生理学实验 家兔减压神经放电
实验二十一 家兔减压神经放电
Rabbit depressor neural discharges
【实验目的】
学习引导减压神经放电的电生理学实验方法；观察动脉血压变化与减压神经放电的关 系。
【实验原理】
当动脉血压升高或降低时， 压力感受器的传入冲动也随之增加或减少， 通过中枢机制引 起心率、心肌收缩力、心输出量、血管阻力等发生相应变化，使动脉血压降低或回升，从而 调节血压相对稳定，这一反射称为减压反射。家兔降压反射的主动脉弓压力感受器的传入神 经在颈部单独成一束，称为主动脉神经或减压神经。它是减压反射的传入神经，可将感受器 感受血压变化的传入冲动传送到中枢。用电生理学实验方法可引导、显示、记录减压神经放 电，并用监听器监听减压神经放电的声音。
【实验对象】
家兔。
【实验材料】
哺乳类动物手术器械，兔手术台，BL-410 生物信号采集处理系统，压力换能器、引导 电极，电极架，注射器，玻璃分针，烧杯，棉球及丝线，纱布，滴管，液体石蜡，生理盐水， 1.5%戊巴比妥钠，1:10000 肾上腺素溶液，1:10000 乙酰胆碱溶液。
【实验步骤】
1．手术
(1)麻醉和固定 用 1.5%戊巴比妥钠，按 2ml／kg的剂量从兔耳缘静脉缓慢注入，待动 物麻醉后，取仰卧位固定于兔手术台上。
(2)分离减压神经 颈部剪毛，在颈部正中切开皮肤(约 6～8cm)，钝性分离皮下组织及 肌肉，暴露气管。沿气管两侧小心分离减压神经(如头发粗细)和颈总动脉，穿线备用。减压 神经分布（图 21－1、－2、－3）
(3)颈总动脉插管。
(4)安置电极 向内滴入温热的液体石蜡，浸没神经和电极，以防神经干燥，并起绝缘、 保温作用。 将引导电极固定在电极架上， 用备用线提起减压神经并搭到引导电极的神经钩上， 注意神经不可牵拉过紧。引导电极应悬空并固定于支架上，不能触及周围组织，将接地线就 近夹在皮肤切口组织上。神经放电引导电极参见图 21－4。
2．连接实验仪器装置
(1)神经放电引导电极接到生物信号采集处理系统第 1 通道上，记录减压神经放电。
（2)颈总动脉插管通过压力换能器输入到生物信号采集处理系统第 2 通道上，记录动脉 血压曲线变化。
(3) 打开计算机启动生物信号采集处理系统，点击菜单“输入信号／1 通道／神经放
（图21－5）
，按开始按钮记录实验数据。
、 “输入信号／2通道／压力”
电”
【参数设定】
实验参数详见下表（可据实际情况调整各参数）
通道 换能器类型 增益选项 时间常数 滤波调节 扫描速度 50Hz滤波
采样参数
1 银丝电极 5000 0.01 10k 80ms/div 开
2 压力换能器 50 DC 10k 80ms/div 开
【观察项目】
1． 正常减压神经放电 减压神经伴随血压波动而呈现群集性放电， 电压约 100～200uV； 从监听器中可听到如火车开动样的“轰轰”声（图 13-24）。
2．夹闭颈动脉 观察减压神经群集性放电和动脉血压曲线的变化。
3．注射肾上腺素 从耳缘静脉注射 1:10000肾上腺素 0.3ml，观察减压神经群集性放电 和动脉血压曲线的变化。
4．注射乙酰胆碱 从耳缘静脉注射 1:10000 乙酰胆碱 0.3m1，观察减压神经群集性放 电和动脉血压曲线的变化。
【注意事项】
1．麻醉不宜过浅，以免动物躁动，产生肌电干扰。
2．仪器和动物均要接地，并注意适当屏蔽。
3．分离神经时动作要轻柔，不要牵拉；分离后及时滴旭温热液体石蜡，以防止神经干 燥，并可保温。
4．保持神经与引导电极接触良好；引导电极不可触及周围组织，以免带来干扰。
【思考题】
1．正常减压神经放电的基本波形有何特征?
2. 静脉注射肾上腺素、乙酰胆碱后，减压神经放电频率、幅度有何变化?与血压的关 系如何?
3．肾上腺素、乙酰胆碱是如何影响动脉血压的?
家兔颈部动脉和神经的分离及减压神经放电的引导实验报告
中央民族大学生命与环境科学学院 生理学实验报告 2011年10月28日 家兔颈部动脉和神经的分离及减压神经放电的引导 和 家兔动脉血压的神经与体液调节
【目的与要求】 1.学习家兔颈部手术与分离主动脉神经的方法。 2.学习在体神经冲动引导与记录的方法，理解主动脉神经的生理功能。 3.掌握记录和测量家兔动脉血压的直接测量方法。 4.观察神经和体液因素改变对家兔动脉血压调节的影响，并分析该些因素的作用机制。【实验原理】 主动脉神经是主动脉弓压力感受器的传入神经，又称减压神经。神经传入冲动的频率，在一定范围内随主动脉血压的升高或降低而相应增加或减少，从而使压力感受性反射增强或减弱，以维持动脉血压的相对稳定。由于家兔主动脉神经独成一束，易于分离，故常用家兔为实验动物，进行主动脉神经冲动的引导与血压实验。 在正常的生理情况下，人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。这种相对稳定性是通过神经和体液因素的调节而实现的，其中以颈动脉窦-主动脉弓压力感受器反射尤为重要。此反射即可使升高的血压下降，又可使降低的血压升高，故有血压缓冲反射之称谓。家兔的主动脉神经在解剖上独成一支，易于分离与观察其作用。 【实验动物及器材】 家兔、兔手术台，常用手术器械，止血钳、眼科剪、支架、气管插管、Pc-Lab生物信号采集系统、保护电极、纱布、棉球、丝线、20ml注射器、20%-25%氨基甲酸乙酯，肝素，去甲肾上腺素，生理盐水；RM6240生物信号采集系统，手术剪1把，眼科剪1把，止血钳，镊子，电刺激连线，兔手术台，注射器及针头，血管插管，动脉夹，血压换能器，铁架台，婴儿秤，输液装置，照明灯，有色丝线； 【实验步骤】 1、实验动物准备 1）麻醉：取家兔一只称重，按4-5ml/Kg(1g/Kg)耳缘静脉注射20%-25%氨基甲酸乙酯进行麻醉。 2）固定剪毛：背位固定在兔手术台上，剪去颈部手术视野中的被毛。 3）手术分离血管与神经 A、颈部皮肤切口5-7cm，分离皮下组织 B、分离肌肉层：钝性分离
家兔动脉血压的神经和体液调节
家兔动脉血压的神经和体液调节 【摘要】目的：通过直接测压法记录动脉血压，观察神经和体液因素的改变对家兔动脉血压调节的影响，并分析这些因素的作用机制。方法：通过给家兔夹闭一侧颈总动脉15s，注射0.3mL去甲肾上腺素、乙酰胆碱，电刺激完整的减压神经，刺激减压神经的中枢端和外周端，电刺激迷走神经外周端处理，用生物信号采集处理系统记录家兔动脉血压变化曲线。结果：给家兔夹闭一侧颈总动脉15s，注射0.3mL去甲肾上腺素，家兔动脉血压升高；注射0.3mL乙酰胆碱，电刺激完整的减压神经及其中枢端，电刺激迷走神经后，家兔动脉血压降低；电刺激减压神经的外周端，家兔动脉血压无明显变化。结论：家兔动脉血压受到神经和体液的调节。夹闭一侧颈总动脉时，压力感受器传入冲动减少，注射去甲肾上腺素，NE能广泛作用于缩血管效应的平滑肌受体，都能使血压升高；减压神经是传入神经，刺激其完整时及中枢端，传入冲动增多，电刺激迷走神经，都能使家兔的血压下降。【关键词】动脉血压；神经调节；体液调节；减压神经；压力感受器1实验材料和方法 1.1实验材料 1.1.1实验动物 家兔（雌雄不限）。 1.1.2实验材料和器械 微机化生物信号采集处理系统（RM6240系统），血压换能器，保护电极，注射器，电刺激装置，动脉夹，三通管，动脉插管，手术器
械，手术盘，玻璃分针，绳子，棉线，家兔手术台等；肝素，去甲肾上腺素，乙酰胆碱，氨基甲酸乙酯。 1.2实验方法 1.2.1实验装置准备和仪器参数设置 1.2.1.1用盛有肝素的注射器与三通管其中一个接头相连，旋动三通管上的开关，使动脉插管与注射器相通，推动注射器，排空动脉插管中的气体，使动脉插管内充满肝素溶液，然后回旋开关关闭三通管。1.2.1.2将血压换能器固定于铁支架上，使换能器的位置尽量与家兔心脏在同一水平面上。然后将换能器输出线接至RM6240生物信号采集系第1通道。压力换能器的另一端与三通管的其中一个接头相连，三通管的另一个接头与动脉插管相连。 1.2.1.3RM6240系统:点击“实验”菜单，选择“兔动脉血压调节”，仪器参数：通道时间常数为直流，滤波频率30Hz，灵敏度12kPa，扫描速度10.0s/div。正电压刺激方式，刺激强度为8V（刺激减压神经）、1V（刺激迷走神经），刺激波宽5ms，刺激频率25Hz。 1.2.2手术准备 1.2.2.1兔称重后，按5mL/kg体重剂量给家兔耳缘静脉注射200g/L的氨基甲酸乙酯使之麻醉，将兔仰卧并固定于兔手术台上。 1.2.2.2切开颈部皮肤、肌肉后，使颈部气管和两侧血管神经鞘暴露，用玻璃分针仔细分离右侧迷走神经和减压神经，各穿细线备用；用玻璃分针仔细分离两侧颈总动脉，穿线备用。 1.2.2.3在左颈总动脉头端用线结扎，向心端夹上动脉夹。用眼科剪在
山西大学大学物理实验演示实验实验报告范文
实验目的： 1.在拓展知识面的同时训练学生的动手操作能力； 2.通过此类实验建立理论联系实践的能力与思维； 记忆合金水车：形状记忆合金是一种特殊的功能材料，它可以记住加工好的形状，当外力或温度改变使其形状发生改变的时候，只要适当的加热就可以恢复原来的形状。该装置让所选记忆合金周期性地与高温热源和低温热源接触，形状随之周期性地变化，从而驱动水车轮的转动，形象地展示了热变为功的过程和形状记忆合金的特性和用途。 该种形状记忆合金为镍钛合金，有双程记忆功能（即能记忆温度高低两种情况下的形状）可以有上百万次的变形和恢复。镍钛合金还有相当好的生物相容性，相变温度较低，约在40-50℃，医学上用于脊柱侧歪、骨骼畸形等的矫正。 低温差热机：可以利用比环境温度高4℃的任何热源，使一组活塞运动并推动转轮运转，是一种很好的利用低温热源的热机，可以利用不高的温度差实行热工转化。主要应用在于能利用传
统热机无法利用的能量来源。 经典置换式热气机：利用酒精灯的热量驱动一组活塞、连杆和转轮往复运动，工作物质为封闭在透明活塞筒中的空气。活塞和工作物质在往复过程中完成吸放热和能量转化，工作过程形象直观，是对热力学定律和热机原理极好的阐释。其透明活塞材料为石英玻璃，主要特点是热胀冷缩系数小，透光性好。耐腐蚀性强。 投影式伽耳顿板：可以用来验证大量随机物理事件共同遵循的统计物理规律。统计物理规律因等概率假设则其结果可靠，在应用方面很广泛，比如相对论基本假设的提出等等。 辉光盘：利用低压气体分子在在高频强电场中激发、碰撞、电离、复合的过程，外界声音影响电场分布从而影响电子运动，在盘上显示出形状变化的荧光。 昆特管（声驻波演示）：利用管中泡沫小球在声驻波场中形成的“泡沫墙”将看不见的声波显示出来，实现了抽象概念的具象化。该装置的缺点是无法消除静电的影响：泡沫小球帖在管内壁上。 气柱共鸣声速测量装置：通过气柱共鸣测量
神经生理学模拟实验报告材料
实用文档专业：应用心理学 ： 学号：日期：地点：汪加诚3110102422 2016.1024 医学楼 C512 实验报告 课程名称：实验名称： 神经生理学指导老师：成绩： 同组学生：神经干不应期的测定实验类型：模拟实验 一、实验目的 了解蛙类坐骨神经干产生动作电位后其兴奋性的规律性变化。学习绝对不应期和相对不 应期的测定方法。 二、实验原理 神经组织和其他可兴奋组织一样，在接受一次刺激产生兴奋以后，其兴奋性将会发生规 律性的变化，依次经过绝对不应期、相对不应期，超常期和低常期，然后再回到正常的兴奋 水平。 采用双脉冲刺激的方法。将两刺激脉冲间隔由最小逐渐增大时，开始只有第一个刺激脉 冲刺激产生动作电位(action potential, AP)，第二个刺激脉冲刺激不产生 AP，当两刺激脉 冲间隔达到一定值时，此时第二个刺激脉冲刚好能引起一极小的 AP，这时两刺激脉冲间隔即 为绝对不应期。继续增大刺激脉冲间隔，这时由第二个刺激脉冲刺激产生的 A P逐渐增大，当 两刺激间隔达到某一值时，此时由第二个刺激脉冲刺激产生的 AP，其振幅刚好和由第一个刺 激产生的 A P相同，这时两刺激脉冲间隔即为相对不应期。 三、材料和方法 【材料】：蟾蜍或蛙；标本屏蔽盒、任氏液、微机生物信号采集处理系统。 【实验方法】： 1．系统连接和仪器参数设置 （1）RM6240 系统：点击“实验”菜单，选择“肌肉神经”或“生理科学实验项目”菜 单中的“神经干兴奋不应期的测定”或“神经干兴奋不应期的自动测定”项目。系统进入该 实验信号记录状态。仪器参数：1通道时间常数 0.02s、滤波频率 1KHz、灵敏度 4mV，采样频率 80KHz，扫描速度 1ms/p。双刺激激模式，最大刺激强度，刺激波宽 0.1ms，起始波间隔 30 ms，延迟 2ms，同步触发。
【生理学】临床机能实验讨论题--学生用有答案
临床机能实验讨论题 运动、体位变化对人体动脉血压的影响 离体心肌动作电位（模拟实验） 离子与药物对离体蟾蜍心脏活动的影响（模拟实验） MedLab生物信号采集处理系统使用 蟾蜍坐骨神经腓肠肌标本的制备 不同刺激强度和频率对骨骼肌收缩的影响 心室期前收缩与代偿间歇及不应期的测定 家兔实验基本操作胸内负压和气胸的观察 生理因素及药物对呼吸运动及膈肌放电的影响 神经、体液因素及药物对动脉血压的影响 左心室内压的测定 减压神经放电及其影响因素红细胞渗透脆性的测 定 尿生成的影响因素胃肠运动观察 1.钙离子、肾上腺素、乙酰胆碱对离体蛙心活动有何影响？为什么？ 2.心室肌动作电位的分期和产生机制？ 3.运动前后血压有何不同？机理如何？ 4.何谓期前收缩与代偿间歇？ 5.从不同刺激强度引起的反应，讨论刺激与反应的关系，出现的现象如何解释？ 6.复合收缩引起的条件？ 7为何吸入气中CO2浓度增加会使呼吸运动加强？ 8.何吸入纯氮气后会影响呼吸运动？ 9.增加无效腔，呼吸运动会有何变化，为什么？ 10.注射乳酸后影响呼吸运动？ 11切断两侧迷走神经后对呼吸有何影响，为什么？ 12实验所记录到的群集型减压冲动发放是代表血压的一级波还是二级波？试说明之。13总结减压神经放电与动脉血压的关系。 14夹闭颈总动脉，血压如何变化？为什么？ 15刺激完整减压神经及其中枢端以及外周端，动脉血压变化？为什么？ 16刺激迷走神经末梢外周端，引起血压？为什么？ 17静脉注射去甲肾上腺素，血压？为什么？ 18静脉注射大量生理盐水，尿量？为什么？ 19静脉注射1：10000去甲肾上腺素，尿量？为什么？ 20静脉注射20%葡萄糖液，尿量？为什么？ 21连续间断刺激迷走神经外周端，尿量？为什么？ 22静脉注射速尿，尿量？为什么？ 23静脉注射垂体后叶素，尿量？为什么？
弦上驻波实验-实验报告
实验名称：弦上驻波实验 目的要求 （1）观察在两端被固定的弦线上形成的驻波现象。了解弦线达到共振和形成稳定驻波的条件。 （2）测定弦线上横波的传播速度。 （3）用实验的方法确定弦线作受迫振动时的共振频率与驻波波长，张力和弦线线密度之间的关系。 （4）对（3）中的实验结果用对数坐标纸作图，用最小二乘法作线性拟合和处理数据，并给出结论。 仪器用具 弦音计装置一套（包括驱动线圈和探测器线圈各一个，1Kg砝码和不同密 度的吉他线,信号发生器，数字示波器，千分尺，米尺）。 实验原理： 1.横波的波速 横波沿弦线传播时，在维持弦线张力不变的情况下，横波的传播速度v与张力F T及弦线的线密度（单位长度的质量）p之间的关系为： 2.两端固定弦线上形成的驻波
考虑两列振幅，频率相同,有固定相位差，传播方向相反的间谐波u i（x,t）=
A cos( kx - wt -扪和 U2 (x, t) = A cos( kx+ st)。其中k 为波数，? 为 u i 与 U2 之间的相位差叠加，其合成运动为: t t) + 就0 = 2J1 cos(fcx —-)cos(wf + )由上可知，时间和空间部分是分离的，某个x点振幅不随时间改变: 川￡)= \2A cos(A-.r —< 振幅最大的点称为波腹，振幅为零的点，为波节，上述运动状态为驻波。驻波中振动的相位取决于cos(kx- ?/2)因子的正负，它每经过波节变号一次。所以，相邻波长之间各点具有相同的相位，波节两侧的振动相位相反，即相差相位n。对两端固定的弦(长为L),任何时刻都有： O J1 + T' ?._G—及则rns( —= 0 =Or 则cu^(kL—^) = 0 由上式知，? = n意味着入射波U1和反射波U2在固定端的相位差为n，即有半波损。?确定后，则有kL = n冗(n = 1 , 2, 3, 4)或入=2 +，驻波的频 率为： , a kt v f = — = — = n - J2TT刼2L fn三讪三"金=(佥)￡ 式中f i为基频，f n (n>1 )为n次谐波。 3.共振条件：对于两端固定的弦线上的每一列波在到达弦的另一端时都被反射，
物理演示实验报告
物理演示实验报告 学院材料科学与工程 专业材料科学与工程 年级2014级 姓名杨林 班级信箱号80 实验时间2016年5月4日星期三晚上 2016年5月10日 实验一锥体上滚 【实验目的】： 1．通过观察与思考双锥体沿斜面轨道上滚的现象，使学生加深了解在重力场中物体总是以降低重心，趋于稳定的运动规律。 2．说明物体具有从势能高的位置向势能低的位置运动的趋势，同时说明物体势能和动能的相互转换。 【实验仪器】：锥体上滚演示仪 图1 锥体上滚演示仪 【实验原理】： 能量最低原理指出：物体或系统的能量总是自然趋向最低状态。本实验中在低端的两根导轨间距小，锥体停在此处重心被抬高了；相反，在高端两根导轨较为分开，锥体在此处下陷，重心实际上降低了。实验现象仍然符合能量最低原理。 【实验步骤】： 1．将双锥体置于导轨的高端，双锥体并不下滚；
2．将双锥体置于导轨的低端，松手后双锥体向高端滚去； 3．重复第2步操作，仔细观察双锥体上滚的情况。 【注意事项】： 1．移动锥体时要轻拿轻放，切勿将锥体掉落在地上。 2．锥体启动时位置要正，防止它滚动时摔下来造成变形或损坏。 实验二陀螺进动 【实验目的】： 演示旋转刚体（车轮）在外力矩作用下的进动。 【实验仪器】：陀螺进动仪 图2陀螺进动仪 【实验原理】： 陀螺转动起来具有角动量L,当其倾斜时受到一个垂直纸面向里的重力矩(r×mg)作用,根据角动量原理, 其方向也垂直纸面向里。 下一时刻的角动量L+△L向斜后方,陀螺将不会倒下,而是作进动。 【实验步骤】： 用力使陀螺快速转动，将其倾斜放在支架上，放手后陀螺不仅绕其自转轴转动，而且自转轴还会绕支架旋转。这就是进动现象。
生理学实验 家兔减压神经放电
实验二十一 家兔减压神经放电 Rabbit depressor neural discharges 【实验目的】 学习引导减压神经放电的电生理学实验方法；观察动脉血压变化与减压神经放电的关 系。 【实验原理】 当动脉血压升高或降低时， 压力感受器的传入冲动也随之增加或减少， 通过中枢机制引 起心率、心肌收缩力、心输出量、血管阻力等发生相应变化，使动脉血压降低或回升，从而 调节血压相对稳定，这一反射称为减压反射。家兔降压反射的主动脉弓压力感受器的传入神 经在颈部单独成一束，称为主动脉神经或减压神经。它是减压反射的传入神经，可将感受器 感受血压变化的传入冲动传送到中枢。用电生理学实验方法可引导、显示、记录减压神经放 电，并用监听器监听减压神经放电的声音。 【实验对象】 家兔。 【实验材料】 哺乳类动物手术器械，兔手术台，BL-410 生物信号采集处理系统，压力换能器、引导 电极，电极架，注射器，玻璃分针，烧杯，棉球及丝线，纱布，滴管，液体石蜡，生理盐水， 1.5%戊巴比妥钠，1:10000 肾上腺素溶液，1:10000 乙酰胆碱溶液。 【实验步骤】 1．手术 (1)麻醉和固定 用 1.5%戊巴比妥钠，按 2ml／kg的剂量从兔耳缘静脉缓慢注入，待动 物麻醉后，取仰卧位固定于兔手术台上。 (2)分离减压神经 颈部剪毛，在颈部正中切开皮肤(约 6～8cm)，钝性分离皮下组织及 肌肉，暴露气管。沿气管两侧小心分离减压神经(如头发粗细)和颈总动脉，穿线备用。减压 神经分布（图 21－1、－2、－3） (3)颈总动脉插管。 (4)安置电极 向内滴入温热的液体石蜡，浸没神经和电极，以防神经干燥，并起绝缘、 保温作用。 将引导电极固定在电极架上， 用备用线提起减压神经并搭到引导电极的神经钩上， 注意神经不可牵拉过紧。引导电极应悬空并固定于支架上，不能触及周围组织，将接地线就 近夹在皮肤切口组织上。神经放电引导电极参见图 21－4。 2．连接实验仪器装置 (1)神经放电引导电极接到生物信号采集处理系统第 1 通道上，记录减压神经放电。 （2)颈总动脉插管通过压力换能器输入到生物信号采集处理系统第 2 通道上，记录动脉 血压曲线变化。 (3) 打开计算机启动生物信号采集处理系统，点击菜单“输入信号／1 通道／神经放 （图21－5） ，按开始按钮记录实验数据。 、 “输入信号／2通道／压力” 电”
驻波实验报告
实验目的： 1、观察弦振动及驻波的形成； 3、在振动源频率不变时，用实验确定驻波波长与张力的关系； 4、在弦线张力不变时，用实验确定驻波波长与振动频率的关系； 4、定量测定某一恒定波源的振动频率； 5、学习对数作图法。 实验仪器： 弦线上驻波实验仪（FD-FEW-II型）包括：可调频率的数显机械振动源、平台、固定滑轮、可动刀口、可动卡口、米尺、弦线、砝码等；分析天平，米尺。 实验原理： 如果有两列波满足：振幅相等、振动方向相同、频率相同、有固定相位差的条件，当它们相向传播时，两列波便产生干涉。一些相隔半波长的点，振动减弱最大，振幅为零，称为波节。两相邻波节的中间一点振幅最大，称为波腹。其它各点的振幅各不相同，但振动步调却完全一致，所以波动就显得没有传播，这种波叫做驻波。驻波相邻波节间的距离等于波长λ的一半。 如果把弦线一端固定在振动簧片上，并将弦线张紧，簧片振动时带动弦线由左向右振动，形成沿弦线传播的横波。若此波前进过程中遇到阻碍，便会反射回来，当弦线两固定端间距为半波长整数倍时，反射波与前进波便形成稳定的驻波。波长λ、频率f和波速V满足关系：V = fλ (1) 又因在张紧的弦线上，波的传播速度V与弦线张力T及弦的线密度μ有如下关系：(2) 比较(1)、(2)式得：(3) 为了用实验证明公式(3)成立，将该式两边取自然对数，得： (4) 若固定频率f及线密度μ，而改变张力T，并测出各相应波长λ ，作ln T -lnλ图，若直线的斜率值近似为，则证明了的关系成立。同理，固定线密度μ及张力T，改变振动频率f，测出各相应波长λ，作ln f - lnλ图，如得一斜率为的直线就验证了。 将公式(3)变形，可得：(5) 实验中测出λ、T、μ的值，利用公式（5）可以定量计算出f的值。 实验时，测得多个(n个)半波长的距离l，可求得波长λ为：(6) 为砝码盘和盘上所挂砝码的总重量；用米尺测出弦线的长度L，用分析天平测其质量，求出弦的线密度（单位长度的质量）：(7) 实验内容： 1、验证横波的波长λ与弦线中的张力T 的关系（f不变） 固定波源振动的频率，在砝码盘上添加不同质量的砝码，以改变同一弦上的张力。每改变一次张力(即增加一次砝码)，均要左右移动可动卡口支架⑤的位置，使弦线出现振幅较大而稳定的驻波。将可动刀口支架④移到某一稳定波节点处，用实验平台上的标尺测出④、⑤之间的距离l，数出对应的半波数n，由式(6)算出波长λ。张力T改变6次，每一T下测2次λ，求平均值。作lnλ- ln T图，由图求其斜率。
① 减压神经放电实验报告
减压神经放电实验 2012级临七3班廖梦宇2012021320 一、实验原理： 颈动脉窦和主动脉弓压力感受性反射，（carotid sinus-arotic arch baroreceptor reflex）：即压力感受性反射（baroreceptor reflex），亦称为降压反射(depressor reflex)。动脉压力感受器是位于颈动脉窦和主动脉弓的外膜与中膜之间的一些裸露的神经末梢，可以感受血管壁的牵张度，反应血压的变化。来自压力感受器的冲动通过传入神经窦神经传导到舌咽神经，通过主动脉神经加入迷走神经，在家兔该神经则游离的较长，称为减压神经，传入神经进一步传导冲动先到达孤束核再与心血管中枢联系。减压反射是一种负反馈调节机制。它在平时经常起作用，使动脉血压维持在比较恒定的水平。 二、实验目的： 1、观察减压神经传入冲动的发放特征。 2、动脉血压变动时与减压神经传入冲动发放的相互关系。 三、实验步骤： 1．麻醉和固定 （1）麻醉：25％乌拉坦溶液(1g/kg), 4ml／kg 注射部位：耳缘静脉 注意：①速度----缓慢！！！ ②原则：“一快，二慢，三看看（观察）” 观察：肌张力、角膜反射 （2）仰卧位固定 2. 手术 （1）颈部剪毛，颈正中切口约5~7cm， （2）用止血钳纵向钝性分离颈部肌肉， （3）分离一侧减压神经 血管神经鞘：颈总动脉、迷走、交感和减压神经。 分离出一段的减压神经（长约3～5cm），清除附着的脂肪或结缔组织；加温石蜡油以防止干燥，穿线备用。 3．引导 把已游离的减压神经轻轻悬挂在引导电极上。 注意：勿过度牵拉 4．仪器调试 引导电极连接于BL420实验系统。打开计算机，从BL420实验系统主界面的“实验模块”→“循环实验”→“减压神经放电”，开始记录。 四、观察项目： 1. 记录正常减压神经冲动特征并监听声音。 2. 夹住未插管的颈总动脉15~20秒，观察减压神经冲动、监听的声音的变化。 3. 牵拉插管一侧颈总动脉15～20秒，观察减压神经冲动、监听的声音的变化。
家兔动脉血压的神经和体液调节
姓名*** 系年级********* 学号*********** 科目动物生理学实验同组者***、*** 日期*********** 家兔动脉血压的神经和体液调节 【实验目的】 1. 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验方法。 2. 观察神经、体液因素对心血管活动的影响。 【实验原理】 在正常生理状况下，人和高等动物的动脉血压（arterial blood pressure，ABP）是相对稳定的。这种相对稳定性是通过神经和体液因素的调节而实现的，其中以颈总动脉-主动脉弓压力感受性反射尤为重要。此反射既可使升高的血压下降，又可使降低的血压升高，故有血压缓冲反射之称谓。家兔的主动脉神经在解剖上独成一支，易于分离与观察其作用。 本实验是应用液导系统直接测定动脉血压。即由动脉插管与压力传感器连通，其内充满抗凝液体，构成液导系统，将动脉插管插入动脉内，动脉内的压力及其变化，可通过封闭的液导系统传递到压力传感器，并由计算机采集系统记录下来。 【实验材料】 1.材料：家兔。 2.器具：兔体手术台，常用手术器械，剪毛剪，解剖刀，咬骨钳，止血钳，气管插管，动 脉插管，三通管，动脉夹，压力传感器，计算机采集系统，照明灯，注射器，棉花，棉线，银丝电极（双电极）。 3.试剂：20﹪氨基甲酸乙酯，4﹪柠檬酸钠溶液，肝素钠溶液，生理盐水。 【实验步骤】 （一）实验仪器的准备 1. 打开计算机采集系统，接通压力传感器。从控制界面的菜单“实验项目”中选取“循环实验”的“家兔血压的调节”条，或者直接将相应采集通道的模式调整为“压力”模式。使图线显示压力读数。 2. 连接液导系统并制压 将压力传感器的下方支管，通过输液管连接三通管，再连接动脉插管。上侧管供制压时排除管内空气使用。先用装有20ml 4％柠檬酸钠的注射器，通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注，使之充满液体（不要使动脉插管高过压力传感器的上方支管）后，再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。然后继续向三通管内推注，直至充满压力传感器的上方支管，并用塞子塞住（注意：液导系统内不可有气泡）。继续向三通管内推注，同时观察显示器上压力的变化。当加压到120mmHg（1mmHg=1.33×102Pa）左右即可关闭三通管。观察压力是否变化，如果压力下降，则需要检查液导系统的漏液原因，并重新制压。调节血压显示器的灵敏度，使30~130mmHg的变化都能在显示器上明显地反映出来。将动脉插管端的导管内充满肝素钠溶液。
家兔动脉血压的神经体液调节实验报告汇总
[目的与要求] 1 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法 2观察神经,体液因素对心血管活动的影响 [基本原理] 在正常人体内,任何高等动物的动脉血压时相对稳定的.这种相对稳定是通过神经和体液调节来实现的,其中以静动脉窦-主动脉弓压力感受性反射最为重要.此反射即可使升高的血压下降,又可使降低血压升高,故有血压缓冲反射之称.家兔的主动脉神经在解剖上独成一支,易于分离与观察起作用 本实验是应用液导系统直接测定动脉血压,即由动脉插管与压力传感器连通,其内充满抗凝液体,构成液导系统,将动脉插管插入动脉,动脉内的压力及其变化,可通过封闭的液导系统传导压力感受器,由计算机采集系统记录下来 [动物与器材] 家兔,手术台, 常用手术器械, 止血钳,眼科剪,支架,双凹管, 气管插管,动脉插管,三道管, 动脉夹,计算机采集系统,压力传感器,保护电极,照明灯,纱布,棉球,丝线,注射器(1ml,5ml,20ml),生理盐水,4%柠檬酸钠,20%-25%氨基甲酸已酯,肝素(200U/ml),肾上腺素(1:5000),已酰胆碱(1:10000) 【方法与步骤】 1、实验仪器的准备 打开计算机采集系统，接通压力传感器。从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条，使显示器显示压力读数。 2、连通液导系统并制压 将压力传感器的下方支管，通过输液管连接三通管，再连接动脉插管。上侧管供制压时排除管内空气使用。先用装有20ml 4%柠檬酸钠的注射器，通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注，使之充满液体（不要使动脉插管高过压力传感器的上方支管）后，再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。然后继续向三通管内推注，直至充满压力传感器的上方支管，并用塞子塞住（注意：液导系统内不可有
药物与神经调节对动脉血压的影响
药物与神经调节对动脉血压的影响 一、实验目的 1.掌握家兔动脉血压的描记和分析方法。 2.掌握家兔减压神经放电的引导方法和影响因素。 3.观察分析神经和体液因素对血压和心率的调节。 二．实验原理 1.动脉血压的影响因素： 心脏射血（每搏输出量），心率，外周阻力，血液充盈，大动脉管壁弹性。 2.心血管活动的调节 神经调节：压力感受性反射、心肺感受性反射、化学感受性反射 体液调节：RAAS，Adr，NE，ADH，内皮素），内皮舒血管因子（EDRF，NO），激肽，前列腺素（PGs）等。 3.减压反射： 血压↑→刺激压力感受器(颈动脉窦与主动脉弓)→传入神经(窦神经、减压神经)→传入冲动↑→心血管中枢整合作用→传出神经(心迷走神经兴奋，心交感神经抑制，交感缩血管纤维抑制)→心输出量和外周阻力↓→血压↓。 意义：此反射对血压变化及时纠正，对维持正常血压发挥着重要作用。 4.动脉血压的长期调节 肾-体液控制系统：细胞外液量增加→Q增多→-Bp升高→肾排水、排钠增加→-细胞外液总量减少→Bp下降。反之亦然。 影响因素：ADH、肾素—血管紧张素—醛固酮系统 三．实验步骤 1.兔称重、麻醉和固定。 2. 手术操作 （1）分离右侧减压神经、迷走神经和颈总动脉， （2）左侧颈总动脉分离、插管，记录血压。 （3）耳缘静脉留置头皮针，以备连续给药。 3.仪器连接 1道：引导电极 2道：血压换能器，动脉血压，心率 刺激输出：刺激电极与BL-420E系统的前面板相应插孔连接。 四、观察指标 1. 正常动脉血压、心率
2. 神经体液因素对血压、心率的影响 （1）减压神经放电 （2）乙酰胆碱，0.5ml，神经放电，血压 （3）去甲肾上腺素，0.5ml，神经放电，血压，撤除引导电极。 （4）牵拉左颈总动脉，5-10s, 2-5次/s, 血压、心率 （5）夹闭右颈总动脉, 5-10s，血压、心率 （6）肾上腺素，0.4ml，血压、心率 （7）刺激迷走神经外周端、中枢端，血压、心率。 五，实验注意事项 1. 保护耳缘静脉，先从耳远端进针。 2. 先分减压神经，再分颈动脉、迷走神经。 3. 每项实验后，等血压和心率恢复，再进行下一项目。 4. 注射药品后，再推注少量生理盐水，防止药物残留在局部静脉。 六，分析思考 1.注射NE、Ach时，血压、心率变化？结论？ 2.牵拉左颈总动脉，血压、心率变化？结论？ 3.夹闭右侧颈总动脉，血压的变化？结论？ 4.刺激右迷走神经外周端、中枢端，血压、心率的变化？神经调控机制？ 七、实验结果 不同因素对动脉血压的影响 刺激因素血压心率 牵拉颈总动脉↓↓ 夹紧颈总动脉↑↑ 减压神经↓↓ 迷走神经↓↓ 去甲肾上腺素↑↑ 肾上腺素↑↑ 乙酰胆碱↓↓
家兔动脉血压的神经体液调节实验报告
家兔动脉血压的神经体液调节 实验报告 [目的与要求] 1 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法 2观察神经,体液因素对心血管活动的影响 [基本原理] 在正常人体内,任何高等动物的动脉血压时相对稳定的.这种相对稳定是通过神经和体液调节来实现的,其中以静动脉窦-主动脉弓压力感受性反射最为重要。 本实验应用液导系统直接测定动脉血压,即由动脉插管与压力传感器连通,其内充满抗凝液体,构成液导系统,将动脉插管插入动脉,动脉内的压力及其变化,可通过封闭的液导系统传导压力感受器。 [动物与器材] 家兔 ,手术台, 常用手术器械, 止血钳,眼科剪,支架,双凹管, 气管插管,动脉插管,三道管, 动脉夹,计算机采集系统 ,压力传感器,保护电极,照明灯,纱布,棉球,丝线,注射器(1ml,5ml,20ml),生理盐水,4%柠檬酸钠,20%-25%氨基甲酸已酯,肝素(200U/ml),肾上腺素(1:5000),已酰胆碱(1:10000) 【方法与步骤】 1、实验仪器的准备 打开计算机采集系统，接通压力传感器。从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条，使显示器显示压力读数。 2、连通液导系统并制压 将压力传感器的下方支管，通过输液管连接三通管，再连接动脉插管。上侧管供制压时排除管内空气使用。先用装有20ml 4%柠檬酸钠的注射器，通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注，使之充满液体（不要使动脉插管高过压力传感器的上方支管）后，再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。然后继续向三通管
内推注，直至充满压力传感器的上方支管，并用塞子塞住（注意：液导系统内不可有气泡）。继续向三通管内推注，同时观察显示器上压力变化。当加压到120mmHg时既可关闭三通管。观察压力是否变化，如果压力下降，则需要检查液导系统的漏液原因，并重新制压。调节血压显示器的灵敏度，使30~130mmHg的变化都能在显示器上明显的反映出来。将动脉插管端的导管内充满肝素溶液。 3、动物的准备 （1）按照实验4-9方法，麻醉家兔并进行颈部手术，插入气管插管、分离主动脉神经。同时分离迷走神经并穿线备用。再将止血钳从颈总动脉下方穿过，轻轻张开止血钳，分离出2~3cm长的颈总动脉。分离出的颈总动脉外壁应该十分光洁，外面并无结缔组织及脂肪等物。在动脉上穿两条备用棉线，分别打上活结。将两线分别拉至分离出的动脉两端备用。同样方法分离另一侧血管与神经（一侧动脉用于插管侧压，另侧动脉实验用）。由于家兔的品种不同，个体之间也有差异，常发现3条神经的解剖位置有些变异。主动脉神经的最后确认，蓄意对血压的影响为准。 （2）动脉插管首先用5ml注射器从耳缘静脉注入肝素（200U？kg体重）以防凝血。然后在一侧动脉行动脉插管术以记录血压。其方法如下：将动脉头端的备用线尽可能靠头端结扎（务必扎紧，以防渗血），然后在另一备用线的向心侧（尽可能近心端），用动脉夹夹闭。轻轻提起动脉头端的结扎线，用锐利的眼科剪在靠近扎线的稍后方，沿向心方向斜向剪开动脉上壁（注意：不可只剪开血管外膜，也切勿剪断整个动脉，剪口大小约为管径的一半）。一手持弯头眼科镊，将其一个弯头从剪口处插进动脉少许，轻轻挑起剪开的动脉上壁，另一手将准备好的动脉插管由开口处插入动脉管内。如果插入较浅，可用一手轻轻捏住进入插管的动脉管壁，另一手拿住动脉插管，顺势轻轻推进至6~8mm左右（如果手感滞涩，说明插管并未进入动脉，必须退出插管，重新剪口再插），用备用线将动脉连同进入的插管扎紧（插管不可因扎线松动而滑出，亦不可漏液），并将余线系在插管的固定侧支上，以免滑脱。注意：插管应与动脉血管的方向一致，以防插管尖端扎破动脉管壁。轻轻取下向心端动脉夹，可见动脉血与插管内液体混合。再取下通向压力传感器的止血钳，此时显示器上出现血压的波动曲线。 4、实验观察
家兔减压神经传入冲动的引导
家兔减压神经传入冲动的引导 【目的要求】 1．学习在体记录神经冲动的方法。 2．观察家兔减压神经传入冲动的发放，从而加深对减压反射的理解。 【基本原理】 减压神经又称主动脉神经，是主动脉区感受主动脉压力的传入神经。减压神经传入冲动的频率在一定范围内随主动脉血压的升高或降低而相应增加或减少，从而使减压反射效应增强或减弱以保持血压相对稳定。由于家兔减压神经与迷走神经和颈交感神经分离开来，自成一束，为单独研究减压神经（减压反射）提供了方便。 【动物与器材】 家兔（2kg 以上）、常用手术器械、止血钳、兔体手术台、前置放大器、电子刺激器、示波器及示波照相机、心电图机、保护电极、水银检压计、动脉套管、动脉夹、气管插管、屏蔽箱、注射器、20%氨基甲酸乙酯、肝素（300 单位/ml ）、3.8%柠檬酸钠、生理盐水、石蜡油、去甲肾上腺素（1：100000）、乙酰胆碱 （1：100000）。 【方法与步骤】 1．按实验24 的手术过程麻醉、固定动物，并施行气管插管术。然后一侧做颈总动脉插管，连接水银检压计（注意：此时动脉夹暂不打开）。另一侧从血管神经束中分离减压神经。分离方法：首先用线提起颈总动脉，从被牵拉开来的结缔组织膜中辨认迷走神经、交感神经和减压神经。然后用玻璃解剖针自减压神经和交感神经之间的细小间隙中顺减压神经的走行自头端向胸侧轻轻划动剥离。注意：在此过程中应极力避免上述连接血管和诸神经的结缔组织膜破损。将减压神经分离1cm 左右，提起神经，插入引导电极（用保护电极代替），使电极与神经接触良好。然后用止血钳把伸经周围的皮肤提起，做成人工皮兜，向兜内滴加38—40C的石蜡油。注意：减压神经和电极记录部分均应浸泡在石蜡油中，神经与电极接触良好，但不能牵拉神经。电极记录部分也不可与周围组织接触。如必要时，可将减压神经结扎剪断，在其外周端记录传入冲动的发放。当引导电极固定良好后，实验应立即开始。注意：实验过程中要
生理实验预习题目及答案
1.运动前后血压有何不同？机理如何？ 2为何吸入气中CO2浓度增加会使呼吸运动加强？ 3.何吸入纯氮气后会影响呼吸运动？ 4.增加无效腔，呼吸运动会有何变化，为什么？ 5.注射乳酸后影响呼吸运动？ 6切断两侧迷走神经后对呼吸有何影响，为什么？ 7总结减压神经放电与动脉血压的关系。 8夹闭颈总动脉，血压如何变化？为什么？ 9刺激完整减压神经及其中枢端以及外周端，动脉血压变化？为什么？ 10刺激迷走神经末梢外周端，引起血压？为什么？ 11静脉注射去甲肾上腺素，血压？为什么？ 12静脉注射大量生理盐水，尿量？为什么？ 13静脉注射1：10000去甲肾上腺素，尿量？为什么？ 14静脉注射20%葡萄糖液，尿量？为什么？ 15静脉注射速尿，尿量？为什么？ 16静脉注射垂体后叶素，尿量？为什么？ 1.运动前后血压有何不同？机理如何？运动后即血压升高。机理有（1）运动时，心交感中枢兴奋和心迷走中枢抑制，肾上腺髓质分泌增多，血中儿茶酚胺浓度升高，引起心率加快和心肌收缩力增强。（2）运动时，由于肌肉节律性舒缩和呼吸运动加强，静脉回心血量增加；同时，交感缩血管神经兴奋，使容量血管收缩，也有利于回心血量增加。回心血量增多，通过心肌的异长自身调节机制，博出量增加。因此，心输出量明显增加。（3）由于运动时各器官血流量的重新分配，体循环外周阻力无明显改变。因此，运动后血压升高以收缩压升高为主。 2为何吸入气中CO2浓度增加会使呼吸运动加强？ CO2是调节呼吸运动最重要的生理性体液因素，它不但对呼吸有很强的刺激作用，并且是维持延髓呼吸中枢正常兴奋活动所必须的。每当动脉血中P CO2增高时，呼吸加深加快，肺通气量增大，并可在一分钟左右达到高峰。由于吸入气中CO2浓度增加，血液中CO2增加，CO2透过血脑屏障使脑脊液中CO2浓度增多，CO2+H2O H2CO3 HCO3-+H+, CO2通过它产生的H+刺激延髓化学感受器，间接作用于呼吸中枢，通过呼吸肌的作用使呼吸运动加强。此外，当PC O2增高时，还刺激主动脉体和颈动脉体的外周化学感受器，反射地使呼吸加深加快，但因C O2对外周感受器的刺激阈值远较中枢化学感受器为高，故以后者作用为主。 3.何吸入纯氮气后会影响呼吸运动？ 吸入纯氮气时，因吸入气中缺O2，肺泡气中P O2下降，导致动脉血中P O2下降，而PC O2却基本不变（因C O2扩散速度快），随着动脉血中P O2的下降，通过刺激主动脉体和颈动脉体外周化学感受器使延髓的呼吸中枢兴奋，膈肌和肋间外肌活动加强，反射性地引起呼吸运动增强。 此外，缺O2对呼吸中枢的直接效应是抑制，并随缺O2的程度的加深而逐渐加强。所以，缺O2程度不同，其表现也不一样。在轻度缺O2时，通过颈动脉体等的外周化学感受器的传入冲动对呼吸中枢起兴奋作用大于缺O2对呼吸中枢的直接抑制作用而表现为呼吸增强。在严重缺O2时，对呼吸中枢的抑制作用大于通过外周化学感受器对呼吸中枢的兴奋作用，
家兔主动脉神经放电.
实验八家兔主动脉神经放电 一、实验目的 1、学习颈部脉神经及血管分离术 2、学习在体主动脉神经冲动的引导方法 3、观察主动脉神经放电特点及药物对神经冲动发放的影响 二、实验原理 1、主动脉神经(又称减压神经)是主动脉弓压力感受器的传入神经。神经传入冲动的频率，在一定范围内随主动脉血压的升高或降低而相应增加或减少，从而使压力感受性反射增强或减弱，以维持动脉血压的相对稳定，即减压反射。 2、心电图导联 心脏除极，复极过程中产生的心电向量，通过容积导电传至身体各部，并产生电位差，将两电极置于人体的任何两点与心电图机连接，就可描记出心电图，这种放置电极并与心电图机连接的线路，称为心电图导联（lead）。常用的导联如下： （一）标准导联亦称双极肢体导联，反映两个肢体之间的电位差。 ?Ⅰ导联将左上肢电极与心电图机的正极端相连，右上肢电极与负 极端相连，反映左上肢（L）与右上肢（r ）的电位差。当l 的 电位高于r 时，便描记出一个向上的波形；当r 的电位高于l 时，则描记出一个向下的波形。 ?Ⅱ导联将左下肢电极与心电图机的正极端相连，右上肢电极与负 极端相连，反映左下肢（F）与右上肢（r ）的电位差。当f 的
电位高于r 时，描记出一个向上波；反之，为一个向下波。 Ⅲ导联：将左下肢与心电图机的正极端相连，左上肢电极与负极端相联，反映左下肢（F）与左上肢（l ）的电位差，当f 的电位高于l 时，描记出一个向上波；反之，为一个向下波。3、心电图 ①、P波：心房除极化 ②、QRS：心室去极化 ③、T波：心室复极化T > 1/10R ④、P-R间期：< 0.20s （60-90次/分）兴奋通过房室交界和房室束传导所需的时间 ⑤、S-T段：< 0.05 ~ 0.1 mV 心室肌细胞均处于复极化缓慢进行阶段，各部分之间没有电位差。 ⑥、u波：T后0.02 ~ 0.04s，与T波方向一致，蒲肯野细胞复极化。
减压神经放电与动脉血压神经调节的机制分析
减压神经放电与动脉血压神经调节的机制分析 【实验目的】 1. 实验观察减压神经集群放电频率与动脉血压之间的关系。 2. 观察部分神经因素对动脉血压和减压神经放电的影响。 3. 观察自主神经对动脉血压的影响，并分析其机制。 【实验原理】 机体动脉血压（artery blood pressure）能维持相对稳定，其原因是体内存在压力感受性反射（baroreceptor reflex）。在人的颈动脉窦和主动脉弓处存在能感受血压变化的压力感受器（baroreceptor），当动脉血压发生变化时，这些压力感受器感受的刺激也发生相应的变化，通过窦神经和主动脉神经传入延髓心血管系统，使压力感受性反射增强或减弱来维持动脉血压相对稳定。兔的主动脉神经在颈部自成一束，与迷走神经伴行称减压神经或降压神经（depressor nerve）。减压神经是传入神经（afferent nerve），当主动脉弓处血压升高时，主动脉管壁被动扩张，减压神经传入冲动频率增多，反之，传入减少。 在压力感受性调节中，心迷走神经的节前和节后纤维均为胆碱能纤维，其节后纤维通过释放Ach作用于心肌M受体而抑制心肌的活动；心交感神经和交感缩血管神经的节前和节后纤维分别为胆碱能纤维和肾上腺素能纤维，节前纤维释放Ach作用于节后神经元的N受体而兴奋节后神经，后者再释放去甲肾上腺素兴奋心肌，收缩血管。本实验通过直接记录家兔动脉血压和减压神经放电，观察神经体液因素对动脉血压和减压神经放电的影响，并分析压力感受性调节的受体机制。 【预习要求】 1. 动脉血压的概念、测定方法、及变化规律。 2. 颈动脉窦和主动脉弓压力感受性反射规律及生理意义。 3. 常见的影响动脉血压的神经体液因素。 4. 兔颈部的解剖结构、详细了解兔颈动脉和减压神经的解剖位置。 【实验动物、器材和药品】 1. 实验动物：家兔 2. 台秤、兔手术台、注射器（1ml、20ml各一个）、哺乳类动物手术器械一套、BL-410生物信号记录分析系统（或其它生物信号记录分析系统）、引导电极、血压换能器、三通阀、铁支架2个、动脉夹2个、动脉插管、玻璃分针、棉线、25%氨基甲酸乙酯（乌拉坦，urethane）、0.5%肝素盐水、1：100000乙酰胆碱、0.1％阿托品、1：100000乙酰胆碱、1：15000肾上腺素、1：15000去甲肾上腺素、生理盐水、酚妥拉明。 【实验方法与步骤】 1. 动物手术 （1）静脉注射25％乌拉坦（4ml/kg）将动物麻醉（anaesthesia），仰卧固定于兔手术台； （2）减压神经和颈总动脉的分离：剪去颈部手术野的毛，于喉下正中部位切开皮肤6～9cm，止血钳行钝性分离，暴露气管（trachea）及左颈总动脉（left common carotid artery）。先不破坏颈动脉鞘，仔细观察迷走神经与交感神经之间一条最细的神经即为减压神经。用玻璃分针轻轻分离左侧减压神经2～ 3cm，其下穿2根用生理盐水浸泡过的棉线备用；分离右颈总动脉2～3cm，穿双线备动脉插管用。 （3）动脉插管（cannulation）：塑料插管内预先充满肝素盐水溶液，结扎左侧颈总动脉远心端。用动脉夹夹住其近心端，穿线备用；用眼科剪剪一斜形剪口，心向插入动脉插管并结扎、固定。如有较多血液进入插管内，可经三通管向管内推入少量肝素溶液（特别注意正确使用三通管的使用）。 2. 仪器连接神经放电引导电极一端钩挂分离的减压神经，另外一端与BL-410系统1通道相连，血压换能器插头连至BL-410系统2通道，记录血压。 3. 软件操作：
家兔动脉血压的神经体液调节实验报告
家兔动脉血压的神经体液调节实验报告 [目的与要求] 1 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法 2观察神经,体液因素对心血管活动的影响 [基本原理] 在正常人体内,任何高等动物的动脉血压时相对稳定的.这种相对稳定是通过神经和体液调节来实现的,其中以静动脉窦-主动脉弓压力感受性反射最为重要.此反射即可使升高的血压下降,又可使降低血压升高,故有血压缓冲反射之称。 [动物与器材] 家兔 ,手术台, 常用手术器械, 止血钳,眼科剪,支架,双凹管, 气管插管,动脉插管,三道管, 动脉夹,计算机采集系统 ,压力传感器,保护电极,照明灯,纱布,棉球,丝线,注射器(1ml,5ml,20ml),生理盐水,4%柠檬酸钠,20%-25%氨基甲酸已酯,肝素(200U/ml),肾上腺素(1:5000),已酰胆碱(1:10000) 【方法与步骤】 1、实验仪器的准备 打开计算机采集系统，接通压力传感器。从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条，使显示器显示压力读数。 2、连通液导系统并制压 将压力传感器的下方支管，通过输液管连接三通管，再连接动脉插管。上侧管供制压时排除管内空气使用。先用装有20ml 4%柠檬酸钠的注射器，通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注，使之充满液体（不要使动脉插管高过压力传感器的上方支管）后，再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。然后继续向三通管内推注，直至充满压力传感器的上方支管，并用塞子塞住（注意：液导系统内不可有气泡）。继续向三通管内推注，同时观察显示器上压力变化。当加压到120mmHg时既可关闭三通管。观察压力是否变化，如果压力下降，则需要检查液导系统的漏液原因，并重新制压。调节血压显示器的灵敏度，使30~130mmHg的