植物根际促生菌对蓝莓根际土壤养分与微生物数量的影响

植物根际促生菌对蓝莓根际土壤养分与微生物数量的影响植物根际促生细菌lant growth - promoting rhi zobacteria，PGPR)是在植物根际系统定殖，能够显著促进植物生长或抑制病原菌活动的一类有益细菌的总称。

它不仅具有普通土壤微生物的促进有机质分解与转化、养分循环和吸收等作用，还对植物生长及病害防治有极其显著的作用h 习。

近年来研究证明，PGPR可以固定空气中的氮气，提高土壤可溶性磷、分泌或诱导植物产生生长调节物质（如IAA、G A等）、促进植物根系生长和养分吸收利用、增强植物对病原菌和环境胁迫的抗性、忍耐力和适应性等功能。

蓝莓(Paccinium ssp．L．)，又名越橘、蓝浆果，属杜鹃花科Ericaceae）越桔属accinium）浆果类经济林木。

其天然资源丰富，风味独特，而且具有相当好的营养保健功效，有“水果皇后”美誉，经济价值极高。

蓝莓具有根毛少、根浅等特性，根系多分布于浅层土壤中，要求土壤疏松，有机质含量必须在3%以上，土壤pH值在4.0~5.0之间。

由于蓝莓栽培条件较为苛刻，有必要对土壤有机质含量、酸碱度、微生物及环境条件等进行改良。

接种PGPR，可以提高作物品质与产量，普遍认为是一种环境友好、经济有效的措施。

本研究利用从蓝莓根际土壤中筛选出的几种PGPR，结合蓝莓盆栽试验，分析其对蓝莓土壤养分与微生物数量的影响，确定利于蓝莓生长的优良菌株，可为蓝莓PGPR生物肥的研制与应用提供理论依据。

1 材料与方法1.1 试验地概况试验于2011年3月中旬至10月在山东省林业科学研究院试验苗圃进行。

土壤为潮土，碱解氮、有效磷、速效钾含量分别为27. 96、26. 52、79.00 mg/kg，有机质含量为6.83 g/kg。

1.2供试材料供试材料为半高丛兔眼蓝莓一年生组培苗，青岛沃林蓝莓基地提供。

4株PGPR (L12、L13、L14和L15)是山东省林业科学研究院与山东农业大学从蓝莓根际土壤中利用保绿法和萝l、子叶增重法分别筛选获得；将筛选出的细菌分离物分别接种到NA液体培养基，37℃、180 r/min摇床培养48 h。

利用平板计数法测定每毫升含菌量，计算菌液浓度，并用无菌水稀释至2×los cfu/ml。

1.3试验设计采取盆栽试验，随机区组设计，共设置5个处理：处理1，对照CK）；处理2，L12；处理3，L13；处理4，L 14；处理5，L15。

使用聚乙烯盆（30 cm×25 cm)，按照草炭与土体积比1:3，硫磺粉15 9，将土壤、草炭、硫磺混匀，装盆备用。

定植蓝莓苗，并分别将4种菌液与水按1:2的比例混匀，按照每盆40亿微生物总量浇入，处理1用相同体积的无菌水代替，每处理重复5次，正常管理。

1.4样品采集及测定方法2013年9月27日采用剥离法采集根际土：先带土取出植株，轻轻抖落大块不含根系的土壤qE根际土），然后用力将根表面附着土壤全部抖落下来，迅速装入塑料袋内（根际土）。

采集的根际土样分为2份，一份自然风干、过2 mm筛，用于测定土壤化学性质，另一份于实验室测定土壤微生物。

土壤微生物种群数量测定采用稀释涂布平板法，测定细菌采用牛肉膏蛋白胨琼脂培养基；测定真菌采用马丁培养基+孟加拉红+硫酸链霉素；测定放线菌采用改良高氏1号培养基+重铬酸钾。

土壤EC采用电位法水土比1:5）测定；碱解氮、有效磷、速效钾的测定分别采用碱解扩散法、0.5 mol/L NaHC O，浸提一钼锑抗比色法、1 mol/L NH。

OAc浸提一火焰光度法；土壤有机质采用重铬酸钾容量法一外加热法。

土壤脲酶采用苯酚钠比色法，以培养24 h后1 9土壤中NH，-N的质量（mg）表示脲酶活性(1）；土壤过氧化氢酶CAT）采用高锰酸钾滴定容量法，以20 min后1 9土壤消耗的0.02 m ol/L KMnO。

的体积(m1）表示；土壤蔗糖酶采用3，5一二硝基水杨酸比色法，以24 h后1 9土壤中葡萄糖的质量白g）表示蔗糖酶活性Sue）；土壤碱性磷酸酶用磷酸苯二钠比色法，以培养24 h后1 9土壤中释出酚的质量（mg）表示。

1.5数据统计与分析采用Word 2003制作图表，DPSv 7.05软件进行数据统计。

2 结果与分析2.1 不同菌株处理对土壤微生物数量的影响利用稀释平板计数法测定的微生物数量占微生物总种群数的0. 01% - 10%，虽然不能反映土壤中微生物的绝对数量，但其数量同样对土壤生态环境具有重要参考意义。

一定程度上，土壤微生物的数量、类型及其变化反映了土壤有机碳的矿化速率及各种土壤养分的存在状态，同时微生物种群结构失衡是导致作物减产、土壤质量下降、生态系统物质与能量循环被破坏的主要原因之一。

向土壤添加一定量的微生物，可能起促进作用，增加土壤微生物种群类型及数量，也可能引起微生物种群间的竞争，减少土壤微生物的种群类型及数量。

表1显示的是蓝莓一个生长周期的土壤微生物数量。

处理L14的细菌数量最高，但与处理L13差异不显著，处理L13、L14均显著高于其他处理。

放线菌数量介于细菌、真菌之间，且4个处理之间差异显著，与CK相比，处理L1 4、L12、L13分别增加了334.57%、108.64%、61.73%。

试验测得真菌数量明显小于细菌、放线菌数量，处理L13比处理L14、L15、CK、L12分别增加了10.88%、30.82%、52.46%、65.90%。

微生物总量的规律与细菌、真菌变化规律基本一致，表现为处理L14> L13>CK> L12> L15。

2.2 不同菌株处理对蓝莓土壤养分的影响由表2可以看出，处理L13、L12的土壤电导率分别比CK增高了14.12%、6.05%，且差异显著；处理L14、L1 5则分别比CK降低了27.38%、24.50%，且两处理间差异不显著，说明处理L13、L12显著提高了土壤的电导率。

与CK 相比，处理L13、L12的碱解氮含量分别提高了22.27%、10. 28%，差异显著，而处理L14、L15与CK之间差异不显著，说明菌株L13和L12能够显著提高土壤碱解氮含量，菌株L14、L15对土壤碱解氮含量影响小。

关于土壤有效磷含量，除处理L12低于对照外，其它3个处理均高于对照，但差异均不显著。

处理L13的速效钾含量比CK增加了5.05%，但差异不显著，其它处理的速效钾含量均显著低于CK。

与CK相比，处理L13、L12、L14、L15的有机质含量分别增加了2 7.92%、12.88%、10.17%、8.72%，且差异显著，说明各菌株均能提高土壤有机质含量。

综合来看，菌株L13对增加土壤有机质和土壤速效养分具有明显的促进作用。

2.3 不同菌株处理对土壤酶活性的影响土壤脲酶、蔗糖酶、碱性磷酸酶、过氧化氢酶分别用来表征土壤供氮能力、有机质的转化和呼吸强度、有机磷的分解转化及其生物有效性、腐殖质化强度大小和有机质转化速度。

由表3可知，同CK相比，处理L15、L14、L13、L12的过氧化氢酶活性分别提高了88.41%、85.43%、15.56%、0.33%，且处理L15、L14、L13与CK间差异显著，说明菌株L15、L14、L13接种到土壤后均能够提高土壤过氧化氢酶活性。

处理L15脲酶活性显著高于CK，L12显著低于CK，L1 4、L13与CK差异不显著。

关于土壤蔗糖酶活性，只有处理L14高于CK，增加了6.79%，但二者差异不显著。

处理L 13的碱性磷酸酶活性最高、L12的最低，但各个处理间差异不显著。

总体来看，菌株L15、L14、L13对土壤酶活性的影响较大。

3 结论与讨论本试验结果表明：在蓝莓的一个生长周期内，接种菌株L14和L13能够显著增加蓝莓根际土壤中可培养微生物的数量，而接种菌株L12和L15降低了蓝莓根际土壤中可培养微生物的数量；接种各菌株均能增加土壤有机质含量，L1 3对土壤速效养分含量具有明显的促进作用；菌株L15、L 14、L13对土壤酶活性的影响较大。

综合来看：L13能够明显改善蓝莓根际土壤的养分状况和改变根际土壤微生物，具有良好的应用潜力。

土壤酶是一个非常敏感的指标，施肥种类、管理与耕作方式、作物种类、土壤水分和环境条件等均可能影响其活性。

因此，用土壤酶活性作为评价PGPR菌株对土壤生物学特性的影响情况比较复杂，应结合土壤微生物性状的试验结果做不同分析。

刘方春等人研究了植物根际促生细菌对樱桃根际土壤微生物数量的影响，结果发现，植物根际促生细菌可显著提高樱桃根际土壤中的细菌数量，真菌数量显著减少。

本研究L12和L15降低了蓝莓根际土壤中可培养微生物的数量。

其结果的差异一方面可能与PGPR种类与植物种类有关，另一方面也可能是稀释平板法的局限性造成的。

土壤中可培养微生物的比例极低，目前已从传统的微生物分离培养发展到荧光技术、PCR—RFLP和PLFA图谱分析方法等。

因此，评价蓝莓PGPR菌株对根际土壤微生物多样性的影响，还应进一步采用多种方法开展研究。

在土壤中接种PGPR只要能存活，无论是否改变微生物群落结构，都会在一定程度上影响群落的代谢活性。

PG PR在植物根围聚集，它们旺盛的代谢作用加强了土壤中有机物质的分解，促进了植物营养元素的矿化，增强了对作物营养的供应。

尽管L13处理能够明显改善蓝莓根际土壤的养分状况和提高根际土壤微生物数量，但未必能完全证明它能够在蓝莓根际土壤中存活和定殖，因为其菌液中的代谢产物也有可能产生同样的效果。

因此，有必要对L13在蓝莓根际土壤中的存活和定殖规律、促进蓝莓根际土壤养分活化及生物性状的作用机理进一步探讨。

孙运杰1，马海林，刘方春2，丁延芹3，邢尚军2，丁凤菊4(1．山东农业大学资源与环境学院;2．山东省林业科学研究院／山东省森林植被生态修复工程技术研究中心;3．山东农业大学生命科学学院，4．临清市园林管理处）。