实验七胃肠运动的直接观察Word版
胃肠运动的观察实验报告
胃肠运动的观察实验报告胃肠运动的观察实验报告胃肠运动是人体消化系统中的重要过程之一，它直接影响着食物的消化和吸收。
为了更好地了解胃肠运动的机制和规律，我们进行了一项观察实验。
实验过程中，我们采用了非侵入性的方法来观察胃肠运动。
首先，我们选取了一组健康的志愿者作为实验对象。
在实验开始前，我们要求志愿者空腹至少八小时，以确保胃肠道内没有食物残留。
然后，我们使用超声波技术来监测志愿者的胃肠道运动。
实验过程中，志愿者被要求躺下，并且保持放松状态。
我们将超声波探头放置在志愿者的腹部，以便观察胃肠道的运动。
通过超声波图像，我们可以清晰地看到胃肠道的收缩和蠕动。
在实验过程中，我们观察到了胃肠道的不同运动阶段。
首先是胃的收缩运动，这是胃肠道开始消化食物的第一步。
通过超声波图像，我们可以看到胃壁的收缩和放松，这有助于将食物推向十二指肠。
接下来是十二指肠的蠕动运动，这是食物进入小肠的过程。
我们观察到十二指肠壁的波动，这有助于将食物与胃酸混合，并促进消化酶的分泌。
最后是小肠的蠕动运动，这是食物在小肠内进一步消化和吸收的过程。
通过超声波图像，我们可以看到小肠壁的波动，这有助于将食物推向结肠。
通过观察实验，我们发现胃肠道的运动是一个复杂而有序的过程。
不同部位的胃肠道在不同时间段内表现出不同的运动模式。
胃的收缩运动主要发生在进食后的一段时间内，而十二指肠和小肠的蠕动运动则是持续进行的。
这些运动的协调与顺序对于食物的消化和吸收至关重要。
此外，我们还观察到胃肠道的运动与个体的生理状态和饮食习惯有关。
在实验中，我们发现在饥饿状态下，胃肠道的运动更加明显和频繁。
而在进食后，胃肠道的运动逐渐减弱。
这表明饥饿状态下，胃肠道更加积极地进行食物消化和吸收的过程。
通过这次实验，我们对胃肠运动的机制和规律有了更深入的了解。
胃肠道的收缩和蠕动是食物消化和吸收的关键步骤，而这些运动的协调与顺序对于人体的健康至关重要。
进一步的研究将有助于我们更好地理解和预防与胃肠道相关的疾病。
胃肠运动的观察实验报告
胃肠运动的观察实验报告实验目的，通过观察胃肠运动的实验，了解胃肠在不同条件下的运动规律，为进一步研究胃肠功能提供基础数据。
实验材料，实验所需材料包括，小白鼠、玻璃管、饲料、水、显微镜等。
实验步骤：1. 将小白鼠分为实验组和对照组，实验组给予不同食物进行观察，对照组给予正常饲料进行观察。
2. 观察小白鼠在不同食物条件下的进食情况，记录各组小白鼠的食量和进食时间。
3. 观察小白鼠在不同食物条件下的排便情况，记录各组小白鼠的排便次数和排便时间。
4. 通过显微镜观察小白鼠的胃肠道运动情况，记录各组小白鼠胃肠道的蠕动频率和幅度。
实验结果：1. 实验组小白鼠在给予高脂食物后，进食量明显增加，进食时间延长；而对照组小白鼠在给予正常饲料后，进食量和进食时间保持稳定。
2. 实验组小白鼠在给予高脂食物后，排便次数减少，排便时间延长；而对照组小白鼠在给予正常饲料后，排便次数和排便时间保持稳定。
3. 实验组小白鼠的胃肠道蠕动频率明显减慢，蠕动幅度减小；而对照组小白鼠的胃肠道蠕动频率和幅度保持稳定。
实验结论：1. 高脂食物会导致小白鼠的进食量增加、排便次数减少和胃肠道蠕动减慢，说明高脂食物会对胃肠功能产生不良影响。
2. 通过观察实验可以得出结论，胃肠在不同食物条件下会产生不同的运动规律，为进一步研究胃肠功能提供了重要的参考依据。
实验意义，通过本实验的观察和分析，可以更深入地了解胃肠在不同条件下的运动规律，为进一步研究胃肠功能和疾病提供重要参考，对于促进人类健康具有积极意义。
结语，本实验通过观察胃肠运动的实验，深入了解了胃肠在不同条件下的运动规律，为进一步研究胃肠功能提供了重要的参考依据，具有重要的科学研究价值。
胃肠运动的观察实验报告
胃肠运动的观察实验报告摘要：本实验是基于胃肠道消化与运动的应用实验，旨在通过观察小鼠食道、胃、小肠和大肠的运动规律，了解胃肠运动的生理特征和调节机制。
实验结果表明，胃肠道的运动是复杂而有序的过程，受神经、激素、环境等多种因素的调节，即使在外部影响下仍能保持较为稳定的运动规律。
本实验具有一定的指导意义，可为胃肠道疾病的治疗提供理论依据。
关键词：胃肠道；运动规律；生理特征；调节机制。
引言：胃肠道是人体内重要的消化和吸收道路。
它由食管、胃、小肠、大肠、直肠和肛门六大部分构成，是人类体内最长的一道道路。
胃肠道的消化和吸收能力与胃肠道的运动密切相关，胃肠道的运动规律对正常的消化和吸收起着非常重要的作用，因此对胃肠道的运动特性进行研究，有利于理解胃肠道疾病的病发机制和治疗。
实验方法：将小鼠切开胸腹腔，分离食管、胃、小肠和大肠，并进行清洗和处理。
使用放大镜观察小鼠胃肠道的运动规律，并记录运动规律；分别给小鼠灌入冷、热、甜、咸等口感元素，观察不同口感对胃肠道运动的影响。
实验结果：观察胃肠道的运动规律，发现不同消化道的运动模式各异。
食道的蠕动运动明显，胃部的收缩与放松既能作为形成物传输的推动力，也是混合、细磨及初步消化营养物质的重要场所。
小肠的蠕动比较规律，大肠则相对较慢。
同时，在不同口感元素的作用下，胃肠道明显有相应的反应，尤其是在甜味作用下更明显。
讨论：本实验结果表明，胃肠道的运动是由神经、激素、环境等多种因素综合调节的过程。
人体内的神经、激素和其他生物化学物质都可以调节胃肠道的运动，使之维持在一定的节律和强度上。
口感元素的作用也能促进或抑制胃肠道的运动，从而对食物的消化和吸收产生影响。
结论：胃肠道的运动规律是复杂而有序的过程，该过程在外部因素的影响下仍能保持较为稳定的运动规律。
本实验结果对于探讨胃肠道运动的生理特征和调节机制具有一定的指导意义，可为胃肠道疾病的治疗提供理论依据。
生理学实验—胃肠运动的观察
实验目的
了解：胃肠运动的方式及作用；胃肠运动的神经支配及体液影响 熟悉：迷走神经和交感神经分离；电刺激器的使用 掌握：家兔的腹部手术操作；神经、体液因素对胃肠运动的影响
实验原理
1.消化道平滑肌的一般生理特性 ①兴奋性较低，收缩缓慢。 ②有自动节律性，但频率慢且节律不稳定，波形忽高忽低。 ③紧张性（维持消化道运动，保持器官形态和在身体中的部位)。 ④较大伸展性,可延伸到自身长度4-5倍。 ⑤对电刺激不敏感，但对机械牵张、温度（eg吃冷的食物会腹痛） 和化学刺激特别敏感。
实验步骤：
1.动物手术 ❖ 麻醉、固定、气管插管、沿腹白线打开腹腔，暴露胃肠道 ❖ 分离颈部交感和迷走神经并穿线备用
2.观察项目 （1）观察胃和小肠的正常运动； （2）刺激迷走神经，观察胃肠运动的变化； （3）刺激内脏大神经，观察胃肠运动的变化； （4）滴加0.01%Ach1-2滴，观察胃肠运动的变化； （5）滴加0.01%NE1-2滴，观察胃肠运动的变化； （6）注射新斯的明1ml，观察胃肠运动的变化； （7）注射阿托品1ml，观察胃肠运动的变化。
2.消化道的神经支配
内在神经 肌间神经丛 （壁内神经丛）
黏膜下神经丛
支配平滑肌活动
消化道腺体分泌、肠内物 质吸收、局部血流控制
外来神经
NE 交感神经
（－）运动、腺体分泌
激动α2受体—舒张
副交感神经
Ach
（＋）运动、腺体分泌 激动M3受体—收缩
3.消化道的运动
消化道平滑肌具有自动节律性，可以形成多种形式的运动。 胃的运动主要有容受性舒张、紧张性收缩和蠕动。 肠的运动主要有紧张性收缩、分节运动和蠕动。 这些运动均会受到神经和体液的因素的影响。
胃肠运动观察 实验报告
胃肠运动观察实验报告胃肠运动观察实验报告引言：胃肠运动是指消化道中食物被推动和混合的过程，它对于食物的消化和吸收起着重要的作用。
本次实验旨在观察和记录胃肠运动的过程，以便更好地了解消化系统的功能和机制。
实验方法：1. 实验材料准备：- 一台电子胃肠运动观察仪- 一份标有时间轴的观察表格- 一组实验对象（志愿者）2. 实验步骤：a. 让实验对象空腹至少8小时，以确保胃肠道内没有食物残渣。
b. 让实验对象坐下，并将电子胃肠运动观察仪连接到他们的腹部。
c. 启动观察仪，开始记录胃肠运动的过程。
d. 实验对象在实验过程中可以自由活动，但不得进行剧烈运动。
e. 持续记录胃肠运动的变化，直到观察时间结束。
实验结果：根据我们的观察，胃肠运动表现出以下特点和变化：1. 胃肠蠕动：我们观察到胃肠道的蠕动运动，这是一种周期性的收缩和舒张。
这种运动有助于将食物推进到下一个消化阶段。
我们记录了每次蠕动的时间和持续时间，发现它们在不同的实验对象之间有一定的差异。
2. 混合运动：在胃肠道中，食物不仅被推动，还会被混合。
我们观察到胃肠道壁的收缩和放松，以及食物的搅拌和翻转。
这种混合运动有助于将食物与消化液混合，以便更好地进行化学消化。
3. 蠕动波：我们还观察到胃肠道中的蠕动波，这是一种沿着消化道传播的波动。
这种波动有助于将食物从胃向肠道推进，并促进充分的消化和吸收。
我们记录了蠕动波的速度和频率，发现它们在不同的部位和时间段有所不同。
讨论与结论：通过本次实验，我们对胃肠运动有了更深入的了解。
胃肠道的运动是由平滑肌的收缩和舒张控制的，这种运动是自主神经系统的调节下产生的。
胃肠道的蠕动、混合运动和蠕动波相互协调，确保食物在消化道中顺利推进和消化。
实验结果还显示了不同实验对象之间的差异。
这可能是由于个体差异、饮食习惯、生活方式等因素的影响。
进一步研究可以探索这些差异的原因，并为个性化的医疗和营养建议提供依据。
总之，胃肠运动是消化系统中至关重要的过程。
7、家兔胃肠运动的观察
胃肠运动的观察一、实验目的观察胃肠道的各种形式的运动，以及神经和体液因素对胃肠运动的调节二、实验原理消化道平滑肌具有自动节律性，可以形成多种形式的运动，主要有：紧张性收缩、蠕动、分节运动及摆动。
在整体情况下，消化道平滑肌的运动受到神经和体液的调节。
三、实验用品兔、手术器械、注射器、保护电极、肾上腺素、乙酰胆碱、新斯的明、20%氨基甲酸乙酯四、注意事项1、各段一定等长2、注射时要斜插，避免漏出3、注意实验动物的保温。
4、肠管的结扎以不使肠管内液体相互流通为准。
五、实验步骤麻醉20%氨基甲酸乙酯5ml/kg固定腹部手术：从剑突下，沿正中线切开皮肤、打开腹腔，暴露胃肠。
（伤口不宜过大，约10cm左右足够。
暴露过多，导致体温下降加剧。
）Array分离迷走神经前支：在膈下食管的末端左侧，找出迷走神经的前支，分离后，下穿一条细线备用。
选取一肠段进行实验：1．找到空肠，结扎近幽门端，自结扎处轻轻将肠腔内容物往肛门方向挤压，使之空虚（挤压时避免损伤肠黏膜和肠系膜血管）。
2.选择经过如此处理的小肠五段，每段长2cm左右，两端用棉线结扎，使.如下所示饱和MnSO4、5％葡萄糖和20%葡萄糖各5mL，结扎并做好标记，记下注入时间。
用止血钳闭合腹腔，覆盖上浸透温热生理盐水的纱布，以防散热干燥。
经10min后，首先观察各肠段涨缩蠕动状况，并描记。
实验项目观察胃肠的正常运动分别滴加肾上腺素和乙酰胆碱于肠壁上，观察胃肠运动的变化观察、记录各肠段对内容物吸收的情况，并比较、分析、解释。
六、实验结果结扎后（结扎了明显的五段）结论：注入生理盐水的小肠变细，注入硫酸镁的小肠变粗结果及分析：（1）胃的运动形成有紧张收缩、等容性舒张、蠕动，因为兔子在平静时是紧张性收缩，因此蠕动平稳而有规律胃正常运动（2）用电刺激迷走神经使末梢释放递质乙酰胆碱作用于胃肠平滑道平滑肌上N受体，引起胃肠运动增强，蠕动加快。
（3）刺激内脏大神经其末梢释放的去甲肾上腺素作用于胃肠道平滑肌β受体，引起胃肠运动减弱，蠕动变慢。
肠胃运动的观察的实验报告
肠胃运动的观察的实验报告一、实验目的观察和了解肠胃运动的形式、特点以及影响因素，加深对消化系统生理功能的认识。
二、实验原理肠胃运动受到神经、体液等多种因素的调节。
通过对实验动物进行不同的处理和刺激，可以观察到肠胃运动的变化，并分析其机制。
三、实验材料1、实验动物：健康成年大鼠若干只。
2、实验器材：手术器械、生物信号采集系统、压力传感器、灌胃针、刺激电极等。
3、实验药品：阿托品、新斯的明、肾上腺素、乙酰胆碱等。
四、实验方法1、动物麻醉与手术将大鼠用乙醚麻醉后，仰卧固定在手术台上。
沿腹部正中切口，打开腹腔，暴露胃和小肠。
在胃和小肠表面分别安置压力传感器，用于记录肠胃运动的压力变化。
2、观察肠胃运动的基本形式连接生物信号采集系统，观察并记录在正常生理状态下肠胃运动的波形和频率。
3、药物对肠胃运动的影响分别通过静脉注射阿托品、新斯的明、肾上腺素、乙酰胆碱等药物，观察并记录肠胃运动的变化。
4、刺激对肠胃运动的影响用电刺激胃壁和小肠壁，观察肠胃运动的反应。
五、实验结果1、正常生理状态下，肠胃运动呈现出有规律的蠕动波，胃的运动频率较慢，小肠的运动频率较快。
2、注射阿托品后，肠胃运动明显减弱，蠕动波的幅度和频率均降低。
这是因为阿托品阻断了胆碱能神经对肠胃平滑肌的兴奋作用。
3、注射新斯的明后，肠胃运动增强，蠕动波的幅度和频率增加。
新斯的明抑制了胆碱酯酶的活性，使乙酰胆碱在体内蓄积，从而增强了肠胃平滑肌的兴奋性。
4、注射肾上腺素后，肠胃运动减弱，这是由于肾上腺素能神经兴奋，导致肠胃平滑肌舒张。
5、注射乙酰胆碱后，肠胃运动明显增强，蠕动波的幅度和频率显著增加。
乙酰胆碱直接作用于肠胃平滑肌上的胆碱能受体，引起平滑肌收缩。
6、电刺激胃壁和小肠壁时，肠胃运动增强，刺激强度越大，反应越明显。
六、实验讨论1、肠胃运动的调节机制肠胃运动受到自主神经系统的调节。
副交感神经兴奋时，释放乙酰胆碱，促进肠胃运动；交感神经兴奋时，释放去甲肾上腺素，抑制肠胃运动。
实验七胃肠运动的直接观察
实验七胃肠运动的直接观察引言胃肠道是消化系统中的重要组织，负责将食物分解为可吸收的营养物质，并将废物排除体外。
胃肠运动是胃肠道正常功能的重要组成部分，它包括胃肠蠕动和消化液分泌，起到推动和混合食物的作用。
本实验旨在通过直接观察胃肠运动的方式，了解其机制和特征。
材料和方法材料：1.实验动物：健康的小鼠（数量根据实验需求）2.手术工具：手套、手术剪刀、镊子、医用注射器、10%氯化乙酸溶液、生理盐水3.实验设备：显微镜、组织取样刀、组织定位器、组织采集器、生理记录仪、荧光染料（如罗丹明B）4.实验药物：促胃肠运动药物（如卡维地洛）方法：1.动物术前准备：a.将小鼠放置于适宜的养殖环境中，维持其正常的饮食和生活习惯。
b.饲料禁食：在实验开始前12小时禁食，但允许饮水。
c.注射镇静剂：使用医用注射器将适量的镇静剂注射于小鼠体内，使其处于麻醉状态。
2.手术步骤：a.毛发剃除：在小鼠腹部用剃刀剃除毛发，以保持手术区域清洁。
b.手术准备：带手套进行手术。
使用消毒药水清洗手术器械，并准备好所需的手术材料。
c.手术切口：通过小鼠腹部进行中线切口，暴露出胃肠道。
d.取样和观察：使用组织取样刀和组织定位器采集胃肠道组织样本，并将其放置在显微镜下观察和记录。
3.药物处理：a.药物注射：使用医用注射器将促胃肠运动药物注射到小鼠体内。
b.观察记录：在药物注射后记录胃肠道的运动变化，并与未注射药物的情况进行对比。
4.数据分析：a.使用生理记录仪记录胃肠道运动的变化，并进行数据分析和统计。
b.将数据使用统计学方法进行处理，比较药物注射前后的差异。
结果与讨论通过以上实验步骤，我们可以直接观察和记录胃肠道的运动。
在正常情况下，胃肠道呈现周期性的蠕动运动，有助于食物的混合和推动。
在注射促胃肠运动药物之后，我们可以观察到胃肠道运动的增强或减弱，从而了解药物对胃肠道运动的影响。
此外，我们还可以使用荧光染料来标记胃肠道的组织结构，以更清晰地观察和记录胃肠道运动。
胃肠运动的实验报告
一、实验目的1. 观察和分析动物（家兔）的胃肠运动规律。
2. 理解胃肠运动在消化过程中的作用。
3. 掌握实验操作技能，提高实验设计能力。
二、实验材料与仪器1. 实验动物：家兔一只（体重约2-3kg）。
2. 实验仪器：解剖显微镜、手术器械、生理盐水、注射器、计时器、记录纸等。
3. 实验药品：生理盐水、乙醚（麻醉剂）、阿托品（胃肠运动抑制剂）。
三、实验方法1. 麻醉与固定：将家兔用乙醚麻醉后，仰卧位固定于解剖台上。
2. 解剖：切开家兔腹部，暴露胃、小肠和大肠。
3. 观察胃肠运动：a. 胃的运动：观察胃壁的紧张性收缩和蠕动情况。
b. 小肠的运动：观察小肠的紧张性收缩和蠕动情况。
c. 大肠的运动：观察大肠的紧张性收缩和蠕动情况。
4. 给药实验：在观察过程中，给予阿托品，观察胃肠运动的改变。
四、实验步骤1. 麻醉与固定：将家兔用乙醚麻醉后，仰卧位固定于解剖台上。
2. 解剖：切开家兔腹部，暴露胃、小肠和大肠。
3. 观察胃的运动：a. 在显微镜下观察胃壁的紧张性收缩和蠕动情况。
b. 记录胃的运动频率、幅度和持续时间。
4. 观察小肠的运动：a. 在显微镜下观察小肠的紧张性收缩和蠕动情况。
b. 记录小肠的运动频率、幅度和持续时间。
5. 观察大肠的运动：a. 在显微镜下观察大肠的紧张性收缩和蠕动情况。
b. 记录大肠的运动频率、幅度和持续时间。
6. 给药实验：a. 在观察过程中，给予阿托品。
b. 观察胃肠运动的改变，并记录相关数据。
五、实验结果与分析1. 胃的运动：a. 胃壁紧张性收缩明显，蠕动频率约为每分钟10次。
b. 胃蠕动幅度较大，持续时间较长。
2. 小肠的运动：a. 小肠紧张性收缩和蠕动均明显，蠕动频率约为每分钟20次。
b. 小肠蠕动幅度较大，持续时间较长。
3. 大肠的运动：a. 大肠紧张性收缩和蠕动均明显，蠕动频率约为每分钟5次。
b. 大肠蠕动幅度较小，持续时间较短。
4. 给药实验：a. 给予阿托品后，胃、小肠和大肠的运动均明显减弱。
7胃肠运动的直接观察、小肠吸收与渗透压的关系
胃肠运动的直接观察、小肠吸收与渗透压的关系一、实验目的：1﹒观察胃肠道的各种形式的运动，以及神经和体液因素对胃肠运动的调节。
2．掌握描记胃肠运动的原理和方法。
3．观察不同渗透压溶液对小肠吸收的影响，并分析其作用机理二、实验原理：1．消化间期小肠的运动形式是周期性的移动性收缩群。
2．消化期小肠运动的基本形式是紧张性收缩、分节运动和蠕动三、实验用品：生物信号处理系统，呼吸换能器，刺激电极，手术台，兔用手术器械，气管插管，橡皮管，注射器，纱布和棉线，5%葡萄糖溶液、硫酸镁溶液和生理盐水，肾上腺素、乙酰胆碱、新斯的明、20%氨基甲酸乙酯。
四、实验方法与步骤：1．捉拿：实验家兔多数饲养在笼内，所以抓取较为方便，一般以右手抓住兔颈部的毛皮提起，然后左手托其臀部或腹部，让其体重重量的大部分集中在左手上，这样就避免了抓取过程中的动物损伤。
不能采用抓双耳或抓提腹部。
称重，用20%乌拉坦溶液按5ml/kg体重耳缘静脉注射。
2．麻醉并固定兔子，剪毛、切开颈部皮肤，暴露气管3．气管、迷走神经下穿棉线备用4．将气管切开一小口，插管结扎5．腹部剪毛、切开皮肤，暴露胃肠6．观察胃肠蠕动状况，并描记7．在胃肠上分别滴加肾上腺素、乙酰胆碱，观察胃肠蠕动状况；分别刺激迷走神经、内脏大神经，观察胃肠蠕动状况8．于小肠上选取两段带有吸收毛细血管的部位，两端结扎，两段之间结扎；分别在两段中间穿线备用；分别将生理盐水或（5%葡萄糖溶液）、饱和硫酸美溶液注入两段小肠，结扎。
一段时间后，观察两段小肠注意事项1、各段一定等长2、注射时要斜插，避免漏出3、避免损伤肠黏膜和肠系膜血管4、结扎肠段时应防止把血管结扎，以免影响实验效果。
5、注意实验动物的保温。
6、肠管的结扎以不使肠管内液体相互流通为准。
实验项目1.观察胃肠的正常运动2.电刺激迷走神经，观察胃肠动作变化3.刺激内脏大神经4.滴加乙酰胆碱于肠壁上，观察胃肠运动的变化5.肾上腺素于肠壁上，观察胃肠运动的变化6.观察、记录各肠段对不同渗透压的溶液吸收的情况，并比较、分析、解释五、实验结果观察与记录以及分析：1胃的正常运动记录图：观察到肠、胃的运动：胃的运动形式有容受性舒张、紧张性收缩、蠕动肠的紧张性收缩、分节运动、蠕动三种运动方式2电刺激迷走神经，观察胃肠动作变化胃肠运动受副交感神经的支配，副交感神经加强胃肠运动，迷走神经为副交感神经，电刺激迷走神经，胃紧张性增强3刺激内脏大神经胃肠运动受交感神经的支配，交感神经抑制围胃肠运动，内脏大神经为交感神经，电刺激迷内脏大神经，胃紧张性减弱4滴加乙酰胆碱于肠壁上，观察胃肠运动的变化滴加乙酰胆碱，肠运动加强5肾上腺素于肠壁上，观察胃肠运动的变化滴加肾上腺素，肠运动减弱。
肠胃蠕动的实验报告
一、实验目的1. 了解肠胃蠕动的生理机制。
2. 观察和分析不同刺激对肠胃蠕动的影响。
3. 掌握肠胃蠕动实验的基本操作方法和注意事项。
二、实验原理肠胃蠕动是消化系统中重要的生理过程，它通过肌肉的收缩和松弛，将食物从口腔推向肛门，同时进行机械性和化学性消化。
本实验通过观察动物肠道在特定刺激下的蠕动情况，探讨神经、体液等因素对肠胃蠕动的影响。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：家兔（雌性，体重2-3kg）2. 实验仪器：手术显微镜、解剖剪、镊子、注射器、生理盐水、乙酰胆碱、肾上腺素、氯化钾溶液、酒精、碘酒、生理盐水溶液、记录仪、示波器3. 实验试剂：乙酰胆碱（0.1mol/L）、肾上腺素（0.1mol/L）、氯化钾溶液（0.1mol/L）四、实验方法1. 动物麻醉：采用吸入麻醉法，将家兔置于麻醉箱内，吸入1%的异氟醚麻醉。
2. 腹部手术：打开家兔腹部，暴露出小肠、大肠等肠道器官。
3. 分离迷走神经：用解剖剪分离出膈下迷走神经，并穿线固定。
4. 观察正常情况下肠胃蠕动：在示波器上观察肠胃蠕动波形，记录正常蠕动频率和幅度。
5. 乙酰胆碱刺激：在分离的迷走神经上给予乙酰胆碱（0.1mol/L）刺激，观察肠胃蠕动变化。
6. 肾上腺素刺激：在分离的迷走神经上给予肾上腺素（0.1mol/L）刺激，观察肠胃蠕动变化。
7. 氯化钾溶液刺激：向家兔腹腔内注入氯化钾溶液（0.1mol/L），观察肠胃蠕动变化。
8. 记录和分析实验数据：在实验过程中，记录不同刺激下肠胃蠕动的频率、幅度和波形变化。
五、实验结果与分析1. 正常情况下，家兔肠胃蠕动频率约为1次/分钟，幅度约为5-10cm。
2. 乙酰胆碱刺激后，肠胃蠕动频率增加至2-3次/分钟，幅度增大至10-15cm。
说明乙酰胆碱能增强肠胃蠕动。
3. 肾上腺素刺激后，肠胃蠕动频率降低至0.5-1次/分钟，幅度减小至2-5cm。
说明肾上腺素能抑制肠胃蠕动。
4. 氯化钾溶液刺激后，肠胃蠕动频率增加至2-3次/分钟，幅度增大至10-15cm。
肠道蠕动实验报告模板
一、实验目的1. 了解肠道蠕动的基本原理和过程。
2. 掌握肠道蠕动实验的方法和步骤。
3. 通过实验观察和分析肠道蠕动的规律和影响因素。
二、实验原理肠道蠕动是肠道平滑肌的一种收缩运动，是消化过程中食物向前推进的动力。
通过观察肠道蠕动，可以了解肠道运动功能及其影响因素。
三、实验材料1. 实验动物：小白鼠（体重相近，禁食20～24小时）2. 实验试剂：炭末生理盐水混悬液（0.1g/ml）、大承气汤水煎剂（1g/ml）、苦味酸溶液3. 实验器材：手术剪、眼科剪、直尺、注射器、小鼠灌胃针头、蛙板、解剖显微镜四、实验方法1. 实验分组：将小白鼠随机分为两组，每组2只，分别用苦味酸溶液标记。
2. 给药：分别用炭末生理盐水混悬液（0.1g/ml）和大承气汤水煎剂（1g/ml）以0.3ml/10g的剂量给小鼠灌胃。
3. 处死与解剖：给药18分钟后，用颈椎脱位法处死小鼠，打开腹腔，分离肠系膜，剪取上端至幽门，下端至回盲部的肠管。
4. 测量与计算：将小肠拉成直线，测量肠管的总长度，并从幽门至炭末前沿的距离计算炭末在肠内推进距离。
5. 数据统计：计算炭末推进百分率，并观察各组小鼠的容积变化。
6. 结果分析：对实验数据进行统计分析，比较两组小鼠的炭末推进距离和容积变化是否存在显著性差异。
五、实验步骤1. 准备实验材料，包括实验动物、试剂和器材。
2. 将小白鼠随机分为两组，并做好标记。
3. 给药：分别用炭末生理盐水混悬液和大承气汤水煎剂给小鼠灌胃。
4. 观察给药后小鼠的行为变化，如是否有腹泻、腹痛等症状。
5. 处死小鼠，打开腹腔，分离肠系膜，剪取肠管。
6. 测量肠管总长度和炭末在肠内推进距离。
7. 计算炭末推进百分率，并观察各组小鼠的容积变化。
8. 对实验数据进行统计分析，比较两组小鼠的炭末推进距离和容积变化是否存在显著性差异。
六、实验结果1. 炭末推进百分率：实验组与对照组炭末推进百分率的比较。
2. 容积变化：实验组与对照组小鼠容积变化的比较。
实验7胃肠运动的直接观察以及小肠平滑肌收缩记录共30页文档
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37、我们唯一不会改正的缺点是软弱。——拉罗什福科
xiexie! 38、我这个人走得很慢，但是我从不后退。——亚伯拉罕·林肯
39、勿问成功的秘诀为何，且尽全力做你应该做的事吧。——美华纳
40、学而不思则罔，思而不学则殆。——孔子
注意事项：
1.实验操作过程中，注意动物保温。经常用温热的 生理盐水湿润胃肠。
2.取小肠标本时勿牵拉；标本安装好后应在台氏液 里稳定5-10分钟，待标本有收缩活动时即可开始 实验。
3.保证氧气的补充 以及换液时台氏液的温度为38 度。
实验要求：
描述各项实验项目所得实验现象并分析。 描记小肠平滑肌运动曲线，并分析各种因素对
（4）待平滑肌稳定后，加入0.01%肾上腺素3-4滴， 观察并记录小肠平滑肌活动的变化。然后用台氏液 反复冲洗并更换新的台氏液。
方法与步骤：
（5）滴加1mol/L HCl溶液3-4滴，观察并记录小肠 平滑肌活动的变化。然后用台氏液反复冲洗并更换 新的台氏液。
（6）滴加1mol/L NaOH溶液3-4滴，观察并记录 小肠平滑肌活动的变化。然后用台氏液反复冲洗并 更换新的台氏液。
慢波电位（基本电节律）
频率：胃3次／min ；十二指肠12次／min；回肠末 端8－9次／min
波幅：10－15mV 产生机制：可能与细胞膜上生电性钠泵的活动有关。
动作电位
特点：锋电位上升慢、时程较长（10－20ms）、幅 值较低。
产生机制：主要是Ca2+内流
原理：
该实验方法不仅在理论上证明平滑肌的生理 特性，而且还可用来测量化学物质或药物的生理学 特性，被称为生物学鉴定法。
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实验七胃肠运动的直接观察
一：实验目的
观察胃肠道各种形式的运动，以及神经和体液因素对胃肠运动的调节。
二：实验原理
消化管平滑肌具有自动节律性，可以形成多种形式的运动，主要有紧张性收缩、蠕动、分节运动及摆动。
在整体情况下，消化管平滑肌的运动受神经和体液的调节。
三：实验步骤
1. 实验的准备
(1)棒击兔的后脑使其昏迷死。
将兔仰卧固定于手术台上，剪去颈部和腹部的被毛。
(2)按常规行气管插管术。
(3)从剑突下，沿正中线切开皮肤、打开腹腔，暴露胃肠。
(4)在膈下食管的末端找出迷走神经的前支，分离后，下穿一条细线备用。
以浸有温台氏液的纱布将肠推向右侧，在左侧腹后壁肾上腺的上方找出左侧内脏大神经，下穿一条细线备用。
2、实验项目
(1)观察相对正常情况下胃肠运动的形式，注意胃肠的蠕动、逆蠕动和紧张性收缩，以及小肠的分节运动等。
在幽门与十二指肠的接合部可观察到小肠的摆动。
(2)用连续电脉冲 (波宽0.2 ms、强度5 V,10～20 Hz)作用于膈下迷走神经1～3 min，观察胃肠运动的改变，如不明显，可反复刺激几次。
(3)用连续电脉冲 (波宽0.2 ms、强度10V，10～20 Hz) 刺激内脏大神经1～5 min，观察胃肠运动的变化。
(4)耳廓外缘静脉注射肾上腺素(1:10000)0.5 ml，观察胃肠运动的变化。
(5)将肾上腺素或乙酰胆碱分别滴在小肠上，观察小肠运动有何变化？
(6)耳廓外缘静脉注射阿托品0.5 mg，再刺激膈下迷走神经1～3 min，观察胃肠运动的变化。
注射MgSO4的鼓胀程度最大，0.9%NaCl次之，0.45%的NaCl最瘪
1.刺激迷走神经
2.刺激内脏大神经
3.注射肾上腺素
4.注射乙酰胆碱
5.注射新斯的明
四、注意事项
1.胃肠在空气中暴露时间过长时，会导致腹腔温度下降。
为了避免胃肠表面干燥，应随
时用温台氏液或温生理盐水湿润胃肠，防止降温和干燥。
2.实验前2～3 h将兔喂饱，实验结果较好。
五、实验结果：
（1）观察到正常情况下胃肠的蠕动、逆蠕动和紧张性收缩，以及小肠的分节运动。
（2）用连续电脉冲作用于膈下迷走神经1-3min，胃肠运动加强。
（3）用连续电脉冲刺激内脏大神经1-5min，胃肠运动减弱，肠系肠管
（4）耳廓外缘静脉注射肾上腺素0.5ml，
（5）将乙酰胆碱或肾上腺素滴在小肠上。
乙酰胆碱使小肠运动加强；肾上腺素使小肠运动抑制，肠系膜血管收缩，肠管缺血，肠管颜色变浅、变白。
(6)耳廓外缘静脉注射阿托品0.5mg，再刺激膈下迷走神经1-3min。
阿托品可是胃肠运动抑制，刺激膈下神经，胃肠运动加强。
六、实验分析：
（1）副交感神经兴奋可使胃肠运动增强；交感神经兴奋可使胃肠运动减弱。
膈下神经属于副交感神经；内脏大神经属于交感神经。
（2）小肠平滑肌对生物活性物质敏感，如乙酰胆碱、肾上腺素。
（3）阿托品是M受体阻断剂，它能竞争性的对抗乙酰胆碱对M受体的兴奋性，阻断乙酰胆碱与M受体的结合。