细胞冻存和细胞复苏的方法步骤
细胞的冻存和复苏实验原理
细胞的冻存和复苏实验原理细胞的冻存和复苏实验主要是为了在需要时能够保存活性细胞,以便以后使用。
此过程主要涉及到细胞的冷冻、保存和复苏等环节。
细胞的冻存过程主要包括细胞培养、准备细胞冻存液、细胞冷冻和冷冻保存。
首先,培养细胞是实验的第一步。
细胞可以来自动物组织、细胞系、细胞株等,根据不同的细胞类型和需要,选取合适的培养基和条件进行细胞培养。
培养基中一般含有营养物质、生长因子、激素等,提供细胞生长所需的基础条件。
接下来,要准备细胞冻存液。
细胞冻存液是用于维持细胞的生命状态和保护细胞免受冻融损伤的溶液。
常用的细胞冻存液成分包括冻存液基础培养基、血清、DMSO(二甲基亚砜)等。
其中,冻存液基础培养基可以提供细胞生长所需的营养物质和生长因子,血清则包含有细胞生长因子、蛋白质、维生素等,可以提供细胞所需的生长因子;DMSO作为一种保护剂,可以降低细胞因冻融过程中的机械损伤。
然后进行细胞的冷冻。
将细胞培养物中的细胞用生长基础培养液洗涤去除残存的细胞培养液和旧的培养基,然后加入适量的细胞冻存液,混匀后分装于冷冻管中,最后将细胞冷冻管放入低温冰箱或液氮罐中。
低温环境下,细胞的代谢活动明显减慢,可以有效降低细胞死亡率。
细胞的冷冻保存是将细胞保存在低温条件下,通常为-80或更低的温度。
在低温下,细胞的代谢活动几乎停止,能够大大延缓细胞的老化和死亡,从而实现长期保存。
冷冻保存期间,细胞内部的水分被DMSO等冻存液成分替代,以防止细胞因冻结而受到损伤。
细胞的复苏是将被冷冻保存的细胞通过逐渐升温,使其从低温环境中恢复到生理温度并重新开始生长的过程。
复苏过程中需要进行一系列的操作,其中最关键的是将细胞从冷冻状态逐渐恢复到室温。
一般情况下,将冷冻管放入37水浴中,然后缓慢将温度逐渐升高。
此外,为了减小细胞受到冻融损伤,可以将细胞冻存液缓慢滴入含有细胞培养基的离心管中,将细胞悬浮液转移到细胞培养器皿中进行培养。
总之,细胞的冻存和复苏实验的主要原理是通过低温环境延缓细胞的代谢活动,同时使用合适的冻存液来保护细胞免受损伤,从而实现细胞的长期保存和生存能力的恢复。
细胞学堂|细胞冻存与复苏的技术原理和操作步骤
细胞学堂|细胞冻存与复苏的技术原理和操作步骤细胞冻存与复苏是一种常用的细胞保存方法,用于长期保存细胞并保持其生理活性。
下面将详细介绍细胞冻存与复苏的技术原理和操作步骤。
技术原理:细胞冻存是通过将细胞在低温下快速冷冻,并加入保护剂以减少冷冻引起的细胞损伤,从而降低细胞的新陈代谢活动,保持细胞的生命特性。
具体原理如下:1.冷冻缓慢升温原理:冷冻过程中细胞内水分形成冰晶,容易损伤细胞结构。
为了降低损伤,冷冻时的降温速率应尽量缓慢。
而复苏时,也需要采取缓慢升温的方法,以避免溶解冰晶时造成的细胞破坏。
2.保护剂的添加:在冷冻过程中,加入一定浓度的保护剂能够防止细胞水分快速冻结而形成冰晶,从而减少冷冻引起的细胞膜和细胞器损伤。
一般常用的保护剂有甘露醇、二甘醇和甘油等。
操作步骤:下面将介绍细胞冻存与复苏的具体操作步骤:1.细胞选择与培养:选择要冻存的细胞,并保证细胞处于健康和活跃状态。
采用无菌操作,将细胞培养在适当的培养基中,并严格控制培养条件。
2.细胞冻存液的配制:将适当的冻存液配制好。
一般的冻存液组成包括培养基、胎牛血清/胎儿犊牛血清、20%-50%的甘油或其他保护剂。
保护剂的浓度取决于细胞的类型和耐受性。
3.细胞冻存:将培养好的细胞用冻存液冷冻保存。
首先,用培养基洗涤细胞,去除残留的培养基。
然后,添加冻存液,将细胞悬浮均匀。
最后,将细胞悬液装入标记好的冻存管中,并缓慢冷冻至-80℃或液氮中。
4.细胞复苏:将冷冻的细胞迅速取出,用温暖的手掌加热,迅速溶化冰晶。
将细胞悬液转移到离心管中,并加入预先配制好的培养基。
然后,用离心机离心,除去冻存液或保护剂。
最后,加入适当的培养基,将细胞继续培养。
5.细胞复苏后培养条件的控制:在细胞复苏后的培养过程中,需要严格控制培养条件,包括温度、CO2浓度、培养基成分和营养物质的供给等,以确保细胞能够正常生长和繁殖。
总结:细胞冻存与复苏是一种常用的细胞保存技术,可以长期保存细胞并保持其生理活性。
细胞复苏的原理和方法
细胞复苏的原理和方法细胞复苏的原理是将冻存在液氮或者-70℃冰箱中的细胞解冻之后重新培养,使细胞恢复生长的过程。
细胞复苏的原理是当细胞从冷冻状态恢复到常温状态时,细胞的形态结构保持正常,生化反应即可恢复。
与细胞冻存不同,细胞复苏过程升温要快,原则是慢冻快融,防止在解冻过程中水分进入细胞,形成冰晶,影响细胞存活。
细胞复苏的方法如下:1. 将冷冻管从液氮中取出,迅速投入37℃水浴融化。
在融化的过程中,要注意用镊子夹住冷冻管并在水浴中不时晃动,使细胞受热均匀且速度越快越好,这样可以最大限度的保存细胞活力,并防止水浴锅的水进入细胞冻存管造成细胞污染。
细胞融化后要尽快(约1min)移出37℃水浴。
如果37℃水浴时间延长,会提高细胞死亡率。
2. 完全融化后,用75%酒精擦拭冷冻管外杀菌后,打开盖子,取出冻存管的细胞悬液,缓慢加入到有培养液的T25或者是T75的培养瓶中,37℃、5%CO2培养。
如果细胞需要去除冷冻保护剂,用移液枪将细胞悬液注入15mL无菌离心管中,再加5ml完全培养基,根据细胞类型选择合适的离心速度,低速离心5min,弃去上清,加入2-3mL预热的完全培养基,轻轻吹匀,保证细胞完全重悬。
3. 用培养液适当稀释后,将重悬的细胞接种到培养皿或者T25或者是T75的培养瓶中,37℃、5%CO2培养。
24h后,更换新鲜培养基,去除死细胞。
三天可进行一次换液。
当细胞长到有80-90%汇合时进行传代。
此外,还有一些注意事项:1. 取冻存细胞时应做好防护措施,戴好防冻手套、护目镜。
如果冻存管密封不严,液氮可被吸入。
由于解冻时冻存管中的气温急剧上升,将可能发生爆炸。
2. 打开细胞冻存管之前要用酒精棉球将冻存管消毒并晾干。
注意无菌操作,细胞复苏后的操作在4℃冰盒中进行,以减少冷冻保护剂对细胞的毒性。
3. 解冻时间在2min以内完成,且整个过程尽量避免吹打细胞产生气泡,导致细胞复苏后的生长状态不佳。
4. 复苏细胞的时候尽量避免冻存管接缝处沾水,防止支原体污染。
细胞传代冻存复苏步骤
细胞传代冻存复苏步骤细胞的传代冻存技术是生物医学研究中的一个重要方式。
该技术可以将细胞批量保存并长期维持其活性,以便进行进一步的研究。
细胞传代冻存的过程可以简单地概括为以下几个步骤:从培养皿中收集细胞,处理和停滞细胞增殖,添加冻存保护剂,将细胞悬液冷冻存储,最后进行复苏。
下面我们就详细描述一下这个具体步骤:1. 收集细胞收集细胞需要注意细胞的龄期,通常在细胞的对数生长期收集更好。
另外要注意细胞的数量不能过少或过多。
2. 停滞细胞增殖为了将细胞传代,减少增值周期并停滞细胞增殖是必要的。
对于一些高度增殖性的细胞,可以通过干预细胞内基因表达、添加生长因子等方式来实现。
一般可以使用过量的培养基,并将细胞保存在低吸附的容器中来停滞细胞增殖。
这样可以防止细胞形成多层,而保证单层生长。
3. 添加冻存保护剂添加冻存保护剂是细胞传代冻存的关键步骤之一。
冻存保护剂可以有效地保护细胞免受冻结脱水、冰晶形成和低温应力等因素的损害。
最常用的冻存保护剂是一些有机溶剂,例如DMSO(二甲基亚砜)、甘油等。
这些保护剂可以在细胞冷冻存储的过程中降低溶液的结冰点,防止冰晶的形成。
4. 冷冻存储在添加了冻存保护剂后,可以将细胞悬液装入冷冻管中,使用缓慢冷冻和液氮快速冷冻两种方法将细胞冷冻存储;液氮快速冷冻的方式冷冻效率高,但是会对细胞产生更大的应激,可能会降低细胞的复苏率。
缓慢冷冻是比较安全的方式,可以使用-80度的冰箱进行冷冻,时间从数小时到数日不等。
5. 复苏细胞冻存后,想要复苏它们,需要将细胞迅速退回到正常培养条件下。
此时需要谨慎地处理,以免破坏细胞结构和细胞膜等。
复苏的过程需要按照以下步骤:- 缓慢加热:将冻存细胞悬液从液氮中取出,快速将冻存管放入37度的水浴中,缓慢加热,让细胞悬浮在解冻液中的DMSO等有机溶剂逐渐被稀释。
- 洗涤:用无血清的培养基或PBS等洗涤一遍细胞,约10分钟,以去除有机溶剂。
- 均匀吸附:将无血清培养基或PBS加入细胞悬液中,让细胞吸附于培养皿上,约30分钟。
细胞复苏及冻存的实验步骤及注意事项
细胞复苏及冻存的实验步骤及注意事项《细胞复苏及冻存:一场细胞的“冰与火之歌”》在生物实验室这个奇妙的小世界里,细胞的复苏和冻存就像是操纵细胞命运的魔法步骤。
今天呀,我就来给大家唠唠这细胞复苏及冻存的那些事儿,这里面的门道可多着呢,就像走钢丝,容不得半点马虎。
一、细胞复苏的实验步骤和趣事儿步骤一:前期准备像打仗前的粮草筹备在细胞复苏之前,得把“战场”布置好。
先把超净台用酒精仔仔细细地擦个遍,就像给它做个全面的SPA,确保里面一尘不染。
接着,打开水浴锅,把水温调到37℃,这温度可不能出差错,多一度细胞可能就像洗热水澡被烫着了,少一度就像是在冷水里打哆嗦,都不利于细胞恢复生机。
准备好相应的培养液,这就像是细胞的“营养套餐”,没它细胞可活不下去。
步骤二:复苏过程像是拯救冻僵的小生命从液氮罐里拿出冻存管的时候,感觉就像是从冰天雪地的极寒之地营救小生命。
那冻存管冻得直冰手,得迅速放到37℃的水浴锅里快速解冻,要不停地轻轻晃动,就像是在鼓励细胞:“小宝贝们,快快醒来啊!”这时候心里默默祈祷着,可别出啥岔子。
在小细胞们还迷糊着的时候,把它们转移到含有培养液的离心管里,离心的过程又像一场小小的筛选,把那些还没适应过来的杂质去除,留下顽强的细胞。
最后把细胞接种到培养瓶里,就像给它们安家落户啦,盼着它们在新家里茁壮成长。
二、细胞冻存的实验步骤和其中的小纠结步骤一:选择冻存液就像挑选合适的保护铠甲冻存液的配置可是个技术活。
一般是包括培养液、血清和保护剂(像是二甲基亚砜这类的神奇物质)。
血清就像保护层里的柔软衬里,给细胞温暖的呵护,而保护剂则像坚韧的外壳,防止细胞在冷冻过程中被冰晶刺破。
这三者的比例得拿捏得死死的,就像厨师做菜时放盐的量,多一点少一点都不行。
步骤二:缓缓降温像是送细胞进入冬眠把细胞放到冻存管里,标记好细胞类型、日期等信息,这就好比给细胞上户口,省得以后找不到“人”。
然后要进行程序降温。
想象细胞此时就像个准备冬眠的小动物,得一步步慢慢适应越来越冷的环境。
干细胞冻存及复苏步骤
干细胞冻存及复苏步骤
一、干细胞冻存及复苏步骤
1.提取干细胞
(1)首先,从捐赠者身体组织中提取干细胞,比如从头发根部提取毛发内的细胞,或从脐带血中提取干细胞。
(2)使用双曲线增殖诱导方法,通过对提取的干细胞进行双曲线增殖诱导,使其变成能够细胞分裂的干细胞。
2.干细胞细胞系建立
细胞分裂时,可以分离出更多干细胞,将这些干细胞细胞分离出来,再放入相应的培养基中,建立起细胞系。
3.干细胞冻存
(1)在细胞分离时,应当尽快进行冻存,以防止细胞活性下降。
(2)将细胞放入冰淇淋箱,将其温度降至-80℃,然后将其冻存,一般可以保存2-3年。
(3)将细胞放入低温液氮坩埚中冻存,可以保存更久,约10年。
4.干细胞复苏
(1)将细胞从低温冰箱中取出,将其温度升至4℃,然后将其放入相应的培养基中,缓慢地升温,使其复苏。
(2)缓慢地加入相应的培养液,适当的调节成分,使其复苏,并且保持活性。
(3)观察复苏的细胞,观察其繁殖情况,确保细胞复苏的质量。
5.细胞发展
(1)可以使用双曲线增殖诱导方法,结合培养基中的生长因子,诱导细胞进行分化,用于后续的发展。
细胞传代铺板冻存复苏等细胞培养相关操作步骤和注意事项
细胞传代铺板冻存复苏等细胞培养相关操作步骤和注意事项细胞传代:细胞传代是指将已经培养得到的细胞进行继代,以维持细胞的健康生长和增殖。
具体步骤如下:1.预备培养基和消化液:准备需要的培养基和细胞消化液,将培养基预暖在37摄氏度保温箱中。
2.消化细胞:将已经生长到80-90%的细胞培养皿放到细胞消化液中消化,消化时间根据细胞的种类和生长状态而定。
消化完成后,在显微镜下观察,确保细胞基本脱落。
3.细胞计数与离心:将细胞消化液转移到离心管,进行细胞计数。
根据所需细胞数量计算所需消化液的体积,并用预暖的培养基配置所需的细胞悬液。
离心细胞消化液以去除细胞消化的消化液。
4.铺板:将计算好的细胞悬液转移到铺板中,轻轻摇晃铺板使细胞均匀分布。
放置在培养箱中,培养条件根据细胞类型而定。
注意事项:-消化时间不宜过长,否则细胞会受到过度损伤。
-细胞计数时要使用显微镜和相关计数仪器,确保准确性。
-铺板时要轻轻摇晃铺板以均匀分布细胞,避免气泡产生。
冻存:冻存是将细胞保存在低温条件下,以备日后使用。
具体步骤如下:1.细胞准备:选择处于对称生长期的细胞进行冻存。
对细胞进行消化并离心,将细胞沉淀取出至干燥的离心管。
2.冻存液准备:根据细胞的特性和保存要求选择合适的冻存液,如含有二甲基亚砜(DMSO)和甘油的培养基。
将冻存液预暖。
3.冻存管装填:将已洗净的冻存管放入液氮中预冷,稍微干燥后将细胞沉淀均匀加入冻存管中。
用塑料冻存盖或冷却后的金属冻存夹紧。
4.冷冻:将装有细胞的冻存管放入-80摄氏度的深冷冰箱中,预冻24小时到48小时。
等冷冻固化后将管子迁移到液氮冷冻罐中。
注意事项:-使用合适的冻存液,避免对细胞造成过度伤害。
-在严格消毒和无菌条件下进行冻存操作。
-细胞冷冻时,必须迅速并且均匀降温,以避免冷冻诱导的细胞损伤。
复苏:复苏是指冻存的细胞被解冻、恢复生长和增殖的过程。
具体步骤如下:1.细胞解冻:将冻存的细胞管迅速取出,直接放入37摄氏度的水浴中,轻轻摇动直至融化。
细胞冻存及复苏步骤
细胞的复苏步骤1.实验前准备(1)将水浴锅预热至37℃。
(2)用75%酒精擦拭紫外线照射30min的超净工作台台面。
(3)在超净工作台中按次序摆放好消过毒的离心管、吸管、培养瓶等等。
2.取出冻存管(1)根据细胞冻存记录按标签找到所需细胞的编号。
(2)从液氮罐中取出细胞盒,取出所需的细胞,同时核对管外的编号。
3.(1)迅速将冻存管投入到已经预热的水浴锅中迅速解冻,并要不断的摇动,使管中的液体迅速融化。
(2)约1-2min后冻存管内液体完全溶解,取出用酒精棉球擦拭冻存管的外壁,再拿入超净台内。
4.离心:放入离心机中1000r/min离心4min。
(一般800即可,对于较小细胞可适当增加转速,一般不超过1000r)5.制备细胞悬液(1)吸弃上清液。
(2)向离心管内加入12ml培养液,吹打制成细胞悬液。
6.细胞计数细胞浓度以5×105/ml为宜。
(依照细胞类型而定)7. 培养贴壁细胞的冻存的步骤准备:从冰箱取出各药品在室温下放置,紫外照射超净台30min,配置5%DMSO的冻存液1.收集各管中培养液与一个大的离心管中,吸取1ml培养液加入已标记的EP管中用于支原体的检测,其余用于终止酶解反应。
2.加入5mlPBS洗卡氏瓶除去血清,防止酶解反应受影响。
注意:要在卡氏瓶的反面加液,防止把细胞冲掉。
加入2ml胰酶,使细胞从瓶壁上脱落下来。
3.酶解完全后迅速加入含血清的培养基终止酶解反应。
4.收集各瓶中的细胞悬液,并计算其体积,取出一部分于EP管中用于计数,计算冻存支数。
5.离心800r每分钟,4min。
在超净台中取出冻存管并做好标记(名称株号冻存人日期)6.去除上清,并用适量(依冻存支数而定,每支1ml)的冻存液使其悬浮,加入冻存管中,每管1ml7.放入冻存盒(标注放入日期有使用次数限制),在-80冰箱中过夜后放入液氮罐并作好记录。
细胞冻存与复苏步骤原理及注意事项
细胞冻存与复苏步骤原理及注意事项细胞冻存是指将活体细胞暂时停止其代谢活动,并在低温下保存,以便今后可以复苏和继续进行研究。
这项技术对于维持细胞的长期保存和保护遗传材料非常重要。
步骤:1.细胞培养和准备:选择合适的细胞培养基和培养条件,使细胞处于最佳状态。
2.冻存液制备:制备一种含有细胞生长因子、保护剂(例如DMSO或甘油)以及缓冲剂(例如BSA或EDTA)的冻存液。
3.细胞收集和离心:将培养好的细胞通过离心来收集细胞沉淀。
4.细胞冻存和保存:将收集到的细胞与冻存液混合,将混合液分装到冷冻管中,并在极低温下保存(通常为-80°C或液氮温度)。
复苏:1.细胞溶解和补充:将冷藏的细胞迅速解冻,并将其加入到预先准备好的培养基中。
2.培养和观察:将复苏后的细胞转移到培养皿中,并在适当的条件下培养。
观察细胞的生长和形态变化。
原理:细胞冻存的原理是通过降低细胞内温度来减缓或暂时停止细胞代谢活动。
冷冻液中的保护剂可减少细胞冷冻过程中的冻伤,防止细胞膜的破裂和细胞器的破坏。
细胞冷冻过程中,细胞内的水会形成冰晶,但保护剂的存在可以防止冰晶对细胞结构的破坏。
当细胞需要复苏时,通过迅速解冻并将细胞转移到适当的培养基中,细胞可以恢复其生理功能并继续生长和分裂。
注意事项:1.使用无菌的实验室条件和器具来避免细胞冻存和复苏过程中的污染。
2.选择适当的冻存液和培养基,以确保细胞的最佳保护和生长条件。
3.控制冷冻和解冻速率,过快或过慢的速率都可能对细胞造成伤害。
通常使用准备好的细胞冷冻容器或慢速冷却设备来控制速率。
4.正确选择适合冷冻保存的细胞类型。
不同细胞可能对冷冻敏感性有所差异。
5.注明冷冻细胞的信息,例如细胞类型、冷冻日期、冻存液配方等,以便于后续的管理和查询。
简述动物细胞培养过程中细胞复苏,传代,冷冻的操作方法
简述动物细胞培养过程中细胞复苏,传代,冷
冻的操作方法
动物细胞培养过程中的细胞复苏、传代和冷冻是常见的操作步骤。
具体方法如下:
1. 细胞复苏:
a. 将冷冻保存的细胞样品快速解冻,可以将冰冻管置于37°C的水浴中缓慢解冻。
b. 解冻后,将细胞迅速转移到含有预暖的培养基的离心管中。
c. 用培养基轻轻洗涤细胞,并将其移至培养皿中,使细胞附着于培养器皿表面。
d. 增加足够的预热培养基,将细胞放回合适的培养条件中进行复苏。
2. 细胞传代:
a. 当细胞达到适当的密度或已达到培养器皿的最大生长容量时,需要进行细胞传代。
b. 首先,先用无菌PBS缓冲液轻轻洗涤细胞,以去除残留的培养基和细胞碎片。
c. 使用无菌酶消化液(如胰蛋白酶)轻轻润湿细胞,然后加入等量的无菌培养基来停止消化。
d. 耐心地将细胞悬浮液吸取并转移到新的培养皿中,保持适当的稀释比例,并加入新的预热培养基。
e. 将新的培养皿放入培养箱中,提供适当的温度、湿度和氧气供应。
3. 细胞冷冻:
a. 将细胞按照细胞传代的方法进行收获和洗涤。
b. 用细胞冻存试剂(如DMSO)缓慢添加到细胞悬浮液中,最终细胞密度通常为1-2×10^6个细胞/mL。
c. 将细胞悬浮液转移至预冷的冻存管中。
d. 快速将冷冻管放入冷冻等温器中,以确保细胞迅速冷冻。
e. 细胞冷冻后,将冷冻管转移到液氮罐中进行长期储存。
请注意,动物细胞培养的具体操作方法可能因细胞类型和研究需要而有所不同。
在进行这些操作之前,应仔细阅读并遵守相应的实验室指南和安全操作规程。
细胞传代冻存复苏步骤
细胞传代冻存复苏步骤1.细胞培养首先,需要从细胞库中取出要冻存的细胞,并将其接种在适当的培养基上。
培养基应该包含适当的营养物质和生长因子,以确保细胞的正常生长和分裂。
2.细胞生长将培养皿置于恒温培养箱中,维持适当的温度、湿度和气体环境。
细胞需要在培养基中适当的时间内生长和扩增。
通常,培养时间为2-3天,视细胞类型而定。
3.细胞检查在细胞生长期间,必须定期对细胞进行检查,以确保其健康和无污染。
细胞检查可通过显微镜观察细胞形态和活力,或通过细胞培养基中的染料检测细胞活性。
4.细胞分离一旦细胞达到所需的数量,即可进行细胞分离。
使用适当的胰蛋白酶或其他消化酶来分离细胞。
细胞分离后,将其转移至新的培养皿中。
5.细胞计数使用血细胞计数板或其他形式的计数器来计数细胞数目。
细胞计数是决定细胞数量和密度的重要步骤,以确保在冻存过程中使用适当的细胞浓度。
6.冻存液制备冻存液是保护细胞冻存过程中的关键溶液。
常见的冻存液成分包括培养基和甘油、DMSO(二甲基亚砜)等保护剂。
这些成分具有保护细胞免受冻结和解冻过程中的损伤的作用。
7.细胞冻存将细胞和冻存液混合在一起,使用冷冻管或冻存管将其分装。
然后将冻存管放入冷冻容器中,使其逐渐冷却至极低温(通常为-80℃或液氮温度)。
8.细胞解冻在需要复苏细胞时,从冷冻容器中取出冻存管,快速解冻至37℃。
解冻时应非常小心,以免损伤或破坏细胞。
可选择将冻存管置于37℃水浴中解冻,或使用预先加热的介质进行解冻。
9.细胞复苏一旦细胞完全解冻,将其迅速转移到预先准备好的培养皿中。
加入适量的培养基和生长因子,为细胞提供所需的营养和环境条件。
将培养皿放入恒温培养箱中,并维持适当的生长条件。
10.细胞生长观察在细胞复苏后,定期观察细胞的生长和活性。
使用显微镜观察细胞形态和增殖情况,确保细胞正常生长。
如果发现任何细胞死亡或异常现象,可能需要采取相应的措施来解决。
11.细胞传代一旦细胞复苏并正常生长,可以进行细胞传代以扩增细胞数量。
细胞复苏、传代、冻存过程
细胞复苏、传代、冻存过程引言细胞复苏、传代和冻存是细胞实验中常见的操作流程。
细胞复苏指的是从冻存状态下恢复细胞的生长和功能,传代是将细胞进行繁殖,冻存则是将细胞保存在极低温下,以便长期保存和后续使用。
下面将详细讨论这些过程。
细胞复苏 Process of Cell Revival材料和设备•冻存管:包含冻存细胞的管子•暖水槽:设置在37°C的恒温水槽内•柱塞:用于搅动和混合细胞悬液•无菌培养皿•无菌培养基步骤1.将冻存管取出放在暖水槽中,快速融化冰冻细胞。
2.将融化的细胞悬液转移到无菌培养皿中。
3.加入预热的培养基,使细胞悬液与培养基充分混合。
4.将细胞培养皿放入培养箱中,维持37°C的恒温和5% CO2的含氧条件。
5.定期观察细胞的生长情况。
细胞传代 Process of Cell Passage材料和设备•细胞培养皿:含有生长的细胞•无菌培养基•显微镜•无菌移液器•15ml离心管•离心机步骤1.将培养皿放在显微镜下,观察细胞的生长情况和密度。
2.用无菌移液器将培养基吹洗细胞,移除老化细胞和细胞碎片。
3.将细胞用预热的无菌培养基均匀混合。
4.用无菌移液器将细胞和培养基移入新的细胞培养皿中。
5.定期检查和记录细胞的生长情况和数量。
冻存细胞 Process of Cell Cryopreservation材料和设备•细胞培养皿:含有生长的细胞•冻存液:包含细胞冻存所需的成分•冻存管•冷冻容器:用于储存冻存管的液体氮罐•标签:用于标记冻存管步骤1.将培养皿放在显微镜下,观察细胞的生长情况和密度。
2.用无菌移液器吹洗细胞,并移除老化细胞和细胞碎片。
3.用预热的无菌培养基将细胞均匀混合。
4.将混合的细胞和冻存液按照特定比例混合。
5.将混合液转移至冻存管中,并封闭管盖。
6.标记冻存管上的信息,包括细胞类型、传代数和日期。
7.将冻存管放入冷冻容器中,迅速冷冻至-80°C或更低温度。
细胞复苏、传代、冻存
细胞复苏操作说明(针对冻存细胞)实验仪器:超净工作台 ,CO2 培养箱 ,倒置显微镜 ,水浴锅 ,离心机实验试剂:DMEM 培养基 ,胎牛血清 ,三抗实验材料:T25 细胞培养瓶 ,需复苏的细胞 ,移液枪 ,枪头 ,离心管实验步骤:1. 从液氮罐中取出冻存管 ,直接浸入 37℃温水中 ,并不时摇动令其尽快融化。
2. 从 37℃水浴中取出冻存管 ,打开盖子 ,移液枪吸出细胞悬液 ,加到离心管并滴加 5 倍以上完全培养 基并混匀 。
3. 操作离心 , 调至1000 转/分 ,时长 10 分钟4. 弃去上清液 ,重悬离心管底部细胞沉淀 ,在 T25 培养瓶中加入 5-6ml 完全培养基 ,计数 ,调整细胞 密度,接种培养瓶 ,37℃培养箱静置培养。
5. 次日更换一次培养液,继续培养。
6. 注意:冻存细胞建议三管一起复苏到一个 T25 培养瓶。
细胞传代操作说明(贴壁细胞)实验仪器 :超净工作台 ,CO2 培养箱 ,倒置显微镜 ,离心机实验试剂:DMEM 培养基 ,胎牛血清 ,0.25%胰酶 ,三抗实验材料:T25 细胞培养瓶 ,需传代的细胞 ,移液枪 ,枪头 ,离心管实验步骤:1. 细胞于培养箱中 ,愈合度达到 80% ,可进行传代。
2. 按 T25 培养瓶计 ,吸出完全培养基 ,并 PBS 缓冲液轻冲 3 遍 ,添加 0.25%含 EDTA 胰酶 2ml , 消 化 2min(具体时间视细胞而定) ,后用完全培养基将细胞冲洗下来。
1000r/min 离心 10 min ,弃上清 收集细胞,铺至 2 个 T25 培养瓶中培养,各添加 7ml 完全培养基。
3. 注意: 消化时间不易过长,消化前血清成分务必去除干净,终止消化请用新鲜完全培养基,原瓶培养基不可继续使用(终止消化或传代) 。
细胞传代操作说明(悬浮细胞)实验仪器:超净工作台 ,CO2 培养箱 ,倒置显微镜 ,离心机实验试剂:DMEM 培养基 ,胎牛血清 ,三抗实验材料:T25 细胞培养瓶 ,需传代的细胞 ,移液枪 ,枪头 ,离心管实验步骤:1. 细胞于培养箱中,密度达到悬浮细胞传代标准(沉降后可铺满底面),可进行传代。
细胞冻存和细胞复苏的方法步骤
细胞冻存和细胞复苏的方法步骤细胞冻存是将细胞保存在极低的温度下,以延缓其新陈代谢过程,从而达到长期保藏的目的。
细胞复苏则是将冻存的细胞重新恢复到正常生活状态的过程。
下面将详细介绍细胞冻存和细胞复苏的方法步骤。
细胞冻存的方法步骤:1.细胞培养:首先,需要获得足够数量和质量的细胞进行冻存。
通过细胞培养技术,将细胞培养在含有适当营养物质的培养基中,使其生长繁殖。
2.细胞分离和检测:将细胞从培养基中分离出来,并进行质量检测,确保细胞的纯度和活力。
3.冻存液的制备:制备适当的冻存液,通常是含有细胞保护剂的冻存液,可以起到保护细胞免受低温伤害的作用。
4.冻存管的准备:准备干净的冻存管,并确保管内没有污染物。
5.细胞冻存:将细胞悬浮液和冻存液混合,将混合液加入冻存管中。
随后,将管子放入冷冻器中,逐渐降低温度,使其达到细胞存活所需的最低温度,通常为液氮温度(-196℃)。
6.冻存管理:冻存后的细胞需要进行管理,包括记录存储位置、维护存档和监测保存条件等。
细胞复苏的方法步骤:1.细胞解冻:将冻存管从液氮中取出,迅速放入37℃的温水中,并轻轻摇晃,以加快冻存液的溶解。
待细胞解冻完成后,立即将细胞转移到含有培养基的离心管中。
2.细胞复苏培养:将细胞悬浮液转移到培养基中,然后放入培养箱中进行培养。
培养基的组成与之前的培养条件相似,以帮助细胞适应新的环境。
3.细胞复苏检测:在细胞复苏后的一段时间内,需要对细胞进行监测和检测,包括细胞存活率、生长状况、形态特征等。
4.细胞复苏管理:对细胞进行管理和维护,包括定期更换培养基、检测细胞的多项指标、记录细胞的生长状态等,以确保细胞的健康状态和长期保存。
细胞冻存和细胞复苏的方法步骤需要严格控制和执行,以保证细胞的活性和质量。
冻存和复苏过程中的温度、冻存液的配方、时间等因素都会对细胞的生存和恢复产生影响,因此,在实施这些方法时需要权衡各种参数,并根据具体情况进行调整和优化。
同时,冻存和复苏过程中的操作要保持无菌、无污染,以保证细胞的无菌状态和纯度。
细胞冻存和细胞复苏的方法步骤
细胞冻存和细胞复苏的方法步骤细胞的冻存一、概述目前,细胞冻存最常用的技术是液氮冷冻保存法,主要采用加适量保护剂的缓慢冷冻法冻存细胞。
细胞在不加任何保护剂的情况下直接冷冻,细胞内外的水分会很快形成冰晶,从而引起一系列不良反应。
如细胞脱水使局部电解质浓度增高,pH值改变,部分蛋白质由于上述原因而变性,引起细胞内部空间结构紊乱,溶酶体膜由此遭到损伤而释放出溶酶体酶,使细胞内结构成分造成破坏,线粒体肿胀,功能丢失,并造成能量代谢障碍。
胞膜上的类脂蛋白复合体也易破坏引起细胞膜通透性的改变,使细胞内容物丢失。
如果细胞内冰晶形成较多,随冷冻温度的降低,冰晶体积膨胀造成细胞核DNA空间构型发生不可逆的损伤,而致细胞死亡。
因此,细胞冷冻技术的关键是尽可能地减少细胞内水分,减少细胞内冰晶的形成。
采用甘油或二甲基亚砜作保护剂,这两种物质分子量小,溶解度大,易穿透细胞,可以使冰点下降,提高细胞膜对水的通透性,且对细胞无明显毒性。
慢速冷冻方法又可使细胞内的水分渗出细胞外,减少胞内形成冰结晶的机会,从而减少冰晶对细胞的损伤。
二、细胞冻存操作步骤:1)冻存液:10%DMSO/90%FBS的混合液。
2)每支冻存管2ml冻存液。
每个10cm的培养皿一般分4管冻存。
3)程序冻存盒。
选择处于对数生长期的细胞,在冻存前一天最好换液。
将多个培养瓶中的细胞培养液去掉,用0.25% 胰蛋白酶消化。
适时去掉胰蛋白酶,4)选择处于对数生长期的细胞,在冻存前一天最好换液。
将培养皿中的细胞培养液去掉,用0.25% 胰蛋白酶消化,适时去掉胰蛋白酶,吸取预冷的PBS4.5ml来重悬浮细胞。
5)吸取4°预冷的DMSO1m与FBS4.5lml在试管中混匀,称之A液。
6)将A液与细胞上述悬液混匀即形成10%DMSO/90%FBS的混合液,吸取2ml移入冻存管,盖紧。
7)冻存管表明细胞及代数、冻存日期、冻存者、冻存支数,放入冻存盒,置80°冰箱过夜。
细胞冻存(Cell Freezing)和复苏技术原理和操作步骤
细胞冻存(Cell Freezing)和复苏技术原理和操作步骤一、原理在不加任何条件下直接冻存细胞时,细胞内和外环境中的水都会形成冰晶,能导致细胞内发生机械损伤、电解质升高、渗透压改变、脱水、PH改变、蛋白变性等,能引起细胞死亡。
如向培养液加入保护剂,可使冰点降低。
在缓慢的冻结条件下,能使细胞内水份在冻结前透出细胞。
贮存在-130℃以下的低温中能减少冰晶的形成。
细胞复苏时速度要快,使之迅速通过细胞最易受损的-5~0℃,细胞仍能生长,活力受损不大。
目前常用的保护剂为二甲亚砜(DMSO)和甘油,它们对细胞无毒性,分子量小,溶解度大,易穿透细胞。
二、操作步骤(一)冻存1、消化细胞,将细胞悬液收集至离心管中。
2、1000rpm离心10分钟,弃上清液。
3、沉淀加含保护液的培养,计数,调整至5×106/ml左右。
4、将悬液分至冻存管中,每管1 ml。
5、将冻存管口封严。
如用安瓿瓶则火焰封口,封口一定要严,否则复苏时易出现爆裂。
6、贴上标签,写明细胞种类,冻存日期。
冻存管外拴一金属重物和一细绳。
7、按下列顺序降温:室温→4℃(20分钟)→冰箱冷冻室(30分钟)→低温冰箱(-30℃ 1小时)→气态氮(30分钟)→液氮。
注意:操作时应小心,以免液氮冻伤。
液氮定期检查,随时补充,绝对不能挥发干净,一般30立升的液氮能用1~1.5月。
(二)复苏1、准备一个茶缸或1000ml的烧坏,内装2/3杯37℃的温水。
2、从液氮中取出冻存管、迅速置于温水中并不断搅动。
使冻存管中的冻存物在1分钟之内融化。
3、打开冻存管,将细胞悬液吸到离心管中。
4、1000rpm离心10分钟,弃去上清液。
5、沉淀加10ml培养液,吹打均匀,再离心10分钟,弃上清液。
(细胞数量少的情况下,复苏时可省略步骤5。
)6、加适当培养基后将细胞转移至培养瓶中,37℃培养,第二天观察生长情况。
三、试剂和器材器材:液氮罐、冻存管(塑料螺口专用冻存管或安瓿瓶)、离心管、吸管、离心机等。
细胞冻存与复苏步骤
细胞冻存与复苏步骤一、细胞冻存步骤1.细胞准备:选择需要保存的细胞,如细菌、真核细胞或植物细胞等。
确保细胞在保存前是健康和活跃的。
2.细胞培养:将细胞培养在适当的培养基中,提供足够的营养物质供细胞生长和增殖。
3.预冷处理:在冰箱中对细胞进行预冷处理,以适应环境的改变,减少冷冻过程中对细胞的伤害。
4.冷冻介质配制:配制适合冷冻细胞的冷冻介质。
常见的冷冻介质包括甘油、DMSO(二甲基亚砜)等。
5.细胞冷冻:将培养好的细胞与冷冻介质混合均匀,并分装到冷冻管或冻存袋中,然后将其放入液氮罐中进行冷冻。
6.冷冻保存:将冷冻好的细胞保存在液氮罐中,温度通常保持在-196℃以下。
二、细胞复苏步骤1.预备工作:首先需要准备好细胞复苏所需的培养基和试剂。
培养基通常包括适当浓度的多糖、氨基酸和生长因子等。
2.细胞解冻:将冷冻的细胞从液氮罐中取出,迅速放入37℃的水浴中解冻,避免长时间暴露在室温。
3.细胞离心:解冻后将细胞离心,以去除残留的冷冻介质和杂质。
4.细胞重悬:将离心得到的细胞重悬于预先准备的培养基中。
5.细胞培养:将细胞转移至培养皿中,放入恒温培养箱中,通常为37℃,5%CO2的条件下继续培养。
6.细胞观察:观察培养皿中细胞的生长情况,通过显微镜观察细胞形态和数量的变化。
1.选择适当的冷冻介质:不同细胞类型对冷冻介质的耐受性不同,需要选择能够保护细胞完整性和生物活性的冷冻介质。
2.控制冷冻速率:过快或过慢的冷冻速率都可能导致细胞冻存失败。
通常使用控制冷冻速率的设备,如液氮罐或冷冻机。
3.防止细胞冻伤:冻存过程中细胞易受到冻伤的伤害,应尽量减少或避免冻伤的发生。
例如,在细胞冷冻前使用细胞保护剂可以提高细胞的存活率。
4.保存条件控制:细胞冷冻保存时,需要精确控制温度,确保保存温度稳定,以防止细胞失活或变异。
液氮罐中的细胞保存时间通常可以达到数年以上。
细胞冻存与复苏技术的发展为细胞研究和应用提供了更多的可能性,同时也为人类疾病的治疗和预防带来了希望。
细胞冻存、复苏及传代
细胞冻存步骤
1、将细胞冻存液(10%DMSO+90%FBS)配好并放置冰箱预冷;
2、当10 cm培养皿中的RBMSC细胞汇合到80%-90%时,用胰蛋白酶将细胞消化下来,1200 rpm离心,去上清;
3、加入PBS重悬细胞,以洗去残留的胰蛋白酶,1200 rpm离心,去上清;
4、加入1ml细胞冻存液重悬后,将细胞重悬液放入冻存管中,并快速将冻存管放入冻存盒中(冻存盒需先复温),再将冻存盒放入-80℃冰箱中过夜,再转移至液氮中保存。
细胞复苏步骤
1、先将培养基配好并复温,在15ml离心管中加入3ml培养基
2、将从液氮罐取出的冻存细胞置于37℃水浴锅中1-2min溶解后,立即将细胞悬液转移至
15ml离心管中,1200 rpm离心3 min,弃上清;
3、加入6ml培养基重悬细胞,并将细胞悬液转移至6cm培养皿中培养,贴壁12h后换液。
4、复苏的细胞应传代2-3代后方可用于实验。
细胞传代步骤
1、当培养皿或培养瓶内的细胞增殖为80-90%时,可进行传代。
2、弃上清,PBS洗2-3次,6cm(10cm)培养皿中加入600μl(800 μl)胰蛋白酶消化1-2min
后,在显微镜下观察细胞是否变成圆形,当细胞变成圆形后,应立即加入培养基终止消化,以免细胞消化过度。
3、1200 rpm离心3min,弃上清,加入1ml培养基重悬,将细胞重悬液转移至含有培养基
的6cm培养皿中进行培养。
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细胞冻存和细胞复苏的方法步骤
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细胞的冻存
一、概述
目前,细胞冻存最常用的技术是液氮冷冻保存法,主要采用加适量保护剂的缓慢冷冻法冻存细胞。
细胞在不加任何保护剂的情况下直接冷冻,细胞内外的水分会很快形成冰晶,从而引起一系列不良反应。
如细胞脱水使局部电解质浓度增高,pH值改变,部分蛋白质由于上述原因而变性,引起细胞内部空间结构紊乱,溶酶体膜由此遭到损伤而释放出溶酶体酶,使细胞内结构成分造成破坏,线粒体肿胀,功能丢失,并造成能量代谢障碍。
胞膜上的类脂蛋白复合体也易破坏引起细胞膜通透性的改变,使细胞内容物丢失。
如果细胞内冰晶形成较多,随冷冻温度的降低,冰晶体积膨胀造成细胞核DNA空间构型发生不可逆的损伤,而致细胞死亡。
因此,细胞冷冻技术的关键是尽可能地减少细胞内水分,减少细胞内冰晶的形成。
采用甘油或二甲基亚砜作保护剂,这两种物质分子量小,溶解度大,易穿透细胞,可以使冰点下降,提高细胞膜对水的通透性,且对细胞无明显毒性。
慢速冷冻方法又可使细胞内的水分渗出细胞外,减少胞内形成冰结晶的机会,从而减少冰晶对细胞的损伤。
二、细胞冻存操作步骤:
(1)选择处于对数生长期的细胞,在冻存前一天最好换液。
将多个培养瓶中的细胞培养液去掉,用0.25% 胰蛋白酶消化。
适时去掉胰蛋白酶,加入少量新培养液。
用吸管吸取培养液反复吹打瓶壁上的细胞,使其成为均匀分散的细胞悬液。
悬浮生产细胞则不要消化处理。
然后将细胞收集于离心管中离心(1000r/min,10分钟)。
(2)去上清液,加入含20%小牛血清的完全培养基,于4℃预冷15分钟后,逐滴加入已无菌的DMSO或甘油,用吸管轻轻吹打使细胞均匀,细胞浓度为3×106~1×107/mL之间。
(3)将上述细胞分装于安瓿或专用冷冻塑料管中,安瓿装1~1.5mL在火焰喷灯上封口,封口处要完全封闭,圆滑无勾。
冷冻管要将盖子盖紧,并标记好细胞名称和冻存日期,同时作好登记(日期、细胞种类及代次、冻存支数)。
(4)将装好细胞的安瓿或冻存管装入沙布袋内;置于液氮容器颈口处存放过夜,次日转入液氮中。
采用控制降温速度的方法也可采用下列步骤:先将安瓿置入4℃冰箱中2~3小时,再移至冰箱冷冻室内3~4小时(此步可省略),再吊入液氮容器颈气态部分存放2小时,最后沉入液氮中。
细胞冻存在液氮中可以长期保存,但为妥善起见,冻存半年后,最好取出一只安瓿细胞复苏培养,观察生长情况,然后再继续冻存。
三、常用冷冻设备和材料
常用的细胞冷冻贮存器为液氮贮存器,规格有35L3和50L3两种。
使用时要注意以下几点:(1)一般两周需充液氮一次,至少一个月充氮一次。
液氮温度达-196℃,使用时注意勿让液氮溅到皮肤上,以免引起冻伤。
(2)液氮容器为双层结构,中间为真空层,瓶口有双层焊接处,应防止焊接部裂开。
(3)在装入液氮时,要注意缓慢小心,并用厚纸卷筒或特制漏斗作引导,使液氮直达瓶底,如有专用液氮灌注装置则更好。
若为初次使用,加液氮时更要缓慢,以免温度骤降而使容器损坏。
细胞冻存时常备的材料有:0.25%胰蛋白酶,含10%~20%的血清培养液,DMSO(分析纯)或无色新鲜甘油(121°C蒸气高压消毒),2mL安瓿(或专用细胞冻存管)、吸管、离心管、喷灯、纱布袋(或冻存管架)等。
细胞的复苏
一、细胞复苏的原则
在实际操作中,冻存细胞要进行复苏,再培养传代。
复苏细胞一般采用快速融化法。
以保证细胞外结晶快速融化,以避免慢速融化水分渗入细胞内,再次形成胞内结晶损伤细胞。
二、细胞复苏的主要操作步骤
(1)佩戴眼镜和手套,从液氮罐中取出安瓿或冷冻管。
(2)迅速放入38℃水浴中,并不时摇动,在1分钟内使其完全融化,然后在无菌下取出细胞。
(3)在1000r/min速度下离心5~10分钟,弃去上层液,加入适量培养液后接种于培养瓶中,接种浓度1×109/L,置37℃温箱静置培养,次日更换一次培养液,继续培养,观察生长情况。
若细胞密度较高,及时传代。
或无需离心直接将细胞加入瓶中,并加入培养基贴壁培养12~24小时后,充去上清,换入新鲜培养基继续培养。
三、注意事项
在细胞复苏操作时,应注意融化冻存细胞速度要快,可不时摇动安瓿或冷冻管,使之尽快通过最易受损的温度段(-5~0℃)。
这样复苏的冻存细胞存活率高,生长及形态良好。
然而,由于冻存的细胞还受其他因素的影响,有时也会有部分细胞死亡。
此时,可将不贴壁、飘浮在培养液上(已死亡)的细胞轻轻倒掉,再补以适量的新培养液,也会获得较为满意的结果。