凝胶柱使用注意事项

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GPC 使用注意事项

GPC 使用注意事项

GPC UL TRA使用注意事项
1、做样前检查是否有足够的洗脱液,废液瓶是否有足够的空间。

2、如果仪器长达一周以上未开机,打开进行自检,直接按GPC的Pump上的Start按键,使
得洗脱液流过凝胶柱约为半小时,确保凝胶柱处于最佳,随时可以使用状态。

3、如果发现柱前洗脱液有气泡,或者仪器在待机(Standby)仪器有较大余压时;打开Pump
的Purge阀,用注射器抽取气泡,或者同时按∧和∨按键,进行排放气泡。

4、在仪器自检后或者在处理样品过程中,不要左右转动样品架,以及不要触及进样针。

5、搬动仪器过程中,不要在进样针和固定杆处用力。

6、非厂家安装/维修工程师,请勿轻易改变仪器内部设定参数。

7、需要净化处理的样品一定用无水硫酸钠彻底脱水。

8、建议对需要净化处理的样品用含氟的微孔膜(有机相0.45um)过滤。

9、使用GPC过程中,注意不同溶剂样品的互溶性问题。

凝胶色谱柱

凝胶色谱柱

装柱由于凝胶的分离是靠筛分作用,所以凝胶的填充要求很高,必须要使整个填充柱非常均匀,否则必须重填。

凝胶在装柱前,可用水浮选法去除凝胶中的单体、粉末及杂质,并可用真空泵抽气排出凝胶中的气泡。

最好购买商品中的玻璃或有机玻璃的凝胶空柱,在柱的两端皆有平整的筛网或筛板。

将柱垂直固定,加入少量流动相以排除柱中底端的气泡,在加入一些流动相于柱中约1/4的高度。

柱顶部连接一个漏斗,颈直径约为柱颈的一半,然后在搅拌下、缓慢的、均匀地、连续地加入已经脱气的凝胶悬浮液,同时打开色谱柱的毛细管出口,维持适当的流速,凝胶颗粒将逐层水平式上升,在柱中均匀地沉积,直到所需高度位置。

最后拆除漏斗,用较小的滤纸片轻轻盖住凝胶床的表面,再用大量洗脱剂将凝胶床洗涤一段时间。

3、柱均匀性检查凝胶色谱的分离效果主要决定于色谱柱装填得是否均匀,在对样品进行分离之前,对色谱柱必须进行是否均匀的检查。

由于凝胶在色谱柱中是半透明的,检查方法可在柱旁放一至于柱平行的日光灯,用肉眼观察柱内是否有“纹路”或气泡。

也可向色谱柱内加入有色大分子等,加入物质的分子量应在凝胶柱的分离范围,如果观察到柱内谱带窄、均匀、平整,即说明色谱柱性能良好;如果色带出现不规则、杂乱、很宽时必须重新装填凝胶柱。

4、上样凝胶柱装好后,一定要对柱用流动相进行很好的平衡处理,才能上样。

凝胶柱的上样也是一个非常重要的因素,总的原则是要使样品柱塞尽量的窄和平整。

为了防止样品中的一些沉淀物污染色谱柱,一般在上柱前将样品过滤或离心。

样品溶液的浓度应该尽可能的大一些,但如果样品的溶解度与温度有关时,必须将样品适当稀释,并使样品温度与色谱柱的温度一致。

当一切都准备好后,这时可打开色谱柱的活塞,让流动相与凝胶床刚好平行,关闭出口。

用滴管吸取样品溶液沿柱壁轻轻地加入到色谱柱中,打开流出口,使样品液渗入凝胶床内。

当样品液面恰与凝胶床表面平时,再次加入少量的洗脱剂冲洗管壁。

重复上述操作及此,每一次的关键是既要使样品恰好全部渗入凝胶床,又不致使凝胶床面干燥而发生裂缝。

凝胶柱层析操作方法

凝胶柱层析操作方法

凝胶柱层析操作方法凝胶柱层析是一种常见的生物化学分离和纯化技术,主要用于分离和纯化蛋白质、核酸、多糖以及其他生物大分子。

它是基于溶液中分子在凝胶柱中通过扩散和吸附/排斥作用的差异,从而实现分离和纯化的过程。

凝胶柱层析的操作步骤如下:1. 准备工作首先,准备好所需的实验设备和试剂,包括凝胶柱、载体溶液、平衡缓冲液、洗脱缓冲液以及待纯化的样品等。

2. 凝胶柱的平衡将凝胶柱放入层析缸中,并用足够的平衡缓冲液预先洗涤凝胶柱,以确保凝胶柱内缸体达到平衡状态。

洗涤凝胶柱的缓冲液通常是与样品一样的成分,以确保样品在平衡和层析过程中的稳定性。

3. 样品的加载将待纯化的样品加入凝胶柱顶部,让样品自由通过凝胶柱,在凝胶柱中发生分子的扩散和吸附/排斥作用,不同组分因差异而逐渐分离。

4. 缓冲液的加入与洗脱根据需要,逐渐加入一定体积的洗脱缓冲液,通过调整洗脱缓冲液的组成和浓度,使目标分子从凝胶柱上洗脱下来。

洗脱过程中,可以利用不同组分在凝胶柱中的吸附/排斥特性来实现分离纯化。

凝胶柱层析的洗脱缓冲液通常是在平衡缓冲液的基础上,通过调整pH值、离子浓度、缓冲剂浓度等参数来实现。

常用的洗脱缓冲液包括梯度洗脱和逐步洗脱等方法。

5. 收集分离纯化的样品通过洗脱,将目标物质从凝胶柱上洗脱下来,可以收集到分离纯化后的样品。

收集的样品可以进行后续的实验分析、储存或进一步纯化。

凝胶柱层析操作中需要注意的事项:1. 凝胶柱的选择根据待纯化样品的性质和分子大小,选择合适的凝胶柱类型和尺寸。

常见的凝胶柱类型包括聚丙烯酰胺凝胶、超大孔凝胶、琼脂糖凝胶等。

2. 缓冲液的选择根据待纯化样品的特性,选择适当的缓冲液,确保样品在平衡、层析和洗脱过程中的稳定性。

常用的缓冲液有Tris-HCl、PBS等。

3. 流速的控制凝胶柱层析过程中,要控制好流速,以避免分子在凝胶柱中过快通过,影响分离效果。

流速的选择应根据试剂和样品的性质进行调节。

4. 洗脱缓冲液的选择需要根据目标分子的特性选择合适的洗脱缓冲液,确保洗脱效果和分离纯化效果的最大化。

葡聚糖凝胶柱(sephadex column)使用及注意事项(1)

葡聚糖凝胶柱(sephadex column)使用及注意事项(1)

葡聚糖凝胶柱(sephadex column)使用及注意事项(1)1 Sephadex G型葡聚糖凝胶只适合在水中使用,Sephadex G-25羟丙化后就是Sephadex LH-20。

其既有分子筛作用,在由极性与非极性溶剂组成的溶剂中还有反相层析效果。

虽然价位很高,但由于性能颇佳,可再生利用,所以倍受亲睐。

此外上柱样品损失很少,对处理小样品较好,这也是我们实验室常用的原因之一。

2 Sephadex LH20 的原理。

Sephadex LH20的分离原理主要有两方面:以凝胶过滤作用为主,兼具反相分配的作用(在反相溶剂中)。

因为凝胶过滤作用,所以大分子的化合物保留弱,先被洗脱下来,小分子的化合物保留强,最后出柱。

如果使用反相溶剂洗脱, Sephadex LH20对化合物还起反相分配的作用,所以极性大的化合物保留弱,先被洗脱下来,极性小的化合物保留强,后出柱。

如果使用正相溶剂洗脱,这主要靠凝胶过滤作用来分离。

3 Sephadex LH20 洗脱溶剂。

看完第2点后,就应该清楚Sephadex LH20 洗脱溶剂因分为两类:反相和正相两种。

用得最多的是反相溶剂洗脱,以甲醇--水系统最为常见,先用水,逐渐增加甲醇比例,最后用100%甲醇冲柱。

正相系统以氯仿--甲醇最为常见,先用50%氯仿--甲醇,逐渐增加甲醇比例,最后用100%甲醇冲柱。

4 Sephadex LH20 样品的处理和洗脱溶剂的选择。

如果样品极性大,这选用反相溶剂洗脱(甲醇--水),样品用最少体积的甲醇--水(尽可能甲醇少一些)溶解,过滤后,湿法上样(一定要滤喔!要是把 Sephadex LH20 堵啦,就得将Sephadex LH20的柱头部分弃去,很心痛呀)。

如果样品极性小,这选用正相溶剂洗脱(氯仿--甲醇),样品用最少体积的氯仿--甲醇溶解,过滤后,湿法上样。

5 Sephadex LH-20的步骤。

(1) 选择条件:梯度洗脱在Sephadex使用中并不象在正相柱层析中那么重要。

凝胶柱使用注意事项

凝胶柱使用注意事项

使用注意事项:色谱柱在使用过程中主要应该注意的是:1、每根色谱柱都有一定的压力范围(说明书有说明),一般要在合适的压力下进行分析使用。

2、色谱柱在制作过程中是在一定的压力下按一定的方向添装的,因此要求在使用时要按照规定的方向进行连接。

如果不小心装反了也不用着急,一般没有超压使用应该影响不是很大。

但如果一直使用了很长时间如半年或1-2年,建议你就一直这样使用下去。

3、分析样品和流动相一定要过滤干净,不要让对柱有害的物质通过色谱柱。

4、增加一根保护柱或柱前保护对分析柱是有好处的。

5、色谱柱能不能反冲,在第2中提到了一点,一般咨询厂家时都会告诉你不能反冲,主要是担心反冲会使柱中的填料松散,那样整根柱子就报废了。

这一点应该很好理解,就是在一定压力一定方向将填料填充压紧,如果反向冲操作不当很容易就会使原来压紧的填料松散开,这是无法弥补的损坏。

但在具体使用中,就我所知可以在压力低一些,也就是流量小一些的条件下进行反冲,只要没有影响到柱内的填料,将堵塞的物质冲出可以有效降低系统压力,改善柱效。

应用:凝胶色谱柱主要进行大分子样品分子量与分子量分布的检测,如果样品分子量差异较大,应该也可以进行分离。

这类样品可以作为宽标的标准样品进行标准曲线的建立。

另外,凝胶色谱柱检测的样品有油性的高分子物质,如树脂类等,还有水溶性的高分子物质如糖类等。

对于不同厂家的色谱柱要说好坏之分,我认为和以上很多内容都有关系,样品是否干净,流动相是否干净,人员有没有误操作,有没有保护柱,每天工作量大小等很多影响因素。

总体来说应该差不多。

凝胶色谱柱(水性)的保养与保存:凝胶色谱柱需要注意防止微生物的生长,被微生物污染后的色谱柱将无法重现原来的分离效果与柱效,严重会使凝胶色谱柱报废。

为了抑制微生物的生长,可以使用低温保存。

值得注意的是温度不能过低,以免冻结,为了不冻结可以提高保存时介质的离子强度。

常用的保存抑菌剂有:0.02%叠氮钠、0.002%洗必泰(hibitane,双氯苯双胍己烷)、0.01% -0.02%三氯丁醇、0.1mol/l氢氧化钠。

凝胶色谱柱的使用

凝胶色谱柱的使用

凝胶色谱柱的使用一、凝胶色谱柱的使用原理凝胶色谱柱的分离基于分子在柱中的扩散速率差异。

凝胶柱独特的孔隙结构可以使得较小的分子扩散速度更快,从而在柱中落后于分子较大的组分。

分离效果主要依赖于分子与凝胶孔隙的相互作用力,如尺寸排阻作用、电荷作用或亲疏水作用。

根据分子的大小、形状和性质,可以选择不同类型的凝胶色谱柱。

二、凝胶色谱柱的类型1. 托尔伯特柱(Tskgel):是一种常见的高效凝胶色谱柱,适用于生物大分子的分离和纯化。

根据分子的大小选择不同的托尔伯特柱,包括S、M和G三个系列,具有不同的孔径和分离范围。

2. 超滤柱(Sephacryl):适用于分子量小于2×10^7道尔顿的生物大分子的分离和纯化。

超滤柱具有较大的孔径,可以快速分离高分子量的物质。

3. 离子交换柱(DEAE Sepharose、CM Sepharose):用于根据分子电荷选择或分离带有不同电荷的生物大分子。

正离子交换柱(DEAE Sepharose)适用于弱酸的分子,而负离子交换柱(CM Sepharose)适用于弱碱的分子。

4. 亲和层析柱(Protein A、G、L Sepharose):利用生物大分子与固定在凝胶上的特定结合剂之间的亲和作用进行分离。

常用的亲和层析柱包括Protein A、G和L Sepharose,用于分离抗体或蛋白质。

三、凝胶色谱柱的优缺点1.分离效果好:凝胶柱的孔隙结构可以有效分离不同大小和性质的分子,保证高分离效率和纯度。

2.操作简便:凝胶柱操作相对简单,无需复杂的设备和耗时的准备工作。

3.适用广泛:凝胶柱适用于各种生物大分子的分离和纯化,如蛋白质、抗体、核酸等。

1.分离速度较慢:由于分子在凝胶柱中的扩散速率较慢,分离过程相对缓慢,需要较长的操作时间。

2.不能分离具有相似大小和性质的分子:如果要分离具有相似大小和性质的分子,凝胶柱的分离效果会较差。

四、凝胶色谱柱的实验操作步骤1.准备工作:如准备所需样品、试剂和凝胶柱。

凝胶Sephadex LH-20使用方法及注意事项

凝胶Sephadex LH-20使用方法及注意事项

凝胶使用方法及注意事项1原理Sephadex LH-20的分离原理主要有两方面:以凝胶过滤作用为主,兼具反相分配的作用(在反相溶剂中)。

因为凝胶过滤作用,所以大分子的化合物保留弱,先被洗脱下来,小分子的化合物保留强,最后出柱。

如果使用反相溶剂洗脱, Sephadex LH-20对化合物还起反相分配的作用,所以极性大的化合物保留弱,先被洗脱下来,极性小的化合物保留强,后出柱。

如果使用正相溶剂洗脱,这主要靠凝胶过滤作用来分离。

2.前处理及装柱Sephadex LH-20在使用前必须进行溶胀,溶胀过程中必须避免过分搅拌,否则会破坏球形胶粒。

(1)室温下,将凝胶溶胀于层析液(一般为甲醇)中至少三小时(2)使溶胀胶体积沉淀后占总体积的75%,上层溶剂占25%凝胶悬浮液黏度要适宜A.太稠会在搅拌时产生气泡;太稀会导致装柱时沉降时间长,加凝胶悬浮液的次数增加;B.将凝胶悬浮液静止后所得上清液弃去,保留高于凝胶液面约1 cm的液体即可;C 装柱混悬液的浓度以流动性好,搅拌阻力小为宜。

(3)装柱的要点A 装柱前,先在色谱柱中加入约1/4柱高的液体(溶胀时所用的试剂);B 装柱时,将下端活塞打开,流速尽量大,但要保证小于凝胶沉降速度,否则会干柱;C将凝胶悬浮液搅拌均匀,以漏斗倒入柱子中即可;3.流动相1.分子筛作用,常用的是甲醇、甲醇+氯仿混合溶剂。

甲醇:氯仿一般为1:1左右,切不可用氯仿做为流动相!氯仿比重大,用单纯的氯仿做流动相,填料将浮起来,严重影响分离效果!!2.反相分配作用,常用的是甲醇/水,比例可以根据实际情况进行调整,也可以是梯度洗脱(先用水,逐渐增加甲醇比例,最后用100%甲醇冲柱)4.样品的处理及洗脱过程(1).最重要的一点:用尽可能少的溶剂溶解样品,样品可以很浓。

如果溶解体积很大,一定要先进行浓缩,否则基本没有多大的分离效果。

上样体积一般为柱体积的1%~5%。

(2).很重要的一点:尽可能用起始洗脱溶剂溶解样品(很多情况下样品并不能在起始溶剂中很好地溶解)。

葡聚糖凝胶柱的使用方法

葡聚糖凝胶柱的使用方法

葡聚糖凝胶柱的使用方法:(1) 预处理称取Sephadex G-25(50-100目)约5g,加入蒸馏水100ml,置室温下3h进行溶胀。

(2) 装柱凝胶层析柱的直径与柱长之比一般为1:15。

柱的底部用装有细玻璃管的橡皮塞塞紧,用洗净的玻璃丝(约200目尼龙布)垫底或购买类似规格的商品柱。

然后将柱垂直安装好,先加入1/3柱体积蒸馏水,接着将溶胀好的凝胶边搅匀边连续装入,使它们在柱内自然沉降。

同时大开下口慢速流出蒸馏水。

装柱后的凝胶必须均匀,不能有气泡或明显条纹。

否则,必须到出重装,装好后,用蒸馏水平衡2-3h即可加样品分离。

(3) 加样加样前,首先把柱内凝胶上面多余的蒸馏水放出,直到柱内液面与凝胶表面相齐(或留一极薄液层)为止。

然后,由柱的上端加水解液2ml,注意不要让溶液把凝胶冲松浮起,加完样品后,打开下口缓慢放出液体至液面与凝胶面相齐,再用少量蒸馏水冲洗原来盛样品的容器2-3次,待全部进入层析柱后,即可进行洗脱。

(4) 洗脱与收集洗脱时,用蒸馏水作洗脱剂,并且要连续不断地进行,使凝胶柱上端保持一定的液层,防止凝胶柱表面的液体流干。

本实验洗脱液流出的速度应控制在0.8-1.0ml/min。

洗脱液的收集采用分管连续顺序收集,每管收集3ml,共收集10管。

据经验,4或5号管核苷酸浓度最大,可作为层析鉴定的样品液。

但因层析柱长度的差异,管号会有变化,必要时可用紫外检测A260nm,找出浓度最大的管号。

(5) 凝胶的再生和回收凝胶柱使用一次后,必须反冲疏松一次,平衡后再使用。

若使用数次,就需要再生处理。

用0.1mol/L NaOH-0.5mol/L NaCl溶液浸泡,然后用蒸馏水洗至中性备用。

若实验完毕,将再生后的凝胶在布氏漏斗上用蒸馏水洗涤抽干,再用95%乙醇洗两次,在60℃烘箱中烘干,回收保存。

实验五. 葡聚糖凝胶层析【实验目的】1.掌握葡聚糖凝胶的特性及凝胶层析的原理。

2.学习葡聚糖凝胶层析的基本操作技术。

葡聚糖凝胶柱的使用方法

葡聚糖凝胶柱的使用方法

葡聚糖凝胶柱的使用方法一、准备工作:1.准备好葡聚糖凝胶柱和所需的缓冲液,如PBS(磷酸盐缓冲液)、TBS(三甲基氨基甲烷缓冲液)等。

2.将葡聚糖凝胶柱放入柱层析设备中,并根据设备的要求进行调整和固定。

3.预冲柱层析设备和葡聚糖凝胶柱,以去除可能的污染和杂质。

二、样品处理:1.将待纯化的生物大分子样品先进行预处理,如去除悬浮物、离心沉淀等。

2.将样品溶液以适当的缓冲液进行稀释,以达到最佳的样品浓度和适合葡聚糖凝胶柱操作的样品体积。

三、样品加载:1.将处理好的样品溶液缓慢地倒入柱顶,让样品从柱顶进入柱内。

避免产生气泡。

2.分子在葡聚糖凝胶柱中会根据分子大小和亲疏水性质的不同而发生分离和吸附。

较大分子会在柱上层析,而较小分子会透过凝胶层均匀流出。

因此,样品会在柱内逐渐被分离和纯化。

四、缓冲液流动:1.样品完成加载后,使用适当的缓冲液进行柱洗涤,以洗掉非特异结合的杂质。

2.缓冲液的选择应根据样品的性质而定,具体的选择和流动条件可以参考相关的文献或经验。

五、洗脱纯化:1.在用于洗脱纯化的缓冲液中,调整适当的条件以实现目标分子的洗脱。

如调整pH值、离子浓度、添加洗脱剂等。

2.根据分子的亲疏水性质,选择适当的缓冲液浓度梯度进行洗脱。

一般来说,较强亲疏水性的分子需要更高浓度的洗脱缓冲液。

六、收集洗脱液:1.将洗脱液通过柱底收集,收集不同时间点或不同分析目的的洗脱液。

2.根据实验需要,将洗脱液分为不同部分进行后续的分析或纯化处理。

七、重复使用:1.柱层析后,葡聚糖凝胶柱可以进行再生,以重复使用。

具体的再生方法可以参考柱层析设备和葡聚糖凝胶柱的说明书。

总结:葡聚糖凝胶柱是一种常用的生物大分子纯化方法,通过分子在柱内的分离和纯化来实现样品纯化的目的。

使用葡聚糖凝胶柱时,需要根据样品的特性和需求进行适当的样品处理、缓冲液选择、洗脱纯化条件的优化等。

如操作规范且配合适当的实验条件,葡聚糖凝胶柱可以快速、高效地纯化和富集生物大分子。

葡聚糖凝胶使用说明书

葡聚糖凝胶使用说明书

葡聚糖凝胶使用说明书一、产品名称产品名称:葡聚糖凝胶型号:Gel-300二、适用范围葡聚糖凝胶适用于生物实验室、化学实验室、制药厂等场所,用于分离、纯化蛋白质、核酸、肽类等生物分子。

三、使用方法1.准备葡聚糖凝胶和缓冲液。

根据所需的分离纯化效果,选择合适的缓冲液类型和浓度。

2.将缓冲液加入玻璃柱或层析柱中,直至填满整个柱子。

3.加入适量的葡聚糖凝胶,使其均匀分布在柱子的底部。

4.将样品溶液缓慢地加入柱子中,注意不要过快,以免影响分离效果。

5.收集洗脱液,并进行分析。

根据分离纯化的目的,可以采用不同的收集方法,如分步收集或集中收集。

6.在每次使用后,及时清洗和保存凝胶柱,以延长其使用寿命。

四、注意事项1.在使用葡聚糖凝胶前,应仔细阅读本说明书并遵守操作规程。

2.避免直接接触皮肤和眼睛,若不慎接触,应立即用清水冲洗。

3.使用过程中要避免剧烈震动或晃动,以免影响分离效果。

4.在使用前应确认所需缓冲液的种类和浓度是否合适,避免浪费和影响分离效果。

5.不要使用已经过期或变质的凝胶和缓冲液。

6.在储存和使用过程中要保持环境干燥,避免潮湿和高温。

7.使用后要及时清洗和保存凝胶柱,以免被污染和变质。

五、常见问题及解决方案1.分离效果不佳:可能是由于凝胶或缓冲液质量问题、操作不当等原因引起的。

解决方法是检查凝胶和缓冲液的质量和浓度是否合适,确认操作规程是否正确。

若问题仍未解决,建议更换新的凝胶柱。

2.柱子压力过高:可能是由于样品溶液中存在杂质或凝胶柱堵塞等原因引起的。

解决方法是检查样品溶液是否含有杂质,或者对样品进行预处理以去除杂质。

同时检查凝胶柱是否堵塞,若堵塞则进行清洗或更换新的凝胶柱。

3.柱子漏液:可能是由于接头松动或密封圈损坏等原因引起的。

解决方法是重新拧紧接头或更换新的密封圈。

若问题仍未解决,建议联系售后服务与支持部门寻求帮助。

4.洗脱液中含有杂质:可能是由于样品溶液中存在杂质或缓冲液不纯等原因引起的。

葡聚糖凝胶柱使用及注意事项

葡聚糖凝胶柱使用及注意事项

葡聚糖凝胶柱使用及注意事项葡聚糖凝胶柱是一种常用的色谱柱,其主要由多糖聚合物构成,具有多孔结构以及极高的比表面积。

葡聚糖凝胶柱在生物分离、蛋白质纯化以及分析等方面有重要的应用。

下面将介绍葡聚糖凝胶柱的使用方法以及注意事项,并列举了几种常见溶剂的溶胀系数作为参考。

使用方法:1.预处理:新柱使用前需进行预处理。

首先,在使用前用适当的缓冲液再生柱子,一般推荐使用PBS缓冲液进行再生。

其次,用去离子水进行洗脱,去除缓冲液中的离子。

2.样品准备:准备好带有样品的溶液,可以是蛋白质溶液、核酸溶液或者其他需要分离的溶液。

3.进样:将样品溶液注入到柱子中,可以使用曲线尖管或者注射器进行。

4.溶剂流动:使用适当的流动缓冲液进行柱子的着色,常用的缓冲液有PBS缓冲液、甲醇和乙醇。

5.收集分离的组分:通过收集分离的组分,可以进行后续的实验操作或者分析。

注意事项:1.柱子的平衡:在使用柱子前,将柱子放入合适的缓冲液中,进行平衡处理,通常需要约30分钟。

2.柱子的保管:使用完毕后,需将柱子用适当的缓冲液保存,避免干燥。

3.柱子的温度:柱子的运行温度一般在室温下进行,避免过高温度的使用,以免影响柱子的性能。

4.溶液选择:在选择适当的缓冲液时,应根据样品的性质以及需求进行选择,不同的缓冲液对分离的效果会有影响。

5.柱子的清洗:使用完毕后的柱子需要进行彻底的清洗工作,尤其是对于经常使用的柱子,清洗工作要做得彻底。

下面是几种常见溶剂的溶胀系数参考值:1.水:溶胀系数为1,对于葡聚糖凝胶柱来说,水是适用的溶剂。

2.硫酸:溶胀系数为0.57,硫酸能够完全渗透葡聚糖凝胶柱。

3.乙醇:溶胀系数为0.44,适量的乙醇可以使用,但过高浓度的乙醇可能会影响柱子的性能。

4.甲醇:溶胀系数为0.65,甲醇也可以使用,但同样需要注意控制浓度。

总结:葡聚糖凝胶柱是一种常见的色谱柱,具有广泛的应用。

在使用葡聚糖凝胶柱时,需进行适当的处理以及注意事项,以保证柱子的性能和寿命。

葡聚糖凝胶柱使用及注意事项(包含各种溶剂的溶胀系数)

葡聚糖凝胶柱使用及注意事项(包含各种溶剂的溶胀系数)

葡聚糖凝胶柱使用及注意事项1 Sephadex G型葡聚糖凝胶只适合在水中使用,Sephadex G-25羟丙化后就是Sephadex LH-20。

其既有分子筛作用,在由极性与非极性溶剂组成的溶剂中还有反相层析效果。

虽然价位很高,但由于性能颇佳,可再生利用,所以倍受亲睐。

此外上柱样品损失很少,对处理小样品较好,这也是我们实验室常用的原因之一。

2 Sephadex LH20 的原理。

Sephadex LH20的分离原理主要有两方面:以凝胶过滤作用为主,兼具反相分配的作用(在反相溶剂中)。

因为凝胶过滤作用,所以大分子的化合物保留弱,先被洗脱下来,小分子的化合物保留强,最后出柱。

如果使用反相溶剂洗脱,Sephadex LH20对化合物还起反相分配的作用,所以极性大的化合物保留弱,先被洗脱下来,极性小的化合物保留强,后出柱。

如果使用正相溶剂洗脱,这主要靠凝胶过滤作用来分离。

3 Sephadex LH20 洗脱溶剂。

看完第2点后,就应该清楚Sephadex LH20 洗脱溶剂因分为两类:反相和正相两种。

用得最多的是反相溶剂洗脱,以甲醇--水系统最为常见,先用水,逐渐增加甲醇比例,最后用100%甲醇冲柱。

正相系统以氯仿--甲醇最为常见,先用50%氯仿--甲醇,逐渐增加甲醇比例,最后用100%甲醇冲柱。

4 Sephadex LH20 样品的处理和洗脱溶剂的选择。

如果样品极性大,这选用反相溶剂洗脱(甲醇--水),样品用最少体积的甲醇--水(尽可能甲醇少一些)溶解,过滤后,湿法上样(一定要滤喔!要是把Sephadex LH20 堵啦,就得将Sephadex LH20 的柱头部分弃去,很心痛呀)。

如果样品极性小,这选用正相溶剂洗脱(氯仿--甲醇),样品用最少体积的氯仿--甲醇溶解,过滤后,湿法上样。

5 Sephadex LH-20的步骤。

(1) 选择条件:梯度洗脱在Sephadex使用中并不象在正相柱层析中那么重要。

gpc 凝胶色谱柱 反冲

gpc 凝胶色谱柱 反冲

gpc 凝胶色谱柱反冲
GPC(凝胶渗透色谱法)凝胶色谱柱是一种用于分析高分子样品的有效工具。

在使用GPC
凝胶色谱柱时,反冲(冲洗)是一个重要的步骤,其主要目的是清除残留的样品和溶剂,以保证色谱柱的稳定性和下一次分析的准确性。

以下是关于GPC凝胶色谱柱反冲的一些建议:
1. 选择合适的溶剂:反冲时,应选用与样品溶剂相容的溶剂,以避免对色谱柱造成损害。

常见的反冲溶剂有正己烷、庚烷、甲苯等。

2. 反冲流速:反冲流速应适当,不宜过快。

通常建议的反冲流速为0.5-1mL/min,具
体可根据色谱柱的尺寸和实验室条件进行调整。

3. 反冲时间:反冲时间需要足够长,以确保色谱柱内的残留样品和溶剂被有效清除。

一般建议的反冲时间为10-30分钟,也可以根据实际情况进行调整。

4. 循环次数:为了确保色谱柱彻底清洁,可以进行多次反冲。

一般建议的反冲次数为
3-5次,也可根据需要进行更多次的反冲。

5. 观察色谱柱状态:在反冲过程中,应密切观察色谱柱的状态。

如果发现色谱柱出现压力波动、基线不稳等情况,可能需要延长反冲时间或增加反冲次数。

6. 储藏条件:反冲完成后,应将色谱柱妥善保存,以延长其使用寿命。

色谱柱应存放在密封容器中,并存放在干燥、避光的环境中。

总之,GPC凝胶色谱柱反冲是一个关键步骤,正确地进行反冲可以确保色谱柱的稳定性和
分析结果的准确性。

在实际操作中,需要根据样品和色谱柱的实际情况,选择合适的溶剂、流速、时间和次数等参数。

凝胶渗透色谱(GPC)、凝胶色谱设备安全操作规定

凝胶渗透色谱(GPC)、凝胶色谱设备安全操作规定

凝胶渗透色谱(GPC)凝胶渗透色谱(GPC)又称凝胶色谱,是高分子化合物的分子量测定和分布分析的重要方法之一。

GPC是一种以凝胶过滤为基础的分离技术,通过溶液中高分子量化合物在凝胶柱的过滤作用下发生分离和分子量分布测定。

GPC是一种广泛使用的技术,涉及到工业、生产等多个领域,因此设备的安全操作至关重要。

下面介绍凝胶色谱设备的操作规定。

设备安全操作规定一、设备安装1.在设备安装前,应仔细阅读设备的说明书,并根据说明进行安装。

2.安装地点应选择平稳、通风、无尘、无环境振动和电磁干扰的地方。

3.在安装凝胶色谱柱时,切勿使柱子接触到有机溶剂,以免磨损和污染。

4.在连接系统管路时,要求密封性好,避免泄漏和外界污染。

二、操作前准备1.确认设备电源、水源和气源等是否正常,并根据实际需要进行调整和适当调节。

2.准备好实验所需试剂、溶剂、标准品等,并按要求进行标记和分类。

3.检查柱子封头是否紧固,柱温控制是否正常,出样口和检测器设备是否连接正常。

三、样品准备1.样品需先过滤,去掉杂质和颗粒,然后进行适当的稀释处理,以避免过高的浓度造成的毛刺。

2.样品的溶剂应与流动相相同,以避免对流动相造成干扰和影响。

3.在进行样品预处理和进样前,必须先清洗进样器和采样针,以避免样品交叉污染和干扰。

四、操作过程中的注意事项1.注意保持操作环境干净,避免灰尘、污染物等杂质进入柱子和系统中。

2.切勿突然关闭机器或脱离电源,应按照说明书要求进行操作,避免对设备和数据造成损伤和误差。

3.在操作过程中,随时监测输出信号,注意记录相关的参数和数据,便于后期的分析和处理。

4.如果设备出现异常情况,应立即停止操作,寻找问题并解决,以免对实验数据造成影响和误差。

总结凝胶渗透色谱是一种常用的高分子量分析技术,应用广泛。

在进行实验操作时,设备的安全是至关重要的。

在操作过程中,我们需要仔细阅读说明书,按要求进行设备安装和调试,准备好富有经验的工作人员,保持设备和操作环境的干净和整洁,随时注意操作中的细节注意事项。

凝胶色谱柱使用注意事项

凝胶色谱柱使用注意事项

凝胶色谱柱使用注意事项凝胶色谱柱是生物化学实验中常用的一种方法,其主要使用于蛋白质、核酸、多糖等化合物的分离和纯化。

然而,凝胶色谱柱的使用过程中仍需注意一些问题,以确保实验结果的准确性和稳定性。

下面将按照问题列表依次介绍凝胶色谱柱的使用注意事项。

【1. 色谱柱的储存】在使用凝胶色谱柱前,必须保证其储存的干燥和洁净。

比如对于带有减量剂成分的柱,应该避免暴露在湿气较大的环境中;而对于糖胶色谱柱,应该防止被细菌和霉菌污染。

在使用前应该对色谱柱进行正确的保管和管理。

【2. 样品的处理】准确处理样品是保证结果准确的前提。

首先需要确保样品的状态正确,如果有结晶、混浊或颗粒杂质,应该先进行适当的处理。

其次,在蛋白质样品使用中,可能会遇到问题如如酶降解,除了加入酶抑制剂外,还需要控制样品的温度和pH值。

对于高浓度样品,应该进行稀释后再进行柱层析来降低背景干扰。

【3. 流动相的控制】流动相的选择具有重要的影响。

一定要选择合适的流动相,要充分考虑流速和压力,避免使用过量的流动相来提高流速,导致柱管的承压能力不足,影响分离效果。

对于柱管中可能存在的空隙,需要随时检测,及时调节流速。

【4. 光谱记录】凝胶色谱柱的流量柱同时还要配合光谱监测,以便数据的记录和定量计算。

在进行光谱记录时,需要注意波长的选择、曲线的测量和记录等方面。

【5. 柱层析的终止和柱存储】凝胶色谱柱的使用在实验结束后应该及时终止。

终止之后,需要遵循正确的柱洗、储存、保养等方面的注意事项,以确保凝胶色谱柱能被正确地使用。

总之,凝胶色谱柱在生物化学实验中是不可或缺的手段。

以上介绍的几个问题是在使用凝胶色谱柱时需要特别注意的问题,希望读者能展开研究并在实验中加以实践。

这样一来,不但可以提高实验准确率,同时也可以为一系列医学、生物化学领域工作的顺利进行奠定基础。

凝胶柱使用注意事项

凝胶柱使用注意事项

凝胶柱使用注意事项凝胶柱是一种常用的分离技术工具,广泛应用于蛋白质分离、核酸分离和多肽分析等领域。

为了保证凝胶柱的有效运用和延长其使用寿命,有一些注意事项需要特别注意。

以下是凝胶柱使用的注意事项:1.避免挤压:在操作凝胶柱时,应尽量避免对凝胶柱进行挤压。

凝胶柱在运输和贮存中可能受到压力,如果在操作时再次受到挤压,可能会导致凝胶压缩、破裂甚至变形,从而影响分离效果。

2.预先处理:在使用凝胶柱之前,应按照要求进行预先处理。

对于一些凝胶柱,需要先进行平衡处理,以使凝胶膜充分吸水,并排除其中的空气。

对于一些凝胶柱,还需要进行酶处理或活化处理等。

3.使用适当的缓冲液:在使用凝胶柱时,应根据实验要求选择适当的缓冲液。

不同的凝胶柱适用于不同的缓冲液体系,如肌酸盐缓冲液、磷酸盐缓冲液等。

选择合适的缓冲液可以提高分离效果,避免样品在分离过程中的蛋白酶降解或其他影响。

4.控制流速:在使用凝胶柱时,应控制好流速,避免过快或过慢。

如果流速过快,可能会导致样品不能完全与凝胶膜发生相互作用,从而影响分离效果;如果流速过慢,可能会造成样品在柱中停滞时间过长,导致其它成分的损失。

5.注意溶液质量:在使用凝胶柱时,应注意溶液的质量。

溶液中应去除空气泡,并使用无尘或无菌操作。

特别是在分离蛋白质等敏感样品时,要确保溶液的质量和纯度,以避免潜在的干扰因素。

6.合理的保存和清洁:在使用凝胶柱之后,应及时清洗和保存。

清洗时可以用纯水或适当的缓冲液进行冲洗,不同的凝胶柱可能需要不同的清洁方法。

在保存时,应将凝胶柱放置在透气性好的容器中,避免阳光直射和高温,防止凝胶干燥和老化。

7.根据要求进行校正:凝胶柱在使用一段时间后,可能会出现一些效果的变化,如分辨率下降、分离效果变差等。

在这种情况下,应根据要求进行校正,如更换凝胶、调整流速、更换缓冲液等。

8.注意安全操作:在凝胶柱使用过程中,应注意安全操作。

避免接触有毒物品和有害溶液,戴好手套并佩戴适当的防护设备。

凝胶层析柱最适流速

凝胶层析柱最适流速

凝胶层析柱(gel filtration column)是一种分离生物大分子的常用方法,其中凝胶通常是一种多孔的介质,通过凝胶的孔径大小来实现生物大分子的分离。

流速对凝胶层析的效果有很大的影响,因为适当的流速有助于获得高分辨率和较好的分离效果。

最适流速通常取决于使用的凝胶和生物大分子的性质。

一般而言,较大的生物分子需要较慢的流速,以便在凝胶孔径间进行更多的扩散,实现更好的分离。

相反,较小的生物分子则可以在较快的流速下获得良好的分离。

通常,流速的选择应基于以下几个因素:
1. 生物大分子的大小:较大的分子需要较慢的流速,而较小的分子则可以在较快的流速下进行分离。

2. 凝胶的孔径:孔径较大的凝胶通常适用于较大的生物分子,而孔径较小的凝胶适用于较小的生物分子。

3. 分离的目标:如果需要更高的分辨率和分离效果,则通常选择较慢的流速。

4. 样品的浓度:高浓度的样品可能需要较慢的流速,以确保足够的时间进行分离。

在使用凝胶层析柱时,通常需要进行一些实验性的优化步骤,以确定最适合特定条件的流速。

这可以通过在一系列流速下运行试验性样品来实现,然后评估分离效果和分辨率。

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使用注意事项:
色谱柱在使用过程中主要应该注意的是:
1、每根色谱柱都有一定的压力范围(说明书有说明),一般要在合适的压力下进行分析使用。

2、色谱柱在制作过程中是在一定的压力下按一定的方向添装的,因此要求在使用时要按照规定的方向进行连接。

如果不小心装反了也不用着急,一般没有超压使用应该影响不是很大。

但如果一直使用了很长时间如半年或1-2年,建议你就一直这样使用下去。

3、分析样品和流动相一定要过滤干净,不要让对柱有害的物质通过色谱柱。

4、增加一根保护柱或柱前保护对分析柱是有好处的。

5、色谱柱能不能反冲,在第2中提到了一点,一般咨询厂家时都会告诉你不能反冲,主要是担心反冲会使柱中的填料松散,那样整根柱子就报废了。

这一点应该很好理解,就是在一定压力一定方向将填料填充压紧,如果反向冲操作不当很容易就会使原来压紧的填料松散开,这是无法弥补的损坏。

但在具体使用中,就我所知可以在压力低一些,也就是流量小一些的条件下进行反冲,只要没有影响到柱内的填料,将堵塞的物质冲出可以有效降低系统压力,改善柱效。

应用:
凝胶色谱柱主要进行大分子样品分子量与分子量分布的检测,如果样品分子量差异较大,应该也可以进行分离。

这类样品可以作为宽标的标准样品进行标准曲线的建立。

另外,凝胶色谱柱检测的样品有油性的高分子物质,如树脂类等,还有水溶性的高分子物质如糖类等。

对于不同厂家的色谱柱要说好坏之分,我认为和以上很多内容都有关系,样品是否干净,流动相是否干净,人员有没有误操作,有没有保护柱,每天工作量大小等很多影响因素。

总体来说应该差不多。

凝胶色谱柱(水性)的保养与保存:
凝胶色谱柱需要注意防止微生物的生长,被微生物污染后的色谱柱将无法重现原来的分离效果与柱效,严重会使凝胶色谱柱报废。

为了抑制微生物的生长,可以使用低温保存。

值得注意的是温度不能过低,以免冻结,为了不冻结可以提高保存时介质的离子强度。

常用的保存抑菌剂有:0.02%叠氮钠、0.002%洗必泰(hibitane,双氯苯双胍己烷)、0.01% -0.02%三氯丁醇、0.1mol/l氢氧化钠。

也可以用一定量有机溶剂来保存,如20%乙醇。

值得注意的是,无论何种保护方式,都必须根据色谱柱的特点来进行。

液相色谱仪由高压液体泵、检测器及液相色谱柱等三部分组成,其中液相色谱柱的正确安装和使用,是液相色谱工作的关键;也是液相色谱工作者获得正确可靠的实验数据的必经之路。

一、液相色谱柱的安装:
1、液相色谱柱的结构:
a、空柱由柱接头、柱管及滤片组装而成。

柱接头采用低死体积结构,柱接头是两端螺纹组件,一端是为7/16英寸外螺纹,另一端是3/16英寸的内螺纹(国内外已规范化)。

7/16英寸外螺纹与1/4英寸柱管(Φ6.35mm)
连接,中间放置压坏用于密封。

3/16英寸的内螺纹与1/16英寸(Φ1.57mm)的连接管连接,中间也放置压环用于柱接头的密封。

为了尽量减少柱外死体积,在安装色谱柱时,用Φ1.57mm连接管通过空心螺钉压环后要尽量插到底,然后再拧紧空心螺钉。

压环被空心螺钉挤压变形后紧箍在连接管上(连接管通过压环后露出的管长度应严格控制在2.5mm长或其他固定尺寸)。

在两端柱接头内,柱管两端各放置一片不锈钢滤片(或滤网),用于封堵柱填料不被流动相冲出柱外而流失。

空柱各组件均为316#不锈钢材质,能耐受一般的溶剂作用。

但由于含氯化物的溶剂对其有一定的腐蚀性,故使用时要注意,柱及连接管内不能长时间存留此类溶剂,以避免腐蚀。

b、柱填料:
液相色谱柱的分离作用是在填料与流动相之间进行的,柱子的分类是依据填料类型而定。

正相柱:多以硅胶为柱填料。

根据外型可分为无定型和球型两种,其颗粒直径在3—10 µm 的范围内。

另一类正相填料是硅胶表面键合—CN,-NH2等官能团即所谓的键合相硅胶。

反相柱:主要是以硅胶为基质,在其表面键合十八烷基官能团(ODS)的非极性填料。

也有无定型和球型之分。

常用的其他的反相填料还有键合C8、C4、C2、苯基等,其颗粒粒径在3—10 µm之间。

c、使用0.45µm的过滤膜过滤除去微粒杂质。

2,色谱柱的安装:
a、拆开柱包装盒,确认色谱柱的类型、尺寸、出厂日期以及柱内贮存的溶剂。

b、拧下柱两端接头的密封堵头放回包装盒供备用。

c、按柱管上标示的流动相流向,将色谱柱的入口端通过连接管与进样阀出口相连接(如条件允许,建议在柱前使用保护柱);柱的出口与检测器连接。

连接管是外径为 1.57mm、内径为0.1-0.3mm的不锈钢管。

连接管的两端均有空心螺钉及密封用压环。

在接管时一定要设法降低柱外死体积。

连接管通过空心螺钉、压环后尽量用力插到底,然后顺时针拧紧空心螺钉,直到拧不动为止,再用扳手继续顺时针拧1/4-1/2圈,切记不要用力过大。

如色谱柱
2、流动相的配制:
液相色谱是样品组分在柱填料与流动相之间质量交换而达到分离的目的,因此要求流动相具备以下的特点:
a、流动相对样品具有一定的溶解能力,保证样品组分不会沉淀在柱中(或长时间保留在柱中)。

b、流动相具有一定惰性,与样品不产生化学反应(特殊情况除外)。

c、流动相的黏度要尽量小,以便在使用较长的分析柱时能得到好的分离效果;同时降低柱压降,延长液体泵的使用寿命(可运用提高温度的方法降低流动相的黏度)。

d、流动相的物化性质要与使用的检测器相适应。

如使用UV检测器,最好使用对紫外吸收较低的溶剂配制。

e、流动相沸点不要太低,否则容易产生气泡,导致实验无法进行。

f、在流动相配制好后,一定要进行脱气。

除去溶解在流动相中的微量气体既有利于检测,还可以防止流动相中的微量氧与样品发生作用。

3、流动相流速的选择:
因柱效是柱中流动相线性流速的函数,使用不同的流速可得到不同的柱效。

对于一根特定的色谱柱,要追求最佳柱效,最好使用最佳流速。

对内径为4.6mm的色谱柱,流速一般
选择1ml/min,对于内径为4.0mm柱,流速0.8ml/min为佳。

当选用最佳流速时,分析时间可能延长。

可采用改变流动相的洗涤强度的方法以缩短分析时间(如使用反相柱时,可适当增加甲醇或乙腈的含量)。

注意:
1.由于甲醇廉价,对于反相柱推荐使用甲醇体系(必须使用乙腈的场合除外)。

2.对于正相柱推荐使用沸程为30-60℃的石油醚或提纯后的己烷作流动相,没有提纯的己烷不得使用。

用水最好使用超纯水(电阻率大于18兆欧),去离子水及双蒸水中含有酚类杂质,有可能影响分析结果。

3.含水流动相最好在实验前配制,尤其是夏天使用缓冲溶液作为流动相不要过夜。

最好加入叠氮化钠,防止细菌生长。

4.流动相要求使用0.45 µm滤膜过滤,除去微粒杂质。

5.使用HPLC级溶剂配制流动相,使用合适的流动相可延长色谱柱的使用寿命,提高柱性能。

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