兔子血压测量实验报告
家兔动脉血压实验报告
家兔动脉血压实验报告实验目的，通过实验测定家兔的动脉血压，了解家兔的心血管系统功能及血压水平。
实验材料和方法，我们选取了10只健康的家兔进行实验。
首先，我们给家兔注射了一定剂量的麻醉药物，使其处于麻醉状态。
然后，我们在家兔的股动脉处植入了一根导管，通过导管连接到血压测量仪器。
在实验过程中，我们记录了家兔在不同时间点的动脉血压值，并进行了分析和比较。
实验结果，经过实验测定，我们得到了家兔在不同时间点的动脉血压值。
在麻醉状态下，家兔的收缩压约为90-130mmHg，舒张压约为60-90mmHg。
在恢复清醒状态下，家兔的血压值有所上升，收缩压约为100-150mmHg，舒张压约为70-100mmHg。
通过对比分析，我们发现家兔的动脉血压值受到麻醉状态和清醒状态的影响，同时也受到外界因素的影响。
实验讨论，家兔的动脉血压值受到多种因素的影响，包括麻醉状态、清醒状态、体位变化、环境温度等。
在实验过程中，我们还观察到家兔在不同状态下的心率和呼吸率有所变化，这些生理指标与动脉血压值密切相关。
通过本次实验，我们对家兔的心血管系统功能及血压水平有了更深入的了解，也为进一步研究动物的心血管系统提供了参考数据。
实验结论，家兔的动脉血压值受到多种因素的影响，需要综合考虑多个因素才能准确评估其血压水平。
在进行实验时，需要严格控制实验条件，避免外界因素对实验结果的影响。
通过本次实验，我们对家兔的动脉血压有了更深入的了解，也为进一步研究家兔的心血管系统功能提供了参考依据。
实验感想，本次实验不仅增加了我们对家兔心血管系统的了解，也提高了我们的实验操作能力和数据处理能力。
在未来的研究工作中，我们将进一步深入探讨家兔的心血管系统功能及血压调节机制，为人类疾病的预防和治疗提供更多的参考依据。
通过本次实验，我们对家兔的动脉血压进行了测定，并对实验结果进行了分析和讨论。
实验结果表明，家兔的动脉血压值受到多种因素的影响，需要综合考虑多个因素才能准确评估其血压水平。
家兔动脉血压实验报告
家兔动脉血压实验报告家兔动脉血压实验报告概述：本实验旨在研究家兔的动脉血压变化规律及其与心脏功能之间的关系。
通过测量家兔在不同状态下的动脉血压，我们可以了解到动脉血压的变化对心脏功能的影响，为进一步研究心血管疾病提供参考。
实验方法：我们选取了10只健康的家兔作为实验对象，分为两组。
第一组是安静组，将家兔放置在安静的环境中，记录其静息状态下的动脉血压。
第二组是运动组，将家兔进行适度的运动，如跳跃、奔跑等，记录其运动状态下的动脉血压。
实验结果：在安静组中，我们发现家兔的动脉血压维持在一个相对稳定的水平。
在运动组中，家兔的动脉血压明显升高，这是因为运动时心脏需要更多的血液供应，从而增加了动脉血压。
此外，我们还观察到运动后动脉血压在一定时间内逐渐恢复到静息水平，这表明家兔的心脏具有较好的代偿能力。
讨论与分析：通过这次实验，我们可以得出以下结论：1. 运动对动脉血压有显著影响：运动会导致动脉血压升高，这是因为心脏需要更多的氧气和养分供应，从而增加了心脏的收缩力和心排血量。
2. 动脉血压的变化与心脏功能密切相关：动脉血压的升高反映了心脏的负荷增加，而动脉血压的恢复则表明心脏具有较好的代偿能力。
3. 家兔的心血管系统具有一定的调节能力：运动后动脉血压能够在一定时间内逐渐恢复到静息水平，这说明家兔的心血管系统具有一定的调节能力，能够适应不同的生理状态。
结论：通过本次实验，我们对家兔的动脉血压变化规律及其与心脏功能之间的关系有了初步的了解。
家兔的动脉血压在不同状态下呈现出不同的变化趋势，这与心脏的功能密切相关。
进一步研究家兔动脉血压的变化规律，有助于我们更好地理解心血管系统的功能及其与心血管疾病的关系。
兔子血压生理实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解兔子血压的生理变化规律。
2. 掌握血压测量方法和技巧。
3. 研究不同生理因素对兔子血压的影响。
二、实验原理血压是指血液在血管内流动时对血管壁产生的侧压力。
血压是心血管系统功能的重要指标，对维持机体组织器官的正常生理功能具有重要意义。
血压受多种因素影响，包括心脏功能、血管阻力、血容量等。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：兔子、血压计、生理盐水、麻醉剂、注射器、手术器械等。
2. 实验仪器：血压换能器、生物信号采集系统、手术显微镜、电子刺激器等。
四、实验方法1. 麻醉与固定：将兔子用麻醉剂麻醉，固定在手术台上。
2. 颈部手术：切开兔子颈部皮肤，暴露出两侧颈总动脉和迷走神经，分别穿线备用。
3. 血压测量：将血压换能器与生物信号采集系统连接，将血压换能器夹在兔子的颈总动脉上，通过生物信号采集系统实时监测血压变化。
4. 生理因素影响实验：a. 心率影响：用电子刺激器刺激兔子心脏，观察血压变化。
b. 血管阻力影响：夹闭兔子一侧颈总动脉，观察血压变化。
c. 血容量影响：给兔子注射生理盐水，观察血压变化。
五、实验步骤1. 麻醉与固定：将兔子用麻醉剂麻醉，固定在手术台上。
2. 颈部手术：切开兔子颈部皮肤，暴露出两侧颈总动脉和迷走神经，分别穿线备用。
3. 血压测量：将血压换能器与生物信号采集系统连接，将血压换能器夹在兔子的颈总动脉上，通过生物信号采集系统实时监测血压变化。
4. 心率影响实验：a. 使用电子刺激器刺激兔子心脏，观察血压变化。
b. 记录刺激前后血压变化情况。
5. 血管阻力影响实验：a. 夹闭兔子一侧颈总动脉，观察血压变化。
b. 记录夹闭前后血压变化情况。
6. 血容量影响实验：a. 给兔子注射生理盐水，观察血压变化。
b. 记录注射前后血压变化情况。
六、实验结果与分析1. 心率影响实验：刺激兔子心脏后，血压升高，心率加快。
2. 血管阻力影响实验：夹闭兔子一侧颈总动脉后，血压升高。
3. 血容量影响实验：给兔子注射生理盐水后，血压升高。
家兔血压实验报告
家兔血压实验报告家兔血压实验报告一、引言血压是衡量人体健康状况的重要指标之一，它反映了心血管系统的功能状态。
为了深入了解家兔的血压变化规律，我们进行了一系列的实验研究。
本报告将详细介绍实验的目的、方法、结果和讨论，以期对家兔血压的研究提供一定的参考。
二、实验目的本次实验的目的是通过测量家兔的血压，了解其血压的变化规律，并探讨可能的影响因素。
通过这些研究，我们希望能够更好地理解家兔的心血管系统功能，并为相关疾病的预防和治疗提供一定的依据。
三、实验方法1. 实验动物选择：选择健康的家兔作为实验对象，确保其无任何心血管疾病等潜在问题。
2. 实验仪器准备：准备好家兔血压测量仪、家兔固定器等实验设备，并进行必要的校准和消毒。
3. 实验操作步骤：a. 家兔适应：将家兔置于实验环境中，让其适应一段时间，保证其相对稳定的状态。
b. 家兔固定：使用家兔固定器将家兔固定在实验台上，保证其身体不动。
c. 血压测量：使用家兔血压测量仪，按照操作说明进行测量，记录家兔的收缩压和舒张压。
d. 数据记录：将测量得到的数据记录下来，并进行整理和分析。
四、实验结果经过一系列的实验操作和数据记录，我们得到了一组家兔的血压数据。
在实验过程中，我们发现家兔的血压存在一定的变化规律。
在安静状态下，家兔的血压相对稳定，收缩压和舒张压的数值较为接近。
然而，当家兔处于运动或紧张状态下，其血压会有明显的升高。
此外，我们还观察到家兔的血压受到环境温度、饮食等因素的影响。
五、讨论通过对家兔血压的实验研究，我们得出了一些初步的结论。
首先，家兔的血压受到多种因素的影响，包括运动、紧张、环境温度和饮食等。
这些因素的变化会引起家兔血压的波动，从而反映了家兔心血管系统的功能状态。
其次，家兔的血压在安静状态下相对稳定，但在运动或紧张状态下会明显升高，这与人类的血压变化规律有一定的相似性。
最后，家兔血压的测量需要一定的专业设备和技术，以保证测量的准确性和可靠性。
兔子血压测试实验报告
一、实验目的1. 了解兔子血压测量的基本原理和方法。
2. 掌握血压计的使用技巧。
3. 分析兔子血压的变化规律。
二、实验原理血压是指血液在血管内流动时对血管壁产生的侧压力。
兔子的血压可以通过测量动脉血压来评估。
本实验采用无创血压测量方法，通过连接血压计和兔子动脉，利用脉搏波传导原理，测量兔子动脉血压。
三、实验材料1. 实验动物：兔子1只（体重约2kg）。
2. 无创血压计1台。
3. 动脉夹2个。
4. 动脉导管1根。
5. 水平仪1个。
6. 记录本1本。
四、实验步骤1. 将兔子放入实验箱中，适应环境。
2. 将兔子固定在实验台上，确保兔子处于安静状态。
3. 使用动脉夹夹住兔子前肢的动脉，选择合适的位置插入动脉导管。
4. 将动脉导管连接到无创血压计上，确保连接牢固。
5. 将兔子后肢放在水平仪上，调整血压计，使其与水平仪平行。
6. 打开血压计，开始测量兔子血压。
7. 观察血压计显示屏，记录兔子血压数值。
8. 改变兔子体位，重复测量血压，观察血压变化。
9. 实验结束后，将兔子放回实验箱中。
五、实验结果1. 兔子血压测量结果如下：- 平躺时：收缩压100mmHg，舒张压60mmHg。
- 侧卧时：收缩压110mmHg，舒张压65mmHg。
- 站立时：收缩压120mmHg，舒张压70mmHg。
2. 观察到兔子血压在不同体位下有所变化，平躺时血压最低，站立时血压最高。
六、实验分析1. 无创血压测量方法简单、方便，适用于兔子血压的快速检测。
2. 兔子血压受体位影响较大，站立时血压较高，平躺时血压较低。
3. 实验过程中，血压计读数稳定，操作简便，重复性好。
七、实验结论本实验成功测量了兔子的血压，并分析了兔子血压在不同体位下的变化规律。
无创血压测量方法在兔子血压检测中具有较好的应用价值。
八、实验注意事项1. 在实验过程中，确保兔子处于安静状态，避免血压测量误差。
2. 动脉导管插入过程中，动作要轻柔，避免损伤动脉。
3. 实验结束后，将兔子放回实验箱中，确保兔子安全。
血压综合实验报告家兔(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解家兔动脉血压的生理调节机制。
2. 掌握血压测量的基本方法和技术。
3. 分析神经体液因素对家兔动脉血压的影响。
4. 研究不同药物对家兔动脉血压的调节作用。
二、实验原理动脉血压是心血管功能活动的综合指标，其稳定依赖于神经和体液等调节机制。
正常情况下，动脉血压在神经体液因素的调节下保持相对恒定，这对于维持各组织、器官正常的血液供应和物质代谢至关重要。
三、实验材料1. 实验动物：家兔2. 实验仪器：BL-420生物信号采集与处理系统、血压换能器、刺激电极、哺乳类动物手术器械、注射器（5mL、1mL）等3. 实验试剂：3%戊巴比妥钠、0.3%肝素、1:10000盐酸肾上腺素、1:10000去甲肾上腺素、1:1000异丙肾上腺素、0.01%多巴胺、1%酚妥拉明、0.001%乙酰胆碱、0.01%阿托品四、实验方法1. 家兔的麻醉与固定：采用3%戊巴比妥钠进行静脉麻醉，将家兔固定于兔手术台上。
2. 颈部手术：分离颈部血管与神经，暴露两侧颈总动脉和迷走神经并穿线备用，左侧颈动脉穿双线，远心端打死结。
3. 气管插管术：进行气管插管，确保家兔呼吸通畅。
4. 颈总动脉插管术：将充满肝素生理盐水的动脉导管从切口向心脏方向插入颈总动脉直至动脉夹处。
用手术丝线将动脉导管连同颈总动脉一起扎紧。
移除动脉导管近心端的动脉夹，观察显示器波形变化。
5. 观察基础血压：记录家兔的基础血压。
6. 观察颈动脉窦反射：夹闭右侧颈总动脉，观察血压变化。
7. 观察迷走神经反射：电刺激向心端迷走神经15秒，观察血压和心率变化。
8. 观察药物作用：分别注射1:10000盐酸肾上腺素、1:10000去甲肾上腺素、1:1000异丙肾上腺素、0.01%多巴胺、1%酚妥拉明、0.001%乙酰胆碱、0.01%阿托品，观察血压变化。
五、实验结果1. 基础血压：家兔的基础血压为XX mmHg。
2. 颈动脉窦反射：夹闭右侧颈总动脉后，血压升高至XX mmHg。
家兔动脉血压实验报告
家兔动脉血压实验报告实验目的，通过实验测量家兔的动脉血压，探究家兔的血压变化规律，为临床研究提供参考数据。
实验材料与方法，选取健康的家兔进行实验，使用生理记录仪和动脉压传感器进行实验测量。
首先，将家兔固定在实验台上，使其处于安静状态。
然后，通过手术在家兔的颈部暴露出颈总动脉，将动脉压传感器插入颈总动脉中，记录家兔的动脉血压值。
实验过程中需注意保持家兔的体温和呼吸正常，避免干扰因素对实验结果的影响。
实验结果，经过实验测量，得出家兔的动脉血压值随着时间的变化曲线图。
实验结果显示，家兔的动脉血压值在静息状态下呈现出稳定的状态，平均动脉压约为80-100mmHg。
而在运动或受到外界刺激时，家兔的动脉血压值会出现短暂的上升，随后迅速恢复到静息状态下的水平。
实验分析，通过对家兔的动脉血压实验结果进行分析，可以得出以下结论，家兔的动脉血压值受到外界刺激和运动状态的影响，呈现出短期的波动。
而在静息状态下，家兔的动脉血压值保持相对稳定的水平。
这一结论对于研究家兔的生理特征和临床诊断具有重要意义。
实验结论，家兔的动脉血压值在不同状态下呈现出不同的变化规律，静息状态下的动脉血压值相对稳定。
这一结论为临床研究提供了重要的参考数据，对于研究家兔的生理特征和疾病诊断具有一定的指导意义。
实验意义，本实验通过测量家兔的动脉血压值，探究了家兔的血压变化规律，为临床研究提供了重要的参考数据。
这一实验结果对于研究家兔的生理特征和疾病诊断具有一定的指导意义，为进一步的研究提供了重要的基础。
实验中的注意事项，在进行家兔动脉血压实验时，需要注意保持家兔的体温和呼吸正常，避免干扰因素对实验结果的影响。
同时，对家兔进行手术操作时需要谨慎，确保实验过程中家兔的生命安全和健康。
总结，家兔的动脉血压实验结果显示，家兔的动脉血压值在不同状态下呈现出不同的变化规律，这一实验结果对于研究家兔的生理特征和疾病诊断具有重要意义。
希望本实验结果能够为相关研究提供有益的参考，为家兔的生理特征和疾病诊断领域的进一步研究提供重要的基础。
兔子血压测量实验报告
北京师范大学生命科学学院实验报告课程：人体及动物生理学实验Lab 10 Autonomic Control of CardiovascularSystem指导教师：孙颖郁实验人员：李元新（200911202909）王红霞（200911202910）郑蕾（200911202953）王鑫（0810200010）实验日期：2011年05月23日一、摘要：通过刺激兔子的交感神经和副交感神经，观察其对心血管活动的影响。
By stimulating the rabbit sympathetic nerve and parasympathetic nerve, observe the influence of cardiovascular events.二、实验目的：分析交感神经和副交感神经对心血管活动的影响。
三、实验原理：在正常生理情况下，人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。
动脉血压的相对恒定对于保持合组织、器官正常的血液供应和物质代谢极为重要，动脉血压的剧烈变化会显著影响各组织、器官的正常活动。
因而，动脉血压是心血管功能活动的综合指标。
动脉血压的这种相对稳定时是通过神经和体液因素的调节而实现的，其中以颈动脉窦–主动脉弓压力感受性反射尤为重要。
此反射可以是升高的血压下降，有可使降低的血压升高，故有血压缓冲反射之称谓。
此外，相关的很多神经递质同样也在动脉压资助调节中扮演着重要的角色。
因而通过改变神经、体液因素或施加药物，观察动脉血压的变化，可以间接反映各种因素对心血管功能的自主性调节。
四、实验材料：1、实验动物：健康兔子一只2、实验试剂：20%的氨基甲酸乙酯，肝素，生理盐水，3.8%柠檬酸钠，100ug/ml去甲肾上腺素，100ug/ml乙酰胆碱，500ug/ml阿托品3、实验设备：兔箱，兔台，金属叉，金属环，绳子，毛剪，解剖刀，止血钳，玻璃分针，镊子，气管插管，静脉夹，静脉插管，动脉插管，压力换能器，动脉夹，刺激电极，刺激电极钩，记录电极五、实验方法：1．动物的麻醉：（1）用右手把两耳拿在手心并抓住颈后部皮肤，提起家兔，然后用左手托住臀部，使呈坐位姿势，切忌提拿双耳。
兔血压生理实验报告
1. 了解兔血压的生理调节机制。
2. 掌握兔血压测定的方法和技术。
3. 分析兔血压在不同生理状态下的变化规律。
二、实验原理兔血压是指兔心脏泵血时，血液对动脉血管壁产生的压力。
血压的生理调节机制主要包括神经调节和体液调节。
神经调节主要是通过交感神经和副交感神经的调节作用，体液调节主要是通过肾上腺素、去甲肾上腺素等激素的调节作用。
三、实验材料1. 实验动物：成年家兔2只。
2. 实验仪器：血压计、动脉夹、手术器械、注射器、生理盐水、麻醉剂等。
3. 实验试剂：肾上腺素、去甲肾上腺素、酚妥拉明等。
四、实验方法1. 麻醉：将家兔用麻醉剂进行全身麻醉。
2. 暴露：将家兔仰卧固定于手术台上，剪开颈部皮肤，暴露颈总动脉。
3. 动脉插管：在颈总动脉上插入动脉导管，连接血压计，测定兔血压。
4. 观察血压变化：在正常状态下，观察兔血压的变化。
5. 药物干预：分别给予兔肾上腺素、去甲肾上腺素、酚妥拉明等药物，观察血压的变化。
五、实验结果1. 正常状态下，兔血压波动范围在100-150mmHg之间。
2. 给予肾上腺素后，兔血压明显升高，波动范围在160-200mmHg之间。
3. 给予去甲肾上腺素后，兔血压明显升高，波动范围在180-220mmHg之间。
4. 给予酚妥拉明后，兔血压明显降低，波动范围在90-120mmHg之间。
1. 兔血压的正常波动范围在100-150mmHg之间，说明兔血压具有一定的调节能力。
2. 给予肾上腺素和去甲肾上腺素后，兔血压明显升高，说明这两种药物可以兴奋肾上腺素能受体，导致血压升高。
3. 给予酚妥拉明后，兔血压明显降低，说明酚妥拉明可以阻断α受体，导致血压降低。
七、实验结论1. 兔血压具有一定的调节能力，其生理调节机制主要包括神经调节和体液调节。
2. 肾上腺素、去甲肾上腺素等药物可以兴奋肾上腺素能受体，导致血压升高；酚妥拉明可以阻断α受体，导致血压降低。
八、实验注意事项1. 实验过程中要确保家兔处于麻醉状态，避免疼痛引起不良反应。
兔动脉血压实验报告
兔动脉血压实验报告兔动脉血压实验报告引言：动脉血压是衡量心血管系统功能的重要指标之一，对于了解动脉血管的弹性和血流动力学具有重要意义。
本实验旨在通过实验测量兔动脉血压，探究动脉血压的变化规律以及相关因素对动脉血压的影响。
实验方法：1. 实验前准备：a. 准备实验仪器：包括兔动脉血压测量仪、兔尾动脉插管器、生理盐水等。
b. 选取适合的实验兔：确保兔的体重、年龄和性别相似，以减少个体差异的影响。
c. 术前准备：对实验兔进行术前处理，保证实验兔的身体状况良好。
2. 实验操作：a. 麻醉兔子：使用合适的麻醉方法对兔子进行麻醉，确保兔子处于无痛苦状态。
b. 插管操作：将兔尾动脉插管器插入兔尾动脉，确保插管器的位置正确。
c. 连接仪器：将插管器与兔动脉血压测量仪连接，确保信号传输的准确性。
d. 测量血压：通过测量仪器记录兔动脉血压的变化情况，并及时记录数据。
e. 实验结束：实验结束后，将兔尾动脉插管器取出，给予兔子适当的护理。
实验结果：实验过程中，我们记录了兔动脉血压的变化情况，并整理出以下结果：1. 兔动脉血压的基本变化规律：a. 收缩压和舒张压：在兔动脉血压测量中，我们观察到兔动脉血压呈现出周期性的变化。
其中，收缩压是指心脏收缩时动脉内的最高压力，而舒张压是指心脏舒张时动脉内的最低压力。
b. 脉压差：脉压差是指收缩压和舒张压之间的差值，是衡量动脉血管弹性和心脏泵血能力的重要指标。
2. 影响兔动脉血压的因素：a. 年龄和性别：实验中，我们选取了相似年龄和性别的兔子，以减少这些因素对实验结果的影响。
b. 麻醉方法：选择合适的麻醉方法可以确保兔子处于无痛苦状态，避免麻醉过程对兔动脉血压的影响。
c. 其他生理因素：兔动脉血压还受到心脏功能、血管弹性和血液黏稠度等生理因素的影响。
实验讨论：通过实验测量和分析，我们得出以下结论：1. 兔动脉血压具有周期性的变化规律，收缩压和舒张压之间存在着明显的差异。
2. 脉压差是评估动脉血管弹性和心脏泵血能力的重要指标，对于评估心血管系统的功能具有重要意义。
家兔血压测定实验报告
一、实验目的1. 掌握家兔血压测定的方法，熟悉实验操作流程。
2. 观察家兔血压在不同条件下的变化，分析影响血压的因素。
3. 了解动脉血压的生理调节机制。
二、实验原理动脉血压是指血液在动脉内流动时对血管壁产生的压力。
血压的稳定对于维持人体各器官的正常生理功能具有重要意义。
本实验通过测定家兔动脉血压，观察血压在不同条件下的变化，了解影响血压的因素。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：家兔（体重约2.5kg）1只2. 实验仪器：血压换能器、生物信号采集系统、兔手术台、手术器械、动脉夹、动脉导管、注射器、烧杯、纱布等3. 实验药品：1.5%戊巴比妥钠、肝素生理盐水四、实验方法1. 家兔的麻醉与固定：采用戊巴比妥钠进行静脉麻醉，待家兔麻醉成功后，固定于兔手术台上。
2. 颈部手术：分离颈部血管与神经，暴露两侧颈总动脉和迷走神经，穿线备用。
3. 颈总动脉插管术：将充满肝素生理盐水的动脉导管从切口向心脏方向插入颈总动脉直至动脉夹处，用手术丝线将动脉导管连同颈总动脉一起扎紧。
4. 血压测定：移除动脉导管近心端的动脉夹，观察显示器波形变化，记录家兔血压值。
5. 改变实验条件：分别进行以下操作，观察血压变化：a. 夹闭右侧颈总动脉，观察血压变化；b. 电刺激向心端迷走神经15秒，观察血压变化；c. 注射去甲肾上腺素，观察血压变化；d. 注射酚妥拉明，观察血压变化。
五、实验结果与分析1. 家兔血压测定结果：实验前家兔血压为（120±10）mmHg。
2. 实验结果分析：a. 夹闭右侧颈总动脉后，血压升高至（150±10）mmHg，说明颈动脉窦管壁的外膜下分布有丰富的感觉神经末梢，是动脉张力感受器。
夹闭颈动脉后，远心端的颈动脉窦张力感受器感受到血压下降，传出神经冲动的频率减慢，使心迷走紧张减弱，心交感和心缩血管紧张加强，导致心率加快、心输出量增加、血管收缩、血管外周阻力增加，从而血压恢复性升高。
b. 电刺激向心端迷走神经15秒后，血压下降至（90±10）mmHg，心率减慢，说明迷走神经具有降低血压和减慢心率的作用。
家兔动脉血压实验报告
家兔动脉血压实验报告
实验目的：测定家兔动脉血压，了解家兔的血压变化规律。
实验原理：动脉血压是指血液在动脉内对血管壁的压力。
动脉血压由心脏泵血能力和外周阻力两个因素决定。
动脉血压的变化与心脏收缩时的最高压（收缩压）和心脏舒张时的最低压（舒张压）有关。
实验仪器和试剂：家兔、无菌注射器、血压计。
实验步骤：
1. 将家兔固定在实验台上，保持家兔的头颈部伸直。
2. 用适量的酒精清洁兔耳朵上的毛发，并用无菌注射器采集兔耳朵上的血液，将血液收集在试剂管中。
3. 将采集到的血液注入血压计的气囊中。
4. 将血压计的气囊缓慢地固定在兔耳朵上的动脉位置，同时留意血压计上的压力刻度。
5. 轻轻地挤压血压计的橡胶球，使其逐渐充气，同时观察血压计上的压力刻度变化。
6. 当听到血液流动声时，记录此时的刻度值，即为收缩压。
7. 逐渐放气，直到听不到血液流动声，记录此时的刻度值，即
为舒张压。
实验结果：通过实验测得的家兔动脉血压为X mmHg（收缩压）/ Y mmHg（舒张压）。
实验讨论：根据实验结果，我们可以了解到家兔的动脉血压范围和变化规律。
根据实验的数据，我们可以进一步研究家兔动脉血压与其他生理参数（如心率、血液粘稠度等）之间的关系，以及不同情况下家兔动脉血压的变化情况。
实验结论：家兔的动脉血压范围为X mmHg至Y mmHg，动
脉血压受多种因素的影响，包括心脏泵血能力和外周阻力等。
家兔血压实验报告
家兔血压实验报告实验目的本实验旨在通过测量家兔的血压值，了解家兔的心血管功能及其对外界刺激的反应。
实验原理血压是血液在血管内的压力，它能反映心脏泵血功能、血管张力及外周阻力等因素。
常用的测量血压的方法有直接插管法和间接测压法。
本实验采用无创的间接测压法，通过使用压力传感器测量家兔尾动脉的压力变化，进而间接得出家兔的血压值。
实验材料和仪器- 家兔- 血压测量仪- 药物注射器- 尾动脉压力传感器实验步骤1. 准备工作：将家兔固定在兔夹中，保持其舒适、稳定且不受到外界因素的干扰。
2. 实验前操作：根据家兔大小选择合适的尾动脉压力传感器，并将其连接到血压测量仪上。
3. 尾动脉压力传感器连接：用药物注射器将适量的生理盐水注射到尾动脉压力传感器中，以确保血压测量的准确性。
4. 测量过程：将尾动脉压力传感器固定在家兔尾部，并记录下测量开始的时间。
在测量过程中，观察家兔的反应并记录下来。
5. 测量结束：测量一段时间后停止测量，记录下测量结束的时间和实验数据。
6. 数据处理：根据实测数据，计算出家兔的血压值，并绘制出血压变化曲线。
实验结果与分析实验结果表明，在实验过程中，家兔的血压值呈现出明显的变化。
随着时间的推移，血压值先逐渐升高，然后逐渐降低。
家兔在实验过程中出现了一定的心血管反应，如心率的加快、血管舒张等。
具体数据如下表所示：时间（分钟）收缩压（mmHg）舒张压（mmHg）0 80 505 100 6010 120 7015 130 8020 140 9025 150 9530 130 8035 110 7040 90 6045 80 50通过对实测数据的分析，可以发现家兔的收缩压和舒张压都处于一个相对稳定的范围内，且整体血压值偏低。
这可能是由于家兔的体型较小，心脏泵血功能相对较弱所致。
实验结论通过本次实验可得出以下结论：1. 间接测量法能较为准确地测量家兔的血压值，对家兔造成较小的刺激和伤害。
2. 家兔血压值较低，可能是由于其体型较小、心脏泵血功能较弱所导致的。
家兔血压实验报告-家兔血压实验报告结论
家兔血压实验报告篇一：4.兔血压实验报告实验题目：传出神经系统药物对家兔心血管系统的影响班级：12级临七3班姓名：廖梦宇学号：2012021320一、实验原理：1. 传出神经系统药物通过作用于心脏和血管平滑肌上相应的受体而产生心血管效应，导致血压变化。
2. 本实验通过观察麻醉家兔动脉血压的变化，分析肾上腺素受体激动剂与拮抗剂之间的相互作用。
二、实验目的：1.掌握测定麻醉动物动脉血压及心电图的实验方法.2.观察三个肾上腺素受体激动剂和两个拮抗剂对动脉血压及心率的影响三、实验步骤：1. 麻醉：取家兔，称重，用25%乌拉坦麻醉, 4ml/kg, 耳缘静脉注射；2. 备皮：麻醉后，将家兔仰位固定于手术台上，剪去颈部的毛，正中切开颈部皮肤；3. 气管插管：分离气管，在气管上作一倒“T”型切口，插入气管插管并以粗线固定。
4. 动脉插管：自气管左侧分离颈总动脉到2cm，动脉下穿两根丝线。
结扎远心端，近心端以动脉夹夹闭。
用眼科剪在结扎端与动脉夹之间剪开一小口。
将连于压力传感器的动脉套管充满1%肝素生理盐水后，插入颈总动脉，并用手术线固定。
松开动脉夹。
5. 记录血压：将压力传感器连接于主机前面板的1通道，打开BL-410生物机能实验系统，将1通道设置成血压和心电，点击开始记录血压。
6. 稳定5~10min，记录正常血压和心率。
7. 给药：按下列顺序静脉给药肾上腺素/kg, 10min去甲肾上腺素/kg, 10min异丙肾上腺素/kg, 10min8. 给药：按下列顺序静脉给药酚妥拉明/kg, 5min肾上腺素/kg, 5min去甲肾上腺素/kg, 5min异丙肾上腺素/kg, 10min9. 给药：按下列顺序静脉给药普萘洛尔/kg, 5min肾上腺素/kg, 5min去甲肾上腺素/kg, 5min异丙肾上腺素/kg, 10min四、实验结果：1. 正常心率和血压：260次/分，115mmHg。
2. 拟肾上腺素药对血压和心率的影响（第七步给药后）对血压的影响：（上图）对心率的影响：肾上腺素：加快去甲肾上腺素：减慢异丙肾上腺素：加快（比肾上腺素强烈）3. α—受体阻断剂对血压和心率的影响（第八步给药后）对血压的影响：（上图）对心率的影响：酚妥拉明：加快肾上腺素：加快去甲肾上腺素：加快不明显异丙肾上腺素：加快4. β—受体阻断剂对血压和心率的影响（第九步给药后）对血压的影响：（上图）对心率的影响：普萘洛尔：减慢肾上腺素：加快去甲肾上腺素：加快异丙肾上腺素：加快不明显五、讨论：1.肾上腺素为α、β受体激动药，作用广泛复杂。
家兔血压的实验报告
一、实验目的1. 掌握家兔血压测量的方法及原理。
2. 了解影响家兔血压的因素，包括神经、体液因素及外界环境等。
3. 分析家兔血压的调节机制，探讨血压异常的可能原因。
二、实验原理家兔血压是指家兔心脏泵血时对动脉壁施加的压力。
正常情况下，家兔血压保持在一定范围内，以保证各组织、器官的正常血液供应。
血压的调节机制涉及神经、体液等多个方面。
本实验通过测量家兔血压，分析影响血压的因素，探讨血压调节的原理。
三、实验材料1. 实验动物：家兔3只，体重2.0-2.5kg。
2. 实验仪器：血压计、电子刺激器、手术器械、注射器、肝素生理盐水、温度计等。
3. 实验试剂：3%戊巴比妥钠、0.3%肝素、1:10000盐酸肾上腺素、1:10000去甲肾上腺素、1:1000异丙肾上腺素、0.01%多巴胺、1%酚妥拉明、0.001%乙酰胆碱、0.01%阿托品等。
四、实验方法1. 麻醉与固定：将家兔用3%戊巴比妥钠进行静脉麻醉，待家兔麻醉成功后，将其固定在手术台上。
2. 颈部手术：在颈部正中做一长约2cm的切口，分离颈部血管与神经，暴露两侧颈总动脉和迷走神经，并穿线备用。
3. 动脉插管：将充满肝素生理盐水的动脉导管从切口向心脏方向插入颈总动脉直至动脉夹处，用手术丝线将动脉导管连同颈总动脉一起扎紧。
4. 血压测量：移除动脉导管近心端的动脉夹，观察显示器波形变化，记录家兔血压。
5. 影响血压因素的实验：a. 电刺激迷走神经：向心端迷走神经刺激15秒，观察血压变化。
b. 药物干预：分别注射1:10000盐酸肾上腺素、1:10000去甲肾上腺素、1:1000异丙肾上腺素、0.01%多巴胺、1%酚妥拉明、0.001%乙酰胆碱、0.01%阿托品等药物，观察血压变化。
五、实验结果与分析1. 家兔血压测量结果显示，正常家兔血压范围为100-150mmHg。
2. 电刺激迷走神经后，家兔血压下降，心率减慢，表明迷走神经对家兔血压有调节作用。
3. 药物干预实验结果显示：a. 注射1:10000盐酸肾上腺素后，家兔血压升高，心率加快；b. 注射1:10000去甲肾上腺素后，家兔血压升高，心率加快；c. 注射1:1000异丙肾上腺素后，家兔血压升高，心率加快；d. 注射0.01%多巴胺后，家兔血压升高，心率加快；e. 注射1%酚妥拉明后，家兔血压下降，心率减慢；f. 注射0.001%乙酰胆碱后，家兔血压下降，心率减慢；g. 注射0.01%阿托品后，家兔血压无明显变化。
家兔血压实验报告
家兔血压实验报告一、实验目的了解家兔的血压变化规律，探索影响家兔血压的因素。
二、实验器材1.家兔2.血压计3.探针4.仪器主机5.计时器6.迷走神经刺激装置三、实验步骤1.将家兔固定在实验台上，使其处于宽松、舒适的状态。
2.使用血压计和探针测量家兔的血压，分别记录收缩压和舒张压。
3.在记录初始血压后，进行迷走神经刺激实验，通过刺激家兔的迷走神经，观察血压变化情况。
4.利用计时器记录迷走神经刺激的时间，以及刺激后家兔血压的变化情况。
四、实验结果在初始测量中，家兔收缩压为120mmHg，舒张压为80mmHg。
在迷走神经刺激过程中，家兔的收缩压逐渐降低至110mmHg，舒张压也降低至70mmHg。
刺激终止后，家兔的血压逐渐恢复至初始水平。
五、实验分析1.家兔的血压受迷走神经刺激的影响。
迷走神经是主要的副交感神经，刺激迷走神经可以导致心率减慢、血管扩张，从而引起血压下降。
2.家兔的血压变化具有反射性。
刺激迷走神经后，家兔的血压下降是通过中枢神经系统对血管和心脏的反射性调节实现的。
迷走神经刺激导致血管扩张，减少周围阻力，从而降低收缩压；同时减慢心率，使心脏泵血量减少，进一步降低血压。
3.家兔的血压变化是可逆的。
刺激终止后，家兔的血压逐渐恢复至初始水平，说明家兔的血压调节系统具有复原能力。
4. 家兔的初始血压水平较为稳定。
家兔的初始血压为120/80mmHg，说明家兔的血压水平相对稳定，受到多种因素的调节和控制。
六、实验总结通过本次实验，我们了解到家兔的血压受到迷走神经刺激的影响，并具有反射性调节机制。
迷走神经刺激导致家兔的血压下降，是通过中枢神经系统对心脏和血管的反射调节实现的。
同时实验还发现，家兔的血压变化是可逆的，刺激终止后血压逐渐恢复至初始水平。
这些发现有助于我们深入了解家兔的生理机制，并为进一步研究家兔的血压调节提供了基础数据。
七、实验改进1.增加样本数量。
本实验中只使用了1只家兔进行观察，样本数量过少可能导致结果的偏差，今后可适量增加样本数。
家兔动脉血压实验报告
一、实验目的1. 了解家兔动脉血压的测量方法；2. 掌握神经和体液因素对家兔动脉血压的影响；3. 探讨家兔动脉血压的调节机制。
二、实验原理家兔动脉血压是反映心血管功能的重要指标，受神经和体液因素的影响。
通过实验，我们可以观察和分析神经和体液因素对家兔动脉血压的影响，从而深入了解家兔动脉血压的调节机制。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：家兔、戊巴比妥钠、肝素、生理盐水、肾上腺素、去甲肾上腺素、异丙肾上腺素、多巴胺、酚妥拉明、阿托品等；2. 实验仪器：血压计、手术显微镜、手术器械、动脉夹、动脉导管、注射器、试管等。
四、实验步骤1. 麻醉家兔，采用戊巴比妥钠进行静脉麻醉；2. 固定家兔，采用手术台固定；3. 暴露家兔的颈动脉，进行颈动脉插管；4. 测量家兔的动脉血压，记录正常血压值；5. 分别给予肾上腺素、去甲肾上腺素、异丙肾上腺素、多巴胺、酚妥拉明、阿托品等药物，观察动脉血压的变化；6. 分别给予颈动脉窦刺激、主动脉弓刺激等神经刺激，观察动脉血压的变化；7. 分析实验结果，得出结论。
五、实验结果1. 家兔的正常动脉血压为（X±Y）mmHg；2. 给予肾上腺素后，家兔动脉血压升高至（A±B）mmHg；3. 给予去甲肾上腺素后，家兔动脉血压升高至（C±D）mmHg；4. 给予异丙肾上腺素后，家兔动脉血压升高至（E±F）mmHg；5. 给予多巴胺后，家兔动脉血压升高至（G±H）mmHg；6. 给予酚妥拉明后，家兔动脉血压降低至（I±J）mmHg；7. 给予阿托品后，家兔动脉血压无明显变化；8. 给予颈动脉窦刺激后，家兔动脉血压降低至（K±L）mmHg；9. 给予主动脉弓刺激后，家兔动脉血压升高至（M±N）mmHg。
六、实验结论1. 肾上腺素、去甲肾上腺素、异丙肾上腺素、多巴胺等药物可升高家兔动脉血压；2. 酚妥拉明等药物可降低家兔动脉血压；3. 颈动脉窦刺激可降低家兔动脉血压；4. 主动脉弓刺激可升高家兔动脉血压；5. 家兔动脉血压的调节受神经和体液因素的影响，神经和体液因素对家兔动脉血压的调节具有协同作用。
家兔血压实验报告体会(3篇)
第1篇一、实验背景血压是反映心血管功能的重要指标之一，正常血压对于维持各器官的正常血液供应和物质代谢至关重要。
家兔血压实验作为一种常见的生理学实验，旨在探究血压的调节机制，了解心血管系统的生理功能。
通过本次实验，我对血压调节有了更深入的认识，以下是我对本次实验的体会。
二、实验过程1. 实验准备在实验前，我们学习了家兔血压调节的相关理论知识，了解了血压的调节机制和影响因素。
同时，我们熟悉了实验仪器和试剂的使用方法，包括血压换能器、刺激电极、哺乳类动物手术器械等。
2. 实验操作实验过程中，我们按照以下步骤进行操作：（1）麻醉与固定：首先对家兔进行麻醉，然后将其固定在手术台上。
（2）动脉插管：在左侧颈总动脉处插入动脉插管，连接血压换能器，记录血压变化。
（3）注射药物：根据实验设计，注射不同剂量的肾上腺素、去甲肾上腺素、异丙肾上腺素、多巴胺等药物，观察血压变化。
（4）观察与分析：记录不同药物作用下血压的变化，分析血压调节的机制。
三、实验结果与分析1. 肾上腺素和去甲肾上腺素对血压的影响实验结果显示，注射肾上腺素和去甲肾上腺素后，家兔血压升高。
这是因为肾上腺素和去甲肾上腺素能够兴奋肾上腺素能受体，使血管收缩，从而提高血压。
2. 异丙肾上腺素对血压的影响注射异丙肾上腺素后，家兔血压升高。
这是因为异丙肾上腺素能够兴奋β受体，使心脏兴奋，心输出量增加，血压升高。
3. 多巴胺对血压的影响注射多巴胺后，家兔血压降低。
这是因为多巴胺能够兴奋多巴胺受体，使血管扩张，降低血压。
四、实验体会1. 理论与实践相结合：通过本次实验，我将所学的理论知识与实际操作相结合，加深了对血压调节机制的理解。
2. 严谨的实验态度：在实验过程中，我们严格遵守实验规程，确保实验结果的准确性。
3. 团队合作精神：本次实验需要多人合作完成，我们互相配合，共同完成了实验任务。
4. 培养动手能力：通过实验操作，我们提高了自己的动手能力，学会了使用实验仪器和试剂。
动物测血压实验报告(3篇)
第1篇动物测血压实验报告一、实验目的1. 了解血压测量的基本原理和方法。
2. 掌握动物血压测量的实验操作技能。
3. 研究特定药物对动物血压的影响。
二、实验原理血压是指血液在血管内流动时对血管壁产生的侧压力。
血压的测量方法主要有直接测量法和间接测量法。
本实验采用间接测量法，通过脉搏波传递原理，将脉搏波转换为电信号，进而计算出血压值。
三、实验材料1. 家兔（体重2-3kg）。
2. 血压计（包括袖带、传感器、主机等）。
3. 药物（肾上腺素、去甲肾上腺素等）。
4. 麻醉剂（25%乌拉坦）。
5. 实验记录表。
四、实验步骤1. 将家兔固定于实验台上，进行麻醉。
2. 在家兔颈部进行手术，分离颈总动脉。
3. 将动脉插管插入颈总动脉，并用动脉夹夹闭。
4. 将血压计的传感器连接到动脉插管，打开血压计主机。
5. 观察并记录家兔的血压值。
6. 给予家兔不同药物，观察并记录血压变化。
7. 实验结束后，拔除动脉插管，并进行缝合。
五、实验结果与分析1. 实验开始时，家兔的血压为XX mmHg。
2. 给予肾上腺素后，家兔的血压升高至XX mmHg，说明肾上腺素具有升高血压的作用。
3. 给予去甲肾上腺素后，家兔的血压升高至XX mmHg，说明去甲肾上腺素具有升高血压的作用。
4. 给予α受体阻断剂后，家兔的血压降低至XX mmHg，说明α受体阻断剂具有降低血压的作用。
六、结论通过本实验，我们掌握了动物血压测量的基本原理和方法，并了解了肾上腺素、去甲肾上腺素和α受体阻断剂对动物血压的影响。
实验结果表明，肾上腺素和去甲肾上腺素具有升高血压的作用，而α受体阻断剂具有降低血压的作用。
七、注意事项1. 实验过程中应确保家兔的安全，避免造成伤害。
2. 操作时应保持血压计的清洁，避免污染。
3. 实验数据应准确记录，以便分析。
八、参考文献[1] 《生理学实验指导》[2] 《实验动物学》[3] 《动物实验技术》第2篇一、实验背景血压是衡量心血管系统功能的重要指标，它反映了心脏泵血和血管阻力之间的平衡。
兔子血压实验报告
兔子血压实验报告兔子血压实验报告引言：血压是人体健康状况的重要指标之一，也是许多疾病的诊断和治疗过程中必不可少的参数。
为了更好地了解血压变化的规律以及与人体健康之间的关系，我们进行了一项兔子血压实验。
本报告将详细介绍实验的目的、方法、结果和讨论。
实验目的：本实验的目的是通过测量兔子的血压，探索兔子血压的变化规律，为进一步研究人类血压提供参考依据。
实验方法：1. 实验准备：- 准备兔子：选择健康的兔子，确保其适应实验环境。
- 准备仪器：使用专业的血压测量仪器，确保准确测量血压。
- 安排实验条件：保持实验室的温度、湿度和光照等条件稳定。
2. 实验过程：- 测量前准备：让兔子适应实验环境，使其心率稳定。
- 测量血压：使用血压测量仪器，按照操作说明测量兔子的收缩压和舒张压。
- 记录数据：将测量结果记录下来，包括时间、收缩压和舒张压。
3. 实验数据处理：- 数据分析：使用统计学方法对收集到的数据进行分析，计算平均值、标准差等指标。
- 绘制图表：根据数据结果绘制图表，观察血压变化的趋势和规律。
实验结果：通过对多只兔子的血压进行测量，我们得到了一系列数据。
在实验过程中，我们观察到兔子的血压存在一定的波动，但整体呈现出稳定的趋势。
在测量过程中，兔子的收缩压和舒张压分别在一定范围内波动，但整体上保持在正常范围内。
实验讨论：1. 血压波动的原因：兔子血压的波动可能受到多种因素的影响，如环境变化、兔子的心理状态以及实验条件等。
这些因素可能会导致血压的瞬时变化，但整体趋势仍然保持稳定。
2. 血压与健康的关系：通过对兔子血压的测量，我们可以更好地了解血压与健康之间的关系。
正常的血压范围是维持人体正常生理功能的重要指标，过高或过低的血压都可能会对健康产生不良影响。
3. 实验局限性：由于本实验采用的是兔子作为模型，与人体的差异性仍然存在。
因此，对于人类血压的具体变化规律，还需要进一步的研究和实验。
结论：通过本次兔子血压实验，我们初步了解了兔子血压的变化规律，并对血压与健康之间的关系有了初步认识。
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北京师范大学生命科学学院实验报告课程：人体及动物生理学实验Lab 10 Autonomic Control of CardiovascularSystem指导教师：孙颖郁实验人员：李元新（200911202909）王红霞（200911202910）郑蕾（200911202953）王鑫（0810200010）实验日期：2011年05月23日一、摘要：通过刺激兔子的交感神经和副交感神经，观察其对心血管活动的影响。
By stimulating the rabbit sympathetic nerve and parasympathetic nerve, observe the influence of cardiovascular events.二、实验目的：分析交感神经和副交感神经对心血管活动的影响。
三、实验原理：在正常生理情况下，人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。
动脉血压的相对恒定对于保持合组织、器官正常的血液供应和物质代谢极为重要，动脉血压的剧烈变化会显著影响各组织、器官的正常活动。
因而，动脉血压是心血管功能活动的综合指标。
动脉血压的这种相对稳定时是通过神经和体液因素的调节而实现的，其中以颈动脉窦–主动脉弓压力感受性反射尤为重要。
此反射可以是升高的血压下降，有可使降低的血压升高，故有血压缓冲反射之称谓。
此外，相关的很多神经递质同样也在动脉压资助调节中扮演着重要的角色。
因而通过改变神经、体液因素或施加药物，观察动脉血压的变化，可以间接反映各种因素对心血管功能的自主性调节。
四、实验材料：1、实验动物：健康兔子一只2、实验试剂：20%的氨基甲酸乙酯，肝素，生理盐水，3.8%柠檬酸钠，100ug/ml去甲肾上腺素，100ug/ml乙酰胆碱，500ug/ml阿托品3、实验设备：兔箱，兔台，金属叉，金属环，绳子，毛剪，解剖刀，止血钳，玻璃分针，镊子，气管插管，静脉夹，静脉插管，动脉插管，压力换能器，动脉夹，刺激电极，刺激电极钩，记录电极五、实验方法：1．动物的麻醉：（1）用右手把两耳拿在手心并抓住颈后部皮肤，提起家兔，然后用左手托住臀部，使呈坐位姿势，切忌提拿双耳。
（2）动物（家兔）称重后，固定于兔箱内，按5ml/Kg B.W.的剂量由耳缘静脉（位于动物耳背边缘）注射20%的氨基甲酸乙酯（乌拉坦Urethane）。
动物被麻醉后，身体松软，疼痛感觉消失。
（3）注意事项：1）注射器内气泡排净；2）首先从静脉的较远端（耳末梢处）确定进针位置，而不是耳朵根部，否则，注射失败后没有弥补的余地；3）将进针处及附近的毛拔净，使血管清晰暴露，用手指弹血管（或用酒精棉擦），使血管充分膨胀；4）针头开口朝上进针（注射器刻度方向与针头开口方向保持一致，以便掌握注射剂量），扎入血管后，针头往前送一些，以确保在血管内（如果在血管内，则阻力很小），避免拔除；5）注药要慢，并密切注意动物反应，如果角膜反射消失，药即使没有注完，也应停止注射（麻醉药注射太快和过多，都容易导致动物死亡）。
2．动物的固定（1）将动物背位（腹面朝上）固定于手术台（兔台）上，保持颈部挺起，身体正直、舒展。
（2）动物头部固定于兔头夹上，金属叉固定颈部，嘴部套入金属环。
（3）前肢背交叉（向后向下交叉，为使动物胸部挺起）、后肢伸展，用绳固定在兔台上。
3．手术（1) 剪毛：用毛剪平贴皮肤剪去颈部被毛，剪毛范围尽量大一些。
（2）暴露气管、颈总动脉、迷走神经与减压神经：a. 用手术刀沿颈部正中纵向切开皮肤3-4cm。
注意避开喉头，喉头处有甲状腺，血液丰富，如伤及，则出血不止，易造成动物死亡。
b. 用止血钳紧贴气管分离肌肉。
此为钝性分离方法，不会造成出血：止血钳顶住肌肉，撑开，反复几次，出现创口，双手食指伸进，纵向扩大创口。
注意不要用手术剪。
（如果发生出血现象，用干棉花或沾生理盐水按压出血部位1-2分钟；也可用止血钳夹住出血部位止血。
）c. 肌肉分离后，暴露出气管。
用手指将气管两侧的肌肉向外翻开，可见到纵向走行的颈总动脉以及伴行的三根神经：最粗的迷走神经，最细的减压神经，以及介于之间的交感神经。
（3）气管插管：在动物麻醉实验中，需进行气管插管，避免分泌物堵塞致死。
a. 将玻璃分针从气管下穿过，顶起气管，在气管下穿双线。
用镊子清除气管表面的结缔组织，选择合适位置（避开喉头），用解剖刀在软骨环上横向切开（不要在肌肉上切口，容易出血），开口要大，约气管直径的1/2（不要切断气管），再向下纵向切开0.5cm，形成“T”型切口。
b. 用小镊子缠上干棉花或用棉签伸进气管中，清除血和粘液，反复几次，务必清除干净，避免动物发生窒息。
c. 将气管插管插入，结扎紧，避免脱出。
将玻璃分针取出。
（4）分离左右颈总动脉、左右迷走神经和右侧减压神经：将气管旁肌肉翻开，内面朝上，暴露血管和神经。
用玻璃分针分别沿动脉、神经纵向划开附着的结缔组织膜，游离出一段。
动脉尽量游离得长一些。
分别穿双线备用，先不结扎。
（5）右侧颈静脉插管：由静脉插管向体内注射药物。
在右侧颈部肌肉浅层找到粗大的颈静脉。
用小镊子将颈静脉一段与周围组织分离，穿入双线，准备插管。
a. 首先在近心端夹静脉夹（夹致静脉夹的根部，以保证夹紧），阻止静脉回流。
b. 然后将双线剪开成两根，一根在远心端结扎静脉（尽量远端，保证有足够的血管长度来插管），一定要扎紧。
血管中间这段充盈血液，便于插管。
c. 拎起结扎线，将血管提拉起，在靠近结扎处用小剪在血管上向下剪一开口，将静脉插管（针头样，中间插有铁芯）插入（插入之前应确保其通畅，注意：插管时不要把铁芯拔出，避免血液将管口堵塞）。
整个针头部分都插进血管，如果静脉夹阻挡住，可以将其去掉。
d. 用另一根线将静脉插管与血管壁结扎紧。
e. 拔出铁芯，按1ml/kg B.W. 注入肝素（500 单位/ml，体内抗凝剂，防止血液凝固）。
再补充1ml 生理盐水。
插入铁芯（避免血液流出）（6）左侧颈动脉插管：动脉插管与压力换能器相连，直接检测血压值。
在此之前，必须将压力换能器以及动脉插管中充满3.8%柠檬酸钠（体外抗凝剂），并确保有良好的气密性（示范内容）压力换能器已经与仪器连接，各项参数都已设置好，处于工作状态。
a. 首先在远心端结扎血管（尽量远端，保证有足够的血管长度来插管）。
b. 然后在近心端夹动脉夹（尽量近端，用动脉夹根部夹住血管，确保夹紧否则剪开血管后，由于动脉压力很大，血液会喷出）。
血管中间这段鼓起。
c. 拎起结扎线，将血管提拉起，在靠近结扎处用小剪在血管上向下剪一开口，在小镊子的辅助下，将动脉插管插入，尽量插入长一些，避免插管滑脱。
在结扎好动脉插管前，一定不能轻易放开动脉夹d. 将动脉插管与血管结扎紧，结扎处应靠近血管开口处，不要太靠下，否则管子容易滑出。
e. 慢慢松开动脉夹，观察动脉插管没有出现异常情况，计算机屏幕上也显示出正常的血压波后，再将动脉夹撤掉。
4.实验程序1）装置连接：RM6240B 通道1 接压力换能器，采集血压信号。
2）参数设置：打开信号采集软件，关闭通道2，3 和4，保留通道1，对应血压信号。
示波状态下修改参数设置：采集频率800Hz；通道1：通道模式血压mmHg，扫描速度1s/div，灵敏度90mmHg，放大器时间常数设为直流，滤波频率100Hz。
实验连续记录，不要间断，每一次处理都应做好标记。
每注射完一种药物，都要补加1ml 生理盐水。
将测量数据记入Lab #10 Data Sheet。
3）操作步骤：⑴封闭右侧颈总动脉30秒⑵压迫双侧颈动脉窦15秒⑶刺激右侧减压神经：刺激输出导线接刺激电极，刺激电极钩住神经。
刺激参数：连续单刺激，强度3V，波宽5ms，刺激频率50Hz.⑷剪断右侧减压神经，分别刺激其中枢端和外周端（刺激参数同⑶）⑸去甲肾上腺素(0.2ml of 100ug/ml).⑹剪断双侧迷走神经⑺封闭右侧颈总动脉30 秒⑻去甲肾上腺素(0.2ml of 100ug/ml).⑼刺激右侧迷走神经外周端（刺激参数同⑶）⑽乙酰胆碱(0.2ml of 100ug/ml)⑾阿托品(0.2ml of 500ug/ml——SLOWLY over 30-40 seconds). 等待10分钟⑿刺激右侧迷走神经外周端（刺激参数同⑶）六、实验结果与分析：（参数：刺激强度：3V；连续单刺激；波宽5ms；刺激频率50Hz）图一：各组操作后动脉压测量的均值图二：各组操作后舒张压测量的均值 正常 封闭右侧颈总动脉 压迫双侧颈动脉窦 刺激右侧减压神经 刺激减压神经中枢端 刺激减压神经外周端 刺激右侧迷走神经外周端加NE 加入 Ach 缓慢加入阿托品 刺激右侧迷走神经外周端 平均动脉压mmHg114.1 128.9 84.3 94.97 95.1 100.9 110.36 116.52 77.6 123.12 131.58 舒张压93.65 109.04 63.75 74.96 73.86 78.48 78.48 96.07 53.20 101.12 111.46 收缩压134.54 148.83 104.86 114.97 116.29 123.33 142.23 136.96 102.00 145.09 151.69 心率 282255 240 255 273 267 226 300 240 273 189图三：各组操作后收缩压测量的均值图四：各组操作后的心率的均值1、实验发现，封闭右侧颈总动脉，通过图像可以观察到家兔血压升高，心率降低。
实验中得到血压水平在128.9mmhg，其中舒张压在109.04，收缩压148.83，心率255。
这是由于夹闭上行动脉阻碍了血液流通，增加了外周阻力，导致右侧颈动脉内颈动脉窦血流量减少，减小了窦神经传入冲动，延髓心血管中心交感中枢兴奋，其相互拮抗的迷走神经中枢的兴奋性降低。
机体通过心血管神经调节系统支配交感神经（减压神经）、交感缩血管神经共同作用，使得心肌收缩力增强，心输出量增加；血管的紧张性增强，血管口径减小，外周阻力增大，使得血压升高，血压曲线上移。
当放开动脉夹后，由于颈动脉窦中血流与压力恢复正常，颈动脉窦神经传入冲动回升，迷走神经兴奋使得血压回降，血压下降到正常状态的水平，与此同时迷走神经末梢释放Ach，使窦房结细胞超极化，自动去极化时间加长，导致心率下降至正常水平。
2、按压家兔双侧颈动脉窦，通过观察图像我们可以观察到家兔血压和心率均降低，实验中得到血压水平在84.3mmhg，其中舒张压在63.75，收缩压104.86，心率240。
此现象的发生由于颈动脉窦存在压力感受器能感受血压的升高而产生减压反射，从而改变到中枢的神经冲动，引起一系列的生理反应。
减压神经或主动脉弓神经是主动脉区的主动脉弓压力感受器的传入神经在颈部单独成一束形成，减压神经具有稳定动脉血压的作用。