家兔动脉血压的神经体液调节实验报告
【报告】实验6：家兔动脉血压的神经与体液调节
家兔动脉血压的神经与体液调节（浙江中医药大学第一临床医学院）[摘要] 实验目的采用直接测量和记录动脉血压的急性实验方法，观察神经和体液因素对动脉血压的调节作用。
[关键词] 动脉血压；神经调节；体液调节1 实验材料氨基甲酸乙酯，生理盐水，肝素，去甲肾上腺素，血压换能器，RM6240微机生物信息处理系统，止血钳，手术剪，棉线，针筒，动脉夹。
2 实验对象家兔3 实验方法3.1 实验系统连接及参数设置血压换能器固定在铁支柱上，高度与心脏同一平面。
压力换能器输出线接微机生物信号采集处理系统输入通道。
3.2 手术准备3.2.1 麻醉固定取家兔一只，称重2kg，按1g/kg体重的剂量沿耳缘静脉缓慢注射200g/L 的氨基甲酸乙酯，用10ml麻醉不成功，又注射了3ml，共注射13ml，至呼吸深而慢，皮肤夹捏反射迟钝为停。
背位固定。
3.2.2 颈部手术剪去颈前被毛，颈前正中切开皮肤6~7cm，直至下颌角上1.5cm，用止血钳钝性分离软组织及颈部肌肉，暴露气管及气管平行的左、右血管神经鞘。
细心分离右侧鞘膜内颈总动脉、颈外静脉、减压神经和迷走神经，左侧颈总动脉，穿线备用。
3.2.3 左颈总动脉插管在左颈总动脉远心端结扎，近心端用动脉夹夹住，并在动脉下面穿线备用；用眼科剪在靠近结扎处动脉壁上剪一“V”字形切口，将动脉插管向心方向插入颈总动脉内，扎紧固定；打开动脉夹。
3.2.4 右颈外静脉插管稍稍提起右颈外静脉远心端的细线，用眼科剪朝心脏方向剪一“V”字形切口，将插管向心方向插入颈外静脉内，扎紧固定。
3.3 实验观察3.3.1启动记录按钮，除去动脉夹，可见血液由动脉冲入动脉插管，微机生物信号采集处理系统开始采样记录血压数据，并在屏幕上显示血压波动曲线。
3.3.2 用动脉夹夹闭右侧颈总动脉30s，观察并记录血压变化。
3.3.3 待血压正常后，在右侧颈外静脉静脉注射0.1g/L去甲肾上腺素0.3ml，观察并记录血压变化。
3.3.4 用5v，25hz的连续电流刺激减压神经20s，观察并记录血压变化。
实验15--家兔动脉血压的神经与体液调节
实验15 家兔动脉血压的神经与体液调节王上（浙江中医药大学 2012级针灸推拿七年制1班3组，2022）一、实验目的本实验采用直接测量和记录动物血压的急性实验方法，观察神经核体液因素对动脉血压的调节作用。
二、摘要目的本实验采用直接测量和记录动脉血压的急性实验方法，观察神经和体液因素对动脉血压的调节作用。
方法应用液导系统直接测定动脉血压，并使用计算机采集系统记录封闭的液导系统传递到压力传感器的压力变化。
改变神经和体液因素，记录压力的变化，通过记录的曲线分析不同的神经体液因素对心血管活动的影响。
结果夹闭对侧颈动脉10s和静脉注射去甲肾上腺素可以使家兔动脉血压升高；刺激完整减压神经、减压神经中枢端、迷走神经外周端、注射乙酰胆碱使家兔血压降低；刺激减压神经外周端不影响家兔血压。
结论家兔动脉血压受到神经和体液的调节。
刺激减压神经、减压神经中枢端、迷走神经外周端、注射Ach可使血压降低，夹闭对侧颈动脉10s 和注射NE则使血压升高，刺激减压神经外周端不影响家兔血压。
三、关键字去甲肾上腺素、肝素、乙酰胆碱、减压神经、动脉血压四、引言动脉血压的相对恒定对于保持各组织、器官正常的血液供应和物质代谢是极其重要的。
正常情况下，人和高等动物的心血管活动在神经、体液因素的调节控制下，保持相对稳定，动脉血压相对恒定。
改变神经、体液因素的影响，则可观察到动脉血压的相应变化。
在动物实验中，可利用动脉插管直接测量动脉血压，通过液体导联系统和压力传感器，将动脉血压的变化在计算机采集系统中描记下来。
五、实验材料和方法材料：家兔；血压换能器，生物信号采集处理系统；氨基甲酸乙酯，肝素，去甲肾上腺素，乙酰胆碱方法：2.1实验系统连接及参数设置血压换能器固定于铁支柱上，高度与心脏处于同一水平面。
压力换能器输出线接微机生物信号采集处理系统输入通道。
仪器参数：RM6240系统：点击“实验”菜单，选择“兔动脉血压调节”，仪器参数：时间常数为直流，滤波频率100Hz，灵敏度12kPa，采样频率800Hz，扫描速度2s/div。
家兔动脉血压的神经体液调节实验结果与分析
家兔动脉血压的神经体液调节实验结果与分析 The pony was revised in January 2021家兔动脉血压的神经体液调节实验结果与分析1. 观察正常血压曲线：调节扫描速度与增益，可以明显地观察到心室射血与主动脉回缩形成的压力变化与收缩压、舒张压的读数。
有时可以观察到血压曲线随呼吸变化，心搏为一级波，呼吸波为二级波。
然后将扫描速度调慢，观察正常血压曲线。
分析：如图所示，呼吸波为大波，心波为大波上的小波。
兔子的正常心跳为每分钟180～ 250 下，正常呼吸次数为每分钟30～60 次，因此心波频率较高，而呼吸波频率较低。
该曲线表明，血压的变化受到心率与呼吸的共同影响，在心率与呼吸的共同作用下，血压呈稳定的变化，处于动态平衡中。
2. 夹闭对侧颈总动脉（10-15s）：轻轻提起对侧完好颈总动脉上的备用线，用动脉夹夹闭（于夹闭前记录动脉通畅时的血压曲线），观察并记录血压变化。
出现变化后即取下动脉夹，记录血压的恢复过程。
分析：如图所示，当夹闭对侧颈总动脉时，血压迅速下降，松开动脉夹后，血压上升而恢复正常。
夹闭对侧颈总动脉，血液无法流通，同时心搏出的血液使血压上升，刺激血管壁的压力感受器，神经冲动经传递到达效应器，使心室射血量下降，从而降低血压。
松开动脉夹，对血管壁上的压力感受器的刺激消失，神经冲动停止传递，血压恢复正常。
3. 刺激另一侧减压神经（主动脉神经）：使刺激输出端连接保护电极，轻轻提起主动脉神经上的备用线，小心地将神经置于保护电极之上。
记录对照血压曲线后，再用中等强度的连续电脉冲信号（可设为10V，40Hz）通过保护电极刺激神经10~20s。
血压出现明显下降后，即可停止刺激，并待血压恢复。
如果血压并不下降，可调整刺激强度或刺激频率再进行刺激。
任何刺激都无效时，则表示此神经并非主动脉神经。
需要重新辨认神经 2 后再行实验。
分析：如图所示，刺激减压神经后，血压下降。
减压神经能使血压下降，刺激减压神经后，其将神经冲动传递到效应器，使心射血量下降，从而使血压下降。
血压动脉调节实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 掌握血压动脉调节的基本原理和机制。
2. 了解神经体液因素对血压动脉调节的影响。
3. 学习使用血压测量仪器和数据分析方法。
4. 提高实验操作技能和科学思维。
二、实验原理血压动脉调节是指人体通过神经和体液机制维持动脉血压相对稳定的过程。
在生理状态下，动脉血压受到多种因素的影响，如心脏搏出量、血管阻力、血容量等。
神经调节主要通过交感神经和副交感神经的作用，而体液调节主要通过激素的调节。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：家兔2. 仪器设备：血压计、动脉夹、手术器械、生理盐水、注射器、记录仪等3. 试剂：肾上腺素、去甲肾上腺素、酚妥拉明、阿托品等四、实验方法1. 动物准备：将家兔麻醉后固定在手术台上，暴露颈动脉。
2. 动脉插管：在颈动脉处插入动脉导管，连接血压计，记录血压。
3. 神经刺激：分别刺激家兔的交感神经和副交感神经，观察血压变化。
4. 激素注射：注射肾上腺素、去甲肾上腺素、酚妥拉明、阿托品等，观察血压变化。
5. 数据分析：对实验数据进行统计分析，得出结论。
五、实验结果1. 交感神经刺激：交感神经刺激后，家兔血压升高，心跳加快。
2. 副交感神经刺激：副交感神经刺激后，家兔血压降低，心跳减慢。
3. 肾上腺素注射：肾上腺素注射后，家兔血压升高，心跳加快。
4. 去甲肾上腺素注射：去甲肾上腺素注射后，家兔血压升高，心跳加快。
5. 酚妥拉明注射：酚妥拉明注射后，家兔血压降低，心跳减慢。
6. 阿托品注射：阿托品注射后，家兔血压无明显变化，心跳无明显变化。
六、实验结论1. 交感神经和副交感神经对血压动脉调节具有重要作用。
2. 肾上腺素、去甲肾上腺素等激素对血压动脉调节具有显著影响。
3. 酚妥拉明、阿托品等药物对血压动脉调节具有调节作用。
七、实验讨论1. 交感神经和副交感神经对血压动脉调节的调节机制：交感神经兴奋时，心脏搏出量增加，血管收缩，导致血压升高；副交感神经兴奋时，心脏搏出量减少，血管扩张，导致血压降低。
实验报告家兔动脉血压的神经体液调节影响尿生成的因素
实验报告家兔动脉血压的神经体液调节影响尿生成的因素实验目的：研究神经体液调节对家兔动脉血压的影响，进而探讨其对尿生成因素的调节作用。
实验原理：1.神经调节：交感神经系统通过释放去甲肾上腺素使血管收缩，增加血压；副交感神经系统通过释放乙酰胆碱使血管舒张，降低血压。
2.基础体液调节：对于维持水平衡和血压稳定至关重要的体液激素包括抗利尿激素ADH（抗利尿激素抗利尿激素是一类性质相似的多肽和蛋白质，主要起着催化性质，即提供酶活性），肾素-血管紧张素-醛固酮系统等。
实验步骤：1.适量家兔静脉注射心脏强心剂，将其置于无菌条件下，全麻状态下开腹。
2.暴露家兔肾上腺，切割交感神经以及副交感神经。
3.将家兔肾上腺泡灌注盐水，刺激副交感神经，观察其对血压的影响，并记录。
4.暴露尿路，测量家兔的尿液分泌量。
5.注射抗利尿激素ADH，继续记录家兔的尿液分泌量。
6.切割家兔肾上腺，观察其对血压的影响，并记录。
实验结果：1.切割副交感神经后，家兔动脉血压上升。
2.注射抗利尿激素ADH后，家兔尿液分泌减少。
3.切割肾上腺后，家兔动脉血压下降。
实验讨论：1.切割副交感神经导致家兔动脉血压升高，说明副交感神经对血管的舒张起到了抑制作用。
2.注射抗利尿激素ADH导致家兔尿液分泌减少，说明ADH对尿生成起到了抑制作用。
3.切割肾上腺导致家兔动脉血压下降，说明交感神经通过释放去甲肾上腺素使血管收缩，增加血压。
实验结论：神经体液调节对家兔动脉血压有重要的影响，并进而影响尿生成。
副交感神经通过释放乙酰胆碱使血管舒张，降低血压；抗利尿激素ADH对尿生成起到抑制作用；交感神经通过释放去甲肾上腺素使血管收缩，增加血压。
这些调节机制相互作用，维持了家兔体内的水平衡和血压稳定。
实验意义：通过研究神经体液调节对家兔动脉血压的影响，可以更深入地理解生物体内尿生成的调节机制。
这对于揭示机体水平衡和血压稳定的生理学机制，以及相关疾病的发生与治疗具有重要的理论和实践意义。
兔血压生理实验报告
1. 了解兔血压的生理调节机制。
2. 掌握兔血压测定的方法和技术。
3. 分析兔血压在不同生理状态下的变化规律。
二、实验原理兔血压是指兔心脏泵血时，血液对动脉血管壁产生的压力。
血压的生理调节机制主要包括神经调节和体液调节。
神经调节主要是通过交感神经和副交感神经的调节作用，体液调节主要是通过肾上腺素、去甲肾上腺素等激素的调节作用。
三、实验材料1. 实验动物：成年家兔2只。
2. 实验仪器：血压计、动脉夹、手术器械、注射器、生理盐水、麻醉剂等。
3. 实验试剂：肾上腺素、去甲肾上腺素、酚妥拉明等。
四、实验方法1. 麻醉：将家兔用麻醉剂进行全身麻醉。
2. 暴露：将家兔仰卧固定于手术台上，剪开颈部皮肤，暴露颈总动脉。
3. 动脉插管：在颈总动脉上插入动脉导管，连接血压计，测定兔血压。
4. 观察血压变化：在正常状态下，观察兔血压的变化。
5. 药物干预：分别给予兔肾上腺素、去甲肾上腺素、酚妥拉明等药物，观察血压的变化。
五、实验结果1. 正常状态下，兔血压波动范围在100-150mmHg之间。
2. 给予肾上腺素后，兔血压明显升高，波动范围在160-200mmHg之间。
3. 给予去甲肾上腺素后，兔血压明显升高，波动范围在180-220mmHg之间。
4. 给予酚妥拉明后，兔血压明显降低，波动范围在90-120mmHg之间。
1. 兔血压的正常波动范围在100-150mmHg之间，说明兔血压具有一定的调节能力。
2. 给予肾上腺素和去甲肾上腺素后，兔血压明显升高，说明这两种药物可以兴奋肾上腺素能受体，导致血压升高。
3. 给予酚妥拉明后，兔血压明显降低，说明酚妥拉明可以阻断α受体，导致血压降低。
七、实验结论1. 兔血压具有一定的调节能力，其生理调节机制主要包括神经调节和体液调节。
2. 肾上腺素、去甲肾上腺素等药物可以兴奋肾上腺素能受体，导致血压升高；酚妥拉明可以阻断α受体，导致血压降低。
八、实验注意事项1. 实验过程中要确保家兔处于麻醉状态，避免疼痛引起不良反应。
家兔动脉血压的神经体液调节实验报告(最新编写)
家兔动脉血压的神经体液调节实验报告（最新编写）一、实验介绍动脉血压调节是机体维持内环境稳定的重要机制之一。
神经体液是动脉血压调节的主要调控方式。
在家兔的神经体液调节的实验中，一般使用颈动脉夹闭法作为刺激，测量动脉血压、心率、交感神经活性等指标的变化情况来观察神经体液调节的效应。
本次实验将通过颈动脉夹闭来模拟家兔在生活中遭遇短暂外界刺激，观察神经体液调节对家兔动脉血压的影响，并分析神经体液调节机制。
二、实验原理1. 首先需测定家兔基础血压和心率；2. 颈动脉夹闭10秒钟，观察家兔的反应，测量家兔动脉血压和心率；3. 严密掌握家兔夹颈时间，避免对家兔安全带来影响；4. 预备几只家兔，更换不同家兔保证每个家兔之间的夹颈间隔时常不得低于5分钟。
三、实验材料1. 实验动物：家兔；2. 实验仪器：生命体征监测仪（如RM6240A），家兔夹颈器；3. 实验用品：婴儿毛细管管和胶头，25G针头，生理生化盐水，杀兔针；4. 实验环境：消毒柜，实验室动物养护设备。
四、实验步骤1. 用氯仿麻醉针对实验动物进行麻醉；2. 固定实验动物的颈部，在股动脉或耳动脉或肱动脉处插入婴儿毛细管管，并连接到血压计；3. 为采血做准备，用25G针头对动脉进行取血，取血完毕后需要关闭切口；4. 观察和记录实验动物的基础血压和心率；5. 在实验动物恢复到麻醉深度下夹关闭实验动物的颈部并计时10秒钟，然后放松夹紧的夹子，记录血压和心率的变化情况；6. 在两次夹颈之间，需要进行5分钟以上的恢复缓冲期；7. 实验完毕后需要使用杀兔针快速将实验动物处决，然后进行解剖学研究。
五、实验结果1. 基础血压：将实验动物放置10-15分钟，并进行数据记录和稳定，获得其基础血压和心率。
样本量为5只实验动物，数据如下：|序号|1|2|3|4|5||---|---|---|---|---|---||基础血压（mmHg）|90.5|81.5|87.5|91.3|83.7||基础心率（次/min）|254|266|246|261|273|2. 夹闭颈动脉后，测量家兔动脉血压和心率。
家兔动脉血压的神经与体液调节实验报告
家兔动脉血压的神经与体液调节实验报告家兔动脉血压的神经与体液调节实验报告引言：动脉血压是维持机体正常生理功能的重要指标之一，它受到神经和体液调节的影响。
为了深入了解家兔动脉血压的调节机制，我们进行了一系列实验。
本报告将详细介绍实验设计、方法、结果和讨论。
实验设计：我们选取了10只健康的家兔作为实验对象，随机分为两组。
一组为神经调节组，通过切断交感神经和迷走神经来观察其对家兔动脉血压的影响；另一组为体液调节组，通过注射不同浓度的盐水来模拟不同的体液调节状态，观察其对家兔动脉血压的影响。
方法：1. 神经调节组：在麻醉状态下，我们进行了交感神经和迷走神经的切断手术。
手术后，我们记录了家兔动脉血压的变化，并与术前进行对照。
2. 体液调节组：我们分别注射了低浓度盐水和高浓度盐水，模拟低血容量和高血容量状态。
在注射后，我们记录了家兔动脉血压的变化，并与注射前进行对照。
结果：1. 神经调节组：切断交感神经后，家兔动脉血压明显下降；切断迷走神经后，家兔动脉血压明显升高。
这表明交感神经和迷走神经对动脉血压有相反的调节作用。
2. 体液调节组：注射低浓度盐水后，家兔动脉血压下降；注射高浓度盐水后，家兔动脉血压上升。
这说明体液调节对动脉血压具有重要的调节作用。
讨论：1. 神经调节机制：交感神经的切断导致家兔动脉血压下降，这是因为交感神经释放的去甲肾上腺素能促使血管收缩，增加血压。
而迷走神经的切断导致家兔动脉血压升高，这是因为迷走神经能抑制心率和收缩力，从而降低血压。
2. 体液调节机制：低血容量状态下，体液调节机制会使血管收缩，增加血压；高血容量状态下，体液调节机制会使血管扩张，降低血压。
结论：家兔动脉血压的调节机制主要涉及神经和体液两个方面。
神经调节中，交感神经和迷走神经具有相反的作用；体液调节中，低血容量状态下血管收缩，高血容量状态下血管扩张。
这些调节机制的平衡对于维持动脉血压的稳定至关重要。
结语：通过本次实验，我们深入了解了家兔动脉血压的神经和体液调节机制。
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家兔动脉血压的神经体液调节实验报告
(一)实验项目:家兔动脉血压的神经体液调节
(二)实验目的:
1、掌握神经体液因素及受体阻断或兴奋药物对家兔心血管活动的影响机制。
2、掌握动脉血压作为心血管功能活动的综合指标及其相对恒定的调节原理和重要意义。
3、掌握家兔实验的基本方法和技术(静脉麻醉、静脉输液、动脉插管、分离神经等)。
4、掌握压力生物信号采集与处理系统的使用。
(三)基本原理:
动脉血压是心血管功能活动的综合指标。
正常心血管的活动在神经、体液因素的调节下保持相对稳定，动脉血压相对恒定。
动脉血压的相对恒定对于保持各组织、器官正常的血液供应和物质代谢是极其重要的。
通过实验改变神经、体液因素或施加药物，观察动脉血压的变化，间接反映各因素对心血管功能活动的调节或影响。
实验仪器与试剂:BL-420生物信号采集与处理系统、血压换能器、刺激电极、哺乳类动物手术器械、注射器(5mL、1mL)等;3%戊巴比妥钠、0.3%肝素、1:10000盐酸肾上腺素、1:10000去甲肾上腺素、1:1000异丙肾上腺素、0.01%多巴胺、1%酚妥拉明、
0.001%乙酰胆碱、0.01%阿托品
1、夹闭颈总动脉血压升高，心跳加快。
这是由于颈动脉窦管壁的外膜下分布有丰富的感觉神经末梢，是动脉张力感受器。
这个感受器位于兔颈总动脉的远心端，颈内动脉与颈外动脉的分叉交界处。
夹闭颈动脉后，远心端的颈动脉窦张力感受器感受到血压下降，传出神经冲动的频率减慢。
信息沿窦神经上传至延髓孤束核心血管中枢。
使心迷走紧张减弱，心交感和心缩血管紧张加强，作用于心脏，使心率加快，心输出量增加，血管收缩，血管外周阻力增加。
从而血压恢复性升高。
若血压下降过大，交感缩血管紧张还会扩展到静脉系统，是静脉收缩，促进血液回心，使每博输出量增加。
2、静脉注射0.01%重洒石酸去甲肾上腺素:去甲肾上腺素与血管平滑肌上的α和β2受体结合，使血管收缩，管径变小，外周阻力增加，从而使平均动脉压升高。
此外，去甲肾上腺素还可以使心率增加，心收缩力变大，因此血压升高。
3、静脉注射0.005%盐酸异丙肾上腺素:异丙肾上腺素能与骨骼肌血管β2受体结合，骨骼肌血管(在全身血管中比例较大)持续舒张抵消了皮肤粘膜血管的收缩作用，因而出现后降压作用。
4、静脉注射0.01%盐酸肾上腺素:肾上腺素能与心肌β1受体结合激动心肌心肌收缩力增强，因此心率加快，传导加速，心排出量增多而导致收缩压升高。
肾上腺素能激动腹腔内脏血管α
1受体，使动腹腔内脏血管收缩，血压升高。
5、静脉注射1%酚妥拉明:α受体阻断剂，α受体的作用:α受体为传出神经系统的受体，根据其作用特性与分布不同分为两个亚型:α1、α2。
α1受体主要分布在血管平滑肌(如皮肤、粘膜血管，以及部分内脏血管)，激动时引起血管收缩;α1受体也分布于瞳孔开大肌，激动时瞳孔开大肌收缩，瞳孔扩大。
α2受体主要分布在去甲肾上腺素能神经的突触前膜上，受体激动时可使去甲肾上腺素释放减少，对其产生负反馈调节作用。
(四)实验主要设备和仪器、药品和用品
1、仪器设备:婴儿秤、兔手术台、哺乳动物手术器械一套，BL-420生物机能实验系统，动脉夹、压力换能器等;
2、试剂用品:20%氨基甲酸酯(5mL/kg)、1%去甲肾上腺素、1%肝素、生理盐水、1g/L异丙肾上腺素、1g/L酚妥拉明、5mL、10mL、20mL注射器各一支、三通管、插管、小烧杯等;
(五)实验的步骤与方法
1、动物手术:
(1)、麻醉、固定:家兔称重后，按5mL/kg从耳缘静脉缓慢注射20%氨基甲酸酯。
将家兔麻醉后，使其仰卧固定在兔手术台上。
(2)颈部手术:颈部备皮，沿颈前正中切开皮肤5~6cm，分离气管并做气管插管。
分离两侧的迷走神经，穿线备用。
手术完毕后，用温生理盐水纱布覆盖手术野。
分离左侧颈总动脉、右侧颈
外静脉，分别备线。
(3)插管肝素化后，行右侧颈外静脉插管，通过三通管接动脉血压描记检测装置，然后静脉注射1%全身肝素(按2mL/kg为标准)让家兔全身肝素化。
2、实验装置:
(1)准备检压系统:将动脉插管于压力换能器相连，通过三通管用1%肝素化充满动脉插管和压力换能器，排尽里面的气泡，然后关闭三通管备用。
(2)将记录动脉的压力换能器连接在BL-420生物机能实验系统的通道1上，描记动脉血压。
(3)打开计算机，启动BL-420生物机能实验系统，点击系统菜单，选择实验项目，调整相关参数。
3、实验观察与记录:
(1)记录正常曲线;
(2)夹闭右侧颈总动脉，观察曲线变化;
(3)静脉给药:
①按0.1mL/kg静脉注射0.01%重洒石酸去甲肾上腺素
②按0.1mL/kg静脉注射0.005%盐酸异丙肾上腺素
③按0.1mL/kg静脉注射0.01%盐酸肾上腺素
④按0.2mL/kg静脉注射1%酚妥拉明
⑤按0.1mL/kg静脉注射0.01%肾上腺素。