实验09 家兔颈部动脉与神经的分离及减压神经放电的引导
动物生理学实验：家兔颈部神经、颈总动脉的分离以及动脉的插管手术以及减压神经放电的引导
考核内容
• 自行设计一个综合性的动物生理学实验
要求: 1、要有自己的创新 2、写出设计的依据和目的 3、实验方案 4、最后一次实 6.气管插管 7.分离神经和血管（两侧） 8.引导减压N放电 9.动脉插管
注意：
1.麻醉注射的部位一定要从耳缘静脉的远端 开始，而且务必要慢；
2.注意气管插管； 3.注意钝性分离，分离血管神经时，首先要
确认在一侧的气管旁边的总鞘摸内找到1个 颈总动脉，3根N,并最小的开始穿线，插管 时注意远心端要结扎。 4.结束时,先要再结扎动脉近心端才能拆插管， 不要把动脉夹弄丢，并通过注射空气处死 实验动物
家兔颈部神经、颈总动脉的分离以及动 脉的插管手术以及减压神经放电的引导
目的要求：
• 学习家兔麻醉、固定和手术方法 • 学会颈部气管插管方法 • 学会颈总动脉、迷走N、减压N、
交感N分离方法 • 学习颈部总动脉插管技术
操作过程：
1.称重 2.麻醉：20%氨基甲酸乙酯 3.固定 4.颈部剪毛 5.切开颈部皮肤，钝性分离皮下组织及肌肉组
中南大学生理学06-减压神经放电与动脉血压调节
减压神经放电与动脉血压的调节Depressor nerve discharge and the regulation of arteriole blood pressure 【教学对象与学时】一、教学对象：五年制本科二、学时：4学时【预习要求】理论：减压反射过程，动脉血压调节的方式操作：家兔减压神经走行，颈总动脉的解剖，前后的相邻关系，【目的要求】操作: 家兔颈总动脉、颈迷走神经和内脏大神经的解剖位置及其分离，减压神经放电的引导，颈动脉插管法理论: 心血管的神经支配动脉, 血压相对恒定的机制及生理意义，减压反射在其中的作用【重点和难点】重点：动脉插管，插管凝血；减压神经的辨认，分离和放电的引导。
难点：内脏大神经的分离【教学过程设计】1.课前提问和预习检查2.讲解血压的调节及影响因素3.介绍家兔颈总动脉、颈迷走神经和内脏大神经的解剖位置及其分离，减压神经放电的引导，颈动脉插管法。
4.实验结束前汇总全班实验结果，讨论比较体位和不同运动强度对血压和心率的影响，理解在不同生理情况下心血管的整合反应。
【课前预习检查或提问】一、什么是动脉血压？二、影响动脉血压的因素有哪些？三、减压神经属什么神经？参与何种反射？【课前讲解】一、设计原理直接插管于颈总动脉，将动脉血压的变化经压力换能器转变为电信号，由生物信号记录系统记录，兔主动脉弓压力感受器的传入神经在颈部自成一束，即减压神经，故可较方便地引导其放电。
减压神经放电随动脉血压波动而变化。
用牵拉和夹闭颈总动脉分别模拟动脉血压升高和降低对颈动脉窦的刺激作用，借以观察减压反射及其在动脉血压调节中的作用。
二、基本操作技术和仪器参数1、动物的麻醉与固定见实验指导2、分离减压神经于颈正中作一长约7cm的切口，分离皮下组织及肌肉，暴露颈总动脉以及与之并行的神经。
仔细辨认三条神经，迷走神经最细，规整，明亮，交感神经较细较暗，减压神经最细。
迷走神经位于最外侧，减压神经往往位于迷走神经和交感神经之间。
药物对家兔减压神放电及颈动脉血压的影响课件
【注意事项】
1. 准确判定减压神经。分离时不使神经上带有结缔组织 膜。并注意滴加生理盐水保持神经湿润。
2. 悬挂减压神经时不要牵拉过紧，引导电极应悬空，勿 触及周围组织。
【预期结果】
1.血压处于正常情况时减压神经的群集放电波形， 呈三角形，幅度先大后小，群集放电节律与心 率同步，同时能听到监听器发出类似火车开动 的声音。
【预期结果】
4：心迷走神经的节前和节后纤维均为胆碱能纤维，静脉 注射乙酰胆碱后，Ach作用于心肌M受体而抑制心肌的 活动使得血压降低；随后，压力感受器感受血压降低 ，传入神经冲动减少，通过心血管中枢的整合作用， 使心迷走紧张减弱，心交感和心缩血管紧张加强，作 用于心脏，使心率加快，心输出量增加，血管收缩， 血管外周阻力增加，从而血压恢复性升高，但整体趋 势为下降。
随后压力感受器感受血压降低传入神经冲动减少通过心血管中枢的整合作用使传入神经冲动减少通过心血管中枢的整合作用使心迷走紧张减弱心交感和心缩血管紧张加强作用心迷走紧张减弱心交感和心缩血管紧张加强作用于心脏使心率加快心输出量增加血管收缩血于心脏使心率加快心输出量增加血管收缩血管外周阻力增加从而血压恢复性升高但整体趋势管外周阻力增加从而血压恢复性升高但整体趋势为下降
； ③耳缘静脉注射1：100000乙酰胆碱0.3mL，观察动脉血压及减压神经放电频率 的变化及二者之间的变化。 ④待血压恢复正常或波动平复后，耳缘静脉注射1：10000去甲肾上腺素0.5mL，
观察动脉血压及减压神经放电频率的变化及二者之间的变化。 ⑤切断减压神经，分别在中枢端和外周段记录放电，观察有何变化。
【实验方法与步骤】
动物手术
(1）家兔捉拿、称重。静脉注射25％乌拉坦（4ml/kg）将动 物麻醉，仰卧固定于兔手术台；
【精选】家兔主动脉神经放电 doc资料
家兔主动脉神经放电实验八家兔主动脉神经放电一、实验目的1、学习颈部脉神经及血管分离术2、学习在体主动脉神经冲动的引导方法3、观察主动脉神经放电特点及药物对神经冲动发放的影响二、实验原理1、主动脉神经(又称减压神经)是主动脉弓压力感受器的传入神经。
神经传入冲动的频率，在一定范围内随主动脉血压的升高或降低而相应增加或减少，从而使压力感受性反射增强或减弱，以维持动脉血压的相对稳定，即减压反射。
2、心电图导联心脏除极，复极过程中产生的心电向量，通过容积导电传至身体各部，并产生电位差，将两电极置于人体的任何两点与心电图机连接，就可描记出心电图，这种放置电极并与心电图机连接的线路，称为心电图导联（lead）。
常用的导联如下：（一）标准导联亦称双极肢体导联，反映两个肢体之间的电位差。
⏹Ⅰ导联将左上肢电极与心电图机的正极端相连，右上肢电极与负极端相连，反映左上肢（L）与右上肢（r ）的电位差。
当l 的电位高于r 时，便描记出一个向上的波形；当r 的电位高于l 时，则描记出一个向下的波形。
⏹Ⅱ导联将左下肢电极与心电图机的正极端相连，右上肢电极与负极端相连，反映左下肢（F）与右上肢（r ）的电位差。
当f 的电位高于r 时，描记出一个向上波；反之，为一个向下波。
Ⅲ导联：将左下肢与心电图机的正极端相连，左上肢电极与负极端相联，反映左下肢（F）与左上肢（l ）的电位差，当f 的电位高于l 时，描记出一个向上波；反之，为一个向下波。
3、心电图①、P波：心房除极化②、QRS：心室去极化③、T波：心室复极化T > 1/10R④、P-R间期：< 0.20s （60-90次/分）兴奋通过房室交界和房室束传导所需的时间⑤、S-T段：< 0.05 ~ 0.1 mV 心室肌细胞均处于复极化缓慢进行阶段，各部分之间没有电位差。
⑥、u波：T后0.02 ~ 0.04s，与T波方向一致，蒲肯野细胞复极化。
三、材料与方法（一）动物与器材⏹家兔⏹兔体手术台、RM6240计算机采集系统、音箱、常用手术器械、引导电极、止血钳、注射器、20%氨基甲酸乙酯、生理盐水、肾上腺素（1∶5000）、乙酰胆碱（1∶10000）、石蜡油、棉花。
动物生理学实验课件08家兔颈部动脉
注意：
1.麻醉注射的部位一定要从耳缘静脉的远端 开始，而且务必要慢；
2.注意气管插管； 3.注意钝性分离，分离血管神经时，首先要
确认在一侧的气管旁边的总鞘摸内找到1个 颈总动脉，3根N,并最小的开始穿线，插管 时注意远心端要结扎。 4.结束时,先要再结扎动脉近心端才能拆插管， 不要把动脉夹弄丢，并通过注射空气处死 实验动物
考核内容
• 自行设计一个综合性的动物生理学实验
要求: 1、要有自己的创新 2、写出设计的依据和目的 3、实验方案 4、最后一次实验课交（注明姓名，联系方式）
浅谈实验家兔的颈部手术
管前 ， 静脉周围粘连的其他组织应尽量分离彻底。 ） （ 应选用健 ４
康家兔进行实验 ， 避免使用 已做 过实 验的家兔 。 如做过“ 有机磷 中毒及解救” 实验的家兔 ， 再进行颈部手术 时 ， 钝性分离血管时 易出血 。（ ） ５ 在靠近头端处有颈外静脉的分支 ， 有些分支在充盈 时管径较粗 ， 但剪一斜 口血液流走后 ， 则管径显得非常细 。 导致 插管的难度加大 ； 找出颈外静脉的主干进行分离 。注意观察 应
围组织 。（）分离静 脉的长度为 ３— ｃ 有些筋膜或结缔组织 ３ ４ ｍ。 不易分离 。此时分离的长度可适当缩短 ， 但这会增加插管 的难
度 。分离不彻底 ，血管周 围还粘连有其他组织时 ，在剪开静脉 后， 由于血液流出 ， 静脉和周 围组织 的颜色一致 ， 导致切 口部位 不易判别 ， 甚至插管插入组织 中， 而不在静脉血管内， 所以在插
8助手在结扎丝线时因结扎力度不够或打成活结在输液时由于液体流向血管的同时产生了反作用力使输液管向后退输液时间较长时输液管可完全滑脱出血管所以应将丝线结扎牢固当然也应强调结扎时不要将输液管扎闭
维普资讯
Ｖｏ ． ４ ０ ６ Ｎ ． ４ １ ２ ２ ０ ｏ ２
使插管难度加大。４ （）有些家兔的静 脉血管易破 ， 影响对其 的分 离 。（） ５ 游离静脉分支进行插管 ， 将增 加插 管的难度。（ ）进行 ６ 插管操作 的姿势不正确 ， 造成插管难度加大 。７ 插管 口剪得太 （）
颈总 动脉位于气管两侧 ， 腹面 由胸 骨舌骨肌和胸骨 甲状肌
所覆盖 。用止血钳分离其上方 的肌 肉组织 ，可见一条粉红色血
在机 能学实验 中， “ 出神经 系统药对家兔血压的影响” 如 传
外静脉 。６ 插管操作的姿势 以插管者站在家兔左侧为例 ： （） 插管
实验九 家兔动脉血压的神经体液调节(最全)word资料
实验九家兔动脉血压的神经体液调节(最全)word资料实验九家兔动脉血压的神经体液调节一、实验目的1.学习直接测定家兔动脉血压的急性实验方法2.观察神经、体液因素对心血管活动的影响二、实验动物与器材家兔、兔体手术台、常用手术器械、止血钳、眼科剪、支架、双凹夹、气管插管、动脉插管、三通管、动脉夹、计算机采集系统、压力传感器、保护电极、照明灯、纱布、棉球、丝线、注射器、生理盐水、4%柠檬酸钠、20%~25%氨基甲酸乙酯、肝素、肾上腺素、乙酰胆碱等。
三、实验步骤1.实验仪器的准备打开计算机采集系统，接通压力传感器。
从显示器的试验项目中找出“循环试验”的“家兔血压调节”。
2.连通液导系统并制压将压力传感器的下方支管，通过输液管连接三通管，在连接动脉插管。
先用装有柠檬酸钠的的注射器向三通管内注入柠檬酸钠，直至充满压力传感器的上方支管，并用塞子塞住。
3.动物的准备麻醉家兔并进行颈部手术，分离主动脉神经。
同法分离迷走神经并穿线备用。
分离出2~3cm长的主动脉。
分离出的颈总动脉外壁应十分光洁，穿两条线备用，分别打上活结。
将两线分别拉至动脉两端备用。
同样的方法分离另一侧的血管与神经。
然后进行动动脉插管。
4.实验观察（1）观察正常的血压曲线调节扫描速度与增益，可以明显的观察到心室射血与主动脉回缩形成的压力变化与收缩压、舒张压的读数。
有时可以观察到血压随呼吸变化，心搏为一级波，呼吸波为二级波。
（2）轻轻提起对侧完好颈总动脉上的备用线，用动脉夹加毕30s，观察并记录血压变化。
出现变化后即取下动脉夹，记录血压恢复过程。
（3）刺激主动脉神经使刺激输出端连接保护电极，轻轻提起主动脉神经上的备用线，小心的将神经置于保护电极之上。
记录对照血压后，再用中等强度的连续电脉冲信号，通过保护电极，刺激神经10~20s。
血压出现明显下降后即可停止刺激，并待血压恢复。
如果血压并不下降，可以调整刺激强度后再行刺激。
（4）分别刺激主动脉神经的中枢端和外周端双结扎主动脉神经后，从两扎线结之间剪断神经。
家兔颈部动脉和神经的分离及减压神经放电的引导实验报告
.中央民族大学生命与环境科学学院生理学实验报告2011年10月28日家兔颈部动脉和神经的分离及减压神经放电的引导和家兔动脉血压的神经与体液调节【目的与要求】1.学习家兔颈部手术与分离主动脉神经的方法。
2.学习在体神经冲动引导与记录的方法，理解主动脉神经的生理功能。
3.掌握记录和测量家兔动脉血压的直接测量方法。
4.观察神经和体液因素改变对家兔动脉血压调节的影响，并分析该些因素的作用机制。
【实验原理】主动脉神经是主动脉弓压力感受器的传入神经，又称减压神经。
神经传入冲动的频率，在一定范围内随主动脉血压的升高或降低而相应增加或减少，从而使压力感受性反射增强或减弱，以维持动脉血压的相对稳定。
由于家兔主动脉神经独成一束，易于分离，故常用家兔为实验动物，进行主动脉神经冲动的引导与血压实验。
在正常的生理情况下，人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。
这种相对稳定性是通过神经和体液因素的调节而实现的，其中以颈动脉窦-主动脉弓压力感受器反射尤为重要。
此反射即可使升高的血压下降，又可使降低的血压升高，故有血压缓冲反射之称谓。
家兔的主动脉神经在解剖上独成一支，易于分离与观察其作用。
【实验动物及器材】家兔、兔手术台，常用手术器械，止血钳、眼科剪、支架、气管插管、Pc-Lab生物信号采集系统、保护电极、纱布、棉球、丝线、 20ml注射器、20%-25%氨基甲酸乙酯，肝素，去甲肾上腺素，生理盐水；RM6240生物信号采集系统，手术剪1把，眼科剪1把，止血钳，镊子，电刺激连线，兔手术台，注射器及针头，血管插管，动脉夹，血压换能器，铁架台，婴儿秤，输液装置，照明灯，有色丝线；【实验步骤】1、实验动物准备1）麻醉：取家兔一只称重，按4-5ml/Kg(1g/Kg)耳缘静脉注射20%-25%氨基甲酸乙酯进行麻醉。
2）固定剪毛：背位固定在兔手术台上，剪去颈部手术视野中的被毛。
3）手术分离血管与神经A、颈部皮肤切口5-7cm，分离皮下组织B、分离肌肉层：钝性分离C、行气管插管：倒“T”切口，插管固定D、分离血管与神经：一侧：迷走神经(1)、主动脉神经（2）、颈动脉（1）另一侧：迷走神经(1)、颈动脉(3)（插管用）2、连接仪器引导减压神经放电活动打开Pc-Lab生物信号采集系统，连接引导电极在第一通道中，设置通道功能为神经放电，输入实验相关信息，采样观察减压神经放电活动。
实验七家兔减压神经放电
实验目的
学习和掌握哺乳类的麻醉和解剖方法。 学习观察测定神经放电的方法。 观察药物对减压神经放电的影响。
实验步骤
1．麻醉和固定 （1）麻醉：20%氨基甲酸乙酯 5 ml/kg体重，实验用家兔<2 kg，注射 约10 ml即可； 注射部位：耳缘静脉 注意：①速度----缓慢！！！ ②观察：肌张力;呼吸频率;瞳孔的变化;角 膜反射
六、结果分析：
1.减压神经呈簇状放电，神经放电幅度与心动周期中动脉血压的变化呈正相关。 2.去甲肾上腺素结合血管平滑肌α受体，使血管收缩，血压升高。 3.乙酰胆碱与心肌M受体结合，心率减慢，心输出量降低，血压降低；同时ACh 激动内皮细胞M受体，血管舒张，降低外周阻力，使血压下降。
七、实验结论：
1.压力感受性反射参与动脉血压的即时调节 2.心血管活动受植物神经调控 3.减压神经是传入神经，其群集放电的幅度与血压呈正相关
心 血 管 活 动 的 神 经 调 节
心血管中枢 （延髓）
迷 走 神 经
窦ห้องสมุดไป่ตู้神 经
心 迷 走 神 经
心 交 感 神 经
交 感 缩 血 管 神 经
感受器 （颈动脉窦、 主动脉弓） BP搏动性变化
效应器 （心、血管）
生理意义：
减压反射是一种负反馈调节机制。它在 平时经常起作用，使动脉血压维持在比较恒 定的水平。
实验七
家兔的减压神经放电
实验原理
兔的主动脉弓压力感受器的传入神经纤维自成一 束，在颈部与迷走神经、交感神经并行，称为减压神 经(depressor nerve)。 减压神经在动脉血压的调控中发挥重要作用，当 动脉血压升高时，主动脉弓压力感受器的传入冲动增 多，经减压神经传入中枢，使心迷走紧张增强，交感 性紧张减弱，从而使血压下降；反之，当动脉血压降 低时，主动脉弓压力感受器发放冲动减少，经减压神 经传入中枢，使心迷走紧张减弱，交感性紧张增强， 从而使血压升高。
家兔动脉血压的神经和体液调节
姓名*** 系年级********* 学号***********科目动物生理学实验同组者***、*** 日期***********家兔动脉血压的神经和体液调节【实验目的】1. 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验方法。
2. 观察神经、体液因素对心血管活动的影响。
【实验原理】在正常生理状况下，人和高等动物的动脉血压（arterial blood pressure，ABP）是相对稳定的。
这种相对稳定性是通过神经和体液因素的调节而实现的，其中以颈总动脉-主动脉弓压力感受性反射尤为重要。
此反射既可使升高的血压下降，又可使降低的血压升高，故有血压缓冲反射之称谓。
家兔的主动脉神经在解剖上独成一支，易于分离与观察其作用。
本实验是应用液导系统直接测定动脉血压。
即由动脉插管与压力传感器连通，其内充满抗凝液体，构成液导系统，将动脉插管插入动脉内，动脉内的压力及其变化，可通过封闭的液导系统传递到压力传感器，并由计算机采集系统记录下来。
【实验材料】1.材料：家兔。
2.器具：兔体手术台，常用手术器械，剪毛剪，解剖刀，咬骨钳，止血钳，气管插管，动脉插管，三通管，动脉夹，压力传感器，计算机采集系统，照明灯，注射器，棉花，棉线，银丝电极（双电极）。
3.试剂：20﹪氨基甲酸乙酯，4﹪柠檬酸钠溶液，肝素钠溶液，生理盐水。
【实验步骤】（一）实验仪器的准备1. 打开计算机采集系统，接通压力传感器。
从控制界面的菜单“实验项目”中选取“循环实验”的“家兔血压的调节”条，或者直接将相应采集通道的模式调整为“压力”模式。
使图线显示压力读数。
2. 连接液导系统并制压将压力传感器的下方支管，通过输液管连接三通管，再连接动脉插管。
上侧管供制压时排除管内空气使用。
先用装有20ml 4％柠檬酸钠的注射器，通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注，使之充满液体（不要使动脉插管高过压力传感器的上方支管）后，再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。
然后继续向三通管内推注，直至充满压力传感器的上方支管，并用塞子塞住（注意：液导系统内不可有气泡）。
优质《家兔动脉血压的神经体液调节》实验报告
优质《家兔动脉血压的神经体液调节》实验报告实验目的：探讨神经和体液因素对动脉血压的调节作用。
实验方法：采用液压传递系统直接测量和记录动脉血压的急性实验方法。
结果夹闭右颈总动脉，血压升高（P<0.01），电刺激减压神经，血压降低（P>0.05），电刺激迷走神经，血压降低（P<0.05），注射去甲肾上腺素，血压升高（P<0.01）。
结论夹闭右颈总动脉和静脉注射去甲肾上腺素使血压升高，刺激减压神经和迷走神经使血压下降。
动脉血压是心血管功能活动的综合指标。
正常情况下，人和高等动物的动脉血压在神经和体液因素的调节下保持相对稳定，因此可以通过改变神经、体液因素或施加药物，观察动脉血压的变化，间接反应各种因素对心血管功能活动的调节及影响。
本实验即是探讨神经和体液因素对动脉血压的调节作用。
1、实验材料：家兔，哺乳动物手术器械；血压换能器，生物信号采集处理系统，输液装置；氨基甲酸乙酯，生理盐水，去甲肾上腺素，乙酰胆碱2、实验方法：2.1 实验数据连接及参数设置动脉插管固定于血压换能器上，血压换能器固定于铁支柱上，高度与心脏处于同一水平面。
压力换能器输出线接微机生物信号采集处理系统输入通道。
参数如下：开启RM6240系统，在“实验”菜单中选择“兔动脉血压调节”，时间常数为直流，滤波频率100Hz，灵敏度12kPa，采样频率800Hz，扫描速度2s/div。
连续单刺激方式，刺激强度5-10V，刺激波宽2ms，刺激频率30Hz。
2.2 手术准备2.2.1 家兔称重后，按1g/kg体重的剂量于耳缘静脉注射200g/L的氨基甲酸乙酯麻醉。
动物麻醉后仰卧于手术台上，固定四肢，前肢交叉固定，用棉绳勾住兔门齿，将绳拉紧并缚于兔台铁架上。
2.2.2 减去颈部被毛，切开颈部皮肤5-7cm，钝性分离颈部肌肉、暴露颈部气管和血管神经鞘，用玻璃分针仔细分离右侧减压神经、右侧迷走神经和右侧颈总动脉，穿线备用，分离右侧颈外静脉和左侧颈总动脉，各穿两根线备用。
家兔动脉血压的神经与体液调节实验报告
家兔动脉血压的神经与体液调节实验报告家兔动脉血压的神经与体液调节实验报告引言：动脉血压是维持机体正常生理功能的重要指标之一，它受到神经和体液调节的影响。
为了深入了解家兔动脉血压的调节机制，我们进行了一系列实验。
本报告将详细介绍实验设计、方法、结果和讨论。
实验设计：我们选取了10只健康的家兔作为实验对象，随机分为两组。
一组为神经调节组，通过切断交感神经和迷走神经来观察其对家兔动脉血压的影响；另一组为体液调节组，通过注射不同浓度的盐水来模拟不同的体液调节状态，观察其对家兔动脉血压的影响。
方法：1. 神经调节组：在麻醉状态下，我们进行了交感神经和迷走神经的切断手术。
手术后，我们记录了家兔动脉血压的变化，并与术前进行对照。
2. 体液调节组：我们分别注射了低浓度盐水和高浓度盐水，模拟低血容量和高血容量状态。
在注射后，我们记录了家兔动脉血压的变化，并与注射前进行对照。
结果：1. 神经调节组：切断交感神经后，家兔动脉血压明显下降；切断迷走神经后，家兔动脉血压明显升高。
这表明交感神经和迷走神经对动脉血压有相反的调节作用。
2. 体液调节组：注射低浓度盐水后，家兔动脉血压下降；注射高浓度盐水后，家兔动脉血压上升。
这说明体液调节对动脉血压具有重要的调节作用。
讨论：1. 神经调节机制：交感神经的切断导致家兔动脉血压下降，这是因为交感神经释放的去甲肾上腺素能促使血管收缩，增加血压。
而迷走神经的切断导致家兔动脉血压升高，这是因为迷走神经能抑制心率和收缩力，从而降低血压。
2. 体液调节机制：低血容量状态下，体液调节机制会使血管收缩，增加血压；高血容量状态下，体液调节机制会使血管扩张，降低血压。
结论：家兔动脉血压的调节机制主要涉及神经和体液两个方面。
神经调节中，交感神经和迷走神经具有相反的作用；体液调节中，低血容量状态下血管收缩，高血容量状态下血管扩张。
这些调节机制的平衡对于维持动脉血压的稳定至关重要。
结语：通过本次实验，我们深入了解了家兔动脉血压的神经和体液调节机制。
兔减压神经放电及药物对放电的影响
兔减压神经放电及药物对放电的影响【目的和原理】本实验的目的是熟悉外周神经复合电位引导方法，通过同步记录减压神经放电及颈总动脉血压变化，观察二者之间的关系，从而了解压力感受器的工作特性，加深对减压反射的理解。
压力感受性反射是保持动脉血压稳定的重要调节机制。
减压神经为主动脉弓血管壁上压力感受器的传入纤维。
多数哺乳动物的减压神经在颈部混入迷走神经，其传入中枢的冲动引起降压反射。
家兔的减压神经自成一束，在颈部与交感神经、迷走神经和颈总动脉一起走行于颈动脉鞘内，主要反映主动脉弓压力感受器感受压力刺激的情况。
减压神经是传入神经，当主动脉弓处血压升高时，主动脉管壁被动扩张，减压神经传入冲动频率增多，反之，传入减少。
在压力感受性调节中，心迷走神经的节前和节后纤维均为胆碱能纤维，其节后纤维通过释放Ach作用于心肌M受体而抑制心肌的活动使得血压降低；心交感神经和交感缩血管神经的节前和节后纤维分别为胆碱能纤维和肾上腺素能纤维，节前纤维释放Ach作用于节后神经元的N受体而兴奋节后神经，后者再释放去甲肾上腺素兴奋心肌，收缩血管，使得血压升高。
不同药物作用于迷走神经及交感神经改变动脉血压，使得减压神经放电出现差异。
【实验对象】家兔【实验器械和药品】台秤、兔手术台、注射器（1ml、20ml各一个）、哺乳类动物手术器械一套、BL-420生物信号记录分析系统、监听器、引导电极、血压换能器、三通阀、铁支架2个、动脉夹2个、动脉插管、玻璃分针、棉线、25%氨基甲酸乙酯（乌拉坦）、0.5%肝素盐水、1：100000乙酰胆碱、1：10000去甲肾上腺素、生理盐水、酚妥拉明。
【实验方法和步骤】1：动物手术（1）家兔捉拿、称重。
静脉注射25％乌拉坦（4ml/kg）将动物麻醉，仰卧固定于兔手术台；（2）减压神经和颈总动脉的分离：剪去颈部手术野的毛，于喉下正中部位切开皮肤6～9cm，止血钳行钝性分离，暴露气管及两侧颈总动脉。
先不破坏颈动脉鞘，仔细观察迷走神经与交感神经之间一条最细的神经即为减压神经。
实验09 家兔颈部动脉和神经的分离及减压神经放电的引导
【实验结果】
记录减压神经放电活动。
【分析讨论】
解结果分析其机制。
【结论】
实验九 家兔颈部动脉和神经的分离及减 压神经放电的引导
【目的与要求】
1、学习家兔颈部手术与分离主动脉神经的方法。 2、学习在体神经冲动引导与记录的方法，理解主动 脉神经的生理功能。
【实验原理】
主动脉神经是主动脉弓压力感受器的传入神经， 又称减压神经。神经传入冲动的频率，在一定范围内 随主动脉血压的升高或降低而相应增加或减少，从而
术视野中的被毛。 3）手术分离血管与神经 A、颈部皮肤切口5-7cm，分离皮下组织 B、分离肌肉层：钝性分离 C、行气管插管：倒“T”切口，插管固定 D、分离血管与神经：
一侧：迷走神经(1)、主动脉神经（2）、颈动脉（1） 另一侧：迷走神经(1)、颈动脉(3)（插管用）
2、连接仪器引导减压神经放电活动
打开Pc-Lab生物信号采集系统，连接引导电极在第 一通道中，设置通道功能为神经放电，输入实验相关 信息，采样观察减压神经放电活动。
注意事项：
A、麻醉过程中，推注要慢，注射时先从耳缘静脉尽 可能远心端注射。 B、气管插管不可过深。 C、分离时应钝性分离，不可横向剪断肌肉。 D、分离神经和血管时尽量在原位分离。 E、动脉插管头端务必要扎紧，以防渗血。
【实验动物及器材】
家兔、兔手术台，常用手术器械，止血钳、眼科 剪、支架、气管插管、Pc-Lab生物信号采集系统、 保护电极、纱布、棉球、丝线、 20ml注射器、生理 盐水、20%-25%氨基甲酸乙酯、
【实验步骤】
1、实验动物准备 1）麻醉：取家兔一只称重，按4-5ml/Kg(1g/Kg)耳缘 静脉注射20%-25%氨基甲酸乙酯进行麻醉。 2）固定剪毛：背位固定在兔手术台上，剪去颈部手
家兔“减压神经放电与动脉血压调节”综合性实验的分析与评价
家兔“减压神经放电与动脉血压调节”综合性实验的分析与评价杨雪梅;张冬梅;王俊亚;陈岩【摘要】目的：加深学生对减压神经与动脉血压调节关系的理解与掌握，培养学生动手能力、观察能力和解决问题的能力。
方法观察家兔在体减压神经传入冲动的发放特征及神经、体液因素对动脉血压变化与减压神经传入冲动发放的关系。
结果减压神经放电幅度与心动周期中动脉血压的变化呈正相关；夹闭颈总动脉使减压神经放电增强；去甲肾上腺素使减压神经放电增强；乙酰胆碱使减压神经放电减弱。
结论通过将学生实验过程中出现的问题以及解决方法进行归纳总结，提出实验注意事项与实验效果评价方法。
%Objective To improve understanding of the students about the theory of discharge of aortic nerve on blood pressure adjustment, along with their hands-on ability, observational and problem-solving skills.Methods To observe the characteristics of Aortic Nerve Impulse in rabbits, along with the relations of neurohormonal factors and discharge of aortic nerve and blood pressure adjustment.Results There is a positive correlation between the amplitude of aortic nerve impulse and the changes of blood pressure in a cardiac cycle. The amplitude of Aortic nerve impulse was increased by clamping the common carotid artery or by norepinephrine. The amplitude of Aortic nerve impulse was decreased by acetylcholine.Conclusion We summarize the problems we encounter and solutions we use in doing these student experiments into experimental notes and evaluation methods which can guide us in future experiments.【期刊名称】《继续医学教育》【年(卷),期】2016(030)008【总页数】3页(P58-60)【关键词】减压神经放电;动脉血压;综合实验【作者】杨雪梅;张冬梅;王俊亚;陈岩【作者单位】首都医科大学燕京医学院机能学教学实验室，北京 101300;首都医科大学燕京医学院机能学教学实验室，北京 101300;首都医科大学燕京医学院机能学教学实验室，北京 101300;首都医科大学燕京医学院机能学教学实验室，北京 101300【正文语种】中文【中图分类】G642.423近年来，医学机能学实验教学改革已成为国内医学院校基础医学实验教学改革的重要内容。
减压神经放电实验报告
减压神经放电实验报告一、实验介绍减压神经放电实验是一种常用的生物电学实验方法，旨在研究神经元在不同刺激下的放电活动。
本实验利用小鼠的颈部迷走神经刺激，观察其对心率的影响，并记录颈部迷走神经的放电活动。
二、实验步骤1. 将小鼠固定在手术床上并进行全身麻醉。
2. 切开小鼠颈部皮肤和肌肉，暴露出颈部迷走神经。
3. 使用电极刺激颈部迷走神经，并观察其对小鼠心率的影响。
4. 记录颈部迷走神经的放电活动，并进行数据分析和处理。
5. 实验结束后，将小鼠恢复到正常状态并进行观察和护理。
三、实验结果通过对多只小鼠进行减压神经放电实验，我们得到了以下结果：1. 颈部迷走神经刺激可以显著降低小鼠的心率。
2. 在刺激过程中，颈部迷走神经会出现明显的放电活动，其形态和频率与刺激强度和频率有关。
3. 不同小鼠之间的反应差异较大，可能与个体差异、身体状态等因素有关。
四、实验分析减压神经放电实验是研究神经元放电活动的常用方法之一。
通过对颈部迷走神经的刺激和记录其放电活动，可以了解神经元对不同刺激的响应规律，并探究其与生理功能之间的关系。
本实验结果表明，颈部迷走神经刺激可以显著降低小鼠心率，这与该神经对心脏起到抑制作用的生理机制相符。
同时，在刺激过程中，颈部迷走神经出现明显的放电活动，这说明该神经在传递信号时会产生特定的电信号，这为进一步研究神经元放电活动提供了基础数据。
然而，在实验中我们也发现了不同小鼠之间反应差异较大的情况。
这可能与个体差异、身体状态等因素有关。
因此，在进行减压神经放电实验时需要注意选择合适的实验对象，控制外部干扰因素等。
五、实验应用减压神经放电实验是研究神经元放电活动的重要手段之一，其应用范围广泛。
在医学领域，该实验可用于研究心血管、呼吸等系统的生理机制；在神经科学领域，该实验可用于探究神经元放电活动与行为、认知等方面的关系；在药理学领域，该实验可用于评估药物对神经系统的影响等。
六、实验注意事项1. 实验前需要进行充分准备和训练，并遵循相关规范和伦理要求。
家兔动脉血压的神经与体液调节实验报告
家兔动脉血压的神经与体液调节实验报告一、实验目的1、学习直接测定家兔动脉血压的急性实验方法。
2、观察神经与体液因素对家兔动脉血压的调节作用。
二、实验原理正常情况下，动脉血压保持相对稳定，这种相对稳定是通过神经和体液因素的调节实现的。
神经调节主要通过交感神经和副交感神经对心血管活动进行调节。
交感神经兴奋时，会使心率加快、心肌收缩力增强、血管收缩，从而导致血压升高；副交感神经兴奋时，则会使心率减慢、心肌收缩力减弱、血管舒张，血压降低。
体液调节主要通过肾上腺素、去甲肾上腺素、血管紧张素等激素来调节血压。
肾上腺素和去甲肾上腺素能使心脏兴奋、血管收缩，导致血压升高；血管紧张素则通过收缩血管升高血压。
三、实验材料1、实验动物：健康家兔 1 只。
2、实验器材：哺乳动物手术器械一套、压力换能器、生物信号采集处理系统、动脉插管、注射器、丝线、纱布等。
3、药品：20%氨基甲酸乙酯溶液、肝素生理盐水溶液、1:10000 肾上腺素溶液、1:10000 去甲肾上腺素溶液、生理盐水等。
四、实验步骤1、麻醉与固定家兔称重后，由耳缘静脉缓慢注射20%氨基甲酸乙酯溶液（5ml/kg）进行麻醉。
待家兔麻醉后，仰卧固定于手术台上。
2、手术操作（1）颈部正中切口：剪去颈部的毛，在颈部正中切开皮肤，分离皮下组织和肌肉，暴露气管。
（2）分离颈部血管和神经：在气管两侧，分别分离出右侧颈总动脉、迷走神经、减压神经和交感神经。
用玻璃分针小心分离神经和血管，避免过度牵拉和损伤。
在各神经和血管下穿线备用。
（3）动脉插管：在右侧颈总动脉远心端结扎，近心端用动脉夹夹住。
在结扎线下方用眼科剪在动脉上作一“V”形切口，将充满肝素生理盐水的动脉插管向心脏方向插入动脉内，并用丝线固定。
3、仪器连接将压力换能器与生物信号采集处理系统相连，调整好参数，使系统能准确记录动脉血压的变化。
4、观察项目（1）正常血压曲线：打开动脉夹，记录家兔正常的动脉血压曲线。
观察血压的波动情况，包括收缩压、舒张压和平均动脉压。
动物生理学实验思考题
实验二：坐骨神经标本的制作1、毁坏脑颅 ----单毁随。
保持静止，麻醉蟾蜍，减少痛苦。
2、脑颅+脊髓----双毁随。
排除中枢神经对腓肠肌的m影响。
3、完整的标本：坐骨神经脊柱骨+坐骨神经+腓肠肌+股骨头或胫腓骨头4、任氏液的作用：它包括钾离子，钙离子、钠离子，氯离子，碳酸氢根和磷酸二氢根等等。
维持其正常生理机能，维持细胞渗透压稳定，保持内环境稳态，相当于机体中的组织液。
5、注意事项：@用锌铜弓刺激时神经干要悬空，切勿接触其他物体。
@如果神经干结扎不好，通电断电时会引起腓肠肌收缩，需要重新结扎。
@剥过皮的保本不可和皮肤，赃物接触6、如何保持机能正常：1、金属器械不要碰及、损伤神经或腓肠肌2、保持湿润，常加任氏液，最好先泡一会.实验三四：骨骼肌单收缩和收缩特性1定义：阈强度或阈刺激，即产生动作电位所需的最小刺激强度，作为衡量组织兴奋性高低的指标。
强度小于阈值的刺激，称为阈下刺激；阈下刺激不能引起兴奋或动作电位，但并非对组织细胞不产生任何影响。
最适刺激强度有了阈刺激也就是刺激导致的电位变化已经达到了阈电位,这样就会有动作电位的产生,从而形成局部电位因为骨骼肌收缩是许多神经纤维共同作用的结果，当刺激在一定范围内增大时，兴奋的神经纤维增多，多支配的骨骼肌肌纤维也会随之增多，收缩增强活的神经肌肉组织具有兴奋性，能接受刺激发生兴奋反应。
标志单一细胞兴奋性大小的刺激指标一般常用阈值即强度阈值表示，阈值是指在刺激作用时间和强度－时间变化率固定不变的条件下，能引起组织细胞兴奋所需的最小刺激强度，达到这种强度的刺激称为阈刺激。
单一细胞的兴奋性是恒定的，但是不同细胞的兴奋性并不相同。
因此，对于多细胞的组织来说，在一定范围内，刺激与反应之间表现并非“全或无”的关系。
坐骨神经和腓肠肌是多细胞组织，当单个方波电刺激作用于坐骨神经或腓肠肌时，如果刺激强度太小，则不能引起肌肉收缩，只有当刺激强度达到阈值时，才能引起肌肉发生最微弱的收缩，这时引起的肌肉收缩称阈收缩（只有兴奋性高的肌纤维收缩）。
家兔动脉血压的神经
实验九家兔动脉血压的神经、体液调节一、实验目的1．学习直接测定动脉血压的急性实验方法，及同时记录与之相关的实验参数（心电图）的方法。
2．观察神经、体液因素对心血管活动的调节。
二、动物与器材1家兔2兔体手术台、RM6240计算机采集系统、音箱、常用手术器械、压力传感器、引导电极、刺激电极、动脉夹、止血钳、注射器、20%氨基甲酸乙酯、生理盐水、7%柠檬酸钠、肾上腺素（1∶5000）、乙酰胆碱（1∶10000）、石蜡油、棉花。
三、方法与步骤1．实验仪器的准备：打开计算机采集系统，进入“减压神经放电、血压、心电同步实验”项目。
制备液导系统，使压力传感器内充满7%柠檬酸钠（注意三通的方向，液导系统内不要留有气泡）。
调零（在不同灵敏度下）。
2．将动物麻醉后，背位固定于手术台上。
剪去颈部被毛，切开颈部皮肤，分离双侧颈总动脉、迷走神经、主动脉神经，穿线备用。
神经上滴石蜡油防止干燥。
3．动脉插管：将一侧动脉头端的备用线尽可能靠头端结扎（务必扎紧，以防渗血），另一棉线在近心端打活结备用，并用动脉夹在近心端夹闭血管。
用眼科剪在靠近头端结扎线的稍后方沿向心方向斜向剪开动脉上壁。
将动脉插管由开口处插入动脉管内，用备用线将动脉连同进入的插管扎紧，并将余线固定在插管上。
取下动脉夹，可记录血压的波动曲线。
（不要快速归零！）4．记录心电图：将针形电极插入动物四肢，选择II导联记录（右上肢负极-绿，左下肢正极-红，左上肢接地）。
5．观察项目：⑴观察正常的血压曲线：有时可观察到血压随呼吸变化，心搏为一级波，呼吸为二级波。
⑵轻提对侧完好颈总动脉的备用线，用动脉夹夹闭30s，观察并记录血压、心率变化。
(3) 刺激主动脉神经：用中等强度的连续电脉冲刺激神经10~20s，观察血压变化。
(2-6V、10-20HZ正电压连续单刺激)(4) 刺激迷走神经：同法刺激迷走神经，观察血压下降曲线与⑶有何不同。
双结扎双侧迷走神经并剪断后，观察血压变化。
分别刺激迷走神经中枢端与外周端，观察并记录血压的变化。
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注意事项：
A、麻醉过程中，推注要慢，注射时先从耳缘静脉尽 可能远心端注射。 B、气管插管不可过深。 C、分离时应钝性分离，不可横向剪断肌肉。 D、分离神经和血管时尽量在原位分离。 E、动脉插管头端务必要扎紧，以防渗血。
使压力感受性反射增强或减弱，以维持动脉血压的相
对稳定。由于家兔主动脉神经独成一束，易于分离，
故常用家兔为实验动物，进行主动脉神经冲动的引导
与血压实验。
在正常的生理情况下，人和高等动物的动脉血压 是相对稳定的。这种相对稳定性是通过神经和体液因 素的调节而实现的，其中以颈动脉窦-主动脉弓压力感 受器反射尤为重要。此反射即可使升高的血压下降， 又可使降低的血压升高，故有血压缓冲反射之称谓。 家兔的主动脉神经在解剖上独成一支，易于分离与观 察其作用。
【实验动物及器材】
家兔、兔手术台，常用手术器械，止血钳、眼科 剪、支架、气管插管、Pc-Lab生物信号采集系统、 保护电极、纱布、棉球、丝线、 20ml注射器、生理 盐水、20%-25%氨基甲酸乙酯、
【实验步骤】
1、实验动物准备 1）麻醉：取家兔一只称重，按4-5ml/Kg(1g/Kg)耳缘 静脉注射20%-25%氨基甲酸乙酯进行麻醉。 2）固定剪毛：背位固定在兔手术台上，剪去颈部手
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术视野中的被毛。 3）手术分离血管与神经 A、颈部皮肤切口5-7cm，分离皮下组织 B、分离肌肉层：钝性分离 C、行气管插管：倒“T”切口，插管固定 D、分离血管与神经：
一侧：迷走神经(1)、主动脉神经（2）、颈动脉（1） 另一侧：迷走神经(1)、颈动脉(3)（插管用）
2、连接仪器引导减压神经放电活动
【实验结果】
记录减压神经放电活动。
【分析讨论】
解释结果分析其机制。
【结论】
实验九 家兔颈部动脉和神经的分离及减 压神经放电的引导
【目的与要求】
1、学习家兔颈部手术与分离主动脉神经的方法。 2、学习在体神经冲动引导与记录的方法，理解主动 脉神经的生理功能。
【实验原理】
主动脉神经是主动脉弓压力感受器的传入神经， 又称减压神经。神经传入冲动的频率，在一定范围内 随主动脉血压的升高或降低而相应增加或减少，从而