茉莉酸甲酯浸种对水稻幼苗白叶枯病抗性及抗氧化酶活性的影响

茉莉酸甲酯浸种对水稻幼苗白叶枯病抗性及抗氧化酶活性的影响
向妙莲１付永琦１何永明１黄友明１,２曾晓春１,２,∗
(１江西农业大学作物生理生态与遗传育种教育部重点实验室,南昌３３００４５;２宜春学院生命科学与资源环境学院,江西宜春
３３６０００;∗通讯联系人,EＧmail:xchzeng２０１３＠１６３．com)
EffectsofSeedSoakingwithMethylJasmonateonResistancetoBacterialLeaf BlightandAntioxidantEnzymeActivitiesofRiceSeedlings
XIANGMiaoＧlian１,FUYongＧqi１,HEYongＧming１,HUANGYouＧming１,２,ZENGXiaoＧchun１,２,∗
(１KeyLaboratoryofCropPhysiology,EcologyandGeneticBreeding,MinistryofEducation,JiangxiAgriculturalUniversity,
Nanchang３３００４５,China;２DepartmentofLifeScienceandEnvironmentalResources,YichunUniversity,Yichun３３６０００,China,
∗Correspondingauthor,EＧmail:xchzeng２０１３＠１６３．com)
XIANGMiaolian,FUYongqi,HEYongming,etal．Effectsofseedsoakingwithmethyljasmonateonresistanceto
bacterialleafblightandantioxidantenzymeactivitiesofriceseedlings．ChinJRiceSci,２０１４,２８(４):４１９Ｇ４２６．
Abstract:Thisexperimentwascarriedouttostudytheeffectsofseedsoakingwithexogenousmethyljasmonate(MeＧ
JA)onresistancetobacterialleafblightandantioxidantenzymeactivitiesofriceseedlingswithWen２２９(susceptibleto
ricebacterialleafblight)andJiazao３１２(resistant)asexperimentalmaterials．TheresultsshowedthatMeJAsoaking
significantlydecreasedthediseaseindexesofbacterialleafblightinriceseedlings,especiallyfortheresistantcultivar．
WithrisingMeJAsolutionconcentration,theactivitiesofsuperoxidedismutase,peroridase,catalaseandascorbateperＧ
oxidaseinleavesofriceseedlingsincreasedfirstlyandthendecreased,whilethemalondialdehyde(MDA)content
raisedatfirstanddroppedafterwards．Ataconcentrationof０．５mmol/L,MeJAsoakingcauseddamagetoriceseedＧ
ings．TheresponsesofantioxidantenzymeactivitiesandlipidperoxidationcontenttoMeJAsoakingvariedwithvariety．
TheaboveresultsindicatedthatMeJAsoakingcouldeffectivelyrelievethebacterialleafblightofriceseedlings．TheinＧ
creaseoftheantioxidantenzymeactivitiesandthedecreaseoftheMDAcontentarerelatedtoitsresistantreactionsto
bacterialleafblight．
Keywords:Methyljasmonate;riceseedlings;bacterialleafblight;antioxidantenzyme;lipidperoxidation
向妙莲,付永琦,何永明,等．茉莉酸甲酯浸种对水稻幼苗白叶枯病抗性及抗氧化酶活性的影响．中国水稻科学,
２０１４,２８(４):４１９Ｇ４２６．
摘要:以温２２９(感白叶枯病)和嘉早３１２(抗白叶枯病)为材料,研究外源茉莉酸甲酯(methyljasmonate,MeJA)浸种对水
稻幼苗接种白叶枯病菌后抗氧化酶活性及膜脂过氧化的影响.结果表明,MeJA浸种显著降低了水稻幼苗白叶枯病病情指
数,对抗病品种的诱导效果优于感病品种;幼苗叶片超氧化物歧化酶(superoxidedismutase,SOD)、过氧化物酶(peroridase,
POD)、过氧化氢酶(catalase,CAT)和抗坏血酸过氧化物酶(ascorbateperoxidase,APX)等酶活性随MeJA浓度的升高先增强
后减弱,丙二醛(Malondialdehyde,MDA)含量先降低后升高,MeJA浓度为０．５mmol/L时表现为毒害作用.不同抗性品种
幼苗抗氧化酶活性和MDA含量对MeJA浸种响应不同,表明MeJA浸种可有效减轻水稻幼苗白叶枯病的发生,其中,抗氧
化物酶活性的提高和MDA的下降与水稻对白叶枯病的抗性反应有关.
关键词:茉莉酸甲酯;水稻幼苗;白叶枯病;抗氧化酶;膜脂过氧化
中图分类号:文献标识码:A文章编号:１００１Ｇ７２１６(２０１４)０３Ｇ０４１９Ｇ０８
植物在旱涝、冷热、盐渍、病虫害等逆境胁迫下, 植株体内活性氧代谢加强,产生过量O－２、H２O２、OH－等过氧化物自由基伤害细胞膜,损伤蛋白质、膜脂和其他细胞组分,严重影响植株生长发育,甚至
收稿日期:２０１３Ｇ０８Ｇ０１;修改稿收到日期:２０１４Ｇ０３Ｇ
１７.
基金项目:江西省“赣鄱英才５５５工程”领军人才培养计划资助项目;江西省科技支撑计划资助项目.９１４
中国水稻科学(ChinJRiceSci),２０１４,２８(４):４１９－４２６http://www．ricesci．cn
DOI:１０．３９６９/j．issn．１００１Ｇ７２１６．２０
１４．０４．０１１
导致植物死亡[１Ｇ２].为了适应外界环境的变化,植物
对逆境胁迫的应答反应涉及形态结构、生理生化、蛋
白及基因等一系列复杂变化过程.其中,以超氧化
物歧化酶(superoxidedismutase,SOD)、过氧化物
酶(peroridase,POD)、过氧化氢酶(catalase,CAT)
和抗坏血酸过氧化物酶(ascorbateperoxidase,
APX)等抗氧化酶类组成的酶促清除系统,可清除
过量的自由基和过氧化物,抑制膜脂过氧化以保护
细胞免遭自由基伤害,从而减轻活性氧对植物的伤
害[３].
茉莉酸甲酯(methyljasmonate,MeJA)是一种
新型植物激素,具有广泛的生理效应.大量研究表
明,外源MeJA活性较强,易透过细胞膜作为信号分
子参与植物抗逆胁迫,逐渐成为植物抗逆反应研究
的热点[４Ｇ５].据李荣冲等[６]报道,MeJA能提高SOD
等抗氧化酶活性,缓解高温高湿造成的氧化损伤,有
效促进高温高湿胁迫下紫苏种子的萌发和幼苗生
长;段小华等[７,８]研究表明,适宜浓度的MeJA可提
高SOD、POD和CAT等活性,降低H２O２和O２－水
平及丙二醛(malondialdehyde,MDA)含量,保护冷
胁迫下水稻和黄瓜幼苗对低温的抗性;另有试验证
明,JAs参与植物对病原菌等逆境胁迫的应答,诱导
活性氧迸发并增强POD、CAT等抗氧化酶活
性[９Ｇ１０],显著上调PRＧ１、PRＧ２、PRＧ５和TaＧJA２等抗性基因的表达,而上述酶活性和抗性基因表达的
增强与JAs诱导的抗病性密切相关[１１].
我们在前期研究中发现,外源MeJA喷雾处理
水稻幼苗,能有效诱导水稻对细菌性条斑病的抗性,
显著降低白叶枯病病情指数,而这与MeJA诱导提
高水稻幼苗SOD、POD、CAT等防御酶活性密切相
关[１０,１２].本研究拟以常规水稻品种嘉早３１２(抗白
叶枯病)和温２２９(感白叶枯病)为实验材料,探索
MeJA浸种对水稻幼苗叶片抗氧化酶活性及膜脂过
氧化的影响,以期为MeJA诱导水稻幼苗抗逆性研
究开辟新的途径.
１材料与方法
１．１实验材料
嘉早３１２(抗白叶枯病)和温２２９(感白叶枯病)
均由江西农业大学作物生理生态与遗传育种实验室
提供.
茉莉酸甲酯购自美国Sigma公司.先以少量二甲基亚砜(dimethylsulfoxide,DMSO)溶解,再用
含０．１％Tween８０的蒸馏水配成１０mmol/L的溶
液备用.
白叶枯病菌为江西农业大学植物病理实验室保
存菌种.－８０℃冷冻保存,试验前于NA培养基(牛
肉膏３．０g,蛋白胨５．０g,葡萄糖２０．０g,琼脂１７．０
g,蒸馏水１０００mL,pH７．０)上活化,２８℃下培养４８
h,１２０００下离心１０min,去除上清液,配制浓度为５
×１０８CFU/mL的菌液,以备接种之用.
１．２试验方法
１．２．１水稻种子处理
水稻种子用０．１％的HgCl２表面消毒１５min,
蒸馏水冲洗３次,阴干.选取大小一致、饱满的种子
分别用浓度为０．０００８、０．００４０、０．０２００、０．１
０００和
０．５０００mmol/L的MeJA溶液浸泡２４h,对照为含
０．１％Tween８０的无菌蒸馏水.处理完后蒸馏水
冲洗３次,备用.
１．２．２水稻幼苗培养
先加入５mL蒸馏水湿润滤纸,将１．２．１处理后
的水稻种子置于垫有滤纸的培养皿中,放入３０℃±
１℃人工气候箱中催芽,待种子露白后,采用国际常
用砂培法培养.培养钵中先放入灭菌砂,后放置
１００粒催芽种子,置于２５℃~３０℃、光周期为１２h光
照/１２h黑暗的生长室中培养.水稻幼苗培养１０d
后备用.
１．２．３MeJA诱导对水稻白叶枯病抗性的影响
取１．２．１中水稻幼苗,用灭菌剪刀蘸取菌液剪
去幼苗叶尖１．０cm,每株接种２~３片叶.接种后置
于２５℃~３０℃、相对湿度９０％以上的发病室观察.
当对照病情发展趋于稳定时(接种后１５~２１d),每
处理调查１５片叶,逐叶测量被剪水稻叶片的病斑长
度和叶片全长,按分级标准记载病情并计算病情指
数和诱导效果[１３]:病情指数＝∑(各级病叶数×该
病级值)/(调查总叶数×最高级值)×１００;诱导效果
(％)＝(对照组病情指数－处理组病情指数)/对照
组病情指数×１００.
１．２．４MeJA浸种对水稻抗氧化酶活性的影响
１．２．４．１MeJA调控水稻抗氧化酶活性的浓度效应
将１．２．１中经不同浓度MeJA浸种(以含０．１％
Tween８０的无菌蒸馏水浸种为对照),按１．２．２方法
培养的水稻幼苗接种白叶枯病菌.４８h后取各处
理叶片０．５g冷冻保存(－８０℃),用于各项生理指
０２４中国水稻科学(ChinJRiceSci)第２８卷第４期(２０１４年７月)
标测定.每处理３个重复,每重复１盆,每盆８０株. １．２．４．２MeJA调控水稻抗氧化酶活性的动态变化选用１．２．１中经０．００４mmol/LMeJA浸种处理的水稻幼苗,设置以下处理:清水浸种(CK)、清水
浸种＋白叶枯病菌接种(Xoo)、MeJA浸种＋白叶
枯病菌接种(Xoo),处理０、２４、４８、７２和９６h后取各处理水稻叶片０．５g冷冻保存(－８０℃),用于各
项生理指标测定.方法同上.
１．２．５生理指标测定
SOD活性采用NBT法测定[１４];POD活性采用
愈创木酚法测定[１５];CAT活性参照陈利锋等[１４]测定;APX活性参照刘凤权等的方法[１６]测定;MDA
含量采用硫代巴比妥酸法测定[１７].
１．３数据统计与分析
采用Excel２００３和DPS７．０５统计软件进行数
据分析处理,用单因素方差分析统计各处理平均值
的差异,Duncan新复极差法比较各处理间的差异显
著性.
２结果与分析
２．１MeJA浸种诱导水稻幼苗白叶枯病抗性
从图１可知,MeJA浸种可诱导水稻幼苗白叶
枯病抗性,诱导效果与MeJA浸种的浓度和时间有
关,不同抗性的水稻品种对MeJA反应存在差异.
MeJA浸种对抗病品种嘉早３１２的诱导效果优于感
病品种温２２９,随MeJA浓度上升,两水稻品种的诱
导效果先上升后下降,当MeJA浓度为０．００４
mmol/L时,温２２９和嘉早３１２的诱导效果分别为
４５．０９％和５４．４２％,说明MeJA浸种诱导水稻幼苗抗白叶枯病具有浓度效应.
２．２MeJA浸种对水稻幼苗SOD活性的影响
经MeJA浸种处理后,两水稻品种幼苗叶片
SOD活性均随MeJA浓度上升先增强后减弱(图２Ｇ
A).感病品种温２２９和抗病品种嘉早３１２的SOD
活性均在MeJA浓度为０．０２００mmol/L时达最高
值,分别为对照的１．６３倍和１．８５倍.当MeJA浓度
为０．５０００mmol/L时,SOD活性最低,分别比对照
下降２３．９７％和６．１８％,表明高浓度MeJA浸种对水稻SOD活性存在抑制作用.
水稻幼苗经MeJA和白叶枯病菌诱导后,
SOD活性变化如图２ＧB所示.结果表明,与对照
图柱上方不同小写字母表示处理间经Duncan新复极差法检验,在
P＜０．０５水平差异显著. Differentlowercaselettersindicatesignificantdifferencesamong
treatmentsatP＜０．０５levelbytheDuncan’smultiplerangetest．
图１MeJA浸种对水稻幼苗白叶枯病抗性的影响Fig．１．Effectsofseedsoakingwithmethyljasmonate(MeJA)onbacteＧ
rialleafblightresistanceofriceseedling．
相比,SOD活性随MeJA作用时间延长先逐渐升高
后缓慢下降,MeJA浸种＋白叶枯病菌接种的SOD
活性上升速度快.其中,温２２９的SOD活性于接种
４８h后达最大值,比对照上升４８．６２％,随后逐渐减
弱;接种２４h后,抗病品种SOD活性达第一次高
峰,比对照增加３３．０８％,第二次高峰为接种后７２
h,比对照增加５０．２６％.
２．３MeJA浸种对水稻幼苗POD活性的影响
由图３ＧA可知,当MeJA浓度为０．０２mmol/L
时,温２２９幼苗POD活性上升幅度最大,为
５５．５７％,嘉早３１２在MeJA浓度为０．００４mmol/L
时上升幅度最大,为９２．４３％.当MeJA浓度为０．５０
mmol/L时,涠洲和嘉早３１２POD活性最低,分别
比对照下降３８．８９％和３．６２％.
MeJA和白叶枯病菌处理后不同抗性水稻品种
POD活性动态变化如图３ＧB.对照水稻幼苗POD
活性呈缓慢上升趋势,差异不显著,而MeJA＋白叶
枯病菌诱导后,温２２９和嘉早３１２的POD活性分别
于接种后４８h和２４h达最大值,比对照增加
７６．３７％和６３．９１％,但感病品种温２２９的POD活性
始终低于抗病品种嘉早３１２.以上结果表明,MeJA
１２４向
妙莲等:茉
莉酸甲酯
浸种对水
稻幼苗白
叶枯病抗
性及抗氧
化酶活性
的影响
W ＧCK －对照;W ＧXoo ＧMeJA －MeJA 浸种＋白叶枯病菌接种(温２２９);W ＧXoo －白叶枯病菌接种(温２２９);J ＧCK －对照(嘉早３１２);J ＧXoo Ｇ MeJA －MeJA 浸种＋白叶枯病菌接种(嘉早３１２);J ＧXoo －白叶枯病菌接种(嘉早３１２).图柱上方不同小写字母表示处理间经Duncan 新复极 差法检验,在P ＜０．０５水平差异显著.
W ＧCK,Check(Wen ２２９);W ＧXoo ＧMeJA,MeJAsoaking ＋Xooinfection(Wen ２２９);W ＧXoo,Xooinfection(Wen ２２９);J ＧCK,Check(Jiazao ３１２);J ＧXoo ＧMeJA,MeJAsoaking ＋Xooinfection(Jiazao ３１２);J ＧXoo,Xooinfection(Jiazao ３１２)．Differentlowercaselettersindicatesignificant differenceamongtreatmentsatP ＜０．０５levelbytheDuncan’smultiplerangetest ．
图２ 外源MeJA 浸种对水稻幼苗叶片SOD 活性的影响
Fig ．２．Effectsofseedsoakingwithmethyljasmonate(MeJA)onthesuperoxidedismutase(SOD)activityofriceseedlingsleaves ．
图柱上方不同小写字母表示处理间经Duncan 新复极差法检验,在P ＜０．０５水平差异显著.
DifferentlowercaselettersindicatesignificantdifferenceamongtreatmentsatP ＜０．０５levelbytheDuncan’smultiplerangetest ．
图３ 外源MeJA 浸种对水稻幼苗叶片POD 活性的影响
Fig ．３．Effectsofmethyljasmonate(MeJA)soakingontheperoridase(POD)activityofriceseedlingsleaves ．
２２４中国水稻科学(ChinJRiceSci) 第２８卷第４期(２０１４年７月)
图柱上方不同小写字母表示处理间经Duncan 新复极差法检验,在P ＜０．０５水平差异显著.
DifferentlowercaselettersindicatesignificantdifferenceamongtreatmentsatP ＜０．０５levelbytheDuncan’smultiplerangetest ．
图４ 外源MeJA 处理对水稻幼苗叶片CAT 活性的影响
Fig ．４．Effectsofmethyljasmonate(MeJA)pretreatmentonthecatalase(CAT)activityofriceseedlingsleaves ．
和白叶枯病菌处理均可诱导水稻幼苗POD 活性增 强,活性水平与水稻品种基础抗性有关. ２．４ MeJA 浸种对水稻幼苗CAT 活性的影响
当MeJA 浓度低于０．１０００mmol/L 时,温２２９ 和嘉早３１２幼苗CAT 活性随MeJA 浓度上升呈增 强趋势(图４ＧA).当MeJA 浓度分别为０．１０００ mmol/L 和０．０２００mmol/L 时,温２２９和嘉早３１２ 幼苗CAT 活性达最大值,其活性依次较对照增加
３０．９６％和３８．６１％.高浓度(０．５０００mmol/L)Me Ｇ JA 浸种使温２２９和嘉早３１２幼苗CAT 活性分别降 低了４．９６％和１５．１１％.
MeJA 和白叶枯病菌对水稻幼苗CAT 活性的 影响如图４ＧB.结果表明,MeJA ＋白叶枯病菌处理 可诱导水稻幼苗CAT 活性上升,感病品种温２２９ 和抗病品种嘉早３１２分别于４８h 和２４h 后达最高 值,分别比对照增加８９．４５％和９８．１１％;白叶枯病 菌处理后温２２９和嘉早３１２幼苗CAT 活性亦于４８ h 和２４h 后出现高峰,分别为对照的１．６９倍和１．７５ 倍,随后逐渐减弱.
２．５ MeJA 浸种对水稻叶片APX 活性的影响
如图５ＧA 所示,低浓度MeJA 浸种均能增强水 稻幼苗叶片APX 活性.其中,温２２９幼苗APX 活
性最高值出现在MeJA 浓度为０．１０mmol/L 时,为 对照的２．７３倍;嘉早３１２在MeJA 浓度为０．０２ mmol/L 时活性最强,为对照的２．８１倍.当MeJA 浓度为０．５０mmol/L 时,温２２９和嘉早３１２幼苗 APX 活性反而分别比对照低３．０５％和６３．７９％.
MeJA 和白叶枯病菌对水稻幼苗APX 活性影 响如图５ＧB.结果表明,MeJA 和白叶枯病菌处理均 可增强APX 活性.其中,感病品种温２２９经MeJA
和白叶枯病菌诱导后,APX 活性均在７２h 后出现 最大值,分别为对照的２．９４倍和１．９９倍;MeJA 和 白叶枯病菌诱导后嘉早３１２的APX 活性在４８h 后 达最高峰,依次为对照的２．２７倍和１．７２倍. ２．６ MeJA 浸种对水稻叶片MDA 含量的影响
从图６ＧA 可以看出,２个水稻品种MDA 含量 均随MeJA 浓度的上升先降低后升高.温
２２９MDA 含量在MeJA 浓度为０．００８mmol/L 时最 小,比对照低１０．４２％.嘉早３１２则在MeJA 浓度为 ０．０２mmol/L 时MDA 含量最低,比对照低
３７．１９％.随着MeJA 浓度上升,温２２９和嘉早３１２ 幼苗MDA 含量上升,当MeJA 浓度为０．５０mmol/ L 时达最大值,分别为对照的１．３７倍和１．４６倍. 由图６ＧB 可知,MeJA 和白叶枯病菌处理后两
３２４向妙莲等:茉莉酸甲酯浸种对水稻幼苗白叶枯病抗性及抗氧化酶活性的影响
图柱上方不同小写字母表示处理间经Duncan新复极差法检验,在P＜０．０５水平差异显著. DifferentlowercaselettersindicatesignificantdifferenceamongtreatmentsatP＜０．０５levelbytheDuncan’smultiplerangetest．图５外源MeJA处理对水稻幼苗叶片APX活性的影响
Fig．５．Effectsofmethyljasmonate(MeJA)pretreatmentontheascorbateperoxidase(APX)activityofriceseedlingsleaves．
图柱上方不同小写字母表示处理间经Duncan新复极差法检验,在P＜０．０５水平差异显著. DifferentlowercaselettersindicatesignificantdifferencesamongtreatmentsatP＜０．０５levelbytheDuncan’smultiplerangetest．图６外源MeJA处理对水稻幼苗叶片MDA含量的影响
Fig．６．Effectsofmethyljasmonate(MeJA)pretreatmentonmalondialdehyde(MDA)contentofriceseedlingsleaves．
水稻品种MDA含量随时间延长迅速上升,接种后
９６h,感病品种温２２９和抗病品种嘉早３１２的MDA
含量分别为对照的１．３６倍和１．７１倍.而MeJA处
理可显著降低水稻幼苗温２２９和嘉早３１２的MDA
含量,最低值依次为对照的６１．４７％和６９．７５％,随时间延长,两品种MDA含量逐渐升高.以上结果
说明适宜浓度的MeJA处理在一定时间范围内可有效减缓水稻幼苗细胞氧化损伤,维持细胞膜正常结构及功能,增强植株抗逆性.
４２４中国水稻科学(ChinJRiceSci)第２８卷第４期(２０１４年７月)
３小结与讨论
MeJA等信号物质诱导脂类过氧化产物的积
累,改变病程相关蛋白的表达,增强病原菌等生物胁
迫的抗性,与SOD、POD、CAT和APX等抗氧化酶
活性密切相关.Sun等[１８]报道低浓度MeJA对人
参根腐病菌无抑制作用,但显著增强了人体内CAT
和POD等酶活性,从而降低了根腐病的发生,说明MeJA诱导人参抗根腐病可能与其激活了抗氧化酶
活性有关.Cao等[１９]用１０μmol/LMeJA预处理枇杷,结果发现枇杷冷害症状减少,且O２－和H２O２的含量显著降低,而SOD、CAT、APX等抗氧化酶活
性明显增强.另有报道证明MeJA诱导番茄抗灰霉
病是由于MeJA促进了SOD、CAT和APX等酶基
因表达,有利于清除过量的活性氧和减轻蛋白质氧
化损伤[２０].然而,JAs类外源激素通常可清除植株
体内活性氧自由基,增强抗氧化酶活性从而提高植
株抗病性,但抗氧化酶活性与诱导抗病性的相关性
在不同植物或同一植物不同器官可能不尽相同[２１]. Ferrareze等[２２]在试验中发现,甜菜采后用JA处
理,贮藏期腐烂显著减轻,但甜菜的APX、CAT、POD等抗氧化酶活性并没有相应显著提高,表明这
些抗氧化酶类可能并没有直接参与JA诱导的抗病
反应.MDA是植物组织在逆境下遭受氧化胁迫发
生膜脂过氧化的产物,其含量可作为膜脂过氧化的
一个重要指标[２３].在水稻遭受逆境胁迫时,其体内存在系列的酶促抗氧化剂可清除活性氧自由基,保
护植物细胞免受活性氧伤害,维持膜系统稳定[２４].
本研究结果表明,水稻经MeJA浸种后幼苗接
种白叶枯病菌,可有效降低病情指数,这与前期试验MeJA喷雾处理可诱导水稻幼苗抗白叶枯病的结果
一致[１０],MeJA浸种后水稻幼苗叶片内上述４种抗氧化酶活性均表现为随MeJA浓度增大先增强后减弱,呈单峰曲线;幼苗叶片MDA含量变化则随MeＧ
JA浓度增大先降低后升高.说明MeJA浸种对水
稻抗氧化酶活性及MDA含量的影响与其浓度有
关,同时证明了MeJA能有效提高SOD、POD、CAT
和APX等抗氧化酶活性,减轻膜脂过氧化,从而提
高植株抗逆境胁迫能力.
不同抗性水稻抗氧化酶活性及MDA含量的变
化不尽相同,暗示MeJA诱导不同水稻品种的抗性
途径可能存在一定的差异[５].两种对白叶枯病不同
抗性的水稻品种经MeJA处理后,幼苗叶片抗氧化
酶活性及MDA含量变化亦有异.与感病品种温
２２９比较,抗病品种嘉早３１２的SOD、CAT和APX
的活性基数高,对MeJA较敏感,且４种抗氧化酶活
性增幅大,而MDA含量下降快,说明外源MeJA浸
种对水稻幼苗抗氧化酶活性及MDA含量的影响可
能与水稻品种本身的遗传背景有关,其生理生化及
分子机制有待深入研究.
参考文献:
[１]张亚军,王丽学,陈超,等．植物对逆境的响应机制研究进展．
江西农业学报,２０１１,２３(９):６０Ｇ６５．
[２]裴丽丽,郭玉华,徐兆师,等．植物逆境胁迫相关蛋白激酶的研
究进展．西北植物学报,２０１２,３２(５):１０５２Ｇ１０６１．
[３]张桂莲,张顺堂,肖浪涛,等．花期高温胁迫对水稻花药生理特
性及花粉性状的影响．作物学报,２０１３,３９(１):１７７Ｇ１８３．
[４]RajendraB,JonathanD,JonesG．Roleofplanthormonesin
plantdefenceresponses．PlantMoleculBiol,２００９,６９:４７３Ｇ
４８８．
[５]张智慧,聂燕芳,何磊,等．外源茉莉酸甲酯诱导的水稻叶片蛋
白质差异表达分析．植物病理学报,２０１２,４２(２):１５４Ｇ１６３．[６]李荣冲,沈亮余,梁晶龙,等．高湿胁迫下荣莉酸甲酯对紫苏种
子萌发及生理特性的影响．西北植物学报,２０１２,３２(２):３１２Ｇ
３１７．
[７]段小华,邓泽元,宾金华．茉莉酸甲酯对水稻幼苗抗冷性的影
响．植物生理学通讯,２００９,４５(９):８８１Ｇ８８４．
[８]LiDM,GuoYK,QianL,etal．ThepretreatmentofcucumＧ
berwithmethyljasmonateregulatesantioxidantenzymeactiviＧ
tiesandprotectschloroplastandmitochondrialultrastructure
inchillingＧstressedleaves．SciHortic,２０１２,１４３:１３５Ｇ１４３．
[９]张智慧,聂燕芳,何磊,等．外源茉莉酸甲酯诱导水稻抗瘟性相
关防御酶和内源水杨酸的变化．植物病理学报,２０１０,４０(４):
３９５Ｇ４０３．
[１０]向妙莲,何永明,付永琦,等．茉莉酸甲酯对水稻白叶枯病的诱
导抗性及防御酶活性的影响．植物保护学报,２０１３,４０(２):９７Ｇ
１０１．
[１１]牛吉山,刘靖,倪永静,等．茉莉酸对PRＧ１、PRＧ２、PRＧ５和TaＧJA２基因表达以及小麦白粉病抗性的诱导．植物病理学报,
２０１１,４１(３):２７０Ｇ２７７．
[１２]向妙莲,陈明,曾晓春,等．茉莉酸甲酯对水稻幼苗抗细菌性条
斑病的诱导效应．江西农业大学学报,２０１１,３３(４):６７９Ｇ６８３．[１３]方中达,许志刚,过崇俭,等．中国水稻白叶枯病菌致病型的研
究．植物病理学报,１９９０,２０(２):８１Ｇ８８．
[１４]陈利锋,宋玉立,徐雍皋,等．抗感赤霉病小麦品种超氧化物歧
化酶和过氧化氢酶的活性比较．植物病理学报,１９９７,２７(３):
２０９Ｇ２１３．
[１５]QinGZ,TianSP．EnhancementofbiocontrolactivityofCryＧ
tococcuslaurentiibysiliconandthepossiblemechanismsinＧ
５２４向
妙莲等:茉
莉酸甲酯
浸种对水
稻幼苗白
叶枯病抗
性及抗氧
化酶活性
的影响
volved．Phytopathology,２００５,９５(１):６９Ｇ７５．
[１６]刘凤权,王金生．水杨酸对水稻叶片抗氧化酶系的影响．农业生物技术学报,２００１,９(４):３９６Ｇ３９９．
[１７]赵世杰,许长城,邹琦,等．植物组织中丙二醛测定方法的改进．植物生理学通讯,１９９４,３０(３):２０７Ｇ２１０．
[１８]JiaMS,JunFF,RuJZ,etal．EffectsofMethyljasmonate
oncylindrocarponrootrotdevelopmentonGinseng．AdvMat
Res,２０１３,６１０Ｇ６１３:３５１１Ｇ３５１
７．
[１９]CaoSF,ZhengYH,WangKT,etal．MethyljasmonatereＧ
duceschillinginjuryandenhancesantioxidantenzymeactivity
inpostharvestloquatfruit．FoodChem,２００９,１１５(４):１４５８Ｇ１４６３．
[２０]ZhuZ,TianSP．Resistantresponsesoftomatofruittreated
withexogenousmethyljasmonatetoBotrytiscinereainfecＧ
tion．SciHorticul,２０１２,１４２:３８Ｇ４３．
[２１]ParraＧLobatoMC,FernandezＧGarciaN,OlmosE．Methyl jasmonateＧinducedantioxidantdefenceinrootapoplastfrom
sunflowerseedlings．EnvironExperBot,２００９,６６:９Ｇ１７．[２２]JocleitaPF,KarenKF．JasmonicaciddoesnotincreaseoxiＧ
dativedefensemechanismsorcommondefenseＧrelatedenＧ
zymesinpostharvestsugarbeetroots．PosthBiolTechnol,
２０１３,７７:１１Ｇ１８．
[２３]白晓娟,刘丽娟,张春华,等．H２O２预处理对不同水稻品种Cd 耐性的影响．中国水稻科学,２０１０,２４(４):３９１Ｇ３９７．[２４]孟杰,王人民,万吉丽,等．不同锌效率水稻基因型及其杂种一代幼苗生长和抗氧化酶活性对Zn２＋活度的反应．中国水稻科
学,２０１０,２４(３):２８９Ｇ２９６．
６２４中国水稻科学(ChinJRiceSci)第２８卷第４期(２０１４年７月)。