家兔的麻醉气管插管,颈总动脉插管课件
生理科学实验常用手术器械和家兔实验基本操作PPT课件
➢ 给药方法
• 灌胃法 • 皮下注射法：背部或腿部皮下 • 肌内注射法：后肢大腿部 • 腹腔注射法：腹中线左侧1cm • 静脉注射法：
耳缘静脉、颈外静脉、股静脉等
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耳缘静脉给药法操作要点：
1. 用酒精棉球擦拭或用水湿润局部 2. 左手绷紧皮肤，右手持注射器进针 3. 从远心端平行刺入血管内，顺血管平行方向
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1. 颈外静脉位于颈部两侧皮下 2. 钝性分离一段静脉（不要绷太紧） 3. 穿2根丝线 4. 先用静脉夹夹住近心端，再丝线结扎远心端 5. 剪开静脉、插管、结扎固定 6. 松开静脉夹
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1. 备皮（下腹部，耻骨联合上） 2. 切开皮肤（耻骨联合上3~5cm） 3. 沿腹白线剪开腹膜，暴露膀胱 4. 玻璃分针分离出输尿管，穿2根线 5. 结扎近膀胱端，剪开一小口 6. 向肾脏方向插入插管，结扎固定
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家兔的基本操作
➢ 捉拿方法、秤重
➢ 麻醉、固定 ➢ 给药方法 ➢ 取血方法 ➢ 处死方法
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家兔各种常用急性手术方法
➢ 颈部手术
切开、分离、止血
• 气管插管
缝合、打结
• 颈总动脉插管
• 颈外静脉插管
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➢ 腹部手术
• 输尿管插管
• 膈小肌的分离（P86）
6
➢ 股部手术
• 股动脉插管 • 股静脉插管
• 大量放血法
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1. 家兔麻醉，仰卧固定于手术台上 2. 颈部备皮（剪毛） 3. 切开皮肤（甲状软骨下缘正中线向下切3~5 cm） 4. 血管钳钝性分离筋膜肌肉，暴露气管 5. 气管下穿一棉线备用 6. 第3或4软骨环上切开气管的1/3，倒T切口 7. 向下插入气管插管，结扎固定
机能学实验家兔的捉拿麻醉气管插管
实验步骤
2 气管插管
1、切开倒“T”形切口：甲状软骨下第3~4软骨环处 2、插管及固定
头
4
5 心
注意事项
麻醉动物时,注射速度先快后慢, 边注射边观察动物麻醉指征。如麻醉过浅, 动物挣扎时可适量追加麻醉药, 切忌麻醉过深引起家兔死亡；
手术过程中操作应轻柔,尽量避免不必要的损伤和出血； 手术时, 切开颈部皮肤后, 尽量钝性分离, 以免损伤血管； 气管插管前，应注意止血，并将气管分泌物清理干净；
实验步骤
1 家兔捉拿、麻醉与固定
捉拿： 右手抓兔颈部皮毛提起 左手托其臀部
使兔呈坐位，重量大部分 集中在左手
应避免的错误： 4 1、单提兔耳 25、捉拿四肢 3、提抓腰部、背部
实验步骤
1 家兔捉拿、麻醉与固定
麻醉： 药量：1.5%戊巴比妥钠 2ml/kg 方法：注射耳缘静脉（由耳尖到耳根）
4麻醉成功标志：1、角膜反射消失
2、肌张力降低
5
3、呼吸减慢
4、疼痛反应消失
实验步骤
1 家兔捉拿、麻醉与固定
固定（台式）：
四肢用粗绳活结固定，拉直四肢，将绳打结
固定在兔台四周的固定木块上。 头用一根粗绳挑过兔门齿固定在兔台上。 45 Nhomakorabea 实验步骤
2 气管插管
1、剪毛
2、做切口：沿颈中线从甲 状软骨下到胸骨上
4 3、游离气管：钝性分离皮 下管组，织穿5、线背备侧用结缔组织、食
实验三家兔动脉血压的调节(讲课演示)课件
• 实验目的 • 实验原理 • 实验步骤 • 实验结果与分析 • 实验结论 • 参考文献
01
实验目的
了解家兔动脉血压的调节机制
总结词
理解家兔动脉血压的生理调节机 制，包括神经调节和体液调节。
详细描述
通过实验，学生将观察到家兔动 脉血压在神经和体液因素下的变 化，从而深入理解血压的生理调 节过程。
实验仪器准备
准备实验台和手术器械
准备药品
实验台应平稳、无尘，手术器械应清 洁、消毒。
根据实验需要准备各种药品，如麻醉 药、生理盐水、抗凝剂等。
准备实验仪器
包括血压计、注射器、动脉插管、血 管夹等，确保其性能良好，准确无误。
实验操作流程
手术准备
进行必要的手术准备，如剪毛、 消毒等。
固定家兔
将家兔固定在实验台上，确保 其稳定不动。
学习观察药物对家兔动脉血压的影响
总结词
学习并掌握如何使用药物来改变家兔 的动脉血压。
详细描述
在实验过程中，学生将学习使用各种 药物来改变家兔的动脉血压，并观察 这些变化对心血管系统的影响。
掌握实验操作技术和数据处理方法
总结词
掌握实验操作技术和数据处理方法，包括实验动物的准备、实验操作步骤、数 据记录和分析等。
数据分析与解释
数据分析
对实验数据进行统计分析，计算各项指标的平均值、标准差 等。
数据分析解释
根据统计分析结果，解释实验数据所反映的规律和趋势，以 及可能的原因。
结果讨论与总结
结果讨论
对实验结果进行深入讨论，探讨可能 的误差来源、实验方法的改进等。
总结
总结实验的主要发现和结论，强调实 验的意义和价值，提出进一步研究的 方向和建议。
实验三家兔动脉血压的调节(讲课演示)PPT课件
目录
• 实验目的 • 实验原理 • 实验步骤 • 实验结果与分析 • 结论与讨论
01
实验目的
掌握家兔动脉血压的调节机制
了解家兔动脉血压的 生理正常值及波动范 围。
掌握压力感受性反射 和化学感受性反射对 动脉血压的影响。
学习并掌握家兔动脉 血压的神经调节和体 液调节机制。
了解肾素-血管紧张素系统和一 氧化氮等体液因素对心血管活 动的调节作用。
02
实验原理
神经调节
交感神经和副交感神经
交感神经兴奋时，释放去甲肾上腺素，使心率加快、血管收缩，血压升高；副 交感神经兴奋时，释放乙酰胆碱，使心率减慢、血管舒张，血压降低。
压力感受器反射
当动脉血压升高时，颈动脉窦和主动脉弓压力感受器受到刺激，通过传入神经 将兴奋传至延髓心血管中枢，使心迷走紧张加强，心交感紧张和缩血管紧张减 弱，导致心率减慢、血管舒张、血压下降。
对未来研究的建议
未来研究可以进一步探讨不同因 素对动脉血压调节的具体作用机 制，例如深入研究肾素-血管紧 张素系统在高血压中的作用。
此外，可以研究其他动物模型或 人类中的类似机制，以便更好地 理解这些机制在心血管疾病中的
普遍性和特殊性。
同时，可以探索如何将这些发现 应用于临床实践，例如开发新的 药物或治疗方法来调节动脉血压。
使用药物阻断自主神经的调节作用，如使用阿托品阻断M受体，使用心得安阻断β受 体等。
体液调节阻断
注射药物阻断体液调节机制，如注射血管紧张素Ⅱ、去甲肾上腺素等。
药物注射与观察
药物注射
根据实验要求，将不同浓度的药物注 射到家兔体内，观察其对动脉血压的 影响。
观察记录
动物实验的常用插管术
动物实验的常用插管术一、气管插管术气管插管的作用在于保证麻醉动物呼吸道通畅，清除气管内分泌物或异物，收集呼出气体进行实验分析等。
将动物麻醉后仰卧位固定在实验台上，充分暴露颈部，剪去颈前区被毛，于喉部下缘至胸骨上缘之间沿正中切开皮肤（切口长度家兔约5～6cm，狗约8～10 cm，大白鼠约2～3cm）。
用皮钳将皮肤向外侧牵拉，用止血钳钝性沿正中线纵向分离皮下组织，暴露颈前肌肉群。
气管位于颈部正中，胸骨舌骨肌与胸骨甲状肌背侧。
沿正中线顺肌肉走行方向用止血钳钝性分离肌肉，暴露气管。
从甲状软骨以下分离气管两侧及其与食管之间的结缔组织，游离气管约2～3cm，在其下方穿一丝线备用。
实验者左手轻提丝线，右手持手术刀于4、5气管软骨环之间切开一横切口，横切口约为气管圆周的1/3，再用手术剪向上纵向剪两个气管软骨环，纵切口约为0.5～0.7cm，从而形成“（倒“T”形）切口。
将气管插管由切口向肺端插入适当深度，以备好的丝线将插管与气管结扎在一起，然后将丝线绕于插管分叉处再作结扎固定，以防插管脱落。
二、颈总动脉插管术颈总动脉插管是将充满肝素或其他抗凝剂溶液的导管插入颈总动脉，多用于直接检测动脉血压的变化，采集动脉血样和放血，是机能实验最常用的技术。
动物的麻醉和固定、颈部剪毛、切开颈部皮肤并进行气管插管等操作与前面所述相同。
实验者以左手拇指和食指将一侧颈部皮肤及肌肉提起向外侧牵拉，其余三指从皮肤外面向上顶起，清晰暴露颈总动脉；右手持玻璃分针顺颈总动脉走行方向轻轻划开其周围的神经、结缔组织，游离所需动脉2～3 cm，在其下方穿两根丝线备用。
取直径适宜的动脉导管并将其连接三通管和压力换能器，检查其插口端是否光滑，确定无尖无钩，将导管和压力换能器一起充满肝素生理盐水，排尽压力换能器和导管内的空气，并将三通管置于“三不通”的位置。
用一根丝线结扎游离颈总动脉的远心端，用动脉夹夹闭其近心端，另一丝线置于结扎部位和动脉夹之间。
实验者以左手拇指、中指提起结扎线，食指自下方托起血管，右手持眼科剪在靠近远心端结扎处成45°角向心脏方向将颈总动脉剪一斜行剪口，剪口的大小约颈总动脉直径的1/3～1/2，将动脉导管顺血管切口向近心端插进约1～1.5cm，用丝线结扎动脉与动脉导管，并固定导管，以防导管滑脱。
家兔气管插管的操作方法
家兔气管插管的操作方法
家兔气管插管是一项技术性较强的操作，需要经过专业训练或医生指导才可以进行。
以下是家兔气管插管的一般步骤：
1. 首先将兔子固定在一个安全舒适的位置，可以用毛巾包裹住身体，只露出头部和颈部。
2. 使用一个口腔镜或一个手持口腔扩张器，打开兔子的口腔，以便能够看到兔子的喉咙。
3. 用一支注射器和一根硬质的塑料管（称为气管插管）来插入兔子的气管。
一般选用内径约为1.0-2.0毫米的气管插管。
4. 先确定气管的位置，一般在喉咙处有一个凹槽，气管就位于其中。
将注射器拔出，连上气管插管，用手固定口腔扩张器，尽力将气管插管插入兔子的气管中。
5. 一旦气管插管插入到了正确的位置，就可以将注射器插入气管插管的末端，注入适量的气体，以确定气管插管已经插入了兔子的肺部，并且兔子可以正常呼吸。
6. 操作完成后，需要及时将气管插管拔出，闭合兔子的口腔，用温水清理口腔内部，以避免感染的风险。
值得注意的是，家兔的气管比较脆弱，操作时需要非常小心，避免对兔子身体造成过多的创伤。
这项操作最好由兽医或经过专业训练的人员来进行。
机能学实验家兔的捉拿麻醉气管插管精品课件
10、低头要有勇气，抬头要有低气。09:21:3909:21:3909:218/13/2020 9:21:39 AM
11、人总是珍惜为得到。20.8.1309:21: 3909:2 1Aug -2013-Aug -20
12、人乱于心，不宽余请。09:21:3909:21:3909:21Thursday, August 13, 2020
16、业余生活要有意义，不要越轨。2020年8月13日 星期四 9时21分39秒09:21:3913 August 2020
17、一个人即使已登上顶峰，也仍要 自强不 息。上 午9时21分39秒 上午9时21分09:21:3920.8.13
谢谢大家
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手术过程中操作应轻柔,尽量避免不必要的损伤和出血； 手术时, 切开颈部皮肤后, 尽量钝性分离, 以免损伤血管； 气管插管前，应注意止血，并将气管分泌物清理干净；
可修改 欢迎间被决定 。20.8.1320.8.13Thurs day, August 13, 2020
4麻醉成功标志：1、角膜反射消失
2、肌张力降低
5
3、呼吸减慢
4、疼痛反应消失
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实验步骤
1 家兔捉拿、麻醉与固定
固定（台式）：
四肢用粗绳活结固定，拉直四肢，将绳打结
固定在兔台四周的固定木块上。 头用一根粗绳挑过兔门齿固定在兔台上。 4
5
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实验步骤
2 气管插管
1、剪毛 2、做切口：沿颈中线从甲 状软骨下到胸骨上
4 3、游离气管：钝性分离皮 下管组，织穿5、线背备侧用结缔组织、食
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实验步骤
2 气管插管
机能实验之家兔手术操作
机能实验之家兔手术操作1．皮肤切开：动物麻醉固定后，在切口沿线的中点两侧，分别用血管钳向两侧夹起皮肤，用手术剪在两血管钳之间的皮肤上剪一小口，将剪刀伸进切口，贴紧并挑起皮肤撑开剪刀以钝性分离皮下组织，然后小心剪开皮肤。
分离下面的组织避免使用剪刀，以免发生出血，尽可能作钝性分离。
2．家兔颈部手术：颈部手术主要包括气管插管、颈动脉插管、颈外静脉插管和分离颈部神经等。
（1）气管插管：先用水湿润局部毛发，再用粗剪刀剪去颈部手术部位兔毛，在麻*醉情况下沿颈部正中线切开皮肤5－7cm，分离皮下组织，于正中线分开肌肉，暴露气管，分离出气管，剔尽周围组织，于气管下穿线备用，在甲状软骨下约l cm处剪一倒“T”型切口，插入气管插管，并用线扎紧，再将余线绕气管插管的分又处再行结扎，以防滑脱。
（2）颈动脉插管：将上述切口边缘的皮肤及其下方的肌肉组织向外侧拉开，即可见在气管两侧纵行的左、右颈总动脉鞘，在鞘内，颈总动脉与颈静脉、颈迷走神经、降压神经伴行在一起。
可先将颈总动脉鞘分离出来，再从鞘内分离出颈总动脉，剔尽周围结缔组织，游离出长3～4cm的颈总动脉，尽可能向远心端游离，在动脉下穿2根线，用其中一根结扎远心端，用动脉夹夹住其近心端，结扎处与动豚夹夹闭间的颈总动脉长度约需3cm。
用眼科镊柄垫在颈总动脉下方，用眼科剪在远心端结扎线的近心侧0.3cm处的动脉壁上作一斜切口，切口约为管径的一半，然后将准备好的充满肝素溶液的动脉导管（事先在距导管口上方1.5cm处裹贴一白胶布）由切口向心脏方向插入动脉内。
用已穿好的线扎紧插入导管的血管，并将剩余线平行于导管拉直，与远心端结扎线打一死结，以拉住导管防止其滑脱。
使动脉插管与动脉保持在同一直线上，然后将动脉导管作适当固定。
（3）颈外静脉插管：颈部皮肤切开后，用左手拇指和食指捏住颈部左侧缘皮肤切口，其余三指从皮肤外向上顶起外翻，可清晰的看见位于颈部皮下，胸骨乳突肌外缘的颈外静脉。
沿血管走向，用玻璃分针钝性分离颈外静脉二侧的皮下筋膜，仔细分离3~5cm长，在血管的远心端穿丝线，在靠近锁骨端用动脉夹夹闭颈外静脉的近心端，待血管内血液充盈后用手术线结扎颈外静脉的远心端。
动脉插管和气管插管(课件)
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14、 抱 最 大 的 希望 ，作最 大的努 力。2021年 5月 18日星 期二**21.5.18
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15、 一 个 人 炫 耀什 么，说 明他内 心缺少 什么。 。2021年 5月*21.5.18*May18, 2021
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16、 业 余 生 活 要有 意义， 不要越 轨。**5/18/2021
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操作练习
全身麻醉 家兔 气管插管
颈总A插管
哺乳动物手术器材清单
金属用品 粗剪1把 手术剪1把 眼科剪1把 血管钳4把 手术镊1把 手术刀1把 动脉夹1个
玻璃/塑料用品 气管插管1个 动脉插管1根 玻璃分针1根 三通管1-2个 注射器2支
其他 纱布 棉签 丝线 布条 压力换能器
药品
• 戊巴比妥钠（1.5%）
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11、 人 总 是 珍 惜为 得到。 2021/5/182021/5/182021/5/18May-2118-May-21
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12、 人 乱 于 心 ，不 宽余请 。2021/5/182021/5/182021/5/18Tuesday, May 18, 2021
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13、 生 气 是 拿 别人 做错的 事来惩 罚自己 。2021/5/182021/5/182021/5/182021/5/185/18/2021
6、将充满肝素的动脉插管向近心端插入，用线打 双结结扎，再固定于插管缠胶布处（二次固定）。
7、打开生物机能实验系统，观察并记录动 脉血压。
•先小心松开动脉夹，确认无误后再取走。若有渗血或血 液回流等意外，可立刻夹闭再进一步处理。
•进入BL－410/420系统。
•选择“实验项目” →选择“循环实验” →“兔动脉血 压调节”实验模块。 •选 择 “ 输 入 信 号 ” → 选 择 “ 通 道 ” → “ 压 力 ” → 点 击 “开始”实验按钮，即可在屏幕上观察到正常的血压曲 线。
家兔气管插管实验原理
家兔气管插管实验原理家兔气管插管实验是一种常用的实验方法，用于研究家兔气管插管技术和相关疾病的治疗方法。
本实验旨在通过插入气管插管，模拟气管插管手术过程，探究插管对家兔的影响，并验证插管技术的可行性和安全性。
实验前准备：1.选择健康的家兔，体重适中，免疫系统良好。
2.准备麻醉剂和镇痛剂，确保家兔处于无痛苦和镇静状态。
3.准备气管插管器具，包括气管插管管、导丝、插管固定带等。
实验步骤：1.将家兔置于手术台上，进行全身消毒，确保手术场所无菌。
2.使用注射器将麻醉剂和镇痛剂混合后，通过皮下注射给家兔麻醉。
3.等待麻醉剂起效后，将家兔固定在手术台上，保持舒适的体位。
4.使用无菌手套和器具，进行局部消毒，特别是颈部和喉咙区域。
5.用手指按压家兔的气管，找到气管的位置。
6.将气管插管器的导丝插入家兔的气管中，确保导丝顺利通过气管。
7.将气管插管管沿着导丝缓慢插入家兔的气管，直到插管的一端位于气管末端。
8.固定插管，使用插管固定带将插管与家兔的颈部固定，防止插管脱落。
9.观察家兔的呼吸情况和身体反应，确保插管过程没有引起异常情况。
10.实验结束后，将家兔从麻醉状态中唤醒，观察其恢复情况。
实验原理：1.气管插管可以通过人工方式将插管管插入气管，建立起人工通气通道。
这个通道可以用于给家兔提供氧气和麻醉药物，同时也可以用于清除气道分泌物，预防肺部感染等。
2.插管过程中要注意插管管的长度和位置，确保插管的一端位于气管末端，而不是误插入食道或其他部位。
插管的固定带也要正确使用，保证插管不会松脱。
3.气管插管需要经过严格的消毒和无菌处理，以避免引入细菌或其他病原体，导致感染和并发症。
4.实验中的麻醉剂和镇痛剂的使用，可以减轻家兔的痛苦和不适感，同时也使实验操作更加顺利和安全。
实验结果和意义：1.通过家兔气管插管实验，可以验证气管插管技术的可行性和安全性，为临床操作提供依据。
2.实验结果可以帮助研究人员了解插管对家兔的影响，探究插管对气道和呼吸功能的影响，进一步研究相关疾病的治疗方法。
机能学实验家兔的捉拿麻醉气管插管 ppt课件
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机能学实验家兔的捉拿麻醉气管插管
机能学实验家兔的捉拿麻醉气管插管
实验步骤
2 气管插管
1、剪毛 2、做切口：沿颈中线从甲 状软骨下到胸骨上
4 3、游离气管：钝性分离皮 下管组，织穿5、线背备侧用结缔组织、食
机能学实验家兔的捉拿麻醉气管插管
手术过程中操作应轻柔,尽量避免不必要的损伤和出血； 手术时, 切开颈部皮肤后, 尽量钝性分离, 以免损伤血管； 气管插管前，应注意止血，并将气管分泌物清理干净；
机能学实验家兔的捉拿麻醉气管插管
实验步骤
2 气管插管
1、切开倒“T”形切口：甲状软骨下第3~4软骨环处 2、插管及固定
头
4
5
机能学实验家兔的捉拿麻醉气管插管
心
机能学实验家兔的捉拿麻醉气管插管
注意事项
麻醉动物时,注射速度先快后慢, 边注射边观察动物麻醉指征。如麻醉过浅, 动物挣扎时可适量追加麻醉药, 切忌麻醉过深引起家兔死亡；
机能学实验家兔的捉拿麻醉气管插管
实验内容
1 家兔捉拿、麻醉与固定 2 气管插管
机能学实验家兔的捉拿麻醉气管插管
实验步骤
1 家兔捉拿、麻醉与固定
捉拿： 右手抓兔颈部皮毛提起 左手托其臀部
使兔呈坐位，重量大部分 集中在左手
应避免的错误： 4 1、单提兔耳 25、捉拿四肢 3、提抓腰部、背部
机能学实验家兔的捉拿麻醉气管插管
实验步骤
1 家兔捉拿、 2ml/kg 方法：注射耳缘静脉（由耳尖到耳根）
4麻醉成功标志：1、角膜反射消失
2、肌张力降低
5
3、呼吸减慢
4、疼痛反应消失
家兔实验手术ppt课件
童攒
手术器械介绍
手术刀
注射器
排除气泡
动物的抓取
X X X
家兔的麻醉
（1）注射液剂量 （参考值） 5 ml/kg体重20%氨基甲酸乙酯（乌拉坦） 1g/kg 抽吸麻醉液多吸一部分；剩余麻醉液回收
（2）进针 选择耳缘静脉，从远心端开始 针头扎进1/3至1/2，并用拇指固定住 前1/3 可以快，中1/3慢,后1/3更慢 判断麻醉深度 四肢肌张力、角膜反射、呼吸运动
气管插管
游离一段气管、穿线、剪倒T口
气管插管
头
软骨
心脏
分离迷走神经
翻开气管一侧，迷走神经(1根) 穿线备用
颈总动脉
交感神经
迷走神经 减压神经
动脉插管
压力换能器
压力仓充满液体石蜡，排气泡 插管充满肝素生理盐水动脉插管源自动脉插管游离一段颈动脉
管
结扎远心端、动脉夹近心端、插
头
心脏
胆管插管
腹部手术 腹白线
膀胱插管
插管前插管内应注满生理盐水 在膀胱正中作一荷包缝合,不能穿透膀胱壁！ 在中心剪一小口，插入膀胱套管， 收紧缝线，固定膀胱套管
动物实验技术操作训练课件
②动作轻柔，以免引起损伤性尿闭。 ③注意膀胱插管不要插入过深。
第二十七页，共31页。
2.输尿管插管术(视频)
(1)输尿管插管操作要点：
①在耻骨联合上方备皮，做一3~5cm的切口，沿腹白线打 开腹腔，暴露膀胱，将膀胱向下方翻开，可见白色输尿管。
第二十五页，共31页。
六、腹部手术 1.膀胱插管术(视频)
(1)膀胱插管操作要点：
①在耻骨联合上方备皮，做一3~5cm的切口，沿腹白线打
开腹腔，暴露膀胱，将膀胱向下方翻开，可见白色输尿管。
②结扎尿道口。
③膀胱底部剪一小口，插入导管，与切口处的膀胱壁结扎固 定。
第二十六页，共31页。
(2)注意事项
2.药品： 25%氨基甲酸乙酯溶液(乌拉坦)
第五页，共31页。
[实验方法]
一、家兔的捉拿与称重
1.家兔的捉拿
右手抓住家兔颈背部皮肤， 轻轻将家兔提起，迅速以左手 托住其臀部，使家兔体重主要 落左掌心上，以免损伤动物颈 部。
图1 正确捉拿家兔
注意点： 家兔一般不咬人，但脚
爪锐利，在挣扎易抓伤捕捉 者，所以捕捉时要特别注意 其四肢。
①于气管一侧小心分离颈总动脉约3cm穿两线备用。 ②远心端结扎、近心端用动脉夹夹紧。 ③用眼科剪与血管呈45℃的角度从远心端开始在向心一侧 剪开管壁的1/3。 ④插管前导管和压力换能器的肝素化。 ⑤插管后结扎固定。
第二十四页，共31页。
(2)注意事项
①分离动脉时不要损伤动脉的小分支，以免造成出血。 ②颈总动脉剪口不宜过大或过小，过大易于使颈总动脉插断， 过小导管不易插入。 ③动脉导管的插入端要光滑，不能过尖，以防刺破动脉壁， 引起大出血。 ④未扎紧动脉插管前不要松动动脉夹。
家兔气道插管实验原理
家兔气道插管实验原理家兔的呼吸系统由鼻腔、喉、气管、支气管及肺组成，其中气管是一个较长的管道，连接着喉和支气管。
为了研究呼吸系统的生理功能和药物的效果，需要对家兔进行气道插管实验。
气道插管实验的目的是通过将一根细长的管子插入家兔的气道，使气体流经特定路径，实现精确的控制和测量。
通过这种方法，可以观察家兔的呼吸过程，使用不同的方法和药物控制或干预家兔的呼吸，从而研究气道和肺的生理和病理过程。
实验中通常选择经口气管插管法，即将插管通过家兔的口腔插入气管。
具体步骤如下：1.身体准备：将家兔静置在适当的位置，确保其身体保持稳定，以便顺利进行插管过程。
2.麻醉：使用适当的麻醉剂对家兔进行麻醉，以减少插管过程中的不适和疼痛。
3.口腔消毒：使用适当的消毒药物对家兔的口腔进行清洁，以防止感染。
4.插管：将细长的管子缓慢地插入家兔的口腔，经过喉进入气管。
插管需要轻柔并小心，以避免对家兔的损伤。
5.固定管子：将插管与家兔的嘴部或皮肤固定起来，以防止意外脱落或移位。
6.连接设备：将插管与呼吸设备连接起来，包括呼吸机、氧气供应和呼吸参数监测设备。
这些设备可以用来控制家兔的呼吸，并记录呼吸参数的变化。
7.观察和记录：观察家兔的呼吸过程，如呼吸频率、潮气量等。
记录实验中的相关数据，并根据需要进行分析和解读。
通过家兔气道插管实验，可以研究呼吸系统的生理和病理过程，如呼吸功能的改变、气道阻力的测量、肺的力学特性等。
此外，还可以评估各种药物或治疗方法对呼吸系统的影响，例如药物吸入治疗、机械通气等。
需要指出的是，家兔气道插管实验需要严格遵循伦理规范和动物保护法律，保证实验操作的安全性和动物的福利。
在实验中需要尽量减少对家兔的不良影响，选择合理的实验操作和监测方法，确保实验的科学性和可靠性。
机能学实验家兔的捉拿麻醉气管插管
实验步骤
手术时, 切开颈部皮肤后, 尽量钝性分离, 以免损伤血管； 家兔捉拿、麻醉与固定
5%戊巴比妥钠 2ml/kg
2 气管插管 2、肌张力降低
3、游离气管：钝性分离皮下组织、背侧结缔组织、食管，穿线备用 手术时, 切开颈部皮肤后, 尽量钝性分离, 以免损伤血管； 4、疼痛反应消失 手术时, 切开颈部皮肤后, 尽量钝性分离, 以免损伤血管； 四肢用粗绳活结固定，拉直四肢，将绳打结固定在兔台四周的固定木块上。
2、做切口：沿颈中线从甲状软骨下到胸骨上 麻醉动物时,注射速度先快后慢, 边注射边观察动物麻醉指征。 2、做切口：沿颈中线从甲状软骨下到胸骨上
1、剪毛 气管插管前，应注意止血，并将气管分泌物清理干净；
家兔捉拿、麻醉与固定
手术时, 切开颈部皮肤后, 尽量钝性分离, 以免损伤血管； 四肢用粗绳活结固定，拉直四肢，将绳打结固定在兔台四周的固定木块上。
25、%戊肌2巴张、比力妥降做钠低 2切ml/k口g ：沿颈中线从甲 状软骨下到胸骨上 家兔捉拿、麻醉与固定
如麻醉过浅, 动物挣扎时可适量追加麻醉药, 切忌麻醉过深引起家兔死亡；
4 家兔捉拿、麻醉与固定
2、做切口：沿颈中线从甲状软骨下到胸骨上
3、游离气管：钝性分离皮 头用一根粗绳挑过兔门齿固定在兔台上。
实验步骤
2 气管插管
1、切开倒“T”形切口：甲状软骨下第3~4软骨环处 2、插管及固定
头
4
5 心
注意事项
麻醉动物时,注射速度先快后慢, 边注射边观察动物麻醉指征。如麻醉过浅, 动物挣扎时可适量追加麻醉药, 切忌麻醉过深引起家兔死亡；
手术过程中操作应轻柔,尽量避免不必要的损伤和出血； 手术时, 切开颈部皮肤后, 尽量钝性分离, 以免损伤血管； 气管插管前，应注意止血，并将气管分泌物清理干净；
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家兔的麻醉气管插管,颈总动脉插管
气管插管：
• 由颈正中剪开一约６cm的口，钝性分离皮下筋膜 分离出气管，穿线备用；
• 在甲状软骨下方第3-4个环状软骨上作一倒“T”形 切口，插入“Y”形气管插管，并用线固定好
家兔的麻醉气管插管,颈总动脉插管
颈部手术、气管插管
家兔的麻醉气管插管,颈总动脉插管
家兔全身麻醉
1.5%戊巴比妥钠，2ml/kg
麻醉具体操作：
前1/2快速推入，以求动物能顺利、 快速地渡过兴奋期；后1/2速度宜慢，且 边注射边注意观察动物的生命体征变化， 当确定已达到麻醉效果时，即停止给药， 不必急于将剩余的麻醉药物全部推入
家兔的麻醉气管插管,颈总动脉插管
角膜反射迟钝
麻醉成功标志 肢体肌肉松弛
家兔的麻醉气管插管,颈总动脉插管
颈动脉插管技术
１、沿颈正中线从甲状软骨下到胸骨上沿作一约６cm 的口。
2、钝性分离皮下筋膜。 3、分离一侧颈总动脉，穿双线备用。 4、结扎远心端，在距结扎线约2-3cm处用动脉夹夹闭
颈总动脉近切口，切口大
小约为动脉口径的1/3－1/2。 6、将连接好压力换能器的动脉插管灌满肝素，向近心
NOTICE
• 动脉插管和血压换能 器内注满肝素生理盐 水以排气抗凝
• 压力换能器与动物心 脏等高
• 动脉插管与颈总动脉 呈一条直线
家兔的麻醉气管插管,颈总动脉插管
端插入动脉插管，并用线结扎牢固。 7、打开换能器开关，观察并记录结果。
家兔的麻醉气管插管,颈总动脉插管
颈动脉插管
家兔的麻醉气管插管,颈总动脉插管
家兔的麻醉气管插管,颈总动脉插管
家兔的麻醉气管插管,颈总动脉插管
动脉插管和血压换能器内注满肝素生理盐 水以排气抗凝
家兔的麻醉气管插管,颈总动脉插管
家兔的麻醉气管插管,颈总动脉插管