家兔动脉血压的神经体液调节(动静脉)
实验3 家兔动脉血压的神经体液调节
---------------------------------------------------------------最新资料推荐------------------------------------------------------ 实验3 家兔动脉血压的神经体液调节实验 3 家兔动脉血压的神经体液调节徐忠（浙江中医药大学13 级预防医学 1 班 6 组， 201912203601004）实验目的：动脉血压是循环功能的重要指标之一，动脉血压过高或过低都会影响各器官的血液供应和心脏的负担。
若动脉血压过低，将引起器官血液供应减少，尤其是脑和心脏等重要器官的供血不足，将导致严重后果。
若血压过高，则心脏和血管的负担过重。
长期高血压患者往往引起心脏代偿性肥大、心功能不全，甚至导致心力衰竭。
血管长期受到高压，血管壁本身发生病理性改变，甚至可导致破裂而引起脑溢血等严重后果，所以保持动脉血压近于正常的相对稳定状态是十分重要的。
本实验就是通过对家兔的颈动脉进行试验，掌握记录和测量家兔动脉血压的直接测量方法，观察神经和体液因素改变对家兔动脉血压调节的影响，并分析该些因素的作用机制。
材料和方法：实验对象：家兔 2.06kg 实验仪器：RM6240 生物信号采集系统，手术剪 1 把，止血钳，镊子，电刺激连线，兔手术台，注射器及针头，血管插管，动脉夹，血1 / 6压换能器，铁架台，婴儿秤，输液装置，照明灯，丝线，纱布；实验药品和试剂：氨基甲酸乙酯，肝素，去甲肾上腺素，生理盐水实验方法： 1. 实验装置与连接：1.1 将压力换能器固定使换能器的位置尽量与实验动物的心脏在同一水平面上。
然后将换能器输入至 RM6240 生物信号采集系统一通道。
1.2 压力换能器的另一端与三通管相连。
三通管的一个接头将与动脉插管相连。
在将动脉插管插入左颈总动脉前，先用盛有肝素的注射器与三通管另一接头相连，旋动三通管上的开关，使动脉插管与注射器相通，推动注射器，排空动脉插管中的气体，使动脉插管内充满肝素溶液，然后关闭三通管。
家兔血压的神经及体液调节
家兔动脉血压的神经及体液调节实验目的：1．学习动脉血压的直接测定方法2．加深对动脉压力感受反射的理解3. 观察迷走神经和某些体液因素对动脉血压的影响实验方法：家兔行麻醉, 气管插管后，分离一侧迷走神经和减压神经及双侧颈总动脉和一侧股静脉，分别于未分离神经侧进行颈总动脉插管，并联压力传感换能器测压以及股静脉置管。
观察正常血压曲线后，首先夹闭未插管侧颈总动脉5-10s, 观察血压变化。
戴血压稳定后，静脉注射去甲肾上腺素1:10000(g/ml)0.3ml, 观察血压，待血压稳定后，静脉注射1:10000(g/ml) 肾上腺素0.3ml, 观察血压，待血压稳定后，静脉注射乙酰胆碱1:10000(g/ml)0.3ml, 观察血压和心率变化，静脉注射阿托品0.5ml,1-2min后再静脉注射同量的乙酰胆碱观察血压和心率的变化，血压正常后，结扎一侧迷走神经并剪断，观察血压变化，然后连续电刺激迷走神经外周端,观察血压和心率的变化，血压恢复正常后，分别连续电刺激减压神经中枢端和外周端,观察血压变化。
实验结果：夹闭一侧颈总动脉后，血压上升。
注入去甲肾上腺素后，血压上升心律减慢。
注入肾上腺素后血压上升，心律加快。
注入乙酰胆碱后，血压下降，注入阿托品后，血压上升。
实验目的1．学习动脉血压的直接测定方法2．加深对动脉压力感受反射的理解3. 观察迷走神经和某些体液因素对动脉血压的影响试剂与器材BL-420生物信号处理系统、手术镊、手术剪、手术刀、止血钳、眼科剪、气管插管、玻璃勾针、压力换能器、注射器、动脉夹、肾上腺素（1:10,000）、乙酰胆碱（1:10,000）、去甲肾上腺素（1:10,000）实验方法1. BL-420生物机能实验系统的准备选择“实验项目”菜单中的“循环实验”子菜单, 再选择“兔动脉血压调节”实验模块2．动物的准备麻醉, 气管插管颈部分离一侧迷走神经和减压神经分离双侧颈总动脉备用股部分离股静脉用于药物注射3．测压系统准备将动脉插管一端插入未分离神经侧的颈总动脉，另一端连接压力换能器，血压信号通过1通道输入接口输入计算机实验步骤(1)观察正常血压曲线主要观察血压幅度变化,从中还可观察心率变化(2)夹闭未插管侧颈总动脉5-10s, 观察血压(3)静脉注射去甲肾上腺素1:10000(g/ml)0.3ml, 观察血压(4)静脉注射肾上腺素1:10000(g/ml)0.3ml, 观察血压(5)静脉注射乙酰胆碱1:10000(g/ml)0.3ml, 观察血压和心率变化，静脉注射阿托品0.5ml,1-2min后再静脉注射同量的乙酰胆碱观察血压和心率的变化(6)结扎一侧迷走神经并剪断，观察血压变化，然后连续电刺激迷走神经外周端, 5-10V,20Hz，0.5ms,观察血压和心率的变化(7)分别连续电刺激减压神经中枢端和外周端,观察血压变化，刺激参数均为3-5V, 20Hz, 0.5ms1、每项处理要同时做实验标记,一项处理后，须待血压基本恢复后再进行下一项处理2、动脉套管要扎紧，与血管平行，防止其脱离或戳穿血管3、测压系统内不能有气泡，防止血凝块堵塞测压系统4、打开颈动脉鞘之前先确认减压神经并穿线备用5、不要过度牵拉神经，特别是减压神经，注意滴加石蜡油保护神经，防止其干燥6、刺激神经时刺激电极不要触及其它组织。
家兔动脉血压的神经体液调节
家兔动脉血压的神经体液调节实验目的 1. 学习动脉插管直接测量和记录动脉血压的急性实验方法。
2. 观察神经、体液因素对动脉血压的调节作用。
实验材料与方法动物家兔，体重2.5～3.5㎏，性别不拘。
药品20%乌拉坦，1%普鲁卡因，1000U/mL肝素，0.1g/L去甲肾上腺素，g/L乙酰胆碱，生理盐水器材兔手术台、止血钳、眼科镊、支架、动脉插管、动脉夹、三通管、动脉压力换能器、注射器（1ml、5ml、10ml、20ml）、纱布、棉球、生物信号采集处理系统。
方法1.实验系统连接及参数设置(1) 颈动脉血压测量记录装置。
将动脉压力换能器固定于铁支柱上，其位置应与家兔心脏在同一平面。
(2) 动脉压力换能器输出线接生物信号处理系统输入通道。
(3) 生物信号处理系统参数设置：RM6240系统：找到循环系统，进入该实验信号记录状态。
仪器参数：通道时间常数为直流，采样频率800Hz，扫描速度250ms/div。
连续单刺激方式，刺激强度3~10V，刺激波宽2ms，刺激频率30 Hz。
2. 动物准备(1)麻醉：家兔称重，由耳缘静脉按1g/kg缓慢注射20％乌拉坦。
静推药品时，可先注入一半剂量，观察家兔的结膜反射、瞳孔大小、呼吸心跳等生命体征，同时推注剩余剂量。
(2) 固定：将家兔背位固定在手术台上，用剪毛剪将颈部和剑突部被毛剪去即可手术。
3.手术(1) 分离血管、神经：沿颈部正中线作一长6～8厘米的皮肤切口，用止血钳钝性分离皮下结缔组织，再向下分离气管和血管神经束。
颈部神经与颈总动脉位于气管外侧，用止血钳先将血管神经束腹面的肌肉和结缔组织分离。
在颈总动脉下穿线备用，轻轻提起右侧颈总动脉下的备用线，即可清楚看到3条粗细不同的神经，迷走神经最粗，白色，易识别。
用玻璃分针纵向小分离，穿线备用。
(2) 动脉插管：结扎左颈总动脉远心端，动脉夹夹住近心端。
用眼科剪在靠近结扎处动脉管壁作一V字型切口，将动脉插管向心脏方向插入颈总动脉，注意插管与血管方向一致，防止扭转或插管尖端刺破动脉管壁。
家兔动脉血压的神经、体液调节
实验 14 家兔动脉血压的神经、体液调节【目的与要求】1 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验方法2 观察神经，体液因素对心血管活动的影响【基本原理】高等动物的动脉血压是相对稳定的。
这种相对稳定是通过神经和体液调节来实现的，其中以静动脉窦-主动脉弓压力感受性反射最为重要。
此反射即可使升高的血压下降，又可使降低的血压升高，故有血压缓冲反射之称。
家兔的主动脉神经在解剖上独成一支，易于分离与观察其作用。
本实验是应用液导系统直接测定动脉血压，即由动脉插管与压力传感器连通，其内充满抗凝液体，构成液导系统，将动脉插管插入动脉，动脉内的压力及其变化，可通过封闭的液导系统传导压力感受器，由计算机采集系统记录下来。
【动物与器材】家兔，手术台，常用手术器械，止血钳，眼科剪，支架，双凹管，气管插管，动脉插管，三通管，动脉夹，计算机采集系统，压力传感器，保护电极，照明灯，纱布，棉球，丝线，注射器(1ml，5ml，20ml)，生理盐水，4%柠檬酸钠，20%-25%氨基甲酸乙酯，肝素(200U/ml)，肾上腺素(1:5000)，已酰胆碱(1:10000)【方法与步骤】1、实验仪器的准备打开计算机采集系统，接通压力传感器。
从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条，使显示器显示压力读数。
2、连通液导系统并制压将压力传感器的下方支管，通过输液管连接三通管，再连接动脉插管。
上侧管供制压时排除管内空气使用。
先用装有20ml 4%柠檬酸钠的注射器，通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注，使之充满液体（不要使动脉插管高过压力传感器的上方支管）后，再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。
然后继续向三通管内推注，直至充满压力传感器的上方支管，并用塞子塞住（注意：液导系统内不可有气泡）。
继续向三通管内推注，同时观察显示器上压力变化。
当加压到120mmHg 时既可关闭三通管。
观察压力是否变化，如果压力下降，则需要检查液导系统的漏液原因，并重新制压。
实验五家兔动脉血压的神经体液调节
一、目的要求
• 1.学习并掌握家兔耳缘静脉麻醉法； • 2.学习并掌握家兔气管插管术； • 3.学习并掌握家兔动脉插管术及压力换 能器的使用方法； • 4.学习并掌握家兔理情况下，哺乳动物的血压处于相对稳 定状态，这种相对稳定是通过神经和体液因 素的调节而实现的。
三、动物和器材
• 家兔、小动物手术台、常用手术器械、 压力换能器、三通管、生理实验系统、 气管插管、动脉夹、注射器（1ml、5ml、 20ml、50ml） • 20%氨基甲酸乙酯、肝素生理盐水溶液 (100单位/ml)、 0.9%生理盐水、肾上腺素 (1：10000)、乙酰胆碱(1：10000)
四、方法和步骤
• 4.连接仪器 • 5.观察项目 • 1）观察正常血压波动曲线
• 血压曲线有时可看到三级波： • 一级波(心搏波)：乃由于心室舒缩所引起的血压波动，频率与心率一 致，但由于记录系统有较大惯性，波动幅度不能真实反映收缩压与 舒张压的高度。 • 二级波(呼吸波)：乃由于呼吸运动所引起的血压波动。 • 三级波：常不出现，可能由于血管运动中枢紧张性的周期性变化所 致。
• 1.从家兔耳缘静脉给药麻醉家兔 • 2.家兔气管插管术 • 3.家兔动脉插管术
• 尽可能向远心端游离出长3～4cm的颈总动脉，在动脉下穿2根线，用其 中一根结扎远心端，用动脉夹夹住其近心端，结扎处与动豚夹夹闭间的 颈总动脉长度约需3cm。 • 用眼科剪在远心端结扎线的近心侧0.3cm处的动脉壁上作一斜切口，切 口约为管径的一半，然后将准备好的充满肝素生理盐水溶液的动脉插管 由切口向心脏方向插入动脉内，于远心端结扎线打一死结，以拉住导管 防止其滑脱。 • 使动脉插管与动脉保持在同一直线上，将压力换能器平放于手术台上。
实验15--家兔动脉血压的神经与体液调节
实验15 家兔动脉血压的神经与体液调节王上（浙江中医药大学 2012级针灸推拿七年制1班3组，2022）一、实验目的本实验采用直接测量和记录动物血压的急性实验方法，观察神经核体液因素对动脉血压的调节作用。
二、摘要目的本实验采用直接测量和记录动脉血压的急性实验方法，观察神经和体液因素对动脉血压的调节作用。
方法应用液导系统直接测定动脉血压，并使用计算机采集系统记录封闭的液导系统传递到压力传感器的压力变化。
改变神经和体液因素，记录压力的变化，通过记录的曲线分析不同的神经体液因素对心血管活动的影响。
结果夹闭对侧颈动脉10s和静脉注射去甲肾上腺素可以使家兔动脉血压升高；刺激完整减压神经、减压神经中枢端、迷走神经外周端、注射乙酰胆碱使家兔血压降低；刺激减压神经外周端不影响家兔血压。
结论家兔动脉血压受到神经和体液的调节。
刺激减压神经、减压神经中枢端、迷走神经外周端、注射Ach可使血压降低，夹闭对侧颈动脉10s 和注射NE则使血压升高，刺激减压神经外周端不影响家兔血压。
三、关键字去甲肾上腺素、肝素、乙酰胆碱、减压神经、动脉血压四、引言动脉血压的相对恒定对于保持各组织、器官正常的血液供应和物质代谢是极其重要的。
正常情况下，人和高等动物的心血管活动在神经、体液因素的调节控制下，保持相对稳定，动脉血压相对恒定。
改变神经、体液因素的影响，则可观察到动脉血压的相应变化。
在动物实验中，可利用动脉插管直接测量动脉血压，通过液体导联系统和压力传感器，将动脉血压的变化在计算机采集系统中描记下来。
五、实验材料和方法材料：家兔；血压换能器，生物信号采集处理系统；氨基甲酸乙酯，肝素，去甲肾上腺素，乙酰胆碱方法：2.1实验系统连接及参数设置血压换能器固定于铁支柱上，高度与心脏处于同一水平面。
压力换能器输出线接微机生物信号采集处理系统输入通道。
仪器参数：RM6240系统：点击“实验”菜单，选择“兔动脉血压调节”，仪器参数：时间常数为直流，滤波频率100Hz，灵敏度12kPa，采样频率800Hz，扫描速度2s/div。
家兔动脉血压的神经与体液调节
家兔动脉血压的神经、体液调节【目的要求】1．学习直接测定和记录家兔动脉血压的急性实验方法。
2．观察某些神经、体液因素对心血管活动的影响。
【基本原理】在正常生理情况下，人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。
这种相对稳定性是通过神经和体液因素的调节而实现的，其中以颈动脉窦-主动脉弓减压反射尤为重要。
此反射既可在血压升高时降压，又可在血压降低时升压，故有血压缓冲反射之称。
家兔的减压神经在解剖上独成一支，易于分离和观察其作用，为实验提供了有利条件。
本实验是应用液导系统直接测定动脉血压的。
即由动脉套管、输液管及水银检压计相互连通，其内充满抗凝液体，构成液导系统。
将动脉套管插入动脉内，动脉内的压力及其变化，可通过密闭的液导系统传递压力，反映在水银检压计上，由水银面的上下活动记录血压波动曲线。
此外，也可通过压力换能器将压力变化转换为电信号，间接地用生理记录仪记录。
【动物与器材】家兔、手术台、常用手术器械、止血钳、眼科剪、电动双记纹鼓与杠杆或生理记录仪与压力换能器、电子刺激器或生理多用仪、电磁标、双凹夹、气管插管、动脉套管、动脉夹、水银检压计、水银、保护电极、照明灯、纱布、棉球、丝线、注射器、生理盐水、3.8%柠檬酸钠、20%氨基甲酸乙酯、肝素（300单位/ml）、肾上腺素（1∶10000）、乙酰胆碱（1∶10000）。
【方法与步骤】1．实验装置(1)水银检压计法记录血压的实验装置1)水银检压计是一个有刻度标记的“U”形玻璃管，管内装有水银。
在管的一端水银面上加一浮标。
浮标上有伸出管外的铝丝，铝丝上垂直装置杠杆与笔尖。
管的另一端有两个侧管：下侧管通过输液管连接塑料三通管，再连动脉套管；上侧管供制压时排除管内空气使用。
当动脉套管插入动脉后，其压力变化使水银面及浮标上下活动。
笔尖便在鼓面上记录出压力曲线。
按图4-14装好水银检压计与两个电磁标，上电磁标连电子刺激器，作刺激记录；下电磁标接记时装置，作时间记录。
注意：①水银检压计之零点应与心脏在同一水平；②三只笔尖应在同一垂直线上；③水银检压计在零位时，其笔尖应与作刺激记录的电磁标笔尖重叠于一点，这样，刺激记录的基线即代表血压的零线。
实验十一 家兔动脉血压的神经、体液调节
实验十一家兔动脉血压的神经、体液调节➢介绍一、实验目的1.学习家兔颈部手术与分离主动脉神经的方法。
2.学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法。
3.观察神经、体液因素对心血管活动的影响。
二、背景资料动脉血压的相对恒定对于保持各组织、器官正常的血液供应和物质代谢是极其重要的。
正常情况下，人和高等动物的心血管活动在神经、体液因素的调节控制下，保持相对稳定，动脉血压相对恒定。
改变神经、体液因素的影响，则可观察到动脉血压的相应变化。
在动物实验中，可利用动脉插管直接测量动脉血压，通过液体导联系统和压力传感器，将动脉血压的变化在计算机采集系统中描记下来。
三、相关观察资料1.家兔正常动脉血压曲线2.分别刺激迷走、交感、减压神经，观察血压、心率等参数的变化3.分别注射去甲肾上腺素、乙酰胆碱溶液，观察血压、心率等参数的变化四、实验假说1.正常家兔曲线呈现出两级波。
2.刺激迷走神经，平均动脉降低，脉压差升高，心率减慢。
3.刺激减压神经，平均动脉压降低，脉压差升高，心率变化不明显。
4.刺激交感神经，平均动脉压升高，脉压差升高，心率加快。
5.注射去甲肾上腺素，平均动脉压升高，脉压升高，心率加快。
6.注射乙酰胆碱，平均动脉压降低，脉压升高，心率减慢。
➢实验材料和方法一、实验材料1.实验对象健康家兔1只2.实验试剂25%氨基甲酸乙酯溶液，生理盐水，肝素（300 U/mL），去甲肾上腺素溶液（1:10000），乙酰胆碱溶液(1:10000)、石蜡油3.手术器械兔箱，手术台，绳子，常用手术器械，止血钳，剪毛剪，眼科剪，支架，双凹夹，动脉插管，三通管，动脉夹，玻璃分针，手术灯，纱布，棉球，棉线，注射器（1 mL, 20 mL）4.记录仪器RM6240多道生理参数记录仪，计算机采集系统，YP100血压换能器支架，三通管，保护电极二、实验步骤1.实验仪器的准备打开计算机采集系统RM6240，接通血压换能器从RM6240系统的“实验”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”，使显示器显示压力读数。
实验四家兔动脉血压的神经体液调节解读
实验四家兔动脉血压的神经体液调节解读
实验四研究了家兔动脉血压的神经体液调节。
实验结果表明，神经体液调节对于家兔
动脉血压具有重要的影响作用。
神经体液调节是指人体中神经和内分泌相互作用的生理调节。
实验中，家兔动脉血压
受到了交感神经和副交感神经的调节。
交感神经兴奋会导致血压升高，而副交感神经的激
活会使血管扩张，降低血压。
实验中通过交感神经药物注射和交感神经阻滞剂的使用，可
明显改变家兔动脉血压水平。
同时，神经激素肾上腺素的注入也对动脉血压产生了显著的
影响。
肾上腺素是交感神经对心血管系统最主要的化学传递物质，其作用可以引起机体的
应激反应，使血压升高。
总之，神经体液调节是维持人体内环境稳定的重要机制，对于家兔动脉血压的调节具
有重要的作用。
而实验结果也表明，不同的药物或化学物质对于动脉血压的调节作用不同，各自发挥其特定的生理、病理作用。
因此，在临床上应该根据不同的情况加以选择和应用，以达到最佳的治疗效果。
家兔动脉血压的神经体液调节实验报告(最新编写)
家兔动脉血压的神经体液调节实验报告（最新编写）一、实验介绍动脉血压调节是机体维持内环境稳定的重要机制之一。
神经体液是动脉血压调节的主要调控方式。
在家兔的神经体液调节的实验中，一般使用颈动脉夹闭法作为刺激，测量动脉血压、心率、交感神经活性等指标的变化情况来观察神经体液调节的效应。
本次实验将通过颈动脉夹闭来模拟家兔在生活中遭遇短暂外界刺激，观察神经体液调节对家兔动脉血压的影响，并分析神经体液调节机制。
二、实验原理1. 首先需测定家兔基础血压和心率；2. 颈动脉夹闭10秒钟，观察家兔的反应，测量家兔动脉血压和心率；3. 严密掌握家兔夹颈时间，避免对家兔安全带来影响；4. 预备几只家兔，更换不同家兔保证每个家兔之间的夹颈间隔时常不得低于5分钟。
三、实验材料1. 实验动物：家兔；2. 实验仪器：生命体征监测仪（如RM6240A），家兔夹颈器；3. 实验用品：婴儿毛细管管和胶头，25G针头，生理生化盐水，杀兔针；4. 实验环境：消毒柜，实验室动物养护设备。
四、实验步骤1. 用氯仿麻醉针对实验动物进行麻醉；2. 固定实验动物的颈部，在股动脉或耳动脉或肱动脉处插入婴儿毛细管管，并连接到血压计；3. 为采血做准备，用25G针头对动脉进行取血，取血完毕后需要关闭切口；4. 观察和记录实验动物的基础血压和心率；5. 在实验动物恢复到麻醉深度下夹关闭实验动物的颈部并计时10秒钟，然后放松夹紧的夹子，记录血压和心率的变化情况；6. 在两次夹颈之间，需要进行5分钟以上的恢复缓冲期；7. 实验完毕后需要使用杀兔针快速将实验动物处决，然后进行解剖学研究。
五、实验结果1. 基础血压：将实验动物放置10-15分钟，并进行数据记录和稳定，获得其基础血压和心率。
样本量为5只实验动物，数据如下：|序号|1|2|3|4|5||---|---|---|---|---|---||基础血压（mmHg）|90.5|81.5|87.5|91.3|83.7||基础心率（次/min）|254|266|246|261|273|2. 夹闭颈动脉后，测量家兔动脉血压和心率。
家兔动脉血压的神经体液调节实验报告-
家兔动脉血压的神经体液调节实验报告-
实验目的：
1. 掌握兔动脉血压的基本实验方法。
实验原理：
动物的血压需要靠神经和体液调节来保持相对稳定。
在正常情况下，兔的血压较为平稳，能够维持生物体正常的生理活动。
神经调节机制包括交感神经和副交感神经。
交感神经兴奋时，会使心率和收缩力增加，提高心输出量和组织灌注。
同时，交感神经还会使体表血管收缩，增加外周阻力，提高动
脉压。
副交感神经则对心脏和血管功能有抑制作用，使心率、收缩力和外周阻力下降，降
低动脉压。
此外，髓上皮素、雷诺二氏素、血管紧张素等血管紧缩素也参与了血压的调
节。
实验步骤：
1. 取好兔，先给其进行适应训练，使其心情稳定，减少干扰。
2. 用适当的器材测定兔的基础血压值。
3. 用肌肉注射机将肌肉注射液注射到兔身上。
4. 检测注射后的兔的血压和脉搏，观察神经体内物质对兔的影响。
实验结果：
在肌肉注射后，兔的血压和脉搏被明显影响。
注射高剂量肌肉注射液后，兔的血压和
脉搏迅速上升，表明高剂量肌肉注射液会通过神经调节机制提高兔的动脉压。
而注射低剂
量肌肉注射液后，兔的血压和脉搏出现下降，则说明低剂量的肌肉注射液会通过体液调节
机制将兔的动脉压降低。
兔动脉血压的神经和体液调节是非常重要的，这些机制会对兔的血压和生理活动产生
很大的影响。
神经和体液调节机制是维持兔生命活动的重要手段，对于维持动物生命健康
有着至关重要的作用。
家兔动脉血压的神经与体液调节实验报告
家兔动脉血压的神经与体液调节实验报告家兔动脉血压的神经与体液调节实验报告引言：动脉血压是维持机体正常生理功能的重要指标之一，它受到神经和体液调节的影响。
为了深入了解家兔动脉血压的调节机制，我们进行了一系列实验。
本报告将详细介绍实验设计、方法、结果和讨论。
实验设计：我们选取了10只健康的家兔作为实验对象，随机分为两组。
一组为神经调节组，通过切断交感神经和迷走神经来观察其对家兔动脉血压的影响；另一组为体液调节组，通过注射不同浓度的盐水来模拟不同的体液调节状态，观察其对家兔动脉血压的影响。
方法：1. 神经调节组：在麻醉状态下，我们进行了交感神经和迷走神经的切断手术。
手术后，我们记录了家兔动脉血压的变化，并与术前进行对照。
2. 体液调节组：我们分别注射了低浓度盐水和高浓度盐水，模拟低血容量和高血容量状态。
在注射后，我们记录了家兔动脉血压的变化，并与注射前进行对照。
结果：1. 神经调节组：切断交感神经后，家兔动脉血压明显下降；切断迷走神经后，家兔动脉血压明显升高。
这表明交感神经和迷走神经对动脉血压有相反的调节作用。
2. 体液调节组：注射低浓度盐水后，家兔动脉血压下降；注射高浓度盐水后，家兔动脉血压上升。
这说明体液调节对动脉血压具有重要的调节作用。
讨论：1. 神经调节机制：交感神经的切断导致家兔动脉血压下降，这是因为交感神经释放的去甲肾上腺素能促使血管收缩，增加血压。
而迷走神经的切断导致家兔动脉血压升高，这是因为迷走神经能抑制心率和收缩力，从而降低血压。
2. 体液调节机制：低血容量状态下，体液调节机制会使血管收缩，增加血压；高血容量状态下，体液调节机制会使血管扩张，降低血压。
结论：家兔动脉血压的调节机制主要涉及神经和体液两个方面。
神经调节中，交感神经和迷走神经具有相反的作用；体液调节中，低血容量状态下血管收缩，高血容量状态下血管扩张。
这些调节机制的平衡对于维持动脉血压的稳定至关重要。
结语：通过本次实验，我们深入了解了家兔动脉血压的神经和体液调节机制。
实验5家兔动脉血压的神经体液调节(精)
基本原理
实验步骤
4、麻醉标准：动物四肢松软
呼吸变深变慢 角膜反射迟钝
5、麻醉后注意的问题：
采取保温措施 保持动物气道的通畅和组织的营养
出现麻醉过深情况后，应立刻采取抢救措施
家兔的固定及气管插管
目的要求
基本原理
实验步骤
气管插管的位置：喉头下方2～3cm处做“T”型切口。
液导系统的制作
目的要求
基本原理
实验六
家兔动脉血压的神经体液调节
要求目的
基本原理
实验步骤
目的要求
基本原理
实验步骤
1、学习和掌握家兔颈部气管、血管和神经分 离术。 2、辨认气管、食道、颈总动脉、迷走神经、 减压神经和交感神经的相互位置关系。 3、学会颈部气管插管、颈总动脉插管、直接 测定和记录动脉血压的急性实验方法 。
4、观察神经-体液因素对家兔动脉血压的影响。
家兔动脉血压的神经体液调节
目的要求 动脉血压的形成主要决定于3个条件：心血管 系统内的血量、心室收缩射血和外周阻力。因此， 凡是直接或间接影响以上3个条件的因素均可影响 动脉血压。 在正常生理情况下，人和高等动物的动脉血压 是相对稳定的。这种相对稳定性是通过神经和体液 因素的调节而实现的，其中以颈动脉窦—主动脉弓 压力感受性反射尤为重要。此反射既可使升高的血 压下降，又可使降低的血压升高，故有血压缓冲反 射之称。 家兔的主动脉神经在解剖上独成一支,易于分 离与观察其作用，为实验提供了有利条件。
目的要求
1、家兔的麻醉
2、固定及气管插管
基本原理
实验步骤
3、液导系统的制作
4、家兔颈部精细解剖 5、动脉插管及血压测定Fra bibliotek家兔的麻醉
目的要求
家兔动脉血压的神经与体液调节实验报告
家兔动脉血压的神经与体液调节实验报告一、实验目的1、学习直接测定家兔动脉血压的急性实验方法。
2、观察神经与体液因素对家兔动脉血压的调节作用。
二、实验原理正常情况下，动脉血压保持相对稳定，这种相对稳定是通过神经和体液因素的调节实现的。
神经调节主要通过交感神经和副交感神经对心血管活动进行调节。
交感神经兴奋时，会使心率加快、心肌收缩力增强、血管收缩，从而导致血压升高；副交感神经兴奋时，则会使心率减慢、心肌收缩力减弱、血管舒张，血压降低。
体液调节主要通过肾上腺素、去甲肾上腺素、血管紧张素等激素来调节血压。
肾上腺素和去甲肾上腺素能使心脏兴奋、血管收缩，导致血压升高；血管紧张素则通过收缩血管升高血压。
三、实验材料1、实验动物：健康家兔 1 只。
2、实验器材：哺乳动物手术器械一套、压力换能器、生物信号采集处理系统、动脉插管、注射器、丝线、纱布等。
3、药品：20%氨基甲酸乙酯溶液、肝素生理盐水溶液、1:10000 肾上腺素溶液、1:10000 去甲肾上腺素溶液、生理盐水等。
四、实验步骤1、麻醉与固定家兔称重后，由耳缘静脉缓慢注射20%氨基甲酸乙酯溶液（5ml/kg）进行麻醉。
待家兔麻醉后，仰卧固定于手术台上。
2、手术操作（1）颈部正中切口：剪去颈部的毛，在颈部正中切开皮肤，分离皮下组织和肌肉，暴露气管。
（2）分离颈部血管和神经：在气管两侧，分别分离出右侧颈总动脉、迷走神经、减压神经和交感神经。
用玻璃分针小心分离神经和血管，避免过度牵拉和损伤。
在各神经和血管下穿线备用。
（3）动脉插管：在右侧颈总动脉远心端结扎，近心端用动脉夹夹住。
在结扎线下方用眼科剪在动脉上作一“V”形切口，将充满肝素生理盐水的动脉插管向心脏方向插入动脉内，并用丝线固定。
3、仪器连接将压力换能器与生物信号采集处理系统相连，调整好参数，使系统能准确记录动脉血压的变化。
4、观察项目（1）正常血压曲线：打开动脉夹，记录家兔正常的动脉血压曲线。
观察血压的波动情况，包括收缩压、舒张压和平均动脉压。
家兔动脉血压的神经体液调节实验
家兔动脉血压的神经体液调节实验家兔动脉血压的神经体液调节[实验目的]1. 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验方法。
2. 观察神经、体液因素对心血管活动的影响。
[实验方法]实验仪器准备连通液导系统并制压，压力换能器的调节（液体中含有柠檬酸钠，是体外抗凝剂）动物准备：兔的麻醉与固定（20%氨基甲酸乙酯），气管插管，左颈总动脉、右颈总静脉、右侧迷走神经、主动脉神经穿线备用，静脉插管（插管成功后注射肝素，抗凝血），动脉插管（动脉连血压感受器）[结果分析]1.夹闭一侧颈总动脉15s后，观察到兔动脉血压升高的现象：这是由于颈动脉窦管壁的外膜下分布有丰富的感觉神经末梢，是动脉张力感受器。
这个感受器位于兔颈总动脉的远心端，颈内动脉与颈外动脉的分叉交界处。
夹闭颈动脉后，远心端的颈动脉窦张力感受器感受到血压下降，传出神经冲动的频率减慢。
信息沿窦神经上传至延髓孤束核心血管中枢。
使心迷走紧张减弱，心交感和心缩血管紧张加强，作用于心脏，使心率加快，心输出量增加，血管收缩，血管外周阻力增加。
从而血压恢复性升高。
若血压下降过大，交感缩血管紧张还会扩展到静脉系统，是静脉收缩，促进血液回心，使每博输出量增加。
2.刺激完整减压神经及其中枢端均可引起血压下降，而刺激该神经外周端基本不变：兔减压神经是传入神经，其作用是将主动脉弓感受器发出的冲动传入延髓心血管中枢，反射性引起血压降低。
因此，刺激完整的减压神经或其中枢端，使传入中枢的冲动增加，致血压明显下降，而刺激其外周端虽又冲动传向外周，但不会引起血压变化。
3.刺激迷走神经后观察到，刺激迷走神经和迷走神经外周端都能引起明显的减压反应，而刺激迷走中枢端则没有减压反应，只是稍有轻微抬升变化：迷走神经中含从延髓下行的传出纤维，通向心脏。
节前纤维末端释放Ach,节后纤维末端释放Ach,属于副交感神经纤维，能使cAMP浓度降低，心率减慢，心房收缩力减弱，传导性减弱。
从而使心输出量变小，平均动脉压降低。
人体及动物生理学实验五：家兔动脉血压的神经及体液的调节
【动物与器材】
家兔、兔手术台、常用手术器械、止血钳、 支架、双凹夹、气管插管、动脉插管、三通管、 动脉夹、生理信号采集处理系统、血压传感器、 保护电极、纱布、棉球、丝线、注射器、生理 盐水、4％柠檬酸钠、25％氨基甲酸乙酯、肝素 (200 U／ml)、肾上腺素(1：5 000)、异丙肾上 腺素(1：5 000)、多巴胺(1：5 000)、乙酰胆 碱(1：10000)。
剂进入人体内，防止手术器械的伤害。
注意： a. 插管应与动脉血管的方向一致，以防插管尖端扎
破动脉管壁。轻轻取下向心端动脉夹，可见动脉 血与插管内液体混合。再取下通向压力传感器的 止血钳，此时显示器上出现血压的波动曲线。 b. 在分离血管与神经的同时，要进行实验仪器的准 备，以及连通液导系统并制压。切记！
（8）实验仪器的准备 打开计算机采集系统，接通压力传感器。从
用玻璃分针轻轻挑起分离后的神经，再用弯头 眼科镊由神经下方穿过，将一浸过生理盐水的彩色 丝线放于镊子内，轻轻收回夹住丝线的眼科镊，穿 好线并打一活结备用。如果不能辨认出3条神经，则 可先在颈总动脉下方穿过一条粗棉线(方法同上，但 只分离很小一段动脉，需保留其前后的结缔组织束 膜)。当轻轻提起动脉时即可看清3条神经，同法分 离主动脉神经。分离主动脉神经、迷走神经并穿线 备用。
【实验观察内容】
（1）夹闭对侧颈总动脉 （2）按压颈动脉窦 （3）刺激迷走神经 （4）刺激主动脉神经 （5）刺激交感神经 （6）结扎并剪断主动脉神经 （7）刺激主动脉神经外周端 （8）刺激主动脉神经中枢端
（9）结扎并剪断迷走神经 （10）刺激迷走神经外周端 （11）刺激迷走神经中枢端
注：以上所有刺激均选用“串单刺激”。刺激参 数：刺激强度：1～3V均可（如果没有反应，可适 当增加强度），刺激波宽：0.2ms，脉冲数：40， 波间隔：25ms。
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家兔动脉血压的神经体液调节
【实验目的】
1.学习直接测定和记录家兔动脉血压的急性实验方法
2.观察某些神经、体液因素对心血管活动的影响
【实验材料】
家兔
器材：手术台，止血钳，眼科剪，BL420E+生物机能分析系统，气管插管，动脉套管，动脉夹，保护电极，照明灯，纱布，棉球，丝线，注射器
试剂：生理盐水，肝素，乌来糖（麻醉剂），肾上腺素，乙酰胆碱
【实验步骤】
1.手术
（1）麻醉取家兔一只，称重，耳缘静脉注射麻醉剂（1g/kg）进行麻醉。
麻醉过程要缓慢，当动物角膜反应迟钝，掐其大腿无反应，即可停止注射，避免过度麻醉致死。
（2）将动物背位交叉固定，将颈部喉结下部毛剪掉。
（3）仅靠喉结下缘，沿颈部正中线做一长约5-7cm的皮肤切口，将皮下结缔组织钝性分离，至露出气管，穿线，用手术刀在气管上做一横切口，插入气管插管，结扎。
（4）分离颈部神经血管：分离胸骨舌骨肌和胸骨甲状肌及其周围结缔组织，在接近气管外侧，有一条较细，壁厚的血管，即为主动脉血管（可看出里面血流规律性搏动）。
与主动脉伴行的有两条较粗的神经，最粗的为迷走神经，其次为交感神经，两者之间有一条很细的神经，减压神经。
但减压神经的位置不固定，两条较粗的神经附近的细小神经都有可能是减压神经，可以进行刺激试探。
确定迷走神经和减压神经后，分离出减压神经，迷走神经，主动脉血管，分别穿线备用。
（5）动脉套管插入：动脉套管插入前，需准备好压力换能器记录血压的装置。
用注射器将肝素生理盐水注入套管，至将其中所有空气由插孔处排出，用肝素生理盐水代替。
注入处用止血钳将胶管夹住。
保证其中不能有空气。
准备好动脉套管装置后，用动脉夹夹住近心端，远心端动脉结扎，在两者之间剪一小口，迅速插入动脉套管（动作迅速，否则动脉管腔急剧收缩，难以插入套管），用线将动脉插管固定于动脉内，并挂在套管（缠一圈胶布）上，以免滑脱。
（6）松开动脉夹，即可看到少量动脉血液冲入动脉套管。
此时即可开始进行试验，记录曲线。
2.曲线描记
（1）描记一段正常曲线，识别一级波（心波），二级波（呼吸波）。
（2）提起另一侧颈总动脉的备用线，动脉夹夹闭5-10s，观察记录血压变化，分析原因。
（3）中等强度的点刺激刺激另一侧减压神经，观察血压变化。
双结扎后切断，再刺激减压神经神经的中枢端和外周端，观察记录血压变化。
（4）对另一侧迷走神经进行同样处理，分别观察双结扎切断神经前、后的血压变化。
（5）耳缘静脉注射肾上腺素，观察血压变化。
（6）耳缘静脉注射乙酰胆碱，观察血压变化。
【实验结果】
1.正常心搏曲线
2.夹闭另一侧颈总动脉：
3.刺激减压神经
（1）剪断神经前：
（2）刺激减压神经中枢端
（3）刺激减压神经外周端
4.刺激迷走神经：
（1）剪断神经前：。