CRISPR Cas9精细原理:基因敲除、点突变、基因插入

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只需合成一个sgRNA就能实现对基因的特异性修饰,Cas蛋白不具特异性。
编码sgRNA的序列不超过100bp,因此比构TALENs和ZFNs更简单方便。 较短的sgRNA序列也避免了超星期三:一点 五分。
3.2 CRISPR-Cas9系统的应用前景
CRISPR-Cas9大全:
基因敲除、点突变、基因插入
2015-10-15
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contents
pCRISPR-Cas系统简介
pCRISPR-Cas系统的应用技术 pCRISPR-Cas系统的应用前景
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1. CRISPR-Cas系统简介
crRNA 结合相关的Cas 蛋 白后,形成crRNA-Cas 蛋白 复合体,通过碱基互补配对 精确地与目标DNA相结合,随 后Cas 蛋白对目标DNA 进行 断裂和降解。
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1.3 CRISPR-CAS 系统的作用机理
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2、CRISPR-Cas系统的应用
2.1 CRISPR-Cas9介导的基因组精确编辑技

基因组编辑技术是一种可以在基因组水 平上对DNA序列进行改造的遗传操作技 术。
这种技术的原理是构建一个人工内切酶,在 预定的基因组位置切断DNA,切断的DNA在 被细胞内的DNA修复系统修复过程中会产生 突变,从而达到定点改造基因组的目的。
通过修复途径,基因组编辑技术可以实现 三种基因组改造,即基因敲除,特异突变 的引入和定点转基因
真核细胞的转录激活因子可通过将dCas9与单纯疱疹病毒转录激活子VP16结合获 得。
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3、CRISPR-Cas9技术的优势与前景
3.1CRISPR-Cas9技术的优势
而且从实际应用的角度来说,CRISPRs比TALENs更容易操作,因为每 一对TALENs都需要重新合成,而用于CRISPR的gRNA只需要替换20个 核苷酸就行。
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1.3 CRISPR-CAS 系统的作用机理 CRISPR 的高度可变的间隔区的获得
首先识别入侵的核酸和扫描外源 DNA 潜在的 PAM(NGG序列),将临近 PAM 的序列作为候选protospacer;然后在 CRISPR 基因座的5'端合成重复序列; 最后新的间隔序列整合到两个重复序列之间
1.1 CRISPR-Cas系统的研究历史
1987 年,日本课题组在K12 大肠杆菌的碱性磷酸酶基因附近发现串联间隔重复 序列,随后发现其广泛存在于细菌和古细菌的基因组中,2002 年,正式将其命
名为成簇的规律间隔的短回文重复序列
2005 年发现CRISPR 的间隔序列(spacer)与宿主菌的染色体外的遗传物质高度 同源,推测细菌可能通过CRISPR 系统可能以类似于真核生物的RNAi 方式抵抗
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1.3 CRISPR-CAS 系统的作用机理
p CRIPSR 基因座的表达(包 括转录和转录后的成熟加工)
当该噬菌体再次入侵细菌 时,CRISPR 簇首先转录为长 的crRNA前体,然后逐步被加 工成小的成熟的crRNA。 pCRISPR/Cas 系统活性的发 挥或者是对外源遗传物质的 干扰
PVALB 基因以及小鼠Nero2A 细胞Th 基因实现了定点突变。同年Mali 利用
CRISPR/ Cas9 在人293T 细胞和K652 细胞基因的靶位点形成双链或单链的切 口,从而激活细胞的DNA 修复机制高效介导外源基因定点插入。
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1.2CRISPR-Cas系统的结构 CRISPR-CAS 系统的组成主要包括: 由不连续的重复序列R(
基因组编辑是研究基因功能的重要手 段之一,也可被用于人类遗传性疾病 的治疗,因此这类技术成为现代分子 生物学的研究热点
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2.1 CRISPR-Cas9介导的基因组精确编辑技术
CRISPRs技术是一种由RNA指导Cas蛋白对靶向基因进行修饰的技术。 Mali 等人 利用来自酿脓链球菌和嗜热链球菌中的CRISPR 相关蛋白Cas9, 在一段人为重组的sgRNA( small-guide RNA) 的引导下,针对小鼠和人类 基因组的特定基因片段实现了精确的剪切。这种通过可编程RNA 进行DNA 改造的技术为基因组编辑开创了一条新的途径。
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外源遗传物质的入侵。
2007 年,Barrangou 等首次发现细菌可能利用CRSPR 系统抵抗噬菌体入侵; 2008 年,Marraffini 等发现细菌CRISPR 系统能阻止外源质粒的转移,首次利 用实验验证了CRISPR 系统的功能
2013 年初,MIT 的研究组首次利用CRISPR/Cas9 系统对人293T 细胞EMX1 和
目前应用CRISPR-Cas9系统的研究主要集中在基因编辑方面 。而Cas9真正的优势主要在于它具有能够将3种主要生物聚 合物(DNA、RNA和蛋白质)结合在一起的特殊能力。
各种功能性蛋白都可以通过与Cas9蛋白融合,然后利用gRNA的靶向 作用结合到dsDNA的任意位点,发挥人们预期的功能。 例如:Cas9如果与甲基化酶或去甲基化酶、乙酰化酶或去乙酰化酶、 激酶、磷酸化酶等促进染色质结构变异的蛋白成功融合还将有助于 表观遗传学的研究,并能够持久改变基因的表达状态。如果几个作 用于基因组不同位点Cas9复合物的协同作用,还可通过改变基因组 的结构实现基因调控的目的。
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例子:基因敲除的实验过程
1、在把基因序列中寻 找NGG序列获得其附近 20多个碱基的序列,与 tracrRNA序列融合,设 计出sgRNA并合成该序 列。 2、将该序列以及cas9 基因连入如图所示载 体。 3、转化感受态,质粒 小提,测序验证。
4、细胞培养与细胞转染
repeat) 与长度相似的间区序列S( spacers) 间隔排列而成的 CRISPR 簇,前导序列L( leader) 以及一系列CRISPR 相关蛋白 基因cas。
Cas蛋白是一种双链DNA核酸酶,能在guide RNA引导下对靶位点进行切割。它与folk酶功能 类似,但是它并不需要形成二聚体才能发挥作 用。
5、敲除效果检测。
6、建立稳定敲除的细胞 株
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2.2CRISPR/Cas9介导的转录抑制与转录激活
在CRISPR/Cas9的Ⅱ型系统中将Cas9中的切割域突变,会使Cas9蛋白失去对DNA
的切割活性,但不影响其与DNA 结合的能力。这种失去DNA切割活性的 Cas9蛋白被命名为Dead Cas9。将dCas9与gRNA在细胞中共表达,则 gRNA可以介导dCas9蛋白与DNA 结合。如果dCas9结合到靶基因的 阅读框内,可阻断RNA聚合酶的延伸作用;如果dCas9结合到靶基因 的启动子区域则可阻止基因转录的起始
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2.2CRISPR/Cas9介导的转录抑制与转录激活
CRISPR/Cas9系统用于转录抑制需要PAM(3bp)和至少12bp的gRNA-DNA配 对
利用crRNA介导dCas9能够精确识别靶基因的特点,将dCas蛋白与具有转录 激活的蛋白质功能域融合则可构建具有转录激活活性的CRISPR-on系统。
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