稳定细胞系建立学习

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收稿日期: 2 0 0 8 1 1 1 3 修回日期: 2 0 0 8 1 2 1 1 电子信箱: w e i h u l a i @l z u . e d u . c n 通讯作者,
置于 3 7℃、 5 %C O 当孔内贴壁细 2 的孵箱中培养过夜, 胞达到 9 0 %~ 9 5 %时进行转染。在加入脂质体包被的 D N A前 2h , 6孔板中细胞培养液换为无血清培养基继 e p G 2细胞孵育期间, 用p H7 . 2 续培养。在待转染的 H 的D M E M 分别将 4μ g 的p C I n e o m d r 1和 1 0 l 的脂质 ? ? μ 体( l i p o f e c t a m i n e ) 各稀释至 2 5 0 l , 轻柔混合后, 室温下 μ
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, 同时, 首次发现胰
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d r 1 / P g p 表达增高 岛素抵抗的肝癌细胞 m ?
。藉此, 本
研究将携带人类全长 m d r 1c D N A重组表达质粒 p C I ? n e o m d r 1转入人肝癌 H e p G 2细胞, 成功地筛选出高效、 ? e p G 2 / m d r 1 , 稳定且耐药机理明确的多药耐药细胞株 H 并测定了其生长曲线、 m d r 1m R N A和 P g p 的表达及 P ? ? g p 的功能等生物学特性, 为进一步研究肝癌细胞耐药 g p的关 机制及其逆转, 以及肝癌细胞胰岛素抵抗与 P ? 系提供理想的细胞模型。
1 材料与方法
1 . 1 材 料 1 . 1 . 1 重组质粒与细胞 人肝癌细胞株 H e p G 2细胞 由兰州大学医学实验中心保存, 携带有人类全长 m d r 1 C I n e o m d r 1由四川大学医学中心 c D N A的重组质粒 p ? ? 构建和惠赠。 1 . 1 . 2 试剂 L i p o f e c t T r a n s f e c t i o nR e a g e n t 、 质粒提取 2 3 ( R h 1 2 3 ) 、 低糖 试剂盒购自北京天根公司; 罗丹明 1 D M E M 培养 基 购 自 S i g m a公 司; 阿霉素( A d r i a m y c i n ,
中图分类号 Q 8 1 3 肝癌的综合治疗 中 化 疗 是 目 前 最 重 要 的 方 法 之 一, 但多药耐药现象的产生是影响其疗效的瓶颈
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A D M) 为 浙 江 海 正 药 业 股 份 有 限 公 司 产 品; T r i z o l 为 I n v i t r o g e n 公司产品; A M V 、 P C R 试剂盒、 S Y B RG r e e nI 两步法 R T P C R实时荧光定量试剂盒和 D L 2 0 0 0M a r k e r ? 购自 T a K a R a 公司; m d r 1 、 a c t i n 引物由 T a K a R a 公司合 β ? 成。其余试剂均为进口或国产分析纯。 1 . 2 方 法 1 . 2 . 1 p C I n e o m d r 1重组质粒的提取与纯化 用携带 ? ? 有人类全长 m d r 1c D N A 重组表达质粒 p C I n e o m d r 1转 ? ? 化感受态细胞 J M 1 0 9后, 涂布在含有氨苄青霉素的 L B 平板上, 挑取单个的阳性菌落接种于含有氨苄青霉素 的L B中, 震荡培养过夜。提取、 纯化质粒, 经P C R鉴定 为阳性, 并测定其浓度的质粒溶液置于 - 2 0 ℃备用。 1 . 2 . 2 H e p G 2 细胞的培养及 p C I n e o m d r 1 的转染 复苏 ? ? e p G 2 细胞转于含 1 0 %新生牛血清的低糖 D M E M完 后的 H 全培养基中, 在3 7 ℃、 5 %C O 、 饱和湿度条件下培养, 每周 2 传代 2 ~ 3 次, 取对数生长期的细胞用于试验。 转染前 1d , 取生长状态良好的 H e p G 2细胞, 常规 消化后, 用无抗生素的完全培养基稀释至浓度为 1×
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中国生物工程杂志 C h i n aB i o t e c h n o l o g y
V o l . 2 9N o . 52 0 0 9
静置 2 0 m i n , 形成脂质体 / D N A混合物后。按比例依次 加入 6孔板的相应孔内, 轻轻摇晃混匀后。于 3 7 ℃孵 育2 4h 后, 消化传代。 1 . 2 . 3 H e p G 2 / m d r 1细胞的筛选与传代 将上述转染 后的细胞消化传代于含 1 5 %血清的完全培养基中培养 2 4 h 后, 即转染后的第 2 d , 换为含有 1 2 0 0μ m o l / LG 4 1 8 的完全培养基中培养; 而转染后的第 3 d , 弃细胞培养 H7 . 2的 P B S洗 涤 2次 后, 加入 9 0 0μ m o l / L 液, 用p G 4 1 8完全培养基继续培养 4 d , 中间用同样的方法换液 d , 通过有限稀释法获取单克隆细 一次; 直至转染后第 7 胞, 在筛选培养基中 G 4 1 8的浓度降至正常培养时的维 持浓度, 即6 0 0μ m o l / L , 每隔 2 d更换培养液一次, 持续 筛选 2 0 d 时, 细胞开始稳定生长、 分裂。继续培养 3 d 以 便扩大细胞。 扩大培养后的细胞按照常规方法消化传代, 培养 4 1 8的终浓度为 6 0 0μ m o l / L ; 为促进转染细胞的 液中 G 生长, 在所用的培养液中均加入 2 5 % 经过滤处理的回 收培养液。为保持持续稳定的 G 4 1 8活性, 每隔 4 8 h更 e p G 2 / m d r 1细胞系, 换一次培养液。直至形成稳定的 H 取对数生长期细胞用于后续实验。 1 . 2 . 4 H e p G 2 / m d r 1细胞形态学观察及生长曲线测定 将 H e p G 2 / m d r 1和 H e p G 2细 胞 分 别 接 种 于 6孔 板 e p G 2 / m d r 1细胞 的 培 养 液 中 含 有 终 浓 度 为 中, 其中 H 6 0 0μ m o l / L的 G 4 1 8 , 待细胞完全贴壁, 开始正常的分 裂生长后, 在倒置相差显微镜( O l y m p u s I X 8 1 ) 下观察其 形态学的变化。 取生长状态良好的 H e p G 2 / m d r 1细胞和 H e p G 2细 胞, 接种于 9 6 孔板( C o s t a r ) 中, 培养 1d 后每 2 4 h 用M T T 法测定 5 7 0n m的吸光度值( A值) , 连续测 7d 。以培养 A值为纵坐标, 绘制其生长曲线。 时间为横坐标, 1 . 2 . 5 H e p G 2 / m d r 1细胞 P g p表达的检测 H e p G 2 / ? m d r 1细胞在培养液中 G 4 1 8的终浓度为 6 0 0μ m o l / L的 0代 时, 取对数生长期的 情况 下, 连续传代至第 2 H e p G 2 / m d r 1细胞和正常传代的 H e p G 2细胞, 分别常规 消化后收集细胞。用 p H 7 . 2的 P B S洗涤并稀释至 1× 1 0 个/ m l 单 细 胞 悬 液 后, 分 别 加 入 抗 P? g p抗 体 M R K 1 6 , 混匀, 室温下孵育 1 5m i n ; 1 0 0 0 r / m i n离心洗涤 1次后, 加入 R P E标记的羊抗鼠 I g G 2 a 单抗, 轻轻混匀 后室 温 下 避 光 孵 育 1 5m i n 。用 流 式 细 胞 仪 ( F C M, B e c k m a n C o u l t e r E p i c s X L ) 检测细胞 P g p蛋白表达阳 ? ? 性率和平均荧光强度( M I F ) 。 1 . 2 . 6 实时荧光定量 P C R检测 H e p G 2 / m d r 1细胞中
mdr1的转染复苏后的hepg2细胞转于含10新生牛血清的低糖dmem饱和湿度条件下培养每周传代2转染前1d取生长状态良好的hepg2细胞常规消化后用无抗生素的完全培养基稀释至浓度为1单细胞悬液在6孔板中每孔加入2ml细胞悬液置于375co的孵箱中培养过夜当孔内贴壁细胞达到9095时进行转染
中国生物工程杂志 C h i n aB i o t e c h n o l o g y , 2 0 0 9 , 2 9 ( 5 ) : 1 7~ 2 2
6 1 0 单细胞悬液, 在 6孔板中每孔加入 明, 在肿瘤细胞多药耐药的机理中, 其产物 P 糖蛋白( P g l y c o p r o t e i n , P g p ) 过度表达是最主 ? ? ? 要的因素之一。研究表明, 抑制 m d r 1基因的表达可提 高耐药细胞对化疗药物的敏感性

m d r 1m R N A 的表达变化 分别收集对数生长期的第 2 0代 H e p G 2 / m d r 1及 对 照 H e p G 2细 胞, T r i z o l 提取总 R N A 。以 β a c t i n 为内参、 S Y B RG r e e nI 为指示剂, 利用 ? m d r l 引 物 的 上、 下 游 序 列 分 别 为: 5 ′ 所设计的引 物 ( ? C C CA T CA T TG C AA T AG C AG G? 3 ′ 和5 ′ G T TC A A ? 3 ′ , 扩增片段长度为 1 5 7 b p ; A C TT C TG C TC C TG A ? β ? a c t i n 引 物 的 上、 下 游 序 列 分 别 为: 5 ′ G CT C CT C C ?T T G AG C GC A AG T A 3 ′ 和5 ′ C C AC A TC T GC T GG A A ? ? 3 ′ , 扩增片段长度为 7 9 b p ) , 按照 4 2 ℃1 h ; G G TG G A ? 9 5 ℃1 5 s , 9 5 ℃5 s , 6 0 ℃3 0 s , 进行 4 0个循环后 6 5 ℃1 5 s 的程 序 在 R O T O R? G E N E 3 0 0 0型 定 量 P C R仪 分 别 对 m d r l 和β a c t i n 基因的部分片段进行扩增。采用比较域 ?
H e p G 2 / md r 1稳定细胞系的建立及特性研究
张 巨 程 杰 陈 静 易 娟 孙 静 魏虎来
( 兰州大学基础医学院医学实验中心 兰州 7 3 0 0 0 0 )
摘要 将已构建好的含有人多药耐药( m u l t i d r u gr e s i s t a n c e ,M D R ) 全长基因的真核表达质粒 p C I n e o ? m d r 1 , 应用脂质体导入人肝癌 H e p G 2 细胞, 应用 G 4 1 8筛选出人肝癌多药耐药细胞株 H e p G 2 / m d r 1 。 ? 通过对 H e p G 2 / m d r 1 细胞形态学的观察和生物学特性的研究, 成功地建立了高效、 稳定的 H e p G 2 / m d r 1 细胞系; 为深入研究肝癌的 M D R及其逆转提供了理想的细胞模型, 并为探索建立肝癌 M D R细 胞株提供新的方法和思路, 同时为研究肝癌细胞胰岛素抵抗与 M D R的关系提供了模型细胞。 关键词 多药耐药 人肝癌 H e p G 2细胞 转染 p C I n e o m d r 1 重组质粒 ? ?
- C t Δ Δ 2 , C t 值 值法分析基因表达的量, 目的基因的量 =
为荧光 达 到 荧 光 域 值 的 循 环 数, C t =( C t Δ Δ 目的基因 ? C t ( C t C t 可直接得到目的 管家基因 ) 实验组 ? 目的基因 ? 管家基因 ) 对照 , 基因相对于管家基因的定量。照此获得 H e p G 2 / m d r 1 细胞中 m d r 1m R N A的表达变化。 1 . 2 . 7 F C M 检测 H e p G 2 / m d r 1细胞对阿霉素的蓄积 0代 H e p G 2 / 与排出 分别消化收集对数生长期的第 2
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