高产甘露醇眀串珠菌的分离与鉴定_白琴琴_李志华_李冬梅_崔福顺_金清

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提取和纯化植物中的甘露醇

提取和纯化植物中的甘露醇

提取和纯化植物中的甘露醇甘露醇是一种甜味物质,广泛存在于植物中。

它具有很高的溶解度,甚至在低温下也能快速溶解,所以在许多食品和饮料中都被用作甜味剂和稳定剂。

然而,从植物中提取和纯化甘露醇是一项具有挑战性的任务。

本文将介绍一种常用的方法,即温和的甘露醇提取和纯化方法。

一、甘露醇的提取甘露醇提取是将甘露醇从植物组织中分离出来的过程。

常用的提取方法包括溶剂提取、超临界流体提取和酶解法。

其中,溶剂提取是最常用的方法之一。

1.1 溶剂提取法溶剂提取法是通过选择适当的溶剂将甘露醇从植物组织中溶解出来。

常用的溶剂有乙醇、甲醇和水等。

提取条件包括温度、时间和溶剂的浓度等,需要根据不同的植物物种和需求来确定。

1.2 超临界流体提取法超临界流体提取法是利用超临界流体的特性将甘露醇从植物中提取出来。

超临界流体是一种介于气体和液体之间的状态,具有较高的溶解能力和较低的粘度。

常用的超临界流体有二氧化碳和乙烷等。

1.3 酶解法酶解法是利用酶的作用将植物中的多糖分解为单糖,进而提取甘露醇。

常用的酶有纤维素酶、木聚糖酶等。

酶解条件包括温度、pH值和酶的浓度等。

二、甘露醇的纯化甘露醇提取后还需要进行纯化,以去除杂质和提高甘露醇的纯度。

常用的纯化方法包括晶体分离、电解法和渗透蒸馏等。

2.1 晶体分离法晶体分离法是通过调节甘露醇的溶解度和结晶条件,使甘露醇晶体从溶液中析出。

晶体分离的关键是选择适当的溶剂、溶解温度和冷却速度等。

2.2 电解法电解法是利用电解现象将甘露醇从溶液中转移到电极上,从而实现纯化的过程。

通过调节电解条件和电解槽的结构,可以提高甘露醇的纯度。

2.3 渗透蒸馏法渗透蒸馏法是利用甘露醇和其他成分在蒸馏塔中的不同渗透性,通过连续蒸馏来纯化甘露醇。

该方法操作简单,能够实现对甘露醇的高效纯化。

三、甘露醇的应用甘露醇具有广泛的应用前景。

由于其低热值和不引起龋齿的特点,被广泛用作食品和饮料中的高强度甜味剂和稳定剂。

此外,甘露醇还用于制造药品、化妆品和口腔卫生用品等。

β-甘露聚糖酶产生菌的分离鉴定及其酶学性质的研究

β-甘露聚糖酶产生菌的分离鉴定及其酶学性质的研究

中南民族大学硕士学位论文β-甘露聚糖酶产生菌的分离鉴定及其酶学性质的研究姓名:李长影申请学位级别:硕士专业:生物化学与分子生物学指导教师:李晓华2011-05-23摘要β-甘露聚糖酶(Mannanase)是一类能水解含有β-1,4-D-甘露糖主链的内切水解酶,属于半纤维素酶类,在动物、植物和微生物中广泛存在。

β-甘露聚糖酶在食品、制药、饲料、造纸等方面有重要的应用价值,魔芋低聚糖是一种具有多种生理功能的寡聚糖,利用β-甘露聚糖酶来水解魔芋以制备高纯度的寡糖,其市场前景十分广阔。

本文以魔芋田和魔芋加工厂废液中采集的样品为实验材料,筛选出36株产β-甘露聚糖酶的菌株,利用DNS法测定酶活力进行复筛,得到一株酶活力较高的CYS4菌株,其酶活力大小为5.14 U/mL。

另外,研究发现CYS4菌株是一株胞外β-甘露聚糖酶的产生菌。

对CYS4菌株的16S rDNA序列进行测定,并在NCBI上与其相关序列进行同源比对,比对结果显示CYS4菌株与枯草芽孢杆菌的同源性大于99%,其中与枯草芽孢杆菌CD-23(EU670050.1)的相似性达到100%,结合CYS4菌株的培养特征、形态特征以及生理生化特性,初步确定CYS4菌株为枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)。

通过单因素试验和正交试验来优化CYS4菌株的产酶条件,研究发现最佳发酵培养基为:5%魔芋粉、2%酵母粉、0.6%KH2PO4、0.03%MgSO4;最佳培养条件是培养温度为40℃、接种量为7%、初始pH值为7.5。

在此条件下培养48h,CYS4菌株产生的β-甘露聚糖酶活力为20.67U/mL,是优化前的4.02倍。

对枯草芽孢杆菌CYS4菌株所产的β-甘露聚糖酶的酶学性质进行初步研究,初步确定酶促反应的最适pH值为7.0,在pH值为5.0~11.0时能保持很好的稳定性,37℃处理2h酶活力仍在80%以上;酶促反应的最适温度为60℃,在低于40℃的温度下基本稳定,保温3h酶活力仍然有70%以上;Na+、Fe2+、Mg2+等金属离子对该酶有激活作用,Hg+对酶活有一定的抑制作用。

豆豉中β-甘露聚糖酶高产菌的分离、鉴定及其酶学性质

豆豉中β-甘露聚糖酶高产菌的分离、鉴定及其酶学性质

收稿日期:2019 ̄11 ̄14基金项目:国家自然科学基金(31760449)资助项目.通信作者:王筱兰(1965 ̄)ꎬ女ꎬ江西景德镇人ꎬ教授ꎬ博士ꎬ主要从事食品生物化学及微生物发酵研究.E ̄mail:xlwang08@aliyun.com文章编号:1000 ̄5862(2020)02 ̄0196 ̄06豆豉中β ̄甘露聚糖酶高产菌的分离㊁鉴定及其酶学性质赵文鹏ꎬ李㊀浩ꎬ王筱兰∗(江西师范大学生命科学学院ꎬ江西省亚热带植物资源保护与利用重点实验室ꎬ江西南昌㊀330022)摘要:通过对传统曲霉型豆豉菌群分离纯化ꎬ结合刚果红显色及DNS筛选法ꎬ共得到高产β ̄甘露聚糖酶且形态学差异较大的细菌4株㊁真菌1株ꎬ其中真菌的酶活力为2016U mL-1.经过序列鉴定与比对ꎬ细菌鉴定为芽孢杆菌属(Bacillus)不同种ꎬ真菌为黑曲霉(Aspergillusniger).酶学性质研究表明:黑曲霉的最适温度和pH值分别为60ħ和5.0ꎻ4株芽孢杆菌最适作用温度和pH值范围为40~55ħ和6.0~7.0ꎬ其中1株芽孢杆菌在65ħ时保温240min或在pH值为9.0时保留30minꎬ残留相对酶活仍可达61.4%或84.3%.关键词:β ̄甘露聚糖酶ꎻ豆豉ꎻ分离筛选ꎻ酶学性质中图分类号:TS201㊀㊀文献标志码:A㊀㊀DOI:10.16357/j.cnki.issn1000 ̄5862.2020.02.150㊀引言豆豉是一种以大豆为主要原料ꎬ经过发酵而制成的传统调味副食品.依据制曲微生物的不同ꎬ豆豉主要可分为曲霉型㊁毛霉型㊁细菌型等类别ꎬ各类豆豉外在呈现为不同的营养风味[1]ꎬ其中一个重要原因是各类豆豉微生物分泌酶系的差异.而豆豉发酵微生物产酶往往以蛋白酶㊁淀粉酶㊁脂肪酶等主酶系为主ꎬ过去许多研究也针对豆豉产主酶系的微生物进行了报道[2 ̄3].近年来ꎬ一些研究者利用高通量测序技术等研究了豆豉发酵中的微生物区系[4 ̄5]ꎬ发现豆豉微生物种类往往比预期复杂得多ꎬ这就意味着豆豉发酵中的一些功能酶没有得到充分挖掘.甘露聚糖是半纤维素主要成分之一ꎬ在自然中蕴含丰富.显然ꎬ若能借助β ̄甘露聚糖酶使其得到充分开发ꎬ将带来巨大的社会和经济效益.就β ̄甘露聚糖酶的来源来看ꎬ虽然植物㊁动物及微生物中都普遍存在ꎬ但微生物来源的β ̄甘露聚糖酶具有提取简单㊁低成本㊁高稳定性㊁高活性等诸多优点ꎬ故备受国内外研究者的关注ꎬ而研究的重点领域包括产酶菌株的选育㊁产酶条件的优化及酶基因的克隆表达㊁改造等方面ꎬ其中筛选性能良好的产甘露聚糖酶的菌株一直是探索的重要方向[6]ꎬ如孙会忠等[7]从牡丹内生菌中筛选出1株高酶活的产酶菌株ꎬ也有研究者从碱湖中筛选出产碱性甘露聚糖酶的菌种Bacillusagaradhaerens.然而ꎬ鲜见关于从豆豉发酵菌群中筛选出产β ̄甘露聚糖酶菌株的报道.本文以不同发酵期的豆豉为材料ꎬ基于分离纯化后的微生物ꎬ对其中产β ̄甘露聚糖酶的菌株进行了筛选㊁鉴定ꎬ并对高产菌株的粗酶液的基本性质进行了探究ꎬ以期丰富产β ̄甘露聚糖酶的微生物遗传资源ꎬ并为后续β ̄甘露聚糖酶基因的克隆㊁改造奠定基础.1㊀材料与方法1.1㊀材料与设备1.1.1㊀实验材料㊀豆豉样品采自南昌稻香园调味食品有限公司ꎬ采集阶段为发酵1㊁3㊁6㊁10dꎬ样品采集完毕后装入灭菌自封袋并尽快运回实验室ꎬ于4ħ条件下保存备用.1.1.2㊀实验试剂㊀生理盐水ꎬ刚果红ꎬDNS试剂ꎬ柠檬酸缓冲液ꎬNa2HPO4ꎬNaH2PO4ꎬK2HPO4.1.1.3㊀培养基㊀筛选平板培养基(g L-1):魔芋胶5.00ꎬNH4Cl5.00ꎬKH2PO41.00ꎬMgSO40.10ꎬ琼第44卷第2期㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀江西师范大学学报(自然科学版)㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀Vol.44No.2㊀2020年3月㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀JournalofJiangxiNormalUniversity(NaturalScience)㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀Mar.2020㊀脂20.00ꎬpH值6.0ꎻ细菌种子培养基(g L-1):魔芋胶5.00ꎬ酵母抽提物50.00ꎬ蛋白胨10.00ꎬ氯化钠5.00ꎬ自然pH值ꎻ细菌发酵培养基(g L-1):魔芋胶5.00ꎬ酵母抽提物50.00ꎬ蛋白胨10.00ꎬKH2PO45.00ꎬMgSO40.25ꎬ自然pH值[9]ꎻ真菌种子培养基(g L-1):魔芋胶5.00ꎬ酵母提取物5.00ꎬ蛋白胨10.00ꎬ葡萄糖10.00ꎬpH值6.0ꎻ真菌发酵培养基(g L-1):酵母膏13.00ꎬ(NH4)2SO44.00ꎬ魔芋胶5.00ꎬFeSO4 7H2O0.01ꎬCaCl20.50ꎬK2HPO47.54ꎬKH2PO40.23ꎬpH值6.0[10]ꎻBHI培养基与PDA培养基为购置的成品ꎬ灭菌后分别添加纳他霉素(0.1g L-1)及氯霉素(0.025g L-1)[11].1.1.4㊀实验仪器㊀电子天平ꎬpH计ꎬ移液器ꎬ酶标仪ꎬ电泳仪ꎬ凝胶成像仪ꎬ超净工作台ꎬ高压蒸汽灭菌锅ꎬ恒温培养箱ꎬ恒温水浴锅ꎬ恒温摇床ꎬPCR仪ꎬ高速离心机.1.2㊀方法1.2.1㊀菌株的分离纯化㊀称取4个发酵阶段的豆豉各5gꎬ分别加入50mL生理盐水ꎬ摇床振荡30minꎬ取适宜稀释度的菌液分别涂布在BHI或PDA固体培养基上ꎬ用于细菌或真菌的分离.细菌于36ħ培养24hꎬ真菌30ħ培养72h.挑出若干单菌落再次分离划线ꎬ直至得到单菌落.1.2.2㊀菌株的初筛与复筛㊀将各阶段的细菌点接于筛选平板中ꎬ另按同一布局点接于BHI平板中备用.培养16h后ꎬ对筛选平板进行刚果红染色及生理盐水脱色.按形态差异ꎬ每个形态各挑选出透明圈直径(H)与菌落直径(C)比值较大的4~5株ꎬ再次点接筛选平板复筛ꎬ确定同一形态中最高酶活的细菌株.由于真菌种类较少且大多数都有扩散生长㊁产色素的特性ꎬ故采用种子液的摇瓶发酵法对其筛选.1.2.3㊀产酶菌株的摇瓶发酵㊀挑取复筛后的细菌株及分离得到的真菌ꎬ分别接入不同的种子培养基.细菌于种子液中培养12h后ꎬ接入发酵培养基继续发酵16h后离心得到粗酶液.真菌于种子培养基中培养72h后离心得到上清ꎬ在按下述方法测定酶活力后ꎬ选取最高酶活的菌株转入真菌发酵培养基培养96hꎬ离心后得到发酵上清液.1.2.4㊀β ̄甘露聚糖酶活力的测定㊀(i)甘露糖标准曲线的绘制:参照文献[12]的方法绘制标准曲线ꎬ每组3个平行.以甘露糖浓度(mg mL-1)为横坐标xꎬ吸光度值为纵坐标yꎬ绘制标准曲线ꎻ(ii)β ̄甘露聚糖酶活力测定:参照文献[13]的方法适当修改ꎬ取粗酶液20μL与80μL0.5%的魔芋胶溶液(Na2HPO4 ̄柠檬酸缓冲液配制ꎬpH值为6.0)充分混匀并短暂离心ꎬ置于55ħ水浴反应30min加入100μLDNS沸水浴10minꎬ冷却后定容至1.0mL测定OD540ꎬ以蒸馏水代替酶液作为对照组ꎻ(iii)β ̄甘露聚糖酶活力计算:酶活力定义为在所选取的反应条件下ꎬ以每分钟水解底物产生相当1μmolD ̄甘露糖所需要的酶液量定义为1个酶活力单位(U mL-1)ꎬ具体计算方法参照文献[14].1.2.5㊀高酶活菌株的鉴定㊀利用试剂盒提取复筛得到的各菌株的基因组DNAꎬ通过27F/1492R及ITS1/ITS42对引物分别对细菌㊁真菌的基因保守片段进行PCR扩增ꎬ具体条件参照文献[15]ꎬ扩增完毕使用1%的琼脂糖凝胶电泳检查PCR产物质量后ꎬ送至上海生工测序.同源性序列比对分析用NCBI中的BLAST软件进行分析ꎬ采用MEGA软件对各菌株进行系统发育分析ꎬ系统发育树的构建采用Neighbor ̄joining法.1.2.6㊀酶学性质研究㊀(i)最适反应温度:分别在25㊁35㊁45㊁55㊁65㊁75ħ下按照标准方法测定粗酶液的酶活ꎬ以酶活力最高者为100%ꎻ(ii)酶的温度稳定性:将酶液分别在35㊁45㊁55㊁65ħ温度下保温不同时长ꎬ按标准方法测定残余酶活ꎻ(iii)最适反应pH值:用0.1mol L-1柠檬酸 ̄柠檬酸钠缓冲液及1/15mol L-1K2HPO4 ̄NaH2PO4分别配制不同pH值的底物溶液ꎬ按标准方法测定酶活.以酶活力最高者为100%ꎻ(iv)酶的pH值稳定性:将酶液分别于不同pH值的缓冲溶液(同(iii))中于30ħ放置1hꎬ按标准方法测定残余酶活ꎬ以初始酶活为100%.每组3个平行ꎬ取平均值计算相对酶活力.2㊀结果与分析2.1㊀菌株的分离纯化稀释涂布后ꎬ4个发酵阶段(编号分别为A㊁B㊁C㊁D)菌群总数存在较大差异ꎬ其中发酵前期较高(约107cfu mL-1).各阶段菌落形态种类大致相当ꎬ其中以芽孢菌属典型特征(表面粗糙㊁不透明㊁褶皱㊁乳白或褐色)的菌落为大多数ꎬ而真菌则主要包括曲霉状真菌㊁部分毛霉状真菌及少量酵母菌.2.2㊀产酶细菌株的初筛、复筛每个发酵阶段各选择分离单菌株(40株)进行点板初筛(见图1(a)和图1(b)).初筛中选择每个形态HC(H/C)值的前4~5株ꎬ共18株进入复筛(见图1(c)).复筛中最终确定每个形态HC值最高791第2期赵文鹏ꎬ等:豆豉中β ̄甘露聚糖酶高产菌的分离鉴定及其酶学性质的细菌株ꎬ各形态HC值的最高株分别为A ̄8㊁B ̄3㊁B ̄6㊁C ̄3(见表1)ꎬ其中B ̄3的HC值为6.84ꎬ故选择这4株细菌进行后续研究.表1㊀产较大水解圈的细菌HC值比较㊀编号HC值㊀编号HC值㊀编号HC值㊀编号HC值㊀A ̄43.73㊀B ̄36.84㊀C ̄33.59㊀D ̄52.89㊀A ̄84.82㊀B ̄64.16㊀C ̄193.93㊀D ̄143.65㊀A ̄145.94㊀B ̄214.75㊀C ̄265.18㊀D ̄225.81㊀A ̄173.25㊀B ̄283.06㊀C ̄314.57㊀D ̄376.40㊀B ̄336.41㊀C ̄365.37㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀(a)BHI平板㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀(b)刚果红平板初筛㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀(c)刚果红平板复筛图1㊀产酶细菌株初筛及复筛2.3㊀摇瓶发酵与β ̄甘露聚糖酶活力的测定实验结果表明ꎬ甘露糖含量与吸光度OD540值标准曲线方程为y=1.0016x-0.0098ꎬ且相关性(R2=0.9995)良好(见图2)ꎬ满足后续酶活力测定的要求.图2㊀甘露糖标准曲线㊀㊀将各真菌接入种子液发酵后ꎬ结合标准曲线ꎬ通过DNS法筛选出1株最高酶活的真菌Fu ̄2ꎬ该株真菌及4株细菌形态如图3所示.通过对4株细菌及该株真菌酶活进行测定发现:就细菌来看ꎬB ̄3酶活最高(1845U mL-1)ꎬ与筛选平板结果基本一致ꎬ而从整体来看ꎬ真菌的发酵液酶活更高ꎬ达到2016U mL-1(见图4).2.4㊀高产酶菌株的分子鉴定PCR扩增结果表明:4株细菌16S保守区域的PCR产物均为明亮单一条带ꎬ约为1500bpꎬ真菌的ITS扩增产物大小约为600bp(见图5).基于序列与GenBank中相关细菌菌株的对应序列比较的结果ꎬ建立系统发育树(见图6).分析表明:4株细菌均属于Bacillus属ꎬ但分属于不同种.其中A ̄8菌株与Bacillustequilensis相似程度最高ꎬB ̄3㊁B ̄6㊁C ̄3则分别与Bacillus.Velezensis㊁Bacillus.subtilis和B.licheniformis同源性最高.另外ꎬ根据BLAST在线分析结果ꎬ最高酶活的真菌鉴定为黑曲霉(Aspergillusniger).图3㊀5株高产酶菌株的基本形态特征891江西师范大学学报(自然科学版)2020年图4㊀高产菌株酶活力的比较图5㊀PCR产物电泳图图6㊀细菌株的16SrDNA系统进化树2.5㊀酶学性质研究通过对比不同温度下相对酶活力发现:不同来源酶的最适宜反应温度为40~60ħ(见图7(a))ꎬ且均呈先升后降趋势ꎬ其中黑曲霉的相对酶活力在60ħ时达到最高.就各不同pH值下各菌株酶活力的表现来看ꎬ细菌来源的相对酶活力最适pH值为6.0~7.0ꎬ且在pH值为4.0~8.0时大致仍保留80%以上的酶活力(见图7(b))ꎻ黑曲霉的最适pH值则约为5.0ꎬ且在碱性条件下相对酶活下降明显.而就酶的稳定性来看ꎬ不同细菌间差异化明显.其中菌株B ̄6的温度与pH值稳定性均为最佳ꎬ其在65ħ时保温240min及在pH值9.0时保留30minꎬ残留的相对酶活仍分别达61.4%与84.3%.而A ̄8㊁B ̄3来源的酶的温度与pH值稳定性均较弱ꎬ酶活在65ħ及pH值3.0时尤其下降明显(见图8(a)和图8(b)).另外ꎬ就黑曲霉而言ꎬ其温度与pH值稳定性则整体表现一般.㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀(a)最适反应温度㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀(b)最适反应pH值图7㊀温度及pH值对菌株甘露聚糖酶活力的影响991第2期赵文鹏ꎬ等:豆豉中β ̄甘露聚糖酶高产菌的分离鉴定及其酶学性质㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀(a)温度稳定性㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀(b)pH值稳定性图8㊀温度及pH值对各菌株甘露聚糖酶稳定性的影响3㊀讨论由于β ̄甘露聚糖酶在诸多工业领域中扮演重要角色ꎬ因此很多研究者对其从不同角度展开了大量研究ꎬ特别是产酶菌株的筛选与改良方向.本文通过从豆豉发酵环境中进行产酶菌株的筛选ꎬ最终获得了5株高产β ̄甘露聚糖酶菌株并进行了分子鉴定ꎬ同时对不同菌源的粗酶液的基本性质进行了比较.由于土壤㊁海洋及湖泊等环境中菌种资源丰富ꎬ过去很多研究者倾向于从该类生镜中筛选高酶活的菌株ꎬ如李云程等[16]对海洋中细菌㊁真菌及放线菌产β ̄甘露聚糖酶进行了筛选ꎬ得到1株酶活较高的芽孢杆菌.黄俊丽等[17]从土壤中筛出1株酶活为50.36U mL-1的假单胞菌ꎬ周芳等[14]则从土壤中筛选出酶活为1487U mL-1的芽孢杆菌.本文通过借鉴前人优化后的培养基ꎬ共得到5株高酶活的菌株ꎬ且均在1200U mL-1以上ꎬ4株芽孢杆菌酶活力与周芳等[14]的研究数据大致相当ꎬ而高于其他大部分报道.而就黑曲霉来看ꎬ以往大部分学者往往采用固态发酵进行产酶试验ꎬ与以往利用突变或基因工程的部分黑曲霉液体发酵相比ꎬ本研究与其仍有一定差异[18 ̄19].需要指出的是ꎬ由于酶活方法的定义及具体试验条件不同ꎬ故这也是许多研究酶活力数据存在较大差异的重要原因.另一方面ꎬ较高酶活力往往只是筛选产酶菌株的一个重要指标ꎬ良好的应用前景往往需考虑酶在不同环境中的稳定性.为此ꎬ本文针对不同产酶菌株的酶液的基本性质进行了探索.可以发现ꎬ真菌的在偏酸偏热的环境中达到最高酶活ꎬ而芽孢杆菌最高酶活更集中于温和的中性环境ꎬ这与之前的一些报道类似[14ꎬ17ꎬ20].同时ꎬ部分芽孢菌株来源的酶液(如B ̄6㊁C ̄3)在许多温度及酸碱度区间内均能保持较高酶活力ꎬ这说明其或许更能耐受严酷环境ꎬ可能具有较好的应用开发价值.此外ꎬ本文虽筛选到了一些高产β ̄甘露聚糖酶菌株ꎬ但可培养法往往只能在特定培养基中筛选出易于培养的菌株ꎬ很多难于培养菌株的β ̄甘露聚糖基因资源未能得到有效挖掘ꎬ未来有必要结合宏基因组策略进行更为广泛的筛选ꎬ并针对现有的产酶菌株进一步地改造.4㊀参考文献[1]胡会萍.豆豉后酵中有益微生物及接菌发酵低盐豆豉品质㊁风味与功能性的研究[D].北京:中国农业大学ꎬ2012.[2]宋园亮ꎬ张忠华ꎬ熊骏ꎬ等.元阳豆豉中高产蛋白酶乳酸菌的筛选及其产酶条件的研究[J].中国微生态学杂志ꎬ2011ꎬ23(1):8 ̄12.[3]廖焰焰ꎬ张菊ꎬ李翔ꎬ等.传统曲霉型豆豉中高产脂肪酶的米曲霉筛选及鉴定[J].江西师范大学学报:自然科学版ꎬ2018ꎬ42(5):58 ̄63.[4]石聪ꎬ李世瑞ꎬ李跑ꎬ等.基于高通量测序浏阳豆豉不同发酵阶段微生物多样性分析[J].食品与发酵工业ꎬ2018ꎬ44(2):27 ̄32.[5]HeBinꎬLiHaoranꎬHuZhihongꎬetal.Differenceinmicro 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家蚕肠道产酶菌的分离与筛选

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动物肠道是多种微生物生长繁殖的理想场所 , 正常肠道微生物对宿主具有营养 、免疫 、生长刺激 、 生物拮 抗等 作用 , 是 机体 的生 理组 成部 分 [ 1 ] 。迄 今 ,有关人和一些家禽家畜 、水产动物肠道微生物的
收稿日期 : 2006 - 12 - 03 资助项目 :国家茧丝绸风险基金项目 [编号 国茧协办函 (2005) 45号 ]。 作者简介 :高绘菊 (1975 - ) ,女 ,山东 ,讲师 。
( C o lle g e of Fo re s try, S ha nd on g A g ric u ltu ra l U n ive rs ity, Ta ia n S h a n d o ng 2 71 01 8, C h ina )
A b s tra c t To u nd e rs ta nd the ro le o f b a c te ria from th e s ilkw o rm in te s tine in the d ig e s tion a n d a s s im ila tion of fo od , a nd to s c re e n p o te n tia l b e n e fic ia l s tra ins fo r the fu tu re ap p lic a tion s in th e s ilkw o rm re a rin g , 30 s tra in s w e re is o la te d from th e in te s tine of s ilkw o rm a nd the ir e n zym e 2p rod uc in g c ap a b ilitie s w e re s tud ie d. R e s u lts s how e d tha t a s tra ins w e re a b le to p rod uc e p ro te a s e , 7 s tra ins w e re a b le to p rod uc e e ithe r lip a s e a n d 7 s tra in s p ro d u c e d c e llu lo s e , a nd 8 s tra in s w e re a b le to p ro d uc e am y la s e ( 8 s ta in s ) . Am on g th e 30 is o la te s , 1 s tra in e xc re te d a ll fou r e n zym e s , 4 s tra ins e xc re te d th re e k in d s of e nzym e s , 2 s tra in s e xc re te d tw o k ind s of e n2 zym e s , 1 1 s tra ins e xc re te d on e e nzym e , a n d o the r 1 2 s tra in s d id nπt e xc re t a n y e nzym e. In o th e r w o rd s , 6 0 % of the is o la te s w e re c ap a b le of p rod uc in g e nzym e s. The re fo re , it c a n b e c o nc lu d e d th a t b a c te ria in the in te s 2 tine of s ilkw o rm p la y a n im p o rta n t ro le in the d ig e s tion o f fo od. Ke y w o rd s B om b yx m o ri; In te s tin e m ic ro o rg a n ism ; Ex tra c e llu la r e n zym e; En zym e 2p rod uc in g c ap a b ility

木聚糖酶高产微生物的筛选和鉴定

木聚糖酶高产微生物的筛选和鉴定

文章编号:1000 - 5862 (2002) 03 - 0245 - 04木聚糖酶高产微生物的筛选和鉴定于黄运红1 , 龙中儿1 , 李素珍1 , 裴丽丽2 , 王水兴2 , 敏2(1 . 江西师范大学化学与生物科学学院,江西南昌330027 ;2 .中德联合研究院,江西南昌330047)摘要:利用蔗渣木聚糖为惟一碳源,从甘蔗根部泥土样品中分离得到一株产木聚糖酶活力较高的菌株,经形态、生理及生化鉴定,初步确定为蜂房芽孢杆菌;同时研究了碳源、氮源对该菌产木聚糖酶的影响. 结果表明,其最适碳源为木聚糖,最适氮源为酵母浸膏和硝酸铵的混合氮源; 在装料100 m L 的250 m L 三角摇瓶中于32 ℃、120 r pm 振荡培养40~44 h 后,发酵液中木聚糖酶活力高达3 839. 5 Iu/ m L ,具有工业开发前景.关键词:木聚糖酶;木聚糖;蜂房芽孢杆菌;甘蔗渣中图分类号:O 636. 1 文献标识码:A纤维素类物质是一类大量存在而又可再生的重要潜在资源, 其中半纤维素约占总纤维素的15 %~30 % ,其主要成分为木聚糖. 木聚糖酶( E. C 3 . 2 . 1 . 8) 是一类以内切方式降解木聚糖分子中β- 1 ,4 - 木糖苷键的酶类 1 ,2 ,该酶在造纸工业中部分替代二氧氯用于纸浆漂白,可改善纸浆性能,并减少漂白工艺中的化学物质用量,从而大大减轻环境污染. 另外,木聚糖酶作为饲料添加剂,可提高饲料的能量值和禽、畜对饲料的利用率;食品工业中可利用木聚糖酶降解半纤维素的主要组分木聚糖生产低聚木糖等高附加值的产品3. 因此,国内外都有大量关于木聚糖酶的研究报道,但绝大多数仅限于霉菌、放线菌所产木聚糖酶的研究,而霉菌、放线菌产木聚糖酶的效率低,发酵周期长 4 ,5 ,因而不利于工业化木聚糖酶的开发.芽孢杆菌是一类广泛分布于自然界的微生物,它具有遗传背景稳定、营养要求低、生长速度快等特点,因而在生物工业中得到广泛应用,因而,利用芽孢杆菌产木聚糖酶的研究更具潜力. 我们利用蔗渣木聚糖为惟一碳源,从甘蔗根部泥土样品中筛选到一株可直接利用蔗渣粉产木聚糖酶活性较高的芽孢杆菌,经鉴定初步确定为蜂房芽孢杆菌.1 材料与方法1 . 1 样品来源样品取自甘蔗根部泥土.1 .2 培养基斜面培养基:营养琼脂(中国科学院上海昆虫科技开发公司生产) ,121 ℃灭菌15 min ,备用.初筛培养基: NaC l 0 .6 % , 酵母提取物0 .2 % , 琼脂1 .8 % , NH4NO3 0 .15 % , 蔗渣木聚糖0 .5 % , K2 HPO4 0 . 2 % ,MgSO4 0 . 01 % ,FeSO4 0 . 01 % ,C aCl2 0 . 01 % ,p H7 . 0 ,温度121 ℃灭菌15 min ,备用.复筛培养基:将蔗渣粉替代蔗渣木聚糖,其它和初筛培养基同.1 . 3 蔗渣木聚糖的制备6甘蔗渣加0 . 5 %的草酸铵(以湿润蔗渣为准) ,85 ℃水浴加热90 min ,抽滤,弃清液(用草酸铵连续处理3 次) ; 沉淀物于60 ℃烘干后,用4 %的氢氧化钠浸提( 氢氧化钠用量以浸没沉淀为度) ,在40 ℃下保温16 h 后抽滤. 取滤液,用99 %乙酸调p H5 . 5 ,然后加入95 %乙醇(用量为氢氧化钠用量的一半) ,立即出现木聚糖沉淀,将木聚糖的乙醇悬浮液置4 ℃冷却2 . 5 h ,6 000 rpm 离心30 min ,获木聚糖沉淀. 95 %乙醇洗沉淀物两次,烘干后得深棕色固体,即为蔗渣木聚糖粗提物.收稿日期:2002 - 03 - 11作者简介:黄运红(1979 - ) ,男,江西波阳人,助教,主要从事生化工程教学与科研.江西师范大学学报 (自然科学版) 2002 年2461 . 4 微生物的筛选1 . 4 . 1 初筛 将不同地点采集来的土样约 1 g ,用 0 . 85 %无菌生理盐水适当稀释 ,涂布于初筛培养基平板 , 37 ℃左右培养 24 h ,挑取单菌落在营养琼脂平板上划线分纯.1 . 4 .2 复筛 将纯化菌株接种于装有 100 m L 复筛培养基中的三角摇瓶中 ,于 32 ℃,120 rpm 条件下振荡培养 40~44 h 后 ,将发酵液离心除固形物 ,DNS 法测发酵液中木聚糖酶活性 ,阳性者即为木聚糖酶产生菌.1 . 5 菌种初步鉴定 将复筛后产木聚糖酶的菌株进行革兰氏染色 ,油镜下观察其形态并进行生化鉴定7. 1 . 6 木聚糖酶活测定1 . 6 . 1 0 . 5 %木聚糖的配制 称取适量木聚糖粗提物加入到 0 . 5 m ol ·L- 1NaOH 溶液中 ,加热使之溶解 ,再用醋酸调 p H 到 4 . 8 ,最后加入 0 . 2 m ol ·L - 1 、p H 4 . 8 的醋酸缓冲液稀释 ,使木聚糖的终浓度为 0 . 5 %.1 . 6 .2 木聚糖酶活性测定 参照 Miller G. L . 等8 的方法. 具体操作如下 :取经适当稀释的去菌体发酵液 ( 即粗酶液) 0 . 5 m L 加入 2 . 0 m L 0 . 5 %木聚糖溶液中 ,50 ℃酶解 30 min 后 ,加入 2 . 5 m L DNS 试剂 ,沸水浴 5 m i n , 用 3 ,5 - 二硝基水杨酸比色定糖法 (DNS 法) 测定还原糖 (以木糖计) ,同时以 100 ℃灭活粗酶液作对照. 酶活NG 木聚糖酶活单位 =[μg 木糖/ (m L 酶液·m in ·50 ℃) , 0 . 5 ×30其中 , N 为酶液稀释倍数 ; G 为酶解溶液中木糖的含量 (μg ) ;0 . 5 为吸取的酶液体积 ( m L ) ; 30 为酶解时 间 (min ) .1 . 7 蛋白含量测定 采用 F olin - 酚法9进行蛋白含量测定.2 结果2 . 1 产木聚糖酶微生物的筛选与鉴定 以木聚糖 ( 加入量 0 . 5 %) 作为惟一碳源 ,经过初筛与复筛 ,获得 19株产木聚糖酶的微生物 ,经初步形态观察后对产木聚糖酶活力较高的一株芽孢杆菌进一步生化鉴定 ,表明 它是蜂房芽孢杆菌 (菌株 11) . 结果见表 1 和表 2 .表 1 木聚糖酶产生菌菌株革兰氏染色 芽孢染色菌体形态 产酶活性 ( IU / m L 发酵液)酶比活 ( IU / mg )杆状 、棒状 杆状 球状 杆状 球杆状 、棒状 细杆状 球杆状 、杆状 杆状 、呈链状排列双球状杆状 杆状 细小棒状 细小棒状 细小棒状 细小棒状 球状 细小杆状 细小杆状 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18+ + + + + + + + + + + + - + -±- -+ + - - + + + + - - + - - - - - - -60. 5 57. 9 54. 6 54. 8 60. 5 20. 2 60. 7 54. 3 20. 2 55. 92 3 839. 5 24. 3 54. 2 55. 4 22. 3 25. 0 50. 0 54. 8 - - - - - - - - - - 2 976. 6 - - - - - - - 19 - -杆状54. 5 -第3 期黄运红等木聚糖酶高产微生物的筛选和鉴定247表2 木聚糖酶高产菌的鉴定鉴定指标菌株12菌体形态需氧性过氧化氢酶孢囊形态芽孢着生方式及形状革兰氏染色淀粉水解硝酸盐还原发酵葡萄糖产酸发酵葡萄糖产气V. P实验由甘油产二羟丙酮鉴定结果杆状++孢囊略膨大中生/ 偏端生,椭圆状G++-+-++蜂房芽孢杆菌2 . 2 营养物对蜂房芽孢杆菌产木聚糖酶的影响2 . 2 . 1 碳源影响在产酶培养基中加入不同的碳源,分别检测蜂房芽孢杆菌产木聚糖酶的情况. 结果表明,以自制的木聚糖为碳源时,产酶活力最高;葡萄糖、蔗糖、木糖为惟一碳源时,产酶活力较低,见表3 .2 . 2 . 2 氮源的影响在产酶培养基中加入不同氮源,分别检测蜂房芽孢杆菌的产木聚糖酶情况. 结果表明,以酵母膏和NH4NO3 共同为氮源时产酶最高,蛋白胨、NH4NO3 次之,尿素最低,见表4 .表3 碳源对蜂房芽孢杆菌产木聚糖酶的影响表4 氮源对蜂房芽孢杆菌产木聚糖酶的影响木聚糖酶活力( IU/ m L)木聚糖酶活力( IU/ m L)碳源(0. 5 %)相对活力( %)氮源(1 %)相对活力( %)木聚糖蔗渣葡萄糖蔗糖木糖葡萄糖+ 木聚糖木糖+ 木聚糖酵母膏+ NH4NO3酵母膏NH4NO3牛肉膏(NH4 ) 2 S O4蛋白胨尿素3 839. 51 733. 4906. 5594. 4447. 32 494. 22 754. 11004524151265723 839. 2879. 81 066. 5672. 8637. 21 379. 30. 21002328181736讨论木聚糖作为植物半纤维素的重要组分,是自然界继纤维素之后含量第二丰富的可更新的多糖 1 . 以往的研究中,半纤维素的再利用通常经过酸水解处理,而后再经微生物转化为生产产品10 . 然而,尽管酸水解速度快,但伴随有毒性化合物产生,对随后的生物转化过程有影响11 . 因自然界中许多微生物类群都能产生木聚糖酶,且微生物木聚糖酶水解法处理半纤维素更为安全和有效,因而大力开发经济、高效的微生物木聚糖酶具有重要意义.从自然界中筛选木聚糖酶产生菌国内外已有不少报道,但所分离的微生物主要集中在霉菌、放线菌等微生物类群中,而霉菌、放线菌等生产木聚糖酶周期相对较长,通常为4~7 d4 ,5 ; 少数经研究过的几类产木聚糖酶细菌的产酶率又相对较低12 ,13 . 本研究利用蔗渣木聚糖为惟一碳源作为选择条件,从自然界中分离木聚糖酶产生菌, 经过初筛和复筛两个阶段分离得到19 株产木聚糖酶的细菌, 其中一株菌产酶活高达3 839 . 5 I U/ m L发酵液,产酶率高,发酵周期短,仅40~44 h.微生物发酵生产木聚糖酶的影响因素很多,除了发酵条件外,碳源及氮源等营养物是影响木聚糖酶得率的重要因素14 ~16 . 本研究中,蜂房芽孢杆菌利用葡萄糖、木糖、蔗糖等不含木糖苷键的糖类为碳源时,其产木聚糖酶活性很低,而只有在含木糖苷键的多糖类诸如蔗渣半纤维素为惟一碳源时,才生产高活性的木3江西师范大学学报(自然科学版)2002 年248聚糖酶. 这表明,微生物在含有可利用的含木糖苷键以外的糖类条件下,只组成型地合成较低活性的木聚糖酶,而只有在含有木糖苷键的糖类作惟一碳源时才大量合成木聚糖酶,也即蜂房芽孢杆菌木聚糖酶为诱导酶,这为我们发酵生产木聚糖酶提供了有利条件. 如果通过诱变选育,结合最优化的发酵条件,可望进一步提高其酶的合成水平,这也是我们今后研究的方向之一.参考文献:1 刘巍,范树田,李心治,等.地衣芽孢杆菌H - 1 的鉴定及其产木聚糖酶性质的研究J . 工业微生物,1996 ,26 (4) :11.2 曾宇成,张树政.海枣曲霉木聚糖酶的提纯和性质J . 微生物学报,1987 ,21 (4) :343.3 怀文辉,何秀萍,郭文洁,等.微生物木聚糖酶研究进展及应用前景J . 微生物学通报,2000 ,27 (2) :137.4 毕瑞明,孙迅,任少亭,等.黑曲霉产木聚糖酶发酵条件的研究J . 工业微生物,2000 ,30 (1) :53.5 高庆义,王效忠,毕瑞明,等.链霉菌发酵麦草产木聚糖酶的实验研究J . 工业微生物,2001 ,31 (3) :36.6 周世宁,陆勇军,杜扬. 木聚糖降解菌的筛选和木聚糖酶性质的研究J . 中山大学学报(自然科学版) ,1996 ,35 (1) :91.7 张纪忠,黄静娟,盛宗斗,等.微生物分类学M.上海:复旦大学出版社,1990. 68.8 MI LL E R G L. Use of dinitrosalicylic acid reag ent for d etermination of redu cing sug ar J . Anal C hem ,1959 , 31 : 426.9 李建武,肖能庚,余瑞元,等.生物化学实验原理和方法M.北京:北京大学出版社,1981. 168.10 DAVID C S MITH ,THOMAS M WOOD. Xylanase produ ction b y asperg illus aw am ori ,d evelopment of a med iu m and optimization o f the fer 2mentation parameters for the produ ction o f extracellu lar xylanase andβ- xylosid ase w hile maintaining low protease produ ction J . Biotech 2 nolog y and Bioeng ineering , 1991 ,38(8) :883.11 朱静,严自正.微生物产生的木聚糖酶的功能和应用J . 生物工程学报,1996 , 12 (4) : 375.12 蔡敬民,张洁,于宙,等.芽孢杆菌木聚糖酶的发酵条件研究J . 工业微生物,1996 ,26 (2) :17.13 白云玲,许正宏,孙微,等.细菌产木聚糖酶发酵条件的研究J . 微生物学通报,2000 ,27 (4) :278.14 K AR NI M ,DE OPURKER R L ,R A L E V B , et al . β- xylanase produ ction b y aureob asid iu m p u llu ians g row n on sug ars and ag ricu lturalresiduesJ . J Micro b iol Biotechn ol ,1993 ,9 (4) :476.15 T RI PATHI C K M , A L I S , SRIV AS TAVA R , et al . C haracterization of xylanase activity of strep h tom yces w ed m orensisJ . Ind ian J ExpBiol ,1992 ,30 (8) :741.16 BIE L Y P. M icrob ial xylanoly tic systemsJ . Trends in Biotechn ol ,1985 ,13 :286.Isolation and Identif ication of Prol if i c Microorganism in Xylana s eH UAN G Y un - hong1 , LON G Zhong - er1 , L I Su - zhen1 , PEI Li - li2 , WANG Shui - xing2 , Y U Min2(1 . I nstitute of Chemistry and Biological Sciences , Jiangxi Normal University , N anchang 330027 , China ; 2 . Jiangxi - O AI Joint Research I nstitute , N anchang 330047 ,China)Abstract : A strain of microorganism , which is proli fic in the producti on of x ylanase , was isolated from the soil of sugar2 cane root system , and identi fied as B acillus alvei. Further research showed that , for the x ylanase producti on of B acillus alvei ,the optim al carbon source is x ylan , and nitrogen source is mixture of amm onium nitrate and yeast ex tract . C ulturing was carried out in Shake Flasks (250 m L) containing 100 m L m edium which is com posed of 0 . 6 % NaCl , 0 . 2 % yeast ex tract , 0 . 15 % NH4NO3 , 0 . 2 % K2 HPO4 , 0 . 01 % C aCl2 , 0 . 01 % MgSO4 , 0 . 01 % FeSO4 and 0 . 05 % xylan at initial p H7 . 0 , all flasks were incubated for 44 h in an shaker (120 rpm , 32 ℃) , the x ylanase activity of culture filtrate cam e up to 3 839 . 5 Iu/ m L .K ey w or d s:x ylanase ;x ylan ; B u cillus alvei ; b agasse。

一株产甘露醇的肠膜明串珠菌突变菌株及其应用方法[发明专利]

一株产甘露醇的肠膜明串珠菌突变菌株及其应用方法[发明专利]

专利名称:一株产甘露醇的肠膜明串珠菌突变菌株及其应用方法
专利类型:发明专利
发明人:金红星,王立东,成文玉
申请号:CN201710051539.3
申请日:20170121
公开号:CN106754555A
公开日:
20170531
专利内容由知识产权出版社提供
摘要:本发明一株产甘露醇的肠膜明串珠菌突变菌株及其应用方法,涉及细菌,该菌株是葡聚糖蔗糖酶、D‑乳酸脱氢酶和乙醛脱氢酶基因敲除的肠膜明串珠菌突变菌株,为肠膜明串珠菌()菌株,其在中国典型培养物保藏中心(CCTCC)保藏,保藏日期是2016年11月14日,保藏号是CCTCC
M2016638。

将该菌株以重量百分比1%转接到MRS培养基中,于30℃下,以转速为120转/分钟的摇床培养20小时,甘露醇浓度可以达到9.35克/升,蔗糖中果糖部分的转化率93.5%。

申请人:河北工业大学
地址:300130 天津市红桥区丁字沽光荣道8号河北工业大学东院330#
国籍:CN
代理机构:天津翰林知识产权代理事务所(普通合伙)
代理人:胡安朋
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一种高收率的甘露醇制备工艺[发明专利]

一种高收率的甘露醇制备工艺[发明专利]

专利名称:一种高收率的甘露醇制备工艺
专利类型:发明专利
发明人:章朝晖,王建平,刘极健,冯巧嫦,李志宇,刘勇波,曾志文
申请号:CN03134955.2
申请日:20030928
公开号:CN1528728A
公开日:
20040915
专利内容由知识产权出版社提供
摘要:本发明为一种以葡萄糖为原料高收率制备甘露醇的工艺。

葡萄糖在酸性条件下经差向异构化反应后得到甘露糖-葡萄糖混合物,用模拟移动床装置进行甘露糖-葡萄糖分离,在分离温度为40~85℃,以钙型阳离子交换树脂为吸附剂、以水为洗脱剂的条件下,可连续得到富含葡萄糖组份及富含甘露糖组份,前者可重复进行差向异构化反应,后者经加氢可生成甘露醇,所得的加氢后混醇中的甘露醇含量达75%以上,再经结晶、离心、干燥后得到甘露醇产品,甘露醇产率为葡萄糖干物质投料量的70%。

申请人:南宁市化工研究设计院
地址:530022 广西壮族自治区南宁市古城路4-2号
国籍:CN
代理机构:南宁明智专利事务所有限公司
代理人:黎明天
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一种甘露子碳源细菌纤维素的制备方法[发明专利]

一种甘露子碳源细菌纤维素的制备方法[发明专利]

专利名称:一种甘露子碳源细菌纤维素的制备方法专利类型:发明专利
发明人:李锦宇,盛艳花,高力群
申请号:CN201510584776.7
申请日:20150915
公开号:CN105087714A
公开日:
20151125
专利内容由知识产权出版社提供
摘要:本发明公开了一种甘露子碳源细菌纤维素的制备方法,属于细菌纤维素制备技术领域。

本发明的细菌纤维素是选取甘露子蒸煮后与水混合榨汁、高速打碎得甘露子浆液,经浸提、过滤、离心分离得甘露子汁,将其蒸煮冷却,滴加稀硫酸酸化、冷却,调节pH值为碱性,保温反应得脱毒甘露子酸解液;取甘露醇、胰蛋白胨、酵母和琼脂,加入去离子水,调节pH值为酸性升温灭菌得木醋杆菌培养基,按比例接种于脱毒甘露子酸解液,多次培养后冷却制得。

本发明的有益效果是:以制得甘露子酸解液接种木醋杆菌基质,得到高浓度脱毒甘露子酸解液作为生产细菌纤维素的良好碳源制备细菌纤维素,针对性强;所得产品成本低,产量高,产率比其他方法提高了20%以上。

申请人:江苏锦宇环境工程有限公司
地址:213164 江苏省常州市江苏宜兴市高塍镇高塍西街
国籍:CN
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一种金针菇白色变异菌种分离培养与鉴定方法[发明专利]

一种金针菇白色变异菌种分离培养与鉴定方法[发明专利]

专利名称:一种金针菇白色变异菌种分离培养与鉴定方法专利类型:发明专利
发明人:王波,鲜灵,甘炳成,黄忠乾
申请号:CN201110216057.1
申请日:20110730
公开号:CN102388745A
公开日:
20120328
专利内容由知识产权出版社提供
摘要:本发明公开了一种金针菇白色变异菌种分离培养与鉴定方法,它包括菌种分离培养和菌种鉴定两个步骤,其中,所述的菌种分离培养包括以下步骤:(1)白色子实体获取;(2)菌种分离培养;(3)菌种纯化与保藏,所述的菌种鉴定又至少包括拮抗鉴定和出菇鉴定两种鉴定方法。

本发明能够准确地对金针菇白色变异菌种进行分离培养与鉴定,具有简便、快速等优点。

申请人:四川省农业科学院土壤肥料研究所
地址:610066 四川省成都市锦江区狮子山路2号
国籍:CN
代理机构:成都金英专利代理事务所(普通合伙)
代理人:袁英
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提取和纯化植物中的甘露醇

提取和纯化植物中的甘露醇

提取和纯化植物中的甘露醇甘露醇是一种常见的含糖醇,也被称为低聚糖醇。

它可在多种植物中找到,并且常被用于食品工业和医药领域。

提取和纯化植物中的甘露醇是一项重要的工艺,本文将介绍甘露醇的提取和纯化方法。

一、甘露醇的特点和应用甘露醇是一种白色结晶性化合物,味道甜美,具有低热值、不发酵、耐高温等特点。

因此,甘露醇被广泛应用于食品工业中,如糖果、口香糖、甜点等的制作。

此外,甘露醇还可以作为药物和化妆品的添加剂,具有保湿、防腐、增稠等功能。

二、植物中甘露醇的提取方法1. 乙醚浸提法:将切碎的植物材料与乙醚混合搅拌,使甘露醇从植物组织中溶解到乙醚中。

然后,通过过滤或离心的方法将植物渣滓与乙醚分离,得到含有甘露醇的乙醚溶液。

最后,利用蒸馏或萃取方法从乙醚中提纯甘露醇。

2. 醇提法:将植物材料与乙醇或甲醇混合浸泡,使甘露醇从植物细胞中释放出来。

然后,通过过滤或离心的方法分离植物渣滓和溶液。

接下来,使用萃取或结晶等方法提取和纯化甘露醇。

三、甘露醇的纯化方法1. 结晶法:通过溶液冷却或加入适量的溶剂,使甘露醇结晶并从溶液中分离出来。

然后,使用过滤或离心的方式收集甘露醇晶体,并进行干燥处理,得到纯净的甘露醇。

2. 色谱法:将含有甘露醇的溶液通过色谱柱进行分离和纯化。

常用的色谱方法有薄层色谱、碘化亚氨银柱等。

通过不同溶剂的选择和操作条件的调整,可以将甘露醇与其他杂质分离,并获得高纯度的甘露醇。

四、甘露醇的应用前景随着人们对健康食品需求的增加和对高糖食品的担忧,甘露醇在食品行业的应用前景广阔。

它可以作为食品和饮料中的代糖,用来替代传统的蔗糖、果糖等。

除此之外,甘露醇还可以用于制作口腔护理产品、保健品以及医药制剂等。

总结:提取和纯化植物中的甘露醇是一项重要的工艺,通过乙醚浸提、醇提等方法可以从植物中提取出甘露醇。

而通过结晶法和色谱法等手段可以对甘露醇进行纯化。

甘露醇作为一种具有广泛应用前景的低聚糖醇,在食品、医药和化妆品领域均有重要作用。

以蔗糖为原料明串珠菌发酵生产甘露醇

以蔗糖为原料明串珠菌发酵生产甘露醇

以蔗糖为原料明串珠菌发酵生产甘露醇金红星;史建波;成文玉;莒晓艳【摘要】肠膜明串珠菌CGMCC1.10327为发酵菌株,质量浓度为2%的蔗糖为底物,采用分批发酵,研究甘露醇的生成.为了优化甘露醇的生成,分别考察了添加5 g/L 的葡萄楷、3种盐(K2HPO4、乙酸钠、柠檬酸铵)、不同的初始pH和加入0.2%的CaCO3对产甘露醇的影响.结果表明,葡萄糖的加入有助于提高甘露醇的产量.3种盐(K2HPO4、乙酸钠、柠檬酸铵)对甘露醇的生成有明显的影响,当分别为2 g/L、5 g/L和2 g/L时,甘露醇的产量最高.最佳的初始pH=6.向培养基中加入0.2%的CaCO3,甘露醇的产量明显的降低.%The production of mannitol by Leuconostoc mesenteroides CGMCC 1. 10327 using sucrose (2% , m/v) as the carbon source was investigated in batch culture fermentation. To optimize the production of mannitol, the effects of glucose (5 g/L), three salt nutrients ( K2HPO4, NaAC, and ammonium citrate), various initial culture pHs, and 0. 2% CaCO3 on the production of mannitol were investigated, respectively. The results showed that glucose contributed to improve the yield of mannitol. Three salt nutrients (K2 HPO4, NaAC, and ammonium citrate) had significant effects on the production of mannitol, and the highest yield of mannitol was obtained when three salt nutrients were 2 g/L, 5.0 g/L, and 2 g/L, respectively. The highest yield of mannitol was obtained at initial pH 6. 0. Moreover, the yield of mannitol was significantly decreased by adding CaCO3.【期刊名称】《食品与发酵工业》【年(卷),期】2011(037)002【总页数】4页(P91-93,98)【关键词】蔗糖;肠膜明串珠菌;分批发酵;甘露醇【作者】金红星;史建波;成文玉;莒晓艳【作者单位】河北工业大学化工学院,天津,300130;河北工业大学化工学院,天津,300130;河北工业大学化工学院,天津,300130;河北工业大学化工学院,天津,300130【正文语种】中文甘露醇是一种多元醇,白色结晶性粉末,甜度为蔗糖的一半。

豆酱中明串珠菌的分离筛选

豆酱中明串珠菌的分离筛选

豆酱中明串珠菌的分离筛选豆酱是以大豆为主要原料,经微生物自然发酵而成的一种风味独特的传统发酵制品,而明串珠菌是豆酱发酵过程中的优势菌群。

在发酵过程中,明串珠菌的代谢产物如葡聚糖、双乙酰等,可以赋予豆酱特殊的品质及风味。

本研究选用传统方法对豆酱中明串珠菌进行分离筛选,结合16SrDNA序列分析技术确定供试菌株的种属,然后利用牛津杯琼脂扩散法、粘度计测量法、邻苯二胺比色法、酸和胆盐耐受性试验对获得的明串珠菌进行抑菌特性、产粘特性、产双乙酰特性、益生特性的筛选,以期获得性状优良的明串珠菌菌株,为今后豆酱品质的改善以及明串珠菌应用于工业化生产提供理论依据。

试验从东北六个地区共采集56份传统自然发酵豆酱,采用传统分离纯培养方法从56份豆酱中分离出118株明串珠菌疑似菌株,经过形态学特征和生理生化特性分析,发现有6株菌革兰氏染色结果为阳性,在电镜下呈小球形或卵形,同时符合明串珠菌属细菌的生理生化特性,初步鉴定为明串珠菌属细菌。

结合16SrDNA序列分析技术进行分子生物学鉴定以确定供试菌株的种属,结果表明,6株菌来自明串珠菌属的2个种,菌株MC3、LBQ、LBH被鉴定为乳酸明串珠菌(Leuconowtoc lactis);菌株FX6、WQD、WDX被鉴定为肠膜明串珠菌肠膜亚种(Leuconostoc mesentsroides subsp.mesenteroides ATCC 8293)。

明串珠菌抑菌特性筛选试验中,菌株FX6对大肠杆菌(Escherichia coli 0157:H7882364)抑制作用最强,抑菌圈直径为11.10mm;菌株LBH对单核细胞增生李斯特菌(Listeria monocytogenes C53-3)抑制作用最强,抑菌圈为10.12mm;菌株MC3对福氏志贺氏菌(Shigella flexneri CMCC51592)、鼠伤寒沙门氏菌(Salmonella typhimurium S50333)抑制作用最强,抑菌圈直径分别为10.32mm、13.90mm;菌株WDX对金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureusAS 1.2465)抑制作用最强,抑菌圈直径为 10.58mm。

在明串珠菌构建高产甘露醇的细胞工厂

在明串珠菌构建高产甘露醇的细胞工厂

在明串珠菌构建高产甘露醇的细胞工厂刘成川;金红星【期刊名称】《食品与发酵工业》【年(卷),期】2024(50)7【摘要】甘露醇是一种具有多种功效的六糖醇,被广泛应用于医药、食品、化工和电子等行业。

为构建高产甘露醇的明串珠菌,建立了将底盘细胞转化为高产目标产物菌株的理论:细胞工厂的“源-库”学说。

通过2次同源重组,打破染色体中基因的操纵子和重叠基因模式,并将甘露醇外排泵蛋白(mannitol efflux pump,MEP)基因序列和再生NADH的酶(甲酸脱氢酶)基因序列定点插入到染色体上。

蔗糖为90 g/L时,打破mep基因的操纵子和重叠基因模式的菌株甘露醇产量比原始菌株(CGMCC1.10327)提高了9.5%。

原始菌株染色体上敲入一个拷贝mep基因序列的菌株,底物蔗糖能添加到120 g/L,甘露醇产量也达到55.18 g/L。

CCTCCM2020762菌株染色体上敲入一个拷贝甲酸脱氢酶基因序列的菌株,底物蔗糖能添加到145 g/L,甘露醇产量也达到101.6 g/L。

使细胞工厂具备更强的“源”能(NADH再生等)和更大的“库”容(提高MEP活性),实现目标产物的超高产。

【总页数】8页(P9-16)【作者】刘成川;金红星【作者单位】河北工业大学化工学院【正文语种】中文【中图分类】R74【相关文献】1.化学诱变快速筛选高产甘露醇柠檬明串珠菌株的研究2.乙醛脱氢酶基因敲除对明串珠菌产甘露醇的影响3.在明串珠菌中构建葡萄糖到甘露醇的转化体系4.尿路造口患者参与体育锻炼阻碍因素的质性研究5.探索水利水电工程勘测设计行业信息化发展因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

高产D-甘露醇虫草菌种分离纯化的研究

高产D-甘露醇虫草菌种分离纯化的研究

高产D-甘露醇虫草菌种分离纯化的研究何志礼;李清平;朱德成【期刊名称】《成都大学学报(自然科学版)》【年(卷),期】2001(020)004【摘要】本试验系用生物工程技术分离纯化虫草菌种的研究.先用组织分离法从野生虫草整体组织上分离出虫草菌种,再用平板稀释法将菌种纯化,获得一株高产D-甘露醇(虫草酸)的优良菌种.该菌种被鉴定为蝙蝠蛾拟青霉.使用该菌种经一级种子培养和发酵培养,获得含D-甘露醇9.9%(野生虫草约7%)、总氮5.1%(野生虫草约4%)的虫草菌丝体.原种斜面培养基组成(%):琼脂2、葡萄糖2、蛋白胨0.2、磷酸二氢钾0.1、硫酸镁0.03、麦麸5.种子培养基组成(%);葡萄糖2、蛋白胨0.5、磷酸二氢钾0.1、硫酸镁0.03、麦麸5.原种培养温度23-24℃、培养时间4-5天;平均稀释纯化所用稀释菌液为10-1、10-2、10-3、10-4、10-5、10-6,挑菌培养温度分别为23-24℃、28℃、37℃.种子培养条件:一级种子培养:摇床转速180r/min,培养温度24-25℃,时间2-3天;二级种子培养;摇床转速90r/min,培养温度24-25℃,时间2天.发酵培养条件;接种量5-10%,温度24-26℃,搅拌速度150-180r/min,通气培养,时间5-6天,PH4.5,残糖量降至0.3%.【总页数】5页(P21-25)【作者】何志礼;李清平;朱德成【作者单位】成都大学生物工程系,成都,610081;四川美加美食品工业有限公司,成都,611743;四川省科新营养保健食品研究所,成都,610081【正文语种】中文【中图分类】Q99.32【相关文献】1.人工蛹虫草固体培养基虫草素的分离纯化研究 [J], 任大明;劳云云;李冬琦2.气相色谱法测定蛹虫草中D-甘露醇的含量 [J], 王波;徐哲;金顺姬;逄建伟;刘志成;张若镜3.大孔树脂分离纯化蛹虫草深层发酵液中虫草素的工艺研究 [J], 陈涛;沈健增;蔡宇杰;廖祥儒;岳翠翠;张大兵4.蛹虫草虫草多糖的分离纯化、分子构象分析及抗氧化活性研究 [J], 江琦;娄在祥;王正齐;王洪新;陈孝云5.虫草及其制品中D-甘露醇检测技术研究进展 [J], 王鹏跃;曾议霆;李小军因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

甘露醇对草菇继代菌株生产性状和ROS清除能力的影响

甘露醇对草菇继代菌株生产性状和ROS清除能力的影响

甘露醇对草菇继代菌株生产性状和ROS清除能力的影响赵风云;程志虹;谭强飞;朱嘉宁;孙万合;张紊玮;贠建民【期刊名称】《中国农业科学》【年(卷),期】2024(57)1【摘要】【目的】研究甘露醇对草菇继代菌株的生产性状和活性氧(ROS)清除能力的影响,探索一种简便、有效的草菇退化菌种复壮方法。

【方法】以笔者课题组前期获得的组织分离继代菌株T6、T12、T19为试验菌株,T6为连续继代6次,T12为连续继代12次,T19为连续继代19次;草菇原种V844(T0)为商业栽培种。

将传统马铃薯葡萄糖琼脂培养基(PDA)中的葡萄糖替换为等质量的甘露醇,进行菌丝生理性状测定;在栽培基质中添加甘露醇,测定子实体农艺学性状;以硝基四氮唑蓝(NBT)染色、超氧阴离子(O_(2))、过氧化氢(H_(2)O_(2))含量反映活性氧(ROS)积累;采用实时荧光定量PCR(RT-qPCR)测定抗氧化酶基因表达量;利用试剂盒测定抗氧化酶活力;通过菌丝染色法测定细胞核数量和线粒体膜电位;利用高效液相色谱仪(HPLC)测定菌丝能量指标。

【结果】甘露醇处理对未退化菌株T0、T6的影响不显著,但能有效恢复草菇退化菌株T12、T19的生产性状和ROS清除能力。

甘露醇使T12、T19的菌丝生长速度分别提高31.46%、20.99%,菌丝生物量分别提高97.33%、76.36%;使T12的生产周期缩短12.24%,生物学效率提高17.97%,恢复至T0水平;并使退化严重、失去出菇能力的T19重新长出子实体。

同时,甘露醇使T12、T19的Cu/Zn超氧化物歧化酶基因(Cu/Zn-sod)相对表达量分别上调24.64%和61.54%,Mn-sod2相对表达量分别上调19.76%和267.09%,谷胱甘肽过氧化物酶基因(gpx)相对表达量分别上调25.67%和55.82%,并使SOD活力分别提高10.79%和72.32%,GPX活力分别提高16.98%和103.85%;使T12、T19中的ROS积累量显著降低,T12、T19中的O_(2)含量分别下降35.96%和41.62%,H_(2)O_(2)含量分别下降14.44%和18.26%;并使T12、T19的细胞核数目和线粒体膜电位显著增加;使T12、T19中的ATP含量分别提高17.08%和14.55%,EC值分别提高4.52%和0.92%。

一株产耐高温β-甘露聚糖酶菌株的筛选鉴定

一株产耐高温β-甘露聚糖酶菌株的筛选鉴定

一株产耐高温β-甘露聚糖酶菌株的筛选鉴定罗长财;缪静;李国莹;杜瑶;余晓斌【期刊名称】《生物技术通讯》【年(卷),期】2018(029)002【摘要】目的:筛选鉴定一株产耐高温β-甘露聚糖酶的天然菌株.方法:通过形态、生理生化特征及16S rDNA比对,对从水温高于68℃的热泉中分离出的一株产β-甘露聚糖酶细菌进行鉴定.结果:该菌株的最适生长温度为50℃,可在35~80℃条件下生长,确定为一种极端嗜热枯草芽胞杆菌;该菌所产的β-甘露聚糖酶可耐受90℃高温处理.结论:产耐高温β-甘露聚糖酶极端嗜热枯草芽胞杆菌的筛选鉴定,为后续重组耐高温β-甘露聚糖酶的开发奠定了基础.%Objective:To screen and identify a highly thermostable β-mannanase natural producing stra in.Methods:A β-mannanase producing bacterium,which was isolated from a hotspring(water temperature >68℃),was identified bymorphology,physiological and biochemical characteristics,and 16S rDNA analysis.Results:The bacterium could grow from 35℃ to 80℃ with the optimal culture temperature 50℃,and the bacterium was identified as an extreme thermophilic Bacillus subtilis.The β-mannanase produced by this bacterium could tolerate 90℃treatment.Conclusion:The screening and identification of the extreme thermophilic B.subtilis laid a good foundation for further development of the recombinant highly thermostable β-mannanase.【总页数】6页(P233-237,257)【作者】罗长财;缪静;李国莹;杜瑶;余晓斌【作者单位】江南大学工业生物技术教育部重点实验室,江苏无锡214122;鲁东大学生命科学学院,山东烟台264025;江南大学工业生物技术教育部重点实验室,江苏无锡214122;江南大学工业生物技术教育部重点实验室,江苏无锡214122;江南大学工业生物技术教育部重点实验室,江苏无锡214122【正文语种】中文【中图分类】Q93-3【相关文献】1.一株产低温蛋白酶菌株的筛选鉴定及纯酶研究 [J], 刘静;闵航;章骥;邵爱萍2.一株产几丁质酶菌株的筛选鉴定与产酶条件优化 [J], 苗飞;孟阳;王悦;袁春营;崔青曼3.一株产木聚糖酶菌株的筛选鉴定及产酶条件初步优化 [J], 罗玲;蔡俊;王常高;杜馨;林建国4.产β-甘露聚糖酶菌株的筛选鉴定及产酶条件的优化 [J], 杨苗;卢晓华;王常高;杜馨;林建国;蔡俊5.一株产木聚糖酶菌株的筛选鉴定及产酶条件优化 [J], 王月琳;吴玉婷;石玉因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

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甘露醇(D-mannitol)是一种天然多羟基化合物,广泛用于食品、药物、医疗和化学工业[1]。

它属于低热量的糖类,在功能性糖醇中是唯一一种不易吸潮的六元糖醇,可以取代蔗糖、乳糖、葡萄糖或果糖而应用于食品加工当中。

甘露醇的代谢过程不需要胰岛素的参与,因此是糖尿病人食收稿日期:2013-05-30 *通讯作者基金项目:国家自然科学基金项目(31260362)。

作者简介:白琴琴(1990—),女,辽宁人,硕士研究生,研究方向为食品微生物发酵。

品中甜味成分的最佳替代品[2]。

长期以来,由于甘露醇受到生产原料来源的限制,以及在主要用途方面与生产流程较短、成本较低的山梨醇相近,故影响了甘露醇生产的发展。

随着甘露醇应用的开发以及原料来源的多样化,成本的降低,加上其独特的用途,预示着甘白琴琴,李志华,李冬梅,崔福顺,金 清*(延边大学农学院,延吉 133000)摘要:为了分离与鉴定明串珠菌中高产甘露醇菌株,选取4种蔬菜发酵食品,运用平板稀释法,根据产生透明黏性代谢产物的菌落特征初筛选出21株明串珠菌。

通过高效液相色谱法测定其产生甘露醇的量,筛选出5株高产甘露醇的菌株B17、C47、D24、E13和E28,并对其进行生长特性分析和菌株鉴定。

通过16s rRNA 基因测序确定,B17、C47、D24、E13属于肠膜明串珠菌,E28属于嗜柠檬酸明串珠菌。

关键词:甘露醇;明串珠菌;分离鉴定中图分类号:TS 201.3 文献标志码:A 文章编号:1005-9989(2013)11-0012-04Isolation and identi fi cation of Leuconostoc highly producing D-mannitolBAI Qin-qin, LI Zhi-hua, LI Dong-mei, CUI Fu-shun, JIN Qing *(College of Agricultural, Yanbian University, Yanji 133000)Abstract: Four vegetable-fermented foods were selected for isolating and identifying Leuconostoc, which produces D-mannitol highly. 21 strains of Leuconostoc were isolated based on their colony characteristics of producing transparent and sticky metabolites using the dilution plating method. After measuring the content of D-mannitol by high-performance liquid chromatography, 5 strains producing D-mannitol highly, B17, C47, D24, E13 and E28, were selected from them. Analysis of their growth characteristics and strain identi fi cation were carried out. By 16s rRNA gene sequencing, B17, C47, D24 and E13 were identi fi ed as Leuconostoc mesenteroides, E28 was identi fi ed as Leuconostoc citreum.Key words: D-mannitol; Leuconostoc; isolation and identi fication 高产甘露醇眀串珠菌的分离与鉴定2013年 第38卷 第11期露醇将成为一种有前景的精细化学品[3]。

常规的甘露醇生产方法有提取法、化学合成法和电解还原法,但相应伴有转化率低、有副产物(山梨醇)、成本高等缺点。

近年来,利用微生物发酵合成甘露醇研究很多,许多微生物(如酵母、丝状真菌和乳酸菌等)可以利用碳水化合物为底物合成甘露醇而不生成山梨醇。

真菌以葡萄糖为底物生成甘露醇的容积产率较低,还会消耗产生的甘露醇,使得生产过程难以控制。

相比而言,乳酸菌,尤其是异型乳酸菌代谢途径中的甘露醇脱氢酶(MDH)更易于转化果糖生成甘露醇[4]。

明串珠菌属于异性发酵乳酸菌,是一种重要的革兰阳性菌。

它在多种发酵食品的生产中用作发酵剂,如辣白菜和德国泡菜,更重要的是能够用于甘露醇和葡聚糖的生产[5]。

延边地区的蔬菜发酵食品中含有丰富的乳酸菌,并且从朝鲜族辣白菜中分离出的乳酸菌当中明串珠菌属占主要优势[6],因此可以从延边地区的蔬菜发酵食品中先分离出异型发酵乳酸菌之一明串珠菌属,再筛选出高产甘露醇的眀串珠菌菌株,为眀串珠菌发酵有效生产甘露醇奠定基础。

1 材料与方法1.1 材料与试剂辣白菜、萝卜块、四川泡菜、酸菜:市售;甘露醇、蔗糖、酵母膏、蛋白胨、K 2H P O 4、NaCl、乙腈等试剂:国产分析纯。

1.2 仪器与设备SW-CJ-IFD型超净工作台:上海新苗医疗器械机械制造有限公司;NU-9668E超低温冷冻箱:美国NUAIRE公司;UV-75型紫外可见分光光度计:上海欣茂仪器有限公司;SX-700高压蒸汽灭菌器:日本TOMY公司;TS100型电子显微镜:上海尼康仪器有限公司;DNP-9082BS-Ⅲ型电热恒温培养箱:上海新苗医疗设备有限公司;PHS-3C型数字酸度计:上海鹏顺科学仪器有限公司;Acme 9000型高效液相色谱仪:韩国英鳞有限公司。

1.3 培养基明串珠菌的筛选和培养分别用加2%蔗糖的苯乙醇琼脂培养基(PES)和MRS培养基。

合成甘露醇的蔗糖培养基按照Eom [7]的方法配制(现用现配)。

1.4 方法1.4.1 眀串珠菌的筛选与纯化培养 眀串珠菌的筛选与纯化,采用平板稀释法[8-9]。

取实验材料的汁液10倍递增梯度稀释后,选择2~3个适宜稀释度均匀涂布于PES平板,30 ℃恒温培养箱中培养48 h。

将有明显明串珠菌菌落特征的单个菌落分别挑取到MRS培养基上,30 ℃恒温培养箱中培养48 h,并按照不同样品、不同发酵时间、不同稀释度进行编号(编号头字母依次为A、B、C、D、E、F)。

1.4.2 菌种的保藏 将已经纯化的菌种接种到1 mL MRS液体培养基中,30 ℃恒温培养箱中培养24 h。

然后,取0.7 mL培养液与0.3 mL 50%甘油混合,保藏于-80 ℃的冷冻冰箱中备用[9-10]。

1.4.3 发酵 将分离纯化的明串珠菌预培养、活化以后,按2%(v/v)的接种量接种到蔗糖培养基中,30 ℃恒温发酵24 h。

1.4.4 发酵液中甘露醇含量的测定 HPLC法[7]:利用韩国Younglin公司生产的高效液相色谱仪(M930溶媒输送泵和ACME 9000折光率检测器组成)和Asahipak NH2P-504E色谱柱(4.6 mm ID×250 mm,Shodex,Japan)测定发酵液中甘露醇的含量。

流动相为乙腈和水(75:25),流速为1 mL/min。

测定前将发酵液以3500 r/min的转速离心8 min,然后取上清液于0.45 μm滤孔过滤后进行测定。

标准曲线的绘制:使用高效液相色谱仪对4种标准浓度(0%、0.125%、0.5%、1%)的甘露醇溶液进行测定,并根据标准液中甘露醇含量与图谱上甘露醇波峰面积绘制标准曲线。

1.4.5 pH值的测定 取2 mL发酵液放入试管中,用酸度计进行测定。

1.4.6 OD值的测定 以蔗糖培养基溶液为标准液和稀释液,在660 nm波长下对发酵液进行测定[11]。

当测得OD值大于1时,则要对所测发酵液进行适当倍数的稀释后再行测定,直至OD值小于1。

1.4.7 菌种鉴定方法 菌株的16S rRNA序列的测定:16S r R N A 的序列分析是按照K i m 和Adachi的方法进行的[12]。

引物使用:27F(5'-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3')和1492R(5'-GGTTACCTTGTTACGACTT-3')。

16S rRNA基因是被SolGent有限公司人工合成的(大田,韩国)。

物种鉴定后,每一个菌种的序列被存放在DNA数据库中并编号[13]。

首先把被鉴定菌株培养出单一菌落,由SolGent有限公司进行序列测定,最后把所得菌株的DNA序列信息输入NCBI(National Center for Biotechnology Information [])数据库进行BLASTN分析[14]。

1.4.8 菌株的形态学观察 将已分离纯化的菌种分别涂布MRS固体培养基上,30 ℃恒温培养24 h。

观察菌落特征,取典型菌落涂片革兰染色,油镜下观察菌体形态[15]。

2 结果与分析2.1 眀串珠菌的分离纯化观察PES培养基的菌落特征,分离出产生黏性透明物质推测为明串株菌的菌株21株。

2.2 发酵液中甘露醇含量的测定将21株菌株按2%的接种量,分别接种到蔗糖培养基中,30 ℃恒温培养24 h后,用HPLC法测定发酵液中甘露醇的浓度,结果见表1。

表1 各菌株发酵液甘露醇浓度 %检测菌株甘露醇浓度检测菌株甘露醇浓度A62-D240.24B14-D400.17B170.19E3-B330.17E130.19B440.13E280.18B470.07E370.13C30.08F3-C230.16F6-C470.21F22-D3-F54-D210.15注:图表中“-”,表明在该菌株发酵液的HPLC图谱中未出现甘露醇波峰或者甘露醇波峰不明显。

表1中,每个编号头字母代表着一种菌株来源,以生成甘露醇含量不低于0.18%为基准,最终所挑选出的高产菌株依次为:B17、C47、D24、E13和E28。

2.3 高产甘露醇的眀串珠菌的发酵特性研究将所筛选出的5株高产菌株,分别接种到蔗糖培养基,30 ℃条件下发酵24 h。

期间,每隔3 h对发酵液进行OD值(660 nm)和pH值测定,并绘制出OD值变化曲线(图1)和pH值变化曲线(图2)。

图2 不同培养时间pH值的变化图1 不同培养时间OD值的变化从图1和图2中可以看出,所有菌株均没有明显的迟滞期。

当进入对数生长期后,OD值逐渐升高并达到最大值,这说明菌株生长速度逐渐加快,菌数急剧增加。

其中E28菌株生长速度最快,其次是D24和C47菌株,E13和B17生长速度与其他相比较缓慢。

同时菌液的pH值急剧下降,这是由于菌数的急剧增加,底物转化的速度逐渐加快,产生酸性物质所致。

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