优化留取痰标本的应用价值分析

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1660 引言
下呼吸道标本的来源有咳出痰、诱导痰、吸出痰和支气管肺泡灌洗液、支气管保护性毛刷、肺穿刺组织或手术取出肺组
织的呼吸道标本[1]
，但咳出痰、诱导痰与吸出痰在收集过程中很有可能带有上呼吸道的定值菌，会影响对下呼吸道的病原菌的正确诊断，为提高痰标本的质量，部分医院开始应用改进后的采集方法。

复方氯已定含漱液的成分为葡萄糖酸氯已定、甲硝唑、薄荷香精等。

氯已定是消毒防腐药,具有相当强的广谱抑菌、杀菌作用,对于革兰阳性菌和革兰阴性菌作用强,对局部的刺激及过敏反应都很少见，甲硝唑有抗厌氧菌作用，临床上用于治疗慢性牙龈炎及口疮，能有效的清除口腔细菌。

笔者主要立足于优化痰标本角度，研究两种不同痰标本留取方法对痰培养结果的影响，现将结果报道如下。

1 资料与方法
1.1 标本来源
2016年期间共有680例呼吸内科患者做为监测对象，主要病种为肺炎、支气管扩张等疾病。

其中男360例，女320例；年龄18~90岁，按不同的采样方法随机分为两组：自然咳痰组、复方氯已定含漱液留痰组。

1.2 标本采集方法
对照组在应用抗菌药物前，患者于清晨用清水漱口后，坐直，然后用力咳出深部痰于无菌痰盒中送检；实验组先予以复方氯已定含漱液15mL 含漱5分钟（150mL/瓶；江苏知原药业有限公司生产 国药准字H32026694），然后清水漱口后再留取痰标本。

1.3 痰标本的质量筛查
直接涂片、革兰染色、镜检。

可以接收进行细菌培养的条
件是：痰标本涂片检查平均每低倍镜下见鳞状上皮细胞<10个，多核白细胞>25个或二者比例<1：2.5。

1.4 细菌培养鉴定
将标本用划线法接种在羊血琼脂平板、麦康凯平板、巧
克力平板，置5%-10%CO 2孵育箱中，35℃培养18-24h。

对细菌培养阳性的菌株均采用法国生物梅里埃公司提供的API 手工生化条进行菌种鉴定，鉴定值≥80%为可信限。

并用K-B 法进行药敏试验，结果参照美国年临床实验室标准化委员会(NCCLS)标准。

1.5 质控菌株
质控菌株为大肠埃希菌ATCC 25922、铜绿假单胞菌ATCC 27853、肺炎克雷伯菌ATCC 700603和金黄色葡萄球菌ATCC 25923，白色假丝酵母菌ATCC 90028。

1.6 观察指标
比较两组患者痰涂片的合格率及致病菌检出率、检出病
原菌及构成比。

1.7 统计学分析
统计学处理采用SPSS 19.0软件进行数据分析，计数资
料以%表示，率的比较采用c 2
检验。

以P<0.05为差异有统计学意义。

2 结果
2.1 两组痰标本合格率及病原菌检出率比较
见表1，对照组送检标本360例，涂片合格标本170例，合格率为47.2%；检出致病菌77株，检出率为45.3%。

实验组送检标本320例，涂片合格标本218例，合格率为68.1%；检出病原菌123株，检出率为56.4%。

两组标本合格率及病原菌检出率比较（P<0.05)差异有统计学意义。

两组痰标本检出病原菌比较，见表2。

两组患者痰标本病原菌的构成比较差异无统计学意义（P<0.05）两组患者的痰标本检出病原菌都以革兰阴性杆菌为主，约占标本的74.0%、75.6%。

其次为革兰阳性球菌以及真菌。

病原菌检出率前五位依次为大肠埃希菌、铜绿假单胞菌、肺炎克雷伯菌、金黄色葡萄球菌、鲍曼不动杆菌。

3 讨论
急性呼吸道感染在医院感染中占主要地位，其病死率仅
次于心、脑血管疾病[2]。

对下呼吸道感染患者, 痰的细菌学检查及药敏试验仍是确定病原菌和指导临床用药的重要方法[3]，而痰标本质量直接影响检验结果，合格的痰标本是保证痰培养准确性的前提，在采集方法中经支气管肺泡灌洗液、支气管保护性毛刷采集痰液培养阳性率较高，结果可靠，但其为有创性检查，费用较高，临床操作难度较大，增加了患者痛苦，不宜广泛应用；痰培养因采集方便，花费较少，为临床医师常规使用。

但痰标本依据传统筛选方法合格率很低，标
本合格率为20.0%-30.0%[4]
，采取干预措施后，送检痰标本质量有所提高，但合格率仍不足50.0%，可见痰标本临床意义较差[5]。

我们通过改进痰标本的筛选程序即先涂片镜检合格后再培养及定期对护理人员培训宣教，常规咳痰标本的标本合
优化留取痰标本的应用价值分析
姚远
（内蒙古赤峰市阿鲁科尔沁旗医院检验科，内蒙古 赤峰）
摘要：目的 通过监测复方氯已定含漱液含漱后留痰标本合格率和病原菌检出率，探讨这种留痰方法在临床中的应用价值。

方法
680份呼吸内科送检的痰标本随机分为试验组和对照组，对照组采用常规留痰方法；实验组先予以复方氯已定含漱液15mL 含漱5分钟后留痰。

结果 实验组标本合格率和病原茵检出率分别为68.1%、56.4%；对照组分别为47.2%、45.3%。

两组标本的合格率和病原菌检出率比较（P<0.05），差异有统计学意义。

两组标本检出的病原菌相近（P>0.05），病原菌检出率前五位依次为大肠埃希菌、铜绿假单胞菌、肺炎克雷伯菌、金黄色葡萄球菌、鲍曼不动杆菌。

结论 复方氯己定含漱液含漱后留痰能优化留取痰标本，提高了标本的合格率和病原菌的检出率，具有临床应用价值，值得推广应用。

关键词：咳痰标本；复方氯己定含漱液；优化留痰；监测分析
中图分类号：R441.5 文献标识码：B DOI : 10.19613/ki.1671-3141.2018.51.088
本文引用格式：姚远.优化留取痰标本的应用价值分析[J].世界最新医学信息文摘,2018,18(51):166-167.
·医学检验·
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世界最新医学信息文摘 2018年第18卷第51期
167
格率达到47，2%，和上述报道基本相符。

为了获取合格的痰标本，保证病原菌诊断的准确性和可靠性，通过一定的干预措施清理口咽部，采用复方氯已定含漱液15mL 含漱5分钟后再用清水漱口后留痰，消除或减少口咽部的定值菌对留痰
标本的影响，减少了污染菌，提高了痰标本的涂片合格率和病原菌的检出率。

比率分别为68.1%、56.4%。

明显高于常规咳痰组。

（P<0.05），差异有统计学意义。

两组痰标本病原菌检出及构成比较差异无统计学意义（P<0.05）。

复方氯己定含漱液有着广谱抗菌作用，能有效抑制革兰阳性球菌及革兰阴性杆菌，特别是对大肠埃希菌、某些葡萄球菌及白色假丝酵
母菌等有着高度的敏感性[6]。

本实验证明用复方氯已定含漱液15mL 含漱5分钟后留取痰标本能提高标本合格率和病原菌的检出率，方法简单，行之有效，值得在临床推广应用。

参考文献
[1] 中华人民共和国卫生部医政司.全国临床检验操作规程第四版[M].人
民卫生出版社,2015,4.[2] 黄文智,李淑英.下呼吸道感染病原菌分布及耐药性分析[J].中华医院
感染学杂志,2008,18(9):1328-1330.[3] 毛娟华,徐林燕,郑逸华.呼吸内科患者下呼吸道感染病原菌及药敏分
析[J].中华医院感染学杂志,2009,19(11)1435-1438.[4] 杨进,卢先雷,罗宇鹏.痰液细菌学检验的标准化操作程序初探[J].医
学检验与临床,2008,19(2):7-12.[5] 谢懿,曾娟,李瑜珍.综合干预措施提高痰标本质量的效果评价[J].中
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效果观察[J].中国现代药物应用,2015,9(9):174-176.
为痰标本（41.67%）和血标本（22.92%），共占不合格标本总量的64.59%。

痰标本在不合格标本中占41.67%，造成其微生物检验结果不合格的主要原因为标本污染，占80.00%（16/20）。

分析其原因，在于标本的采集，临床一般是由医生告知受检者，受检者自行取材留存痰标本，然后交予医生，很多受检者对于痰液的正确取材和保存并不明确，导致了在
此过程中极易发生标本污染[2]。

血标本在不合格标本中占22.92%，血标本的培养和检测时诊断败血症等疾病的重要途径，而血标本微生物检测不合格的主要原因在于样本污染（63.64%）和送检不及时（27.27%）。

分析其原因，在于血标本的保存过程中出现污染以及送检程序拖拉，导致血标本送检滞后，待血标本送检时，样品已经被污染而不具检验价值。

标本的采集，若未经专业的指导，由受检者本人采取，经过中间过程的污染，极有可能造成标本的污染，而导致检验结果不合格。

标本的及时送检，也与检验结果关系密切，临床检验应保证标本在2小时内送检，避免送检滞后的情况发生[3]。

此外，标本的运输过程，应由护理人员运送至实验室进行检验。

实验室的环境，应定期进行无菌处理，防止标本在实验室内被污染。

对送检标本采取相应的质量控制对策，对于微生物检验的准确性有重要价值。

除了上述对标本的管理外，还应注意以下几点：①加强临床与检验的沟通交流，
吸取临床医护人员的意见和建议，结合患者的临床表现，对
其检验结果进行综合性评估，并为受检者提供相应的沟通渠道，主动与受检者沟通交流；②加强医护人员的宣教和培训，针对临床与检验的相关性，对医护人员与受检者进行相关内容的宣教，可通过发放宣传册的方式进行[4]。

此外对专业知识技能进行培训，降低微生物检验结果的不合格率，提高临床检验的准确性。

综上所述，在临床检验之中采取相应的质量控制对策，加强微生物检验标本的采集和运输管理，确保标本在送检前的无菌和及时送检，对于降低微生物检验标本的不合格率有重要意义，值得推广应用。

参考文献
[1] 孙静.微生物检验标本不合格原因分析及质量控制对策分析[J].医药卫
生:全文版,2016,25(4):00167-00167.[2] 王淑媛,柯培锋,庄浩林,等.微生物检验标本不合格原因分析及质量
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