实验动物的给药途径和方法及药量计算方法

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实验动物的给药方法

实验动物的给药方法在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代谢及形态引起的变化，常需要将药物注入动物体内。

给药的途径和方法多种多样，可根据实验目的、实验动物种类和药物剂型、剂量等情况确定。

（一）注射给药法1. 皮下注射注射时用左手拇指及食指轻轻捏起皮肤，右手持注射器将针头刺入，固定后即可进行注射。

①小鼠在背部或前肢腋下，大鼠在背部或侧下腹部；②豚鼠在后大腿内侧、背部等脂肪少的部位；③兔在背部或耳根部注射；④蛙可在脊背部淋巴囊注射；⑤狗多在大腿外侧注射，拔针时，轻按针孔片刻，防药液逸出。

2. 皮内注射此法用于观察皮肤血管的通透性变化或观察皮内反应。

如将一定量的放射性同位素溶液、颜料或致炎物质、药物等注入皮内，观察其消失速度和局部血液循环变化，作为皮肤血管通透性观察指标之一。

方法是：将动物注射部位的毛剪去，消毒后，用皮试针头紧贴皮肤皮层刺入皮内，然后使针头向上挑起并再稍刺入，即可注射药液。

注射后可见皮肤表面鼓起一白色小皮丘。

3. 肌肉注射当给动物注射不溶于水而混悬于油或其他溶剂中的药物时，常采用肌肉注射。

肌肉注射一般选用肌肉发达、无大血管经过的部位，多选臀部。

注射时针头要垂直快速刺入肌肉，如无回血现象即可注射。

给大、小鼠作肌肉注射时，选大腿外侧肌肉进行注射。

4. 腹腔注射先将动物固定，腹部用酒精棉球擦试消毒，然后在左或右侧腹部将针头刺入皮下，沿皮下向前推进约0.5厘米，再使针头与皮肤呈45 度角方向穿过腹肌刺入腹腔，此时有落空感，回抽无肠液、尿液后，缓缓推入药液。

此法大小鼠用的较多。

5. 静脉注射是将药液直接注射于静脉管内，使其随着血液分布全身，迅速奏效。

但排泄较快，作用时间较短。

①小鼠、大鼠的静脉注射：常采用尾静脉注射。

鼠尾静脉共有3根，左右两侧和背侧各1根，两侧尾静脉比较容易固定，故常被采用。

操作时，先将动物固定在暴露尾部的固定器内(可用烧杯、铁丝罩或粗试管等物代替)，用75％酒精棉球反复擦试使血管扩张，并可使表皮角质软化，以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧，使静脉充盈，注射时针头尽量采取与尾部平行的角度进针。

实验动物的给药方法

实验动物的给药方法实验动物得给药方法在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代谢及形态引起得变化，常需要将药物注入动物体内。

给药得途径与方法多种多样，可根据实验目得、实验动物种类与药物剂型、剂量等情况确定。

（一）注射给药法1、皮下注射注射时用左手拇指及食指轻轻捏起皮肤，右手持注射器将针头刺入，固定后即可进行注射。

①小鼠在背部或前肢腋下，大鼠在背部或侧下腹部；②豚鼠在后大腿内侧、背部等脂肪少得部位；③兔在背部或耳根部注射；④蛙可在脊背部淋巴囊注射；⑤狗多在大腿外侧注射，拔针时，轻按针孔片刻，防药液逸出。

2、皮内注射此法用于观察皮肤血管得通透性变化或观察皮内反应。

如将一定量得放射性同位素溶液、颜料或致炎物质、药物等注入皮内，观察其消失速度与局部血液循环变化，作为皮肤血管通透性观察指标之一。

方法就是：将动物注射部位得毛剪去，消毒后，用皮试针头紧贴皮肤皮层刺入皮内，然后使针头向上挑起并再稍刺入，即可注射药液。

注射后可见皮肤表面鼓起一白色小皮丘。

3、肌肉注射当给动物注射不溶于水而混悬于油或其她溶剂中得药物时，常采用肌肉注射。

肌肉注射一般选用肌肉发达、无大血管经过得部位，多选臀部。

注射时针头要垂直快速刺入肌肉，如无回血现象即可注射。

给大、小鼠作肌肉注射时，选大腿外侧肌肉进行注射。

4、腹腔注射先将动物固定，腹部用酒精棉球擦试消毒，然后在左或右侧腹部将针头刺入皮下，沿皮下向前推进约0、5厘米，再使针头与皮肤呈45度角方向穿过腹肌刺入腹腔，此时有落空感，回抽无肠液、尿液后，缓缓推入药液。

此法大小鼠用得较多。

5、静脉注射就是将药液直接注射于静脉管内，使其随着血液分布全身，迅速奏效。

但排泄较快，作用时间较短。

①小鼠、大鼠得静脉注射：常采用尾静脉注射。

鼠尾静脉共有3根，左右两侧与背侧各1根，两侧尾静脉比较容易固定，故常被采用。

操作时，先将动物固定在暴露尾部得固定器内(可用烧杯、铁丝罩或粗试管等物代替)，用75％酒精棉球反复擦试使血管扩张，并可使表皮角质软化，以左手拇指与食指捏住鼠尾两侧，使静脉充盈，注射时针头尽量采取与尾部平行得角度进针。

11.常用实验动物的给药途径和方法

11.常用实验动物的给药途径和方法第一篇：11.常用实验动物的给药途径和方法常用实验动物的给药途径和方法在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代谢及形态的变化，常需将药物注入动物体内。

由于实验目的、动物种类、药物剂型不同，给药途径和方法也多种多样。

一经口给药法(一)灌胃法此法给药剂量准确，是借灌胃器将药物直接灌到动物胃内的一种常用给药方法。

1、白鼠灌胃法：抓起小鼠，以左手拇指、食指固定头部，小指、无名指和掌心夹注尾巴，使腹部朝上，颈部拉直，右手持灌胃器，将灌胃针从鼠的口角插入口腔，从舌背沿上腭插入食道。

灌胃量0.2～0.5ml/10g。

胃管可用适宜口径的硬质塑料管或磨去针头的8号注射针头弯成适当的弧度制成。

注意，操作时不要用力猛插，以免插破食道或误插入器官造成动物死亡。

2、白鼠灌胃法：左手戴上棉手套，用左手拇指和食指将大鼠头部固定，将大鼠灌胃器沿腭后壁慢慢插入食道。

灌胃针插入时应无阻力，如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出，重新再插。

灌胃器由注射器和特殊的灌胃针构成。

灌胃量10～20ml/kg 3 兔、犬等:灌胃一般要借助于开口器、灌胃管进行。

先将动物固定，再将开口器固定于上下门齿之间，然后将灌胃管(常用导尿管代替)从开口器的小孔插入动物口中，沿咽后壁而进入食道。

插入后应检查灌胃管是否确实插入食道。

可将灌胃管外开口放入盛水的烧杯中，若无气泡产生，表明灌胃管被正确插入胃中，未误入气管。

此时将注射器与灌胃管相连，注入药液。

4、猪的胃内灌注法：给猪下鼻饲管较困难，因猪的鼻翼与上唇联合形成吻突，鼻腔内上下鼻夹与鼻中隔通道极窄，只能通过F10－12号的导尿管，F14号以上的导尿管不能插入，故一般均给猪采用经口入胃的灌胃方法。

具体方法是，预先做好一矩形小木块，中间有一洞，让小猪咬住，将其固定，然后再由此洞下胃管。

此种操作较为简便。

5、鸟类：包括鸽、鸡等，经口灌胃给药，可由助手将其身体用毛巾裹住固定好。

实验者用左手将动物向后拉，使其颈部倾斜，用左拇指和食指将动物嘴撬开，其他三只手指固定好动物头部，右手取带有灌胃针头的注射器，将灌胃针头由动物舌后插入食管。

实验动物的给药方法

实验动物的给药方法在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代谢及形态引起的变化，常需要将药物注入动物体内。

给药的途径和方法多种多样，可根据实验目的、实验动物种类和药物剂型、剂量等情况确定。

（一）注射给药法1. 皮下注射注射时用左手拇指及食指轻轻捏起皮肤，右手持注射器将针头刺入，固定后即可进行注射。

2. 皮内注射此法用于观察皮肤血管的通透性变化或观察皮内反应。

如将一定量的放射性同位素溶液、颜料或致炎物质、药物等注入皮内，观察其消失速度和局部血液循环变化，作为皮肤血管通透性观察指标之一。

方法是：将动物注射部位的毛剪去，消毒后，用皮试针头紧贴皮肤皮层刺入皮内，然后使针头向上挑起并再稍刺入，即可注射药液。

注射后可见皮肤表面鼓起一白色小皮丘。

3. 肌肉注射当给动物注射不溶于水而混悬于油或其他溶剂中的药物时，常采用肌肉注射。

肌肉注射一般选用肌肉发达、无大血管经过的部位，多选臀部。

注射时针头要垂直快速刺入肌肉，如无回血现象即可注射。

给大、小鼠作肌肉注射时，选大腿外侧肌肉进行注射。

此法大小鼠用的较多。

5. 静脉注射是将药液直接注射于静脉管内，使其随着血液分布全身，迅速奏效。

但排泄较快，作用时间较短。

①小鼠、大鼠的静脉注射：常采用尾静脉注射。

鼠尾静脉共有3根，左右两侧和背侧各1根，两侧尾静脉比较容易固定，故常被采用。

实验动物的给药途径和方法及药量计算方法

一．经口给药法一灌胃法此法给药剂量准确,是借灌胃器将直接灌到动物胃内的·种常用给药法;1．鼠类：鼠类的灌胃器由特殊的灌胃针构成;左手固定鼠,右手持灌胃器,将灌胃针从鼠的右U角中,插入口中,沿咽后壁慢慢插入食道,使其前端到达膈肌位置,灌胃针插入时应无阻力,如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出,以免损伤、穿破食道或误入气管;2．兔、犬等：灌胃一般要借助于开口器、灌胃管进行;先将动物固定,再将开口器固定于上下门齿之间;然后将灌胃管常用导尿管代替从开口器的小孔插入动物口中,沿咽后壁而进入食道;插入后应检查灌胃管是否确实插入食道;可将灌胃管外开口放入盛水的烧杯中,若无气泡产生,表明灌胃管被正确插入胃中,未误入气管;此时将注射器与灌胃管相连,注入药液;二口服法口服给药是把混入饲料或溶干饮水中让动物自由摄取;此法优点是简单方便,缺点是剂量不能保证准确,且动物个体间服药量差异较大;大动物在给予片剂、丸剂、胶囊剂时,可将用镊子或手指送到舌根部,迅速关闭口腔,将头部稍稍抬高,使其自然吞咽;二、注射给药法一皮下注射皮卜注射一般选取皮下组织疏松的部位,大鼠、小鼠和豚鼠可在颈后肩胛问、腹部两侧作皮下注射；家兔可在背部或耳根部作皮卜注射；猫、犬则在大腿外侧作皮下注射;皮下注射用左手拇指和食指轻轻提起动物皮肤,右手持注射器,使针头水平刺入皮下;推送药液时注射部位隆起;拨针时,以手指捏住针刺部位,可防止药液外漏;二肌肉注射肌肉注射一般选肌肉发达,无大血管通过的部位;大鼠、小鼠、豚鼠可注射大腿外侧肌肉；家兔可在腰椎旁的肌肉、臀部或股部肌肉注射；犬等大型动物选臀部注射;注射时针头宜斜刺迅速人肌肉,回抽针栓如无回血,即可注射;三腹腔注射给大鼠、小鼠进行腹腔注射时,以左手固定动物,使腹部向上,为避免伤及内脏,应尽量使动物头处于低位,使内脏移向上腹,右手持注射器从下腹两侧向头方刺入皮下,针头稍向前,再将注射器沿45角斜向穿过腹肌进入腹腔,此时有落空感,回抽无回血或尿液,即可注入药液;免、犬等动物腹腔注射时,可由助手固定动物,使其腹部朝上,者即可进行操作;注射位置为：家兔下腹部近腹白线左右两侧1cm处,犬脐后腹白线两侧边1—2cm处进行腹腔注射;四静脉注射1、大鼠和小鼠：常采用尾静脉注射;注射时,先将动物固定在暴露尾部的固定器内,尾部用45—50℃的温水浸润几分钟或用75％酒精棉球反复擦拭使血管扩张,并使表皮角质软化;以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧,用中指从下面托起鼠,右手持注射器,使针头尽量采取与尾部平行的角度进针,从尾末端处刺入,注入药液,如无阻力,表示针头已进入静脉,注射后把尾部向注射侧弯曲,或拔针后随即以干棉球按住注射部位以止血;2、豚鼠：可采用前肢皮下头静脉、后肢小隐静脉注射或耳缘静脉注射;3、家兔：一般采用耳缘静脉注射;注射时先将家兔用固定盒固定,拔去注射部位的毛,用酒精棉球涂擦耳缘静脉,并用手指弹动或轻轻揉擦兔耳,使静脉充血,然后用左手食指和中指压住耳根端,拇指和小指夹住耳边缘部,以无名指放在耳下作垫,右手持注射器从静脉末端刺入血管,注入药液;注射后,用纱布或脱脂棉压迫止血;四、给药剂量不同种类的动物一次给药能耐受的最大剂量不同,灌胃太多时易导致胃扩张,静脉给药剂量过多时易导致心力衰竭和肺水肿;现将不同种类动物一次给药最大耐受量列出,以供参考;为观察某种对动物的作用时,给药剂量的准确与否是个很重要的问题;剂量太小,作用不明显,剂量太大,又可能导致动物中毒死亡;表二不同种类动物一次给药能耐受的最大剂量ml推荐使用厂述方法确定剂量：1、先用少量小鼠粗略的摸索山毒剂量或致死剂量,然后用中毒剂量或致死剂量的若干分之作为应用剂量,一般可取1／10-1／5;2、确定剂量后,如第一次的作用不明显,动物也没有中毒的表现体重下降、精神不振、活动减少或其它症状,可以加大剂量再次;如出现中毒现象,作用也明显,则应减少剂量再次;在一般情况下,在适宜剂量范围内,的作用常随剂量的加大而增强;所以有条件：时,最好同时用儿个剂量做,以便迅速获得关于作用的较完整的资料;如结果出现剂量与作用强度毫无规律时,则更应慎重分析;3、用人动物进行时,开始的剂量可采用给鼠类剂量的十五分之一至二分之一,以后可根据动物的反应调整剂量;4、确定动物的给药剂量时,要考虑给药动物的年龄大小和体质强弱;—般说,确定的给药剂量是指成年动物的,如果幼小动物,剂量应减小;服量为100,灌胃量应为100-200,皮下注射量为30—50,肌肉注射量为25—30,静脉注射量为25;二、动物给药量的计算方法动物所用的剂量一般按毫克／公斤体重或克／公斤体重计算,应用时须从已知药液的浓度换算㈩相当于每公斤体重应注射的药液量毫升数,以便给药;三、人与动物的给药量换算方法人与动物对同的耐受性相差很大;一般说来,动物的耐受性比人大,也就是单位体重动物的用药量比人要人,近几年来新药药效研究中多以下列公式计算：D2=D1×K2／K1×W1/W2D为剂量,K为常数,W为动物体重kg1指人；2指动物;人及不同种类动物的K值不同,人1．6、猴11．2、兔10．1、大鼠9．1、小鼠9．1、鼠9．8、猫9．8;如一例体重为70kg的人,某药剂量为20ug．kg-1．D-1,—只5kg重的猴为53．6 ug．kg-1．D-1,一只10kg重的大为40．4ug．kg-1．D-1,而一只20g重的小鼠为260．6 ug．kg-1．D-1见表三人用剂量与不同种类动物间剂量的关系;表三人用剂量与不同种类动物间剂量的关系注；表示人与动物的不同体重,以kg表示,第三行以下数据单位为;。

实验动物给药途径和方法

实验动物给药途径和方法在动物实验中，为了观察药物对机能功能、代谢及形态引起的变化，常需将药物注入动物体内。

给药的途径和方法是多种多样的，可根据实验目的、实验动物种类和药物剂型等情况确定。

（一）皮下注射注射时以左手拇指和食指提起皮肤，将连有5（1/2）号针头的注射器刺入皮下。

皮下注射部位一般狗、猫多在大腿外侧，豚鼠在后大腿的内侧或小腹部；大白鼠可在侧下腹部。

兔在背部或耳根部注射。

蛙可在脊背部淋巴腔注射。

（二）皮内注射皮内注射时需将注射的局部脱去被毛，消毒后，用左手拇指和食指按住皮肤并使之绷紧，在两指之间，用结核菌素注射器连4(1/2)细针头，紧贴皮肤表层刺入皮内，然后再向上挑起并再稍刺入，即可注射药液，此时可见皮肤表面鼓起一白色小皮丘。

（三）肌肉注射肌肉注射应选肌肉发达，无大血管通过的部位，一般多选臀部。

注射时垂直迅速刺入肌肉，回抽针栓如无回血，即可进行注射。

给小白鼠、大白鼠等小动物作肌肉注射时，用左手抓住鼠两耳和头部皮肤，右手取连有5（1/2）针头的注射器，将针头刺入大腿外侧肌肉，将药液注入。

（四）腹腔注射用大、小白鼠做实验时，以左手抓住动物，使腹部向上，右手将注射针头于左（或右）下腹部刺入皮下，使针头向前推 0.5～1.0cm，再以45度角穿过腹肌，固定针头，缓缓注入药液（图1），为避免伤及内脏，可使动物处于头低位，使内脏移向上腹。

若实验动物为家兔，进针部位为下腹部的腹白线离开1cm处。

图1小鼠腹腔注射方法（五）静脉注射1．兔：兔耳部血管分布清晰。

兔耳中央为动物，耳外缘为静脉。

内缘静脉深不易固定，故不用。

外缘静脉表浅易固定，常用。

先拔去注射部位的被毛，用手指弹动或轻揉兔耳，使静脉充盈，左手食指和中指夹住静脉的近端，拇指绷紧静脉的远端，无名指及小指垫在下面，右手持注射器连6号针头尽量从静脉的远端刺入，移动拇指于针头上以固定针头，放开食指和中指，将药液注入（图2），然后拔出针头，用手压迫针眼片刻。

11.常用实验动物的给药途径和方法

常用实验动物的给药途径和方法在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代谢及形态的变化，常需将药物注入动物体内。

由于实验目的、动物种类、药物剂型不同，给药途径和方法也多种多样。

一经口给药法(一)灌胃法此法给药剂量准确，是借灌胃器将药物直接灌到动物胃内的一种常用给药方法。

灌胃量0.2～0.5ml/10g。

胃管可用适宜口径的硬质塑料管或磨去针头的8号注射针头弯成适当的弧度制成。

注意，操作时不要用力猛插，以免插破食道或误插入器官造成动物死亡。

2、白鼠灌胃法：左手戴上棉手套，用左手拇指和食指将大鼠头部固定，将大鼠灌胃器沿腭后壁慢慢插入食道。

灌胃针插入时应无阻力，如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出，重新再插。

灌胃器由注射器和特殊的灌胃针构成。

灌胃量10～20ml/kg3 兔、犬等:灌胃一般要借助于开口器、灌胃管进行。

先将动物固定，再将开口器固定于上下门齿之间，然后将灌胃管(常用导尿管代替)从开口器的小孔插入动物口中，沿咽后壁而进入食道。

插入后应检查灌胃管是否确实插入食道。

可将灌胃管外开口放入盛水的烧杯中，若无气泡产生，表明灌胃管被正确插入胃中，未误入气管。

此时将注射器与灌胃管相连，注入药液。

具体方法是，预先做好一矩形小木块，中间有一洞，让小猪咬住，将其固定，然后再由此洞下胃管。

此种操作较为简便。

5、鸟类：包括鸽、鸡等，经口灌胃给药，可由助手将其身体用毛巾裹住固定好。

实验动物用药量的确定及计算方法

实验动物用药量的确定及计算方法（一）动物给药量的确定在观察一药物的作用时，应该给动物多在的剂量是实验开始时应确定的一个重要问题。

剂量太小，作用不明显，剂量太大，又可能引起动物中毒致死，可以按下述方法确定剂量：1．先用小鼠粗略地探索中毒剂量或致死剂量，然后用小于中毒量的剂量，或取致死量的若干分之一为应用剂量，一般可取1/10-1/5。

2．植物药粗制剂的剂量多按生药折算。

3．化学药品可参考化学结构相似的已知药物，特别是化学结构和作用都相似的药物的剂量。

4．确定剂量后，如第一次实验的作用不明显，动物也没有中毒的表现（体重下降、精神不振、活动减少或其他症状），可以加大剂量再次实验。

如出现中毒现象，作用也明显，则应降低剂量再次实验。

在一般情况下，在适宜的剂量范围内，药物的作用常随剂量的加大而增强。

所以有条件时，最好同时用几个剂量作实验，以便迅速获得关于药物作用的较完整的资料。

如实验结果出现剂量与作用强度之间毫无规律时，则应慎重分析。

5．用大动物进行实验时，开始的剂量可采用给鼠类剂量的十五分之一～二分之一，以后可根据动物的反应调整剂量。

6．确定动物给药剂量时，要考虑给药动物的年龄大小和体质强弱。

一般说确定的给药剂量是指成年动物的，如是幼小动物，剂量应减少。

如以狗为例：6个月以上的狗给药量为1份时，3-6个月的给1/2份，45-89日1/4份，20-44日的给1/8份，10-19日的给1/16份。

7．确定动物给药剂量时，要考虑因给药途径不同，所用剂量也不同，以口服量为100时，灌肠量应为100-200，皮下注射量30-50，肌肉注射量为25-30，静脉注射量为25。

（二）实验动物用药量的计算方法动物实验所用的药物剂量，一般按mg/kg体重或g/kg体重计算，应用时须从已知药液的浓度换算出相当于每kg体重应注射的药液量（ml数），以便给药。

例1：计算给体重1.8kg的家兔，静脉注射20%氨基甲酸乙酯溶液麻醉，按每kg体重1 g的剂量注射，应注射多少ml？计算方法：兔每kg体重需注射1g，注射液为20％，则氨基甲酸乙酯溶液的注射量应为5ml/kg体重，现在兔体重为1.8kg，应注射20%氨基甲酸乙酯溶液用量=5×1.8=9ml。

实验动物的给药方式

实验动物的给药方式在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代谢及形态引发的转变，常需要将药物注入动物体内。

给药的途径和方式多种多样，可按如实验目的、实验动物种类和药物剂型、剂量等情况肯定。

（一）注射给药法1. 皮下注射注射时用左手拇指及食指轻轻捏起皮肤，右手持注射器将针头刺入，固定后即可进行注射。

2. 皮内注射此法用于观察皮肤血管的通透性转变或观察皮内反映。

如将必然量的放射性同位素溶液、颜料或致炎物质、药物等注入皮内，观察其消失速度和局部血液循环转变，作为皮肤血管通透性观察指标之一。

方式是：将动物注射部位的毛剪去，消毒后，用皮试针头紧贴皮肤皮层刺入皮内，然后使针头向上挑起并再稍刺入，即可注射药液。

注射后可见皮肤表面鼓起一白色小皮丘。

3. 肌肉注射当给动物注射不溶于水而混悬于油或其他溶剂中的药物时，常采用肌肉注射。

肌肉注射一般选用肌肉发达、无大血管通过的部位，多选臀部。

注射时针头要垂直快速刺入肌肉，如无回血现象即可注射。

给大、小鼠作肌肉注射时，选大腿外侧肌肉进行注射。

4. 腹腔注射先将动物固定，腹部用酒精棉球擦试消毒，然后在左或右边腹部将针头刺入皮下，沿皮下向前推动约0.5厘米，再使针头与皮肤呈45 度角方向穿过腹肌刺入腹腔，此时有落空感，回抽无肠液、尿液后，缓缓推入药液。

此法大小鼠用的较多。

5. 静脉注射是将药液直接注射于静脉管内，使其随着血液散布全身，迅速奏效。

但排泄较快，作历时间较短。

①小鼠、大鼠的静脉注射：常采用尾静脉注射。

鼠尾静脉共有3根，左右双侧和背侧各1根，双侧尾静脉比较容易固定，故常被采用。

操作时，先将动物固定在暴露尾部的固定器内(可用烧杯、铁丝罩或粗试管等物代替)，用75％酒精棉球反复擦试使血管扩张，并可使表皮角质软化，以左手拇指和食指捏住鼠尾双侧，使静脉充盈，注射时针头尽可能采取与尾部平行的角度进针。

实验动物给药途径和方法

实验动物给药途径和方法在动物实验中，为了观察药物对机能功能、代谢及形态引起的变化，常需将药物注入动物体内。

给药的途径和方法是多种多样的，可根据实验目的、实验动物种类和药物剂型等情况确定。

（一）皮下注射注射时以左手拇指和食指提起皮肤，将连有5（1/2）号针头的注射器刺入皮下。

皮下注射部位一般狗、猫多在大腿外侧，豚鼠在后大腿的内侧或小腹部；大白鼠可在侧下腹部。

兔在背部或耳根部注射。

蛙可在脊背部淋巴腔注射。

（三）肌肉注射肌肉注射应选肌肉发达，无大血管通过的部位，一般多选臀部。

注射时垂直迅速刺入肌肉，回抽针栓如无回血，即可进行注射。

给小白鼠、大白鼠等小动物作肌肉注射时，用左手抓住鼠两耳和头部皮肤，右手取连有5（1/2）针头的注射器，将针头刺入大腿外侧肌肉，将药液注入。

若实验动物为家兔，进针部位为下腹部的腹白线离开1cm处。

图1小鼠腹腔注射方法（五）静脉注射1．兔：兔耳部血管分布清晰。

兔耳中央为动物，耳外缘为静脉。

内缘静脉深不易固定，故不用。

外缘静脉表浅易固定，常用。

11.常用实验动物的给药途径和方法

经常运用试验动物的给药门路和办法在动物试验中,为了不雅察药物对机体功效.代谢及形态的变更,常需将药物注入动物体内.因为试验目标.动物种类.药物剂型不合,给药门路和办法也多种多样.一经口给药法(一)灌胃法此法给药剂量精确,是借灌胃器将药物直接灌到动物胃内的一种经常运用给药办法.1.白鼠灌胃法：抓起小鼠,以左手拇指.食指固定头部,小指.无名指和掌心夹注尾巴,使腹部朝上,颈部拉直,右手持灌胃器,将灌胃针从鼠的吵嘴拔出口腔,从舌背沿上腭拔出食道.灌胃量0.2～0.5ml/10g.胃管可用合适口径的硬质塑料管或磨去针头的8号打针针头弯成恰当的弧度制成.留意,操纵时不要用力猛插,以免插破食道或误拔出器官造成动物逝世亡.2.白鼠灌胃法：左手戴上棉手套,用左手拇指和食指将大鼠头部固定,将大鼠灌胃器沿腭后壁慢慢拔出食道.灌胃针拔出时应无阻力,若有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出,从新再插.灌胃器由打针器和特别的灌胃针组成.灌胃量10～20ml/kg3 兔.犬等:灌胃一般要借助于启齿器.灌胃管进行.先将动物固定,再将启齿器固定于高低门齿之间,然后将灌胃管(经常运用导尿管代替)从启齿器的小孔拔出动物口中,沿咽后壁而进入食道.拔出后应检讨灌胃管是否确切拔出食道.可将灌胃管外启齿放入盛水的烧杯中,若无气泡产生,标明灌胃管被精确拔出胃中,未误入气管.此时将打针器与灌胃管相连,注入药液.4.猪的胃内灌注法：给猪下鼻饲管较艰苦,因猪的鼻翼与上唇结合形成吻突,鼻腔内高低鼻夹与鼻中隔通道极窄,只能经由过程F10－12号的导尿管,F14号以上的导尿管不克不及拔出,故一般均给猪采取经口入胃的灌胃办法.具体办法是,预先做好一矩形小木块,中央有一洞,让小猪咬住,将其固定,然后再由此洞下胃管.此种操纵较为轻便.5.鸟类：包含鸽.鸡等,经口灌胃给药,可由助手将其身材用毛巾裹住固定好.试验者用左手将动物向后拉,使其颈部竖直,用左拇指和食指将动物嘴撬开,其他三只手指固定好动物头部,右手取带有灌胃针头的打针器,将灌胃针头由动物舌后拔出食管.不要象其它动物灌胃时插的太深,如动物不挣扎,插针头又很顺遂,即可将药液经口或食管上端罐入胃内.罐入速度要慢.(二)口吃法口服给药是把药物混入饲料或溶于饮水中让动物自由摄取.此法长处是简略便利,缺陷是剂量不克不及包管精确,且动物个别间服药量差别较大.大动物在赐与片剂.丸剂.胶囊剂时,可将药物用镊子或手指送到舌根部,敏捷关杜口腔,将头部稍稍举高,便其天然吞咽.二打针给药法打针给药剂量精确.感化快,是动物试验中经常运用的给药办法,给药时应留意针头的选择 (鼠类：4～5号 ,兔.猫.犬.猪.猴：6～8号).(一)皮下打针法打针一般拔取皮下组织松散的部位,大鼠.小鼠和豚鼠可在颈后肩肿间.腹部两侧作皮下打针;家兔可在背部或耳根部作皮下打针;猫.犬则在大腿外侧作皮下打针.以小白鼠为例,将小白鼠放在笼盒盖上,用左手小指和无名指捏住鼠尾,轻轻向后拉,用拇指和食指捏起背部皮肤,再用右手持打针器,右手将打针器的针头程度刺入背部皮下.针头可用5号针头.推送药液使打针部位隆起.拔针时,以手指捏住针刺部位,可防止药液外漏.打针量：大鼠为 1ml/100g.小鼠为 0.1～0.3ml/10g.鸟类皮下打针平日拔取翼下部位,可打针0.3ml～0.5ml药液.鸽类皮肤弹性差,打针液有时从针口流出.(二)皮内打针法固定动物的办法和打针部位与皮下雷同.将打针部位脱毛.消毒,用左手拇指和食指压住皮肤并便之绷紧,在两指之间,用皮试针头紧贴皮肤表层刺入皮内,然后向上挑起并再稍刺入,当针头不克不及阁下摆动时,即标明针头在皮内,回抽无回流后,即可迟缓打针,皮肤概况消失白色桔皮样隆起,若隆起可保持一准时光,则证实药液确切打针在皮内.打针量：小鼠为 0.1ml/次/穿刺部位.(三)肌肉打针法肌肉打针一般选肌肉蓬勃,无大血管经由过程的部位.大鼠.小鼠.豚鼠可打针大腿外侧肌肉;家兔可在腰椎旁的肌肉.臀部或股部肌肉打针;犬.猴等大型动物选臂部打针.打针时针头宜垂直敏捷刺入肌肉,回抽针栓如无回血,即可打针.小鼠：可二人合作,一人一手抓住小鼠头部皮肤,另一手抓住尾巴.另一人取连有4号针头的打针器,将针头刺入后腿外侧肌肉.打针量：不超出0.1ml.也可一人操纵,办法是左手单手掌握小鼠,并见将小鼠右脚趾拉放于左正面,用左手无名指压住.将针头刺入右腿外侧肌肉.家兔：将家兔用小动物手术台固定,打针部位可选择大腿肌肉.例如家兔股四头肌打针法：在家兔腿部两侧四头肌部位皮肤,用2%碘酒消毒,再用75%酒精擦去碘质,分离在股四头肌部位打针药液1 ml和 2 ml,作药物局部刺激性试验.鸟类：禽鸟类肌肉打针常拔取胸肌或腓肠肌肌肉打针,办法同大.小鼠.(四)腹腔打针法给大鼠.小鼠进行腹腔打针时,以左手固定动物,便腹部向上,为防止伤及内脏,应尽量便动物头处于低位,便内脏移向上腹,右手持连有5号针头的打针器从下腹两侧向头部偏向刺入,掌握针头与腹部的角度不宜太小,不然易误入皮下.针头亦不宜刺入太深或太近上腹部,以防止毁伤内脏.将打针器沿45°角斜向穿过腹肌进入腹腔,此时有失?感,回抽无回血或尿液,即可注入药液.兔.犬等动物腹腔打针时,可由助手固定动物,便其腹部朝上,试验者即可进行操纵.其地位:家兔下腹部近腹中线阁下两侧 lcm处,犬脐后腹中线两侧边 1～2cm处进行腹腔打针.(五)静脉打针法1．小鼠：常采取尾静脉打针.打针时,先将小鼠固定在吐露尾部的固定器内,尾2．大鼠: 将小鼠固定在吐露尾部的固定器内,露出尾巴,用10 ml试管盛45℃～50℃的温水浸润1～2分钟或用 75％酒精棉球重复擦拭使血管扩大,并使表皮角质软化,可明显见到三根暗红色的尾静脉.选择较明显的一条,在尾下1/4处,以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧,用中指从下面托起鼠尾,右手持打针器,使针头尽量采纳与尾部平行的角度（小于30度）进针,刺入,针头在尾静脉内平行推动少许,左手的三指捏住尾巴,并连针头和鼠尾一路捏住,以防大鼠运动将针头脱出.注入药液,如无阻力,暗示针头己进入静脉.打针后把尾部向打针侧曲折,或拔针后随即以干棉球按住打针部位以止血.留意：大小鼠尾静脉打针部位应尽量选在鼠尾下1/3处,此处皮薄,血管较易注入,经常运用鼠尾阁下两侧两根尾静脉,因其地位较固定,轻易注入.背侧尾静脉因为其地位轻易动,固一般罕用.腹正面是动脉,不采取作静脉打针.大鼠舌下静脉打针：将大鼠用40mg/kg戊巴比妥钠腹腔打针法麻醉,用鼠板固定大鼠,当大鼠进入麻醉状况后,用止血钳将大鼠舌头稍微拉出,露出舌下正中小静脉,用左手持止血钳固定舌尖部,右手持连有4号针头的打针器,在舌下静脉近中部向舌头基底部偏向进针,刺入舌下静脉血管,使针头与血管平行.慢慢向前推动,当进针顺遂时,暗示针头已进入舌下静脉,可以慢慢推注药液.打针完毕将针头抽出,用干棉球榨取打针部位止血.3．家兔:一般采取耳缘静脉打针.打针时先将家兔用固定盒固定,拔去打针部位的毛,用酒精棉球涂擦耳缘静脉,并用手指弹动或轻轻揉擦兔耳,使静脉充血,再涂上一薄层凡士林,此时可清晰见到充血的耳缘静脉,然后用左手拇指和食指压住耳根端,待静脉明显充盈后,右手取连有4 1/2号针头的打针器,针头从接近耳尖部刺入静脉,顺血管平行偏向深刻1cm,放松对耳根处血管的榨取,左手拇指和食指,移至针头刺入部位,将针头和兔耳固定,然后向外略抽一下打针器,若有血液回流,即可注入药液.或当针头拔出血管后不必回抽,针头在血管推动顺遂,捎推打针液,即能天然注入,皮下不起液泡,即证实药液注进血管.打针后,拔出针头,用纱布或脱脂棉榨取止血.留意：（1）如打针处组织变白,变厚,或打针时推注阻力大,暗示针头未拔出血管,应拔出针头重插.兔耳中央的是动脉,兔耳内缘的静脉因毛多皮厚,故不宜作静脉打针用.（2）打针针头的号码代表针头内径的粗细.打针部位的组织坚韧宜用粗针头,以免曲折.折断;如组织优柔或血管渺小,宜用细针头,以免毁伤组织.4．犬:后肢外侧小隐静脉打针法：小隐静脉在后肢胫手下1/3的外正面浅表皮下,由前侧向后走向.将狗固定侧卧,把打针部位毛剪去,先用碘酒,后用酒精擦抹消毒皮肤.助手用手紧握股部,榨取血管,使静脉不回流,此时可见到充血的小隐静脉,右手持连有5 1/2号或5号的打针器,将针头向血管旁皮下先刺入,尔后与血管平谋杀入静脉.如进针顺遂,回抽针栓有回血,放松对静脉近端的榨取,将针头顺血管再刺进稍许.然后一手固定针头,一手将药液徐徐注入静脉.留意要很好固定静脉,因为静脉只隔一层皮肤,浅而易滑动,打针时针头不成刺入过深,偏向必定要与血管平行.前肢内侧头静脉打针法：前肢内侧头静脉在前肢内正面皮下,靠前肢内侧外缘走向,比后肢外侧小隐静脉还粗一些,而血管比较轻易固定.是以经常运用作静脉打针及取血用.打针办法与前述后肢外侧小隐静脉打针法雷同.舌下小静脉打针法：此法较便利有用,用于补注麻醉药或紧迫打针药物等用.打针前将麻醉的狗嘴打开,用舌钳包着纱布把舌头拉出,并翻向背侧,即可见到清晰的舌下小静脉,可找一根较粗的作静脉打针用.将舌头尽量拉出,左手拇指榨取舌下静脉根部,见到充血舌下静脉,用连4号针头的打针器与血管平行插进静脉.回血,推动药液.打针完毕将针头抽出,立刻用干棉球榨取止血,或用止血粉止血.因舌下小静脉四周都是软组织,且血管散布很丰硕,故应选择4 1/2号以下的细号针头,打针完毕要实时有用止血.5．豚鼠:可采取前肢皮下头静脉.后肢小隐静脉打针或耳缘静脉打针.6．猴:猴常在后肢小隐静脉.皮下静脉或股静脉打针,打针办法与犬静脉打针法基底细同.7．猪:可在耳静脉 .颈静脉打针.8．蟾蜍胸淋巴囊打针法取蟾蜍一只,一手抓住蟾蜍身材,固定四肢,使腹部朝上;另一手持（4～7号针头）将针头拔出口腔,经由过程下颌肌肉而刺入,打针药液后拨出针头,因为下颌肌内压缩使针孔闭合,可防止药液漏出.打针量每只0.25～1.Oml.三其它门路给药法除上述较经常运用的给药门路外,还有其他一些给药办法,如呼吸道给药.皮肤给药.脑内给药.直肠内给药.关节腔内给药等等.1. 呼吸道给药：呈粉尘.气体及蒸气或雾等状况的药物或毒气,均须要经由过程动物呼吸道给药.如试验时给动物乙醚作吸入麻醉,给动物吸入必定量的氨气,二氧化碳等不雅察呼吸,轮回等的变更;给动物按期吸入必定量的SO2.用锯末烟雾制造慢性气管炎动物模子等,特别在毒理学试验中运用更为普遍.2. 皮肤给药：为了判定药物或毒物经皮肤的接收感化.局部感化. 致敏感化和光感感化等,均需采取经皮肤给药办法.如兔和豚鼠常采取背部必定面积的皮肤脱毛后,将必定的药液涂在皮肤上,药液经皮肤接收.3. 脊髓腔内给药：此法重要用于锥管麻醉或抽取脑脊液.家兔椎管内打针办法：将家兔作天然俯卧式,尽量使其尾向腹侧愚昧,用剪毛剪将第七腰椎四周被毛剪去,用3％碘酊消毒,尔后用75％酒精将碘酊擦去.在兔背部髌骨脊连线之中点稍下方摸到第七腰椎间隙（第七腰椎与第一骶骨之间）,拔出腰椎穿刺针头.当针到达椎管内时（蛛网膜下腔）,可见到兔的后肢跳动,即证实穿刺针头已进入椎管.这是不要再向下刺,以免毁伤脊髓.固定好针头,即可将药物注入.4. 脑内给药：此法经常运用于微生物学动物试验,将病原体等接种于被检动物脑内,然后不雅察接种后的各类变更.5. 直肠内给药：此种办法经常运用于动物麻醉.兔直肠内给药时,常采取灌肠的胶皮管或用14号导尿管代替.6. 关节腔内给药：此法经常运用于关节炎的动物模子复制.7．脚掌打针法：（1）小鼠：打针前小鼠应先麻醉.因前脚需用以取食,故仅能用后脚掌.针头刺入约5mm,即可推液,最大量为0.25ml.假如运用福氏完整佐剂,注入脚掌后,可使足掌部形成轻微肿胀.溃疡及坏逝世,动物行为艰苦,是以,若非试验必须,最好不要运用.其它试剂固然不致引起如斯强烈的反响,最好仅用一只后脚掌.（2）豚鼠：由助手固定好动物,使后脚掌面向操纵者.用棉签沾水将脚掌洗净,特别是脚趾之间,再用酒精棉消毒.其它同小鼠.针头刺入约5mm即可推液.最大量为0.25ml.。

实验动物的给药途径和方法及药量计算方法

实验动物的给药途径和方法及药量计算方法实验动物给药途径和方法的选择是影响实验结果的重要因素之一、根据药物的性质和实验的目的，常用的给药途径包括经口给药、皮下注射、静脉注射、肌肉注射等。

下面将介绍各种给药途径和方法的原理、特点和适用范围，并简述药物给量的计算方法。

1.经口给药(口服给药)经口给药是实验中最常用的给药途径之一、药物通过口腔、食道、胃和肠道进入血液循环，对实验动物产生作用。

优点是简单易行，不需要特殊技术。

但经过胃肠道吸收的药物受到肠道酶和肝脏的一次进过效应。

2.皮下注射皮下注射是在动物的皮下组织中注射药物。

特点是便捷简单，对实验动物能够均匀吸收。

注射部位一般选择在背部的腰椎处。

3.静脉注射静脉注射是将药物直接注射到动脉或静脉血管中，使药物迅速进入循环系统。

该方法能够实现药物的快速作用，但需要特殊的技术和专业的操作，同时需要根据实验动物的体重和药物的性质掌握合适的给药速度。

4.肌肉注射肌肉注射是将药物注射到动物的肌肉组织中。

与皮下注射相比，肌肉注射的吸收更快且更完全，对实验动物的作用更持久。

通常将注射部位选择在大肌肉组织上，例如大腿肌肉。

药物给量的计算方法：药物给量的计算需要根据实验动物的体重、药物的浓度和给药途径进行合理估算。

给药量=目标血药浓度×剂量体积/药物浓度×动物体重其中，目标血药浓度是研究中设定的药物效果所需要达到的血药浓度；剂量体积是每次给药所需用到的药物体积；药物浓度是给药液体中药物的浓度；动物体重是实验动物的体重。

在实验中，根据药物的生物利用度和实际需要，还需要将计算得到的给药量按照一定比例进行折算。

此外，在药物给量计算中还需考虑到给药途径的生物利用度、药物代谢和排泄速度、给药次数等因素。

需要注意的是，给药量的计算只是一个初步估算值，实验中仍需根据动物对药物的反应及目标血药浓度进行进一步调整。

综上所述，实验动物的给药途径和方法、药物给量的计算方法是实验设计中重要的考虑因素。

实验动物的给药方法

实验动物的给药方法在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代谢及形态引起的变化，常需要将药物注入动物体内。

给药的途径和方法多种多样，可根据实验目的、实验动物种类和药物剂型、剂量等情况确定。

（一）注射给药法1. 皮下注射注射时用左手拇指及食指轻轻捏起皮肤，右手持注射器将针头刺入，固定后即可进行注射。

2.皮内注射此法用于观察皮肤血管的通透性变化或观察皮内反应。

如将一定量的放射性同位素溶液、颜料或致炎物质、药物等注入皮内，观察其消失速度和局部血液循环变化，作为皮肤血管通透性观察指标之一。

方法是：将动物注射部位的毛剪去，消毒后，用皮试针头紧贴皮肤皮层刺入皮内，然后使针头向上挑起并再稍刺入，即可注射药液。

注射后可见皮肤表面鼓起一白色小皮丘。

3.肌肉注射当给动物注射不溶于水而混悬于油或其他溶剂中的药物时，常采用肌肉注射。

肌肉注射一般选用肌肉发达、无大血管经过的部位，多选臀部。

注射时针头要垂直快速刺入肌肉，如无回血现象即可注射。

给大、小鼠作肌肉注射时，选大腿外侧肌肉进行注射。

4.腹腔注射先将动物固定，腹部用酒精棉球擦试消毒，然后在左或右侧腹部将针头刺入皮下，沿皮下向前推进约0.5 厘米，再使针头与皮肤呈45 度角方向穿过腹肌刺入腹腔，此时有落空感，回抽无肠液、尿液后，缓缓推入药液。

此法大小鼠用的较多。

5. 静脉注射是将药液直接注射于静脉管内，使其随着血液分布全身，迅速奏效。

但排泄较快，作用时间较短。

①小鼠、大鼠的静脉注射:常采用尾静脉注射。

鼠尾静脉共有3 根，左右两侧和背侧各1 根，两侧尾静脉比较容易固定，故常被采用。

操作时，先将动物固定在暴露尾部的固定器内（可用烧杯、铁丝罩或粗试管等物代替），用75 ％酒精棉球反复擦试使血管扩张，并可使表皮角质软化，以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧，使静脉充盈，注射时针头尽量采取与尾部平行的角度进针。

实验动物用药量的确定及计算方法

实验动物用药量的确定及计算方法（一）动物给药量的确定观察一种药物对实验动物的作用时，一个重要的问题就是给动物用多大的剂量较合适。

剂量太小，作用不明显，剂量太大，又可能引起动物中毒致死。

可以按下述方法确定剂量：1. 先用少量小鼠粗略地探索中毒剂量或致死剂量，然后用小于中毒量的剂量，或取致死量的若干分之一作为应用剂量，一般可取1/10～1/5。

2. 植物药粗制剂的剂量多按生药折算。

3. 化学药品可参考化学结构相似的已知药物，特别是化学结构和作用都相似的剂量。

4. 确定剂量后，如第一次用药的作用不明显，动物也没有中毒的表现，可以加大剂量再次实验。

如出现中毒现象，作用也明显，则应降低剂量再次实验。

在一般情况下，在适宜的剂量范围内，药物的作用常随剂量的加大而增强。

所以有条件时，最好同时用几个剂量作实验，以便迅速获得关于药物作用的较完整的资料。

如实验结果出现剂量与作用强度之间毫无规律时，则更应慎重分析。

5. 用大动物进行实验时，防止动物中毒死亡，开始的剂量可采用鼠类的1/15～1/2，以后可根据动物的反应调整剂量。

6. 确定动物给药剂量时，要考虑给药动物的年龄大小和体质强弱。

一般说确定的给药剂量是指成年动物的，如是幼龄动物，剂量应减小。

如以狗为例：6 个月以上的狗给药剂量为1份时，3～6个月的给1/2份， 45～89日的给1/4份，20～44日的给1/8 份，10～19日的给1/16份。

7. 确定动物给药剂量时，要考虑因给药途径不同，所用剂量也不同。

以口服量为100时，皮下注射量为30～50，肌肉注射量为20～30，静脉注射量为25。

（二）人与动物的用药量换算方法人与动物对同一药物耐受性不同，一般动物的耐受性要比人大，单位体重的用药量动物比人要高。

必须将人的用药量换算成动物的用药量。

一般可按下列比例换算：人用药量： 1小鼠、大鼠： 50～100兔、豚鼠： 15～20狗、猫： 5～10以上系按单位体重口服用药量换算。

实验动物的给药途径和方法及药量计算方法

一．经口给药法(一)灌胃法此法给药剂量准确，就是借灌胃器将药物直接灌到动物胃内得·种常用给药法。

1．鼠类：鼠类得灌胃器由特殊得灌胃针构成.左手固定鼠,右手持灌胃器，将灌胃针从鼠得右U角中,插入口中,沿咽后壁慢慢插入食道，使其前端到达膈肌位置,灌胃針插入时应无阻力，如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出，以免损伤、穿破食道或误入气管。

2.兔、犬等:灌胃一般要借助于开口器、灌胃管进行.先将动物固定，再将开口器固定于上下门齿之间。

然后将灌胃管（常用导尿管代替）从开口器得小孔插入动物口中，沿咽后壁而进入食道。

插入后应检查灌胃管就是否确实插入食道。

可将灌胃管外开口放入盛水得烧杯中，若无气泡产生,表明灌胃管被正确插入胃中,未误入气管。

此时将注射器与灌胃管相连，注入药液.(二）口服法口服给药就是把药物混入饲料或溶干饮水中让动物自由摄取.此法优点就是简单方便,缺点就是剂量不能保证准确,且动物个体间服药量差异较大。

大动物在给予片剂、丸剂、胶囊剂时，可将药物用镊子或手指送到舌根部，迅速关闭口腔，将头部稍稍抬高,使其自然吞咽.二、注射给药法（一）皮下注射皮卜注射一般选取皮下组织疏松得部位,大鼠、小鼠与豚鼠可在颈后肩胛问、腹部两侧作皮下注射;家兔可在背部或耳根部作皮卜注射;猫、犬则在大腿外侧作皮下注射。

皮下注射用左手拇指与食指轻轻提起动物皮肤，右手持注射器,使针头水平刺入皮下。

推送药液时注射部位隆起。

拨针时,以手指捏住针刺部位,可防止药液外漏。

（二）肌肉注射肌肉注射一般选肌肉发达，无大血管通过得部位。

大鼠、小鼠、豚鼠可注射大腿外侧肌肉；家兔可在腰椎旁得肌肉、臀部或股部肌肉注射；犬等大型动物选臀部注射.注射时针头宜斜刺迅速人肌肉,回抽针栓如无回血，即可注射。

（三)腹腔注射给大鼠、小鼠进行腹腔注射时,以左手固定动物，使腹部向上，为避免伤及内脏，应尽量使动物头处于低位,使内脏移向上腹,右手持注射器从下腹两侧向头方刺入皮下,针头稍向前,再将注射器沿4５角斜向穿过腹肌进入腹腔，此时有落空感，回抽无回血或尿液,即可注入药液。