5株植物乳杆菌的分离鉴定及耐受性比较研究

合集下载
  1. 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
  2. 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
  3. 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。

基金项目:沈阳市科学技术计划项目(Y19-3-027)
作者简介:孙小涵(1991 )ꎬ女ꎬ辽宁省沈阳人ꎬ硕士ꎬ主要从事动物肠道微生物菌群的研究ꎮ
∗通讯作者:吕福军(1976 )ꎬ男ꎬ辽宁沈阳人ꎬ博士ꎬ主要从事动物营养和酶制剂㊁微生态制剂等功能性饲料添加剂的研究ꎮ
5株植物乳杆菌的分离鉴定及耐受性比较研究
孙小涵㊀孙洪浩㊀陈秀秀㊀吕福军∗
(辽宁波尔莱特农牧实业有限公司ꎬ辽宁沈阳㊀110127)
㊀㊀摘㊀要:本试验旨在分离出抗逆性强的乳杆菌ꎮ从仔猪肠道中分离出的5株乳杆菌ꎬ利用生化试验和16SrDNA基因序列分析的方法鉴定菌株ꎬ通过细菌生长㊁产酸性能㊁耐受性等相关试验ꎬ确定所鉴定菌株的益生特性ꎮ结果表明ꎬ5个菌株经鉴定为植物乳杆菌(Lactoba ̄cillusplantarumꎬLP)ꎬ分别命名为LP-01㊁LP-03㊁LP-04㊁LP-11和LP-28ꎮ药敏试验发现
5株菌株大多对细菌细胞壁抑制剂敏感ꎬ如青霉素㊁哌拉西林和氨苄西林ꎻ对酸有很好的耐受性ꎬ其中LP11在pH-2环境下表现出良好的生存能力ꎬ4小时活菌数仍提高12.95%ꎬ同时可以耐受0.3%胆汁ꎻ在人工胃肠液作用下ꎬLP11的存活率高达95%ꎬ其他菌株对人工胃肠液也有明显的耐受性ꎬLP01和LP28的存活率都在70%以上ꎮ综上所述ꎬ从猪肠道中分离得到了植物乳杆菌ꎬ并具有良好的益生菌特性ꎮ
关键词:植物乳杆菌ꎻ益生菌ꎻ抗逆性
IsolationandIdentificationof5StrainsofLactobacillusplantarum
andComparisonofTheirResistance
SunXiaohan㊀SunHonghao㊀ChenXiuxiu㊀LuFujun
(LiaoningPowerlightAgricultureandAnimalHusbandryIndustrialCo.ꎬ
LTD.ꎬUniversityꎬShenyangꎬLiaoningꎬ110127ꎬChina)Abstract:ThisstudyaimstoisolatetoLactobacilluswithstressresistance.Fivestrainsof
Lactobacilluswereisolatedfromswineintestineꎬwhichwereidentifiedbybiochemicalidentifica ̄tionand16SrDNAgenesequenceanalysis.Probioticpropertiesamongtheidentifiedspeciesweredeterminedthroughtheimplementationofseveraltestsrelatedwithbacterialgrowthꎬacidproduc ̄
tionꎬtolerance.TheresultsshowedthatfivestrainwereisolatedandidentifiedasLactobacillusplantarum1namedbyLP-01ꎬLP-03ꎬLP-04ꎬLP-11andLP-28.Mostofthemprovedtobesensitivetobacterialcell-wallinhibitorsi.e.penicillinꎬpiperacillinandampicillinasstudiedbydrugsensitivetest.Thesestrainsmanifestedprofoundtolerancetoacidic-stresswhereLP11ex ̄hibitedagoodsurvivalpatternatpH-2for4hꎬthenumberofbacteriumstillincreasedby12.
95%andtolerated0.3%bile.Afterartificialgastricjuiceandintestinaljuicetreatmentꎬthenumberofviablebacteriareachedmorethan95%.LP-01andLP-28displayedmarkedtoleranceagainst
trypsinasthecountdidnotdropbelow70%.IntheprocessofproductionandprocessingꎬLacto ̄bacillusplantarumwasisolatedfromswineintestineandwerefoundtohavegoodprobioticproper ̄ties.
KeyWords:Lactobacillusplantarumꎻprobioticꎻresistance
㊀㊀乳酸菌(LacticacidbacteriaꎬLAB)在自然界中分布广泛ꎬ具有物种多样性ꎬ其中大多数物种能够在胃肠消化过程中存活ꎬ是已被证实的有效益生菌ꎮ它们被作为发酵剂培养物ꎬ增强食品的风味和口感ꎮ目前ꎬ已有研究表明嗜酸乳杆菌㊁布氏乳杆菌㊁干酪乳杆菌㊁唾液乳杆菌等乳杆菌可以在人和动物胃肠道内定植ꎬ并有益于维持肠道健康ꎮ植物乳杆菌是能够定植在人和动物体内定植的菌种之一ꎬ已被广泛用于发酵工业[3]ꎬ被认为是能够改善肠道健康ꎬ预防炎症性肠病和胃肠道感染的重要益生菌[4]ꎬ特别是在乳糖不耐受和降低胆固醇方面具有重要作用ꎮMaragkoudakis等人还发现植物乳杆菌和鼠李糖乳杆菌对轮状病毒(RV)和传染性胃肠炎病毒(TGEV)具有抗病毒作用ꎮ
自2006年ꎬ欧盟禁止使用抗生素作为生长促进剂ꎬ许多益生菌被用于畜牧养殖ꎮ益生菌作为抗生素的替代品在促进生长方面发挥重要作用ꎬ不仅不会引起药物反应ꎬ而且可在胃肠道中定植对致病菌起到竞争排斥的作用[7]ꎮ乳杆菌作为哺乳动物正常肠道微生物的重要共生菌ꎬ在猪肠道菌群构建的早期阶段同样占主导地位ꎮ但大多数乳杆菌的活力极弱ꎬ它们只能在特定的环境中存活ꎬ一旦这些环境发生改变ꎬ其自身将会灭亡ꎬ在复杂的肠道微生物中无法长时间占据主导地位ꎮ植物乳杆菌在胃肠道系统中常常会伴随各种不利环境的胁迫ꎬ因此ꎬ通过体外试验ꎬ以研究植物乳杆菌在机体消化道的生存能力ꎬ以突出其益生菌潜力ꎬ发挥植物乳杆菌最大的益生效果具有重要意义ꎮ
1㊀材料与方法
1.1㊀材料
1.1.1㊀样品来源
仔猪肠道及新鲜粪便(法库康达生态农业有限公司)ꎮ
1.1.2㊀主要试剂
MRS肉汤培养基㊁MRS固体培养基㊁乳酸杆菌生化鉴定套盒购自北京陆桥技术股份有限公司ꎻ碳酸钙购自国药集团化学试剂有限公司ꎻ胆盐购自上海源叶生物科技有限公司ꎻ人工胃肠液购自北京雷根生物技术有限公司ꎻ乳酸(LD)测试盒购自南京建成生物工程研究所ꎮ
1.2㊀方法
1.2.1㊀富集
取5g样品与100mLMRS肉汤培养基中富集ꎬ37ħ培养36-48hꎮ
1.2.2㊀分离
取1mL富集的菌液置于10mLMRS肉汤培养基(pH3.0)中ꎬ37ħ培养12h后ꎬ取1mL置于10mL0.2%胆盐MRS肉汤培养基中ꎬ37ħ培养12hꎬ稀释后涂CaCO3MRS平板ꎬ挑选产酸能力强ꎬ生长快的菌落进行划线分离ꎮ1.2.3㊀菌种鉴定
将分离菌株接种于MRS肉汤培养基中ꎬ用37ħ培养18-24hꎬ进行形态学鉴定ꎮ根据«伯杰氏细菌鉴定手册»对筛选的菌株ꎬ用乳酸杆菌生化鉴定套盒进行生理生化鉴定及16SrDNA分子生物学鉴定ꎬ由华大基因科技有限公司进行菌种鉴定ꎮ将测序的结果在美国国家生物信息中心(NCBI)数据库中进行BLAST分析ꎬ采用MEGA5.0软件构建系统发育树ꎮ
1.2.4㊀植物乳杆菌的产酸速度和产酸能力测定将菌株按2%的接种量接种于200ml无菌MRS肉汤培养基中ꎬ37ħ培养ꎬ分别在0㊁4㊁8㊁12㊁16㊁20㊁24㊁28㊁32㊁36㊁40㊁44㊁48h处取样ꎬ测OD600值ꎬ并记录个时间段的pH值ꎬ48h测定乳酸浓度ꎬ每株菌做3个重复ꎮ乳酸的浓度用乳酸(LD)测试盒测定ꎮ
1.2.5㊀药敏试验
在MRS肉汤培养基中按2%接种己活化的菌种ꎬ传2代ꎬ取活化后的菌液进行耐药性试验ꎮ体外药敏性试验使用K-B纸片扩散法ꎬ吸取108CFU/mL的菌液200μL均匀涂布于固体MRS培养基上ꎬ待菌液被吸收后ꎬ将药敏纸片均匀贴在MRS固体培养基表面ꎬ37ħ培养ꎬ判定其耐药性ꎮ
1.2.6㊀耐酸试验pH
根据Maragkoudakis等人所描述的方法ꎬ将供试菌株接种于MRS肉汤培养基中ꎬ活化培养24-36hꎬ10000rpm离心10minꎬ收集菌体ꎮ用无菌PBS(pH-7.4)洗涤两次ꎬ获得菌体ꎮ将菌体用pH为2.5和6.4的MRS肉汤培养基进行重悬ꎬ37ħ培养ꎬ使用平板计数法在培养0h㊁4h活菌计数ꎬ计算存活率ꎮ
存活率(%)=(4h的活菌数/0h的活菌数)ˑ100
1.2.7㊀耐胆汁的试验
将培养好的菌液用PBS重悬ꎬ菌株按2%(108CFU/mL)接种到含0.3%和0.5%胆汁的MRS肉汤培养基中ꎬ37ħ培养5小时后ꎬ通过平板法记录5h前后活菌数ꎬ计算存活率ꎮ计算方法同1.2.6ꎮ1.2.8㊀耐人工胃肠液试验
离心㊁冲洗获得菌体ꎬ用等体积的人工动物胃液重悬菌体ꎬ模拟胃液的消化作用ꎬ37ħ80rpm培养4h后ꎬ把人工胃液离心ꎬ获取消化处理过后的菌体ꎬ随后用相同体积的人工动物肠液重悬ꎬ培养条件同胃液ꎬ过夜培养12hꎬ取样计活菌数ꎬ计算存活率ꎮ计算方法同1.2.6ꎮ
2㊀结果
2.1㊀菌种筛选及鉴定结果
从健康的仔猪肠道和新鲜粪便中共筛选出12株有溶钙圈菌落ꎬ形态学鉴定表明ꎬ有9株是革兰氏阳性杆菌ꎮ根据«伯杰氏细菌鉴定手册»对菌株进行生理生化试验鉴定ꎬ有5株符合植物乳杆菌生理生化特性ꎬ如表1ꎮ将5株菌株用16SrDNA序列扩增测序ꎬ序列用GenBank的BLAST进行比对ꎮ图1结果表明ꎬ这5株菌株均属植物乳杆菌属ꎬ与植物乳杆菌(LactobacillusplantarumꎬLp)有99%的相似性ꎮ分别命名为植物乳杆菌01(Lp01)ꎬ植物乳杆菌03(Lp03)ꎬ植物乳杆菌04(Lp04)ꎬ植物乳杆菌11(Lp11)ꎬ植物乳杆菌28(Lp28)ꎮ
表1㊀5株植物乳杆菌分离菌生化鉴定结果
菌株编号七叶苷纤维二糖麦芽糖甘露醇水杨苷山梨醇蔗糖棉子糖LP01+++++++dLP03++++++++LP04++++++++LP11+++++++dLP28++++++++㊀㊀注: + 90%菌株阳性ꎻ - 90%菌株阴性ꎻ d 11%-89%菌株阳性ꎮ
图1㊀5株植物乳杆菌16SrDNA基因系统进化树图2㊀5株植物乳杆菌的生长曲线及产酸速度的变化
2.2㊀产酸速度和产酸能力测定
由图2可见ꎬ5株植物乳杆菌生长速度和产酸无明显差异ꎬ从2-4h进入对数生长期ꎬ16-20h后开始趋于平稳生长ꎮ发酵液在初始阶段(0
~4小时)pH没有明显变化ꎬ从6h开始明显降
低ꎬ20-24h发酵液pH达到4.0左右ꎮ由表2可知ꎬLP28的产酸能力最高ꎬ培养48h乳酸含量可达88.31mmol/Lꎮ
表2㊀5株植物乳杆菌乳酸含量
菌株编号LP01LP03LP04LP11LP28乳酸(mmol/L)
47.17ʃ0.16
59.49ʃ0.45
69.59ʃ0.40
71.68ʃ0.48
88.31ʃ0.11
2.3㊀药敏试验
如表3所示ꎬ5株植物乳杆菌对新霉
素㊁庆大霉素㊁卡那霉素㊁丁胺卡那㊁杆菌肽
均有抗性ꎮ但对青霉素㊁土霉素㊁哌拉西林㊁氨苄西林㊁红霉素㊁头孢类等抗生素易感ꎮ
表3㊀5株植物乳杆菌的药敏试验结果
敏感度LP-28LP-01LP-03LP-04LP-11药品名称敏感度LP-28LP-01LP-03LP-04LP-11杆菌肽-----头孢呋辛++++++++++头孢他啶++++++++++头孢曲松+++++++++++++土霉素++++++++++头孢哌酮++++++++++++青霉素+++++++++++丁胺卡那-----苯唑西林++++++庆大霉素++++-氨苄西林+++++++++++++++卡那霉素-----羧苄西林+++++++++++++++新霉素+++++哌拉西林+++++++++++++++四环素++++++头孢氨苄++++++++++++多西霉素+++++++++++头孢唑啉+++++++++++++++米诺环素++++++++++++++头孢拉定
+++
++
+++
+++
++
红霉素
+++
+++
++
+++
+++
㊀㊀注:表中 - 表示不敏感ꎬ + 表示低敏ꎬ ++ 表示中敏ꎬ +++ 表示高敏ꎮ
2.4㊀耐酸试验
表4数据表明ꎬ5株菌株在pH-2下4
小时具有良好的生存能力ꎬ其中LP11在
pH2.0的酸性条件下生存能力最强ꎬ4h后仍保持在正常生长状态ꎬ活菌数提高12.
95%ꎮ
表4㊀5株植物乳杆菌耐酸试验结果(pH-2)
菌株编号LP01LP03LP04LP11LP28存活率pH-10.51%1.08%1.02%1.76%0.45%存活率pH-2
97.15%
82.81%
82.02%
112.95%
81.03%
2.5㊀耐胆汁试验
如表5所示ꎬ在0.3%胆汁中ꎬ5株植物乳杆
菌生长良好ꎬ这表明这些菌株对胆汁的具有一定
的耐受性ꎮLP11表现出较高的耐受性ꎬ在0.5%胆汁中ꎬ存活率可达58.94%ꎬ明显高于其他4株植物乳杆菌ꎮ
表5㊀5株植物乳杆菌耐胆汁试验结果
菌株编号
LP01
LP03
LP04
LP11
LP28
0.3%胆盐存活率66.54%58.09%57.74%79.06%60.81%0.5%胆盐存活率
31.76%
26.17%
0.03%
58.94%
28.05%
2.6㊀耐人工胃肠液试验胃肠道中的恶劣环境不仅是pH和胆盐等
因素造成的ꎬ胃肠液中各种消化酶ꎬ如胃蛋白酶㊁胰蛋白酶等ꎬ都对微生物有较强的抑制和致死作用ꎮ在体外模拟胃肠道实验ꎬ研究植物乳杆菌的生存能力ꎮ如表6所示ꎬ植物乳杆菌在胃液培养4h及肠液过夜处理后ꎬ活菌数虽有不同程度的下降ꎬ但各菌株对胃肠道的耐受能力很强ꎬ在胃肠道内能够一直保持较高的菌浓度ꎬ都在109CFU/m以上ꎬ可以在肠道内发挥作用ꎮ
表6㊀5株植物乳杆菌耐人工胃肠液试验结果
菌株编号进入胃液前
菌液活菌数
胃液处理4h后
菌液活菌数
胃液处理4h
后存活率
肠液过夜处理12h
菌液活菌数
肠液过夜处理
12h存活率
LP014.2ˑ1094.02ˑ10995.71%3.38ˑ10980.48%LP031.65ˑ10101.35ˑ101081.82%5.55ˑ10933.64%LP041.35ˑ10101.11ˑ101082.22%7.2ˑ10953.33%LP113.7ˑ1094.24ˑ109114.59%3.55ˑ10995.95%LP281.27ˑ10101.02ˑ10980.31%8.9ˑ10970.08%
3㊀讨论
本研究的重点是评价所筛选植物乳杆菌的一些益生菌属性ꎮ首先ꎬ根据乳杆菌的生化鉴定表明ꎬ5株植物乳杆菌均具有一定的生物活性ꎬ与植物乳杆菌同源性为99%ꎮ评价一个益生菌的基本标准之一是在不利条件下的生存潜力ꎬ我们对植物乳杆菌进行了体外试验ꎬ模拟猪的消化道内环境ꎬ研究植物乳杆菌在宿主的内环境的作用下的益生功能ꎮ
植物乳杆菌具有广泛的益生特性ꎬ可供开发利用成为新的益生菌发酵食品[9]ꎮ但益生菌在摄入后ꎬ必须要经受住胃的强酸性环境ꎬ以及消化酶的作用ꎬ及外来抗生素等物质的干扰ꎬ并在高浓度胆汁中存活ꎬ才能在肠道内定植发挥作用ꎬ这是益生菌在消化的初始阶段至关重要的ꎮ因此ꎬ一个有效的益生菌必须能够在酸性环境和高浓度的胆汁中生长[12]ꎮ通过药敏试验显示ꎬ植物乳杆菌对常用于细胞壁抑制剂的药物敏感ꎬ如青霉素㊁哌拉西林和氨苄西林等ꎬ同时对头孢类和红霉素也及其敏感ꎮLP01和LP11对新霉素㊁庆大霉素和卡那霉素等9种抗生素有抗性ꎬ也可作为植物乳杆菌候选菌株ꎮ
Wang等人[13]从断奶仔猪中分离到的植物乳杆菌的在pH-2时存活率迅速下降ꎬ但在pH-3时可以存活ꎮ我们在耐酸性试验中发现ꎬ5株植物乳杆菌对pH-1的酸性环境很敏感ꎬ几乎无法存活ꎮ但在pH-2时ꎬ4h后有较好的存活率ꎬ表明即使在禁食条件下ꎬ益生菌也有可从猪胃中成功转运到肠道ꎮ尤其LP11在pH-2的酸性条件下ꎬ不仅保持较好的活性ꎬ还可以保存生长特性ꎮ5株植物乳杆菌在pH-2时整个过程中存活率达到80%以上ꎬ表明有大量菌株有足够的机会到达肠道ꎬ以有效地发挥益生菌的作用ꎮ另一项类似的研究报告了30种乳杆菌ꎬ包括嗜酸乳杆菌㊁植物乳杆菌㊁副乳杆菌㊁鼠李糖杆菌ꎬ在
pH-3可维持3小时的活力ꎬ但在pH-1时仅一个小时菌株活力明显下降ꎮ还有一项类似的研究也表明ꎬ植物乳杆菌在pH-2和pH-3时在2-6小时内表现出良好的存活率ꎬ虽然随着培养时间的增加ꎬ数量略有减少ꎬ活菌数在pH-2下降到50%以下[14]ꎮ
胆汁耐受性是益生菌的另一个关键特性ꎬ因为它决定了益生菌在小肠中的生存能力ꎬ从而调节益生菌发挥功能作用[15]ꎮ植物乳杆菌能耐受高浓度胆汁表明其具有良好的益生菌特性ꎮ在我们的研究中发现0.3%和0.5%胆汁并没有完全抑制植物乳杆菌的生长ꎮ但与本研究一样ꎬ当胆汁盐浓度增加时ꎬ益生菌生物活力的逐渐下降[16]ꎮ造成这一现象的原因可能是益生菌与胆盐[17]结合所致ꎮ所以ꎬ为了维持益生菌在肠道内的活性ꎬ需要持续不断的给机体补充益生菌ꎬ以发挥其益生作用ꎮ
益生菌进入机体后ꎬ胃液及肠液都是益生菌顺利抵达肠道的阻碍ꎮ益生菌要到达肠道末端发挥益生功能ꎬ除了必须通过胃液的酸性环境ꎬ还要抵抗胃蛋白酶的作用ꎬ以及复杂的胃肠道环境ꎬ因此许多学者在益生菌的胃肠道抗逆性上做了大量研究ꎮ我们模拟胃肠道试验结果表明ꎬ有
4株植物乳杆菌在整个胃肠道消化期内可以保持50%以上的存活率ꎮLP11存活率达到95%以上ꎬ保证了益生菌在胃肠道转运过程中ꎬ它们的生长和存活将不受消化液的影响ꎮ由此可见ꎬLP-11在耐酸碱和消化液等抗逆性上ꎬ与其他4株植物乳杆菌相比ꎬ具有明显益生优势ꎬ更加适用微生态制剂的生产和应用ꎮ为了将益生菌候选菌株进一步用于商业应用ꎬ后面将进行体内研究ꎬ以了解它们在动物机体中的有益作用ꎮ
参考文献
[1]MantzouraniIꎬKazakosSꎬTerpouAꎬetal.PotentialoftheProbioticLactobacillusPlantarumATCC14917StraintoProduceFunctionalFermentedPomegranateJuice[J].Foodsꎬ2018ꎬ8(1):4-16.
[2]Sarmiento-RubianoLAꎬBergerBꎬMoineDꎬetal.CharacterizationofanovelLactobacillusspeciescloselyrelatedtoLactobacillusjohnsoniiusingacombinationofmolecularandcomparativegenomicsmethods[J].BMCgenomicsꎬ2010ꎬ11:504-520.
[3]RamliNꎬOmarSRꎬRamakrishnanSS.ToxicologicalassessmentofLactobacillusplantarumasaprobioticstrainindarkchocolate[J].FoodScienceandTech ̄nologyꎬ2012ꎬ13(2):250-257.
[4]DeVriesMCꎬVaughanEEꎬKleerebezemMꎬetal.Lac ̄tobacillusplantarum survivalꎬfunctionalandpotentialprobioticpropertiesinthehumanintestinaltract[J].In ̄ternationalDairyJournalꎬ2006ꎬ16(9):1018-1028. [5]YuZꎬZhangXꎬLiSꎬetal.EvaluationofprobioticpropertiesofLactobacillusplantarumstrainsisolatedfromChinesesauerkraut[J].Worldjournalofmicrobi ̄ology&biotechnologyꎬ2013ꎬ29(3):489-498. [6]MaragkoudakisPAꎬChingwaruWꎬGradisnikLꎬetal.Lacticacidbacteriaefficientlyprotecthumanandani ̄malintestinalepithelialandimmunecellsfromentericvirusinfection[J].Internationaljournaloffoodmicro ̄biologyꎬ2010ꎬ141:S91-S97.
[7]WangSDꎬYangLꎬTangXSꎬetal.Dietarysupple ̄mentationwithhigh-doseBacillussubtilisorLactoba ̄cillusreuterimodulatescellularandhumoralimmunitiesandimprovesperformanceinweanedpiglets[J].J
FoodAgricEnvironꎬ2011ꎬ9(2):181-187. [8]YeoSꎬLeeSꎬParkHꎬetal.Developmentofputativeprobioticsasfeedadditives:validationinaporcine-specificgastrointestinaltractmodel[J].Appliedmicro ̄biologyandbiotechnologyꎬ2016ꎬ100(23):10043-10054.
[9]ZagoMꎬFornasariMEꎬCarminatiDꎬetal.Character ̄izationandprobioticpotentialofLactobacillusplanta ̄rumstrainsisolatedfromcheeses[J].Foodmicrobiolo ̄gyꎬ2011ꎬ28(5):1033-1040.
[10]TurchiBꎬManciniSꎬFratiniFꎬetal.Preliminarye ̄valuationofprobioticpotentialofLactobacillusplanta ̄rumstrainsisolatedfromItalianfoodproducts[J].Worldjournalofmicrobiology&biotechnologyꎬ2013ꎬ29(10):1913-1922.
[11]RuXꎬZhangCCꎬYuanYHꎬetal.Bilesalthydro ̄laseactivityispresentinnonintestinallacticacidbacte ̄riaatanintermediatelevel[J].Appliedmicrobiologyandbiotechnologyꎬ2019ꎬ103(2):893-902.
[12]KaliAꎬSrirangarajSꎬCharlesPM.Acost-effectivecarbohydratefermentationtestforyeastusingmicrotitreplate[J].Indianjournalofmedicalmicrobiologyꎬ2015ꎬ33(2):293-295.
[13]JingWꎬHaifengJꎬDongyanZꎬetal.AssessmentofprobioticpropertiesofLactobacillusplantarumZLP001isolatedfromgastrointestinaltractofweaningpigs[J].AfricanJournalofBiotechnologyꎬ2011ꎬ10(54):11303-11308.
[14]MouradKꎬNour-EddineK.Invitropreselectioncrite ̄riaforprobioticLactobacillusplantarumstrainsoffer ̄mentedolivesorigin[J].IntJProbioticsPrebioticsꎬ2006ꎬ1(1):27-32.
[15]RuizLꎬMargollesAꎬSanchezB.BileresistancemechanismsinLactobacillusandBifidobacterium[J].Frontiersinmicrobiologyꎬ2013ꎬ4ꎬ396-403.
[16]KlayraungS.ProbioticPropertiesofLactobacilliIsola ̄tedfromThaiTraditionalFood[J].ScientiaPharma ̄ceuticaꎬ2008ꎬ76(3):485-503.
[17]PatelHMꎬPandiellaSSꎬWangRHꎬetal.Influ ̄enceofmaltꎬwheatꎬandbarleyextractsonthebiletol ̄eranceofselectedstrainsoflactobacilli[J].Foodmi ̄crobiologyꎬ2004ꎬ21(1):83-89.。

相关文档
最新文档