高度同源性。

患者发病前接触过猪场污水，发病后患者主要表现为眼内炎症状，通过特异性PCR检测结合血清学检测PRV抗体，确诊患
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者感染了PRV。

同一年，赵伟丽对不明原因脑炎患者通过脑脊液二代测序结合流行病学史及临床症状，临床诊断4人感染PRV脑炎散发病例。

由此可以确定，PRV变异株可以跨越物种界限感染人类，必须加强对PR的综合防控。

4 PR的临床症状
生产中，不同阶段的猪群感染PR后表现的症状不同。

母猪感染后表现为发情障碍、返情率高、流产、产死胎、产木乃伊胎等繁殖障碍；公猪感染后睾丸肿胀、萎缩、种用性能下降，甚至丧失；产房仔猪感染后出现流涎、抽搐、运动失调等神经症状，或出现顽固性腹泻，一周内死亡，病死率较高；保育猪感染后表现为呼吸道症状、腹泻和典型的神经症状；育肥猪感染后大多数呈现隐性感染，饲料报酬率下降，料肉比升高，有的育肥群体感染后会表现出呼吸道症状给药无效的情况，此时就需要进行PRV的检测和处理。

5 PR的诊断
PR可以通过临床症状诊断，最终确诊还是需要结合实验室的检测数据。

实验室诊断包括两个方面：（1）血清学检测gB、gE抗体。

如果gB阳性、gE阴性，说明猪只没有感染猪伪狂犬病野毒。

如果两者均为阳性，对于成年种猪来说可以判定为感染了PRV；对于商品猪或后备猪来说，有可能感染了伪狂犬病野毒，或者是母源抗体中的gE抗体进入猪只体内没有完全消退而被检测到。

这需要跟踪监测90～120日龄后的gE抗体，如果仍然是阳性，说明猪只被野毒感染；如果是阴性，说明之前检测到的gE抗体就是母源抗体。

（2）PCR检测gE糖蛋白，检测结果为阴性，说明猪只没有被感染；反之，则感染了伪狂犬病野毒。

6 PR的防控
6.1 做好生物安全
6.1.1 消毒
PRV能够通过粪便、唾液等往外排毒，人员、车辆、物质均有可能携带PRV，感染健康猪群。

所以，人员入场时需要消毒，更换衣服和鞋子，拉猪车清洗消毒后也尽可能远离场区，更不
能随便进入场区。

物资入场时需统一进行熏蒸消
毒或臭氧消毒，手机、疫苗、电脑等物品可以用
酒精擦拭后入场。

带猪消毒建议使用过硫酸氢钾
复合物、碘酸制剂等安全无毒副作用的消毒剂。

外环境可以使用价格低廉的火碱或戊二醛等消毒
剂。

6.1.2 把好引种关
特殊时期引种需要检测以排除非洲猪瘟，还
需要加强后备猪引种前的PR检测，PCR检测gE为
阳性的猪只坚决不能引入。

通过检测确认gE为阴
性的猪只引入场后需要90d左右的驯化，才能进行
合群。

合群前需要免疫PR疫苗，检测抗体合格方
可合群。

6.1.3 防控有害生物
除了猪可以感染PRV，牛、羊、犬、猫、鼠
类、水貂、狐狸、兔子均可感染发病，所以一定要
把好猪场的大门，防止野猫、野狗进入场区，也不
要在猪场生产区饲养猫、狗，并定期灭鼠。

猪场建
场时应该远离牛场和羊场，防止交叉感染。

6.1.4 全进全出，分阶段饲养
许多家庭农场把不同阶段的猪分放的区域不
合理，甚至混养严重。

产房与保育舍、育肥舍都
建在一栋猪舍内，根本不做任何的隔离，一旦某
个阶段的猪只感染了伪狂犬病野毒，病毒会很快
蔓延到全群，给疾病的防控带来了极大的挑战。

所以，尽可能把后备舍、妊娠舍、产房、保育
舍、育肥舍隔开建设，这样能做到全进全出，对
于疾病的防控十分有利。

6.1.5 把控精液质量
PR的感染途径很多，除了上文所述，精液
也是极危险的传播途径。

本场的公猪需要定期进
行检测，一旦gE为阳性，必须坚决予以淘汰。

外
购精液入场使用前也需要进行猪伪狂犬病野毒检
测，检测合格后才能进行人工输精。

6.2 疫苗免疫
疫苗免疫是目前防控PR最有效、最经济的手
段。

免疫PR疫苗可以提高PRV的感染阈值，降低
排毒量。

做好以下几点有助于提高疫苗的免疫保
护率：
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6.2.1 疫苗的选择
2011年后，PRV在我国发生了严重的变异，国内存在多个变异的流行毒株。

目前我国疫苗毒株有Bartha-K61、HB98、HB2000、鄂SA215、Bucharest、C株等。

免疫PR疫苗前，所选的疫苗一定要与当地流行毒株相匹配；否则，即便免疫了，保护效果也不会好。

6.2.2 科学的免疫程序和接种方式
种猪建议1年肌肉注射免疫4次，仔猪1～3日龄滴鼻免疫，商品猪第1针肌肉注射的首免日龄有一定的浮动，建议规模猪场进行母源抗体检测来确定首免日龄，1个月后加强免疫。

家庭农场在做好种猪免疫的同时，一般可以选择在40～50日龄首次肌肉注射免疫，1个月后2次肌肉注射免疫。

1个猪场只能同时使用1种弱毒伪狂犬病疫苗。

6.3 防止免疫抑制性疾病的干扰
疫苗产生抗体的过程需要调动机体的免疫系统功能，如果机体的免疫力低下，免疫应答能力自然不会好。

所以，在饲养过程中，要加强猪蓝耳病和圆环病毒病的预防，减少免疫抑制性因素，提高免疫成功率。

6.4 防控好霉菌毒素
养猪过程中，如果选择的饲料原料如玉米、豆粕、麸皮等品质差，或储存不当，饲料发生霉变产生的霉菌毒素也会导致机体的氧化损伤，特别是免疫系统的损伤，也将导致PR疫苗的应答能力下降，甚至导致免疫失败。

所以，把控好饲料原料关的同时，还需要选用优质脱霉剂防止饲料发霉变质。

6.5 做好抗体监测
定期进行猪群的伪狂犬病抗体监测，可以参考以下方法进行采样检测：
（1）后备母猪：配种前3～4周，采集群体数量的10%或不低于5头。

（2）经产母猪：配种后2个月和产后7～10d，采样群体数量的10%或每个阶段不低于5头。

（3）公猪：100%采样，1年2次。

（4）商品猪：4周龄、8周龄、90～110日龄，3个阶段各采样不低于10头。

7 后记
非常时期在做好非洲猪瘟防控的同时，一定要重视PR的防控。

在防控PR中，我们做好生物安全的同时，还要做好疫苗免疫和抗体监测，只有采取多方位的措施，PR的防控才会收到实效，从而不影响猪场生产。

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