常用实验动物的麻醉
常用实验动物全身性麻醉药物的使用
常用实验动物全身性麻醉药物的使用实验动物全身性麻醉药物的使用在科研和医学领域具有重要意义。
全身性麻醉药物可以抑制动物神经系统,使其处于无痛觉、无意识状态,以便于进行实验操作或治疗。
本文将介绍全身性麻醉药物的分类、使用方法、注意事项及发展趋势。
全身性麻醉药物可根据作用机制分为吸入性麻醉药物和静脉麻醉药物两类。
吸入性麻醉药物通过动物呼吸系统进入体内,主要包括氟烷、甲氧氟烷等。
这类药物可以在动物体内迅速分布,起效快,但排出也较快,需要连续给药以维持麻醉状态。
静脉麻醉药物则通过静脉注射进入动物体内,如丙泊酚、硫喷妥钠等。
这类药物起效较慢,但维持时间较长,且对动物循环系统影响较小。
在使用全身性麻醉药物时,需根据实验需求和动物种类选择合适的药物。
吸入法适用于短期、小型实验,可以通过面罩或注射器给予。
静脉注射法则适用于大型、长期实验,需通过静脉穿刺或导管给予。
在用药过程中,需密切动物的呼吸、心率、体温等指标,以及药物使用量和时间。
使用全身性麻醉药物时需注意以下事项:要严格控制药物剂量,根据动物体重、体型等因素进行个性化给药。
要避免使用时间过长,以免动物出现耐药性或药物残留。
要动物的生命体征,一旦出现异常情况,应立即停止给药并采取相应救治措施。
应尽量选择不良反应小的全身性麻醉药物,以减少对动物的损害。
近年来,随着科技的不断进步,全身性麻醉药物的研究和开发也取得了很多进展。
新型麻醉药物的研发不仅可以提高麻醉效果,还可以降低不良反应发生率。
随着麻醉监控技术的发展,对麻醉药物的用量和麻醉深度的把握更加准确,从而提高了实验的准确性和安全性。
实验动物全身性麻醉药物的使用在科研和医学领域中具有重要作用。
在选择和使用全身性麻醉药物时,需遵循科学、规范的原则,动物的生理变化和药物的不良反应。
随着科技的不断进步,相信未来全身性麻醉药物的研发和麻醉监控技术将取得更加显著的成果,为科研和医学事业的发展做出更大的贡献。
动物实验中,麻醉剂的选择至关重要。
动物实验常见操作技术
动物实验常见操作技术动物实验是科学研究中常用的一种手段,通过对动物进行各种操作和处理,获得与人类相关的科学数据和知识。
以下是动物实验中常见的操作技术。
一、麻醉和镇痛技术动物实验中会应用麻醉药物使动物失去感觉和意识,以减少动物在实验过程中的痛苦和压力。
常用的麻醉技术包括静脉麻醉、吸入麻醉和局部麻醉。
镇痛技术用于减轻术后疼痛,常采用各种药物如阿片类和非甾体抗炎药等。
二、手术技术手术技术是动物实验中常见的一项操作技术,用于在动物体内插入仪器、移除组织样本、修复组织或器官的损伤等。
常见的手术技术包括卵巢切除术、肝脏切片术、心脏手术等。
三、体内采样技术体内采样技术是从动物体内获取生物样本的一种方法,用于分析动物的生理和生化指标。
常见的体内采样技术包括血液采样、尿液采样、肠道内容物采样等。
四、药物给药技术药物给药技术是将药物通过各种途径输入动物体内,以研究药物的药代动力学和药效学等。
常见的给药途径包括静脉注射、腹腔注射、皮下注射等。
五、环境控制技术环境控制技术用于控制实验动物的环境条件,以确保实验结果的准确性和可靠性。
常见的环境控制技术包括温度控制、湿度控制、光照控制等。
六、行为测定技术行为测定技术用于评估动物的行为特征和认知功能,常用于研究动物的学习记忆、情绪行为等。
常见的行为测定技术包括开放田间测试、旋转杆测定、挖洞测试等。
七、分子生物学技术分子生物学技术用于研究动物的基因表达、DNA/RNA的分离和测定等。
常用的分子生物学技术包括PCR技术、凝胶电泳技术、蛋白质电泳技术等。
八、影像学技术影像学技术用于研究动物的器官结构、功能和病理变化等。
常见的影像学技术包括X线摄影技术、CT扫描、MRI等。
九、细胞培养技术细胞培养技术用于研究动物的细胞生长、增殖和代谢等。
常用的细胞培养技术包括离心培养、悬浮培养、共培养等。
以上列举了动物实验中常见的操作技术,不同实验目的和研究领域需要选用不同的操作技术,以获得准确和可靠的实验结果。
实验动物麻醉方法及注意事项
实验动物麻醉方法及注意事项麻醉(anesthesia)的基本任务是消除实验过程中所至的疼痛和不适感觉,保障实验动物的安全,使动物在实验中服从操作,确保实验顺利进行。
一、常用的麻醉药(一)常用局部麻醉剂:普鲁卡因,此药毒性小,见效快,常用于局部浸润麻醉,用时配成0.5%~1%;利多卡因,此药见效快,组织穿透性好,常用1%~2%溶液作为大动物神经干阻滞麻醉,也可用0.25%~0.5%溶液作局部浸润麻醉。
(二)常用全身麻醉剂:1.乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法,各种动物都可应用。
其麻醉量和致死量相差大,所以其安全度大。
但由于乙醚局部刺激作用大,可刺激上呼吸道粘液分泌增加;通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动,并且容易引起窒息,在麻醉过程中要注意。
但总起来说乙醚麻醉的优点多,如麻醉深度易于掌握,比较安全,而且麻醉后恢复比较快。
其缺点是需要专人负责管理麻醉,在麻醉初期出现强烈的兴奋现象,对呼吸道又有较强的刺激作用,因此,需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品(基础麻醉),通常在麻醉前20-30分钟,皮下注射盐酸或硫酸吗啡(每公斤体重5~10mg)及阿托品(每公斤体重0.1mg)。
盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性,提高痛阈,还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。
阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用,可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞,或手术后发生吸入性肺炎。
进行手术或使用过程中,需要继续给予吸入乙醚,以维持麻醉状态。
慢性实验预备手术的过程中,仍用麻醉口罩给药,而在一般急性使用,麻醉后可以先进行气管切开术,通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。
在继续给药过程中,要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小(如发现角膜反射消失,瞳孔突然放大,应立即停止麻醉。
万一呼吸停止,必须立即施行人工呼吸。
待恢复自动呼吸后再进行操作。
2.苯巴比妥钠此药作用持久,应用方便,在普通麻醉用量情况下对于动物呼吸、血压和其它功能无多大影响。
实验动物的麻醉方法
实验动物的麻醉方法 The Standardization Office was revised on the afternoon of December 13, 2020实验动物麻醉方法麻醉(anesthesia)的基本任务是消除实验过程中所至的疼痛和不适感觉,保障实验动物的安全,使动物在实验中服从操作,确保实验顺利进行。
一、常用的麻醉药(一)常用局部麻醉剂:普鲁卡因,此药毒性小,见效快,常用于局部浸润麻醉,用时配成%~1%;利多卡因,此药见效快,组织穿透性好,常用1%~2%溶液作为大动物神经干阻滞麻醉,也可用%~%溶液作局部浸润麻醉。
(二)常用全身麻醉剂:1.乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法,各种动物都可应用。
其麻醉量和致死量相差大,所以其安全度大。
但由于乙醚局部刺激作用大,可刺激上呼吸道粘液分泌增加;通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动,并且容易引起窒息,在麻醉过程中要注意。
但总起来说乙醚麻醉的优点多,如麻醉深度易于掌握,比较安全,而且麻醉后恢复比较快。
其缺点是需要专人负责管理麻醉,在麻醉初期出现强烈的兴奋现象,对呼吸道又有较强的刺激作用,因此,需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品(基础麻醉),通常在麻醉前20-30分钟,皮下注射盐酸或硫酸吗啡(每公斤体重5~10mg)及阿托品(每公斤体重。
盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性,提高痛阈,还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。
阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用,可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞,或手术后发生吸入性肺炎。
进行手术或使用过程中,需要继续给予吸入乙醚,以维持麻醉状态。
慢性实验预备手术的过程中,仍用麻醉口罩给药,而在一般急性使用,麻醉后可以先进行气管切开术,通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。
在继续给药过程中,要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小(如发现角膜反射消失,瞳孔突然放大,应立即停止麻醉。
万一呼吸停止,必须立即施行人工呼吸。
(精选)动物麻醉剂及麻醉剂量
动物麻醉方法及给药剂量一、动物麻醉的目的1.清醒状态的动物虽然更加接近其生理状态,但是试验过程中的各种强刺激容易引起动物大脑皮质的抑制,使动物机体发生生理机能障碍影响到实验的结果。
甚至引起动物死亡或休克。
2.防止动物伤害实验操作者。
3.基于人道主义的考虑,麻醉是动物保护所必需采取的措施。
二、麻醉的类型和方法1.全身麻醉的方法:吸入麻醉:吸入麻醉是将挥发性麻醉剂或气体的麻醉剂经过动物的呼吸道进入体内产生麻醉的效果。
常见的麻醉剂有乙醚、安氟醚、三氟乙烷等,其中乙醚因麻醉深度容易掌握、安全、动物容易恢复等优点,使用最为广泛。
1)大鼠、小鼠、豚鼠的乙醚麻醉:将含有乙醚的棉球/纱布放在大烧杯中,将动物放入,封口。
动物先兴奋后抑制,自行倒下。
当动物角膜反应迟钝,肌肉紧张度降低时,即可取出动物。
如果动物逐渐恢复肌肉紧张(挣扎),可重复麻醉一次,待平静后即可开始试验。
如果试验时间较长,可将动物固定在其口鼻处放置含有乙醚的棉球或纱布,并在实验中注意动物的反应,适时追加乙醚的吸入量,以维持麻醉的深度和实践。
2)猫、兔的乙醚麻醉:将动物放进内装含有乙醚的棉球/纱布的麻醉瓶中,封口。
经过1~2min,从动物后腿依次出现麻痹现象,而后失去运动能力,表明动物进入麻醉状态。
4~6min后可以将动物麻醉,如观察到动物倾斜不能站立、跌倒时,说明动物已经深度麻醉,立即取出动物,这时动物肌肉松弛、四肢紧张度降低,角膜反射迟钝,皮肤痛觉消失,可进行试验。
3)犬的乙醚麻醉:首先将犬用绳子绑定,根据犬的大小选择适合的麻醉口罩,将纱布/棉花放到口罩内,加入乙醚。
一人固定犬的前后肢,另一人用膝盖顶住犬的胸颈处,一手捏住头颈(注意力量,防止窒息),将口罩套在犬嘴上。
开始乙醚用量可大一些,之后逐渐减少。
犬开始兴奋后出现挣扎、呼吸不规则现象,而后呼吸逐渐平稳,肌肉紧张度逐渐消失,角膜反射迟钝,对皮肤刺激无反应,此时可开始试验。
乙醚吸入如果出现呼吸窒息应暂停吸入乙醚,等呼吸恢复后在继续吸入。
实验动物的麻醉方法
实验动物的麻醉方法
实验动物的麻醉方法是根据实验的目的和动物物种的不同而有所区别。
以下是一些常用的麻醉方法:
1. 全身麻醉:使用全身麻醉药物,如氯化乙酰胺或异氟醚等,通过静脉注射或吸入的方式进行麻醉。
这种方法适用于大型动物或需要长时间麻醉的实验。
2. 局部麻醉:使用局部麻醉药物,如利多卡因或普鲁卡因等,通过局部注射或浸润的方式进行麻醉。
这种方法适用于小型动物或需要局部麻醉的实验。
3. 镇静剂:使用镇静剂,如地西泮或苯巴比妥等,通过口服或注射的方式进行麻醉。
这种方法适用于需要轻度麻醉或对镇静剂敏感的动物。
4. 吸入麻醉气体:使用麻醉气体,如笑气或七氟醚等,通过吸入的方式进行麻醉。
这种方法适用于小鼠或需要快速麻醉的实验。
需要注意的是,麻醉方法的选择应根据实验的需要和动物的安全性来确定,并且应严格按照相关伦理和法规要求进行操作。
另外,麻醉时应监测动物的生理指标,确保其在麻醉状态下保持稳定。
动物实验麻醉报告模板
动物实验麻醉报告模板引言动物实验是科学研究的重要手段之一,而麻醉是动物实验中保证实验动物的无痛苦和安全的关键环节。
本报告旨在总结和分析动物实验中使用的麻醉方法和效果,并提供进一步改进的建议。
方法实验动物本次实验使用了40只雌性小鼠(Mus musculus),体重在20克至25克之间。
麻醉方法本次实验采用了三种常见的麻醉方法,分别是:1. 乙醚麻醉:将乙醚溶于柔性纱布片上,放于密闭的麻醉箱中,让小鼠吸入乙醚进行麻醉。
2. 吸入式异氟醚麻醉:将异氟醚注入吸入器中,在特定领域内产生吸入式麻醉。
3. 静脉注射戊巴比妥麻醉:在小鼠的尾静脉注射戊巴比妥至麻醉状态。
结果与讨论乙醚麻醉乙醚麻醉方法对小鼠的麻醉效果较好,迅速进入麻醉状态,并保持相对较长时间的麻醉效果。
然而,需要注意的是乙醚在高浓度下可能引起小鼠呼吸及心率过慢等副作用,因此在实验过程中需要控制乙醚浓度并监测小鼠的生命体征。
吸入式异氟醚麻醉吸入式异氟醚麻醉方法也能够迅速进入麻醉状态,并且对呼吸和心率的影响较小。
而且,异氟醚具有良好的调控性,可以根据实验需要调整麻醉深度。
不过,需要注意的是异氟醚价格较高,且在吸入式麻醉过程中需配备专业的吸入器。
静脉注射戊巴比妥麻醉静脉注射戊巴比妥是一种在动物实验中常用的麻醉方法。
它可以快速、有效地诱导小鼠进入麻醉状态,且对呼吸和心率的影响相对较小。
然而,注意戊巴比妥属于镇痛作用较弱的麻醉药物,若在手术操作中需进一步控制小鼠的疼痛感,需要配合其他麻醉药物使用。
结论根据本次实验结果和讨论,我们可以得出以下结论:1. 乙醚、异氟醚和戊巴比妥均为常用的麻醉方法,具有不同的特点和适用场景。
2. 在选择麻醉方法时,需要根据实验的具体要求和预期效果来综合考虑。
3. 在实验过程中,需要严密监测小鼠的生命体征,确保麻醉效果良好且安全。
4. 麻醉方法的选择和使用应符合伦理规范和实验要求,确保动物实验的科学性和可靠性。
进一步改进的建议根据本次实验的结果和讨论,可以提出以下改进的建议:1. 在长时间实验中,应考虑使用具有较长麻醉效果的麻醉药物,以减少频繁麻醉的需求。
实验动物麻醉方法
啮齿类实验动物常用麻醉方法
一:吸入式麻醉法
(1)物品准备为:啮齿类动物麻醉盒、小烧杯、棉球、乙醚点滴瓶(2)操作流程:
1.将棉球浸泡乙醚,盛入小烧杯中;
2.小烧杯放入麻醉盒
3.把实验动物放入麻醉盒,麻醉过程需要
4-6分钟,当动物呈跌倒状态说明
麻醉成功。
当动物麻醉变浅时可将盛有乙醚的小棉球放在其口、鼻处补吸麻醉药,补充麻醉。
二:注射麻醉法
(常用麻醉剂为-戊巴比妥钠)
药物适用动物给药途径给药剂量mg/kg 给药量ml/kg 配置浓度2%
维持时间戊巴比妥钠小鼠腹腔45 2.3
2-4H
戊巴比妥钠小鼠静脉25 异戊巴比妥钠鼠类腹腔100 1.0
10%
4-6H
硫喷妥钠小鼠腹腔50 硫喷妥钠小鼠静脉25 氨基甲酸乙酯(乌拉坦)小鼠肌内1350 7.0 20% 2-4H 氯胺酮
小鼠
腹腔
100-200
0.1-0.2
10%
10-20min
腹腔注射给药时一般先给药总剂量的2/3,然后进行观察,如果已经达到所需的麻醉程度,可以不再注射余下的麻醉药。
动物实验常用操作技术
动物实验常用操作技术动物实验常用操作技术是指在动物实验过程中常用的一些操作技术,用于进行动物实验的各项实验操作。
这些操作技术的选择和使用对于实验结果的准确性和可靠性有着重要的影响。
在动物实验中,常用的操作技术主要包括动物麻醉、注射、剖检、培养和观察等。
一、动物麻醉技术动物麻醉技术是在动物实验中常用的首要操作技术之一、麻醉技术的运用可以使实验动物保持在一定的安静状态下,减轻动物实验过程中的痛苦和压力,同时还可以提高实验的可靠性和准确性。
常用的动物麻醉技术主要有局部麻醉、全身麻醉和麻醉复苏等技术。
局部麻醉常用的方法有局麻药物的表面涂擦、注射、浸渍和包扎等方式;全身麻醉常用的方法有麻醉药物的口服、皮下、肌肉注射、静脉注射等方式;麻醉复苏技术包括将动物由麻醉状态逐渐恢复到清醒状态,并监测复苏过程中的生理指标。
二、动物注射技术动物注射技术是在动物实验中常用的操作技术之一、注射技术的运用可以向实验动物的体内引入药物、疫苗或其他试剂,观察其对动物的作用和效果。
常用的动物注射技术主要有皮下注射、肌肉注射、静脉注射和腹腔注射等。
皮下注射一般是将药物或试剂注射到动物的皮下组织中;肌肉注射是将药物或试剂注射到动物的肌肉组织中;静脉注射是将药物或试剂注射到动物的血管中;腹腔注射是将药物或试剂注射到动物的腹腔腔隙中。
三、动物剖检技术动物剖检技术是在动物实验中常用的操作技术之一、剖检技术的运用可以观察动物内部器官的结构和病变,对实验结果的解释和分析起到关键的作用。
常用的动物剖检技术主要包括尸体解剖和活体解剖两种。
尸体解剖是在动物死亡后对尸体进行的解剖,以观察其内部器官的结构和异常情况;活体解剖是在动物存活的情况下进行的解剖,以观察其内部器官的运动和功能情况。
四、动物培养技术动物培养技术是在动物实验中常用的操作技术之一、培养技术的运用可以在体外条件下维持动物细胞和组织的生长和繁殖,为研究动物细胞和组织的生物学特性提供便利。
常用的动物培养技术主要有细胞培养和组织培养两种。
实验动物麻醉方法
实验动物麻醉方法实验动物麻醉方法一、动物实验中常用的麻醉剂1、挥发性麻醉剂这类麻药包括乙醚、氯仿等。
乙醚吸入麻醉适用于各种动物,其麻醉量和致死量差距大,所发安全度亦大,动物麻醉深度容易掌握,而且麻后苏醒较快。
其缺点是对局部刺激作用大,可引起上呼吸道粘膜液体分泌增多,再通过神经反射可影响呼吸、血压和心跳活动,并且容易引起窒息,故在乙醚吸入麻醚时必需有人照看,以防麻醉过深而出现上情况。
2、非挥发性麻醉剂这类麻醉剂种类较多,包括苯巴比妥钠、戊巴比妥钠、硫喷妥钠等巴比妥类的衍生物,氨基甲酸乙脂和水合氯醛。
这些麻醉剂使用方便,一次给药可维持较长的麻醉时间,麻醉过程较平衡,动物无明显挣扎现象。
但缺点是苏醒较慢。
3、中药麻醉剂动物实验时有时也用到象洋金花和氢溴酸东莨菪碱等中药麻醉剂,但由于其作用不够稳定,而且常需加佐剂麻醉效果才能理想,故在使用过程中不能得到普及,因而,多数实验室不选用这类麻醉剂进行麻醉二、实验动物的麻醉方法1、全身麻醉(1)吸入法(2)腹腔和静脉给药麻醉法2、局部麻醉(1)猫的局部麻醉一般应用0.5-1.0%盐酸普鲁卡因注射。
粘膜表面麻醉宜用2%盐酸可卡因。
(2)在眼球手术时,可于结膜囊滴入0.02%盐酸可卡因溶液,数秒钟即可出现麻醉。
(3)狗的局部麻醉用0.5-1%盐酸普鲁卡因注射。
眼、鼻、咽喉表面麻醉可用2%盐酸可卡因。
3、麻醉注意事项(1)静脉注射必须缓慢,同时观察肌肉紧张性、角膜反射和对皮肤夹捏的反应,当这些活动明显减弱或消失时,立即停止注射。
配制的药液浓度要适中,不可过高,以兔麻醉过急;但也不能过低,以减少注入溶液的体积。
(2)麻醉时需注意保温。
麻醉期间,动物的体温调节机能往往受到抑制,出现体温下降,可影响实验的准确性。
此时常需采取保温措施。
保温的方法有:实验桌装灯,电褥,台灯照射等。
无论用哪种方法加温都应根据动物的肛门体温而定。
常用实验动物正常体温:猫为38.6℃±1.0℃,兔为38.4℃±1.0℃,大鼠为39.3℃±0.5℃。
小鼠麻醉实验报告
一、实验背景在动物实验中,为了保证实验结果的准确性和动物福利,对实验动物进行麻醉是必不可少的。
小鼠作为常见的实验动物,其麻醉方法的选择对于实验的成功与否至关重要。
本实验旨在探讨不同麻醉方法对小鼠的麻醉效果,为后续实验提供参考。
二、实验材料与仪器1. 实验动物:健康昆明小鼠50只,体重20-25g,雌雄各半。
2. 麻醉药物:水合氯醛、戊巴比妥钠、异氟烷。
3. 仪器:小鼠麻醉机、体温计、注射器、针头、手术器械等。
三、实验方法1. 实验分组:将50只小鼠随机分为5组,每组10只,分别为A组(水合氯醛组)、B组(戊巴比妥钠组)、C组(异氟烷组)、D组(水合氯醛+戊巴比妥钠组)、E组(水合氯醛+异氟烷组)。
2. 麻醉方法:- A组:腹腔注射水合氯醛(剂量为0.3ml/100g体重)。
- B组:腹腔注射戊巴比妥钠(剂量为30mg/kg体重)。
- C组:采用异氟烷吸入麻醉,浓度为1.5%。
- D组:腹腔注射水合氯醛(剂量为0.3ml/100g体重)+腹腔注射戊巴比妥钠(剂量为30mg/kg体重)。
- E组:腹腔注射水合氯醛(剂量为0.3ml/100g体重)+吸入异氟烷,浓度为1.5%。
3. 麻醉效果观察:- 观察各组小鼠的麻醉诱导时间、麻醉维持时间、麻醉恢复时间。
- 观察各组小鼠的生理指标变化,如心率、呼吸频率、体温等。
- 观察各组小鼠的手术操作过程中是否出现挣扎、抽搐等反应。
四、实验结果1. 麻醉诱导时间:A组(10.2±1.5分钟)、B组(8.1±1.2分钟)、C组(5.6±1.0分钟)、D组(9.8±1.3分钟)、E组(7.2±1.1分钟)。
结果显示,异氟烷组的麻醉诱导时间最短,水合氯醛组次之,戊巴比妥钠组最长。
2. 麻醉维持时间:A组(60.5±8.2分钟)、B组(52.3±7.8分钟)、C组(45.1±6.7分钟)、D组(57.9±8.4分钟)、E组(49.8±7.5分钟)。
动物麻醉剂如何使用才符合伦理
动物麻醉剂如何使用才符合伦理实验动物常用的麻醉剂注射性麻醉剂注:IM:肌肉注射;IP:腹腔内注射;IV:静脉注射;SQ:皮下注射;PO注射用麻醉剂指的是经静脉、皮下、肌肉、腹腔等途径注入产生全麻作用的药物。
常用的注射用麻醉剂有戊巴比妥钠、硫喷妥钠、地西泮、氯胺酮等。
氯胺酮(Ketamine)氯胺酮广泛应用于所有动物物种的麻醉,还具有镇痛作用。
然而氯胺酮不适合单独作为手术麻醉药物,常与其它麻醉剂联合使用。
氯胺酮与α⁃2⁃肾上腺素能激动剂(甲苯噻嗪)联合使用,可增加镇静和镇痛作用。
与苯二氮平类药物(地西泮)联用可缓解肌肉僵硬症状。
使用阿托品可以预防使用氯胺酮导致的唾液分泌物增加和心律失常。
戊巴比妥钠(Pentobarbital Sodium)属于中效巴比妥类镇静催眠药(3-6小时),随用量的增加逐渐产生镇静、催眠和抗惊厥作用,大剂量使用时可产生麻醉作用。
对呼吸中枢有较强的抑制作用,安全范围较小,麻醉过量易导致动物死亡。
以戊巴比妥钠(50 mg / kg, IP)麻醉小鼠时,有足够的镇静作用,但是镇痛效果差。
而如果增加麻醉剂量(70 mg / kg, IP)虽可以提供足够的镇痛作用,但是与之相关的死亡率风险和血流动力学不稳定性增加。
因此,巴比妥类药物通常只适合终末阶段大剂量使用并且不准用于疼痛控制,除非和阿片类或非甾体类抗炎药共同使用。
水合氯醛(Chloral Hydrate)水合氯醛是一种催眠药、抗惊厥药,为白色或无色透明的结晶,有刺激性气味。
具有镇静、催眠和抗惊厥作用。
较大剂量有抗惊厥作用,大剂量可引起昏迷和麻醉。
麻醉过量会导致延髓呼吸中枢抑制,引起死亡。
水合氯醛对心血管系统影响大,可引起严重的心律失常。
目前认为水合氯醛适合于催眠而非麻醉,动物手术所需麻醉剂量的水合氯醛不能提供足够的镇痛作用,还会导致显著的呼吸抑制。
20%的水合氯醛具有很强的刺激性,可能会造成大鼠肠梗阻、腹膜炎以及胃溃疡等,因此不推荐存活动物实验使用水合氯醛腹腔麻醉。
实验动物的麻醉
巴比妥类
硫喷妥钠:超短效巴比妥类
戊巴比妥钠:短效巴比妥类,多用3%溶液。静脉一
次注射,犬用40mg/kg,兔、鼠用30mg/kg,腹腔注
射剂量增加20%,可维持持2小时有效全麻,在外科
麻醉中,对呼吸和循环系统都有严重抑制。用于兔、 鼠死亡率较高;用于大等较大动物,亦需要辅助呼 吸和其他复苏措施,且完全苏醒需要6~8小时。
2.5%(0.6-0.8ml/Kg)
现用现配,由于对腹膜刺激大,不宜腹腔注射。
动物麻醉流程图
动物的准备
麻醉人员及仪器的准备
麻醉方式的选择
麻醉药品的准备
术前药 麻醉诱导 麻醉维持
的使用是比较安全的,因为它很少因为过量而致动
物死亡。
(2)不良反应:动物诱导时不舒服,而且乙醚对粘膜的 刺激可导致咳嗽、大量的支气管和唾液腺分泌物, 偶尔还会导致喉痉挛。乙醚还能在动物的麻醉苏醒 期后诱发既有的慢性呼吸系统疾病急性发作,特别
是兔和啮齿类动物。乙醚是可燃的,和空气或氧气
构成爆炸性混合物。
麻醉效果的观察
③肌张力:亢进,麻醉过浅;全身肌肉松弛,麻 醉合适。
④皮肤夹捏反应:麻醉过程中可随时用止血钳或 有齿镊夹捏动物皮肤,若反应灵敏,则麻醉过浅; 若反应消失,则麻醉程度合适。
麻醉意外及处理
呼吸系统
呼吸频率的变化 潮气量的变化 SpO2
心血管系统
血压 心率 心律
麻醉注意事项
麻醉前用药
麻醉前用药是指在手术前30分钟以内适当使用抗
胆碱类药物(如阿托品)及镇静镇痛药物(如安定、 鲁米那、度冷丁等),可以减少呼吸道的分泌物和
防止呕吐,使动物安静以保证麻醉诱导的平稳和
实验动物的麻醉方法知识
实验动物的麻醉方法知识 This model paper was revised by the Standardization Office on December 10, 2020实验动物的麻醉方法麻醉(anesthesia)的基本任务是消除实验过程中所致的疼痛和不适感觉,保障实验动物的安全,使动物在实验中服从操作,确保实验顺利进行。
一、常用的麻醉药(一)常用局部麻醉剂:普鲁卡因,此药毒性小,见效快,常用于局部浸润麻醉,用时配成%~1%;利多卡因,此药见效快,组织穿透性好,常用1%~2%溶液作为大动物神经干阻滞麻醉,也可用%~%溶液作局部浸润麻醉。
(二)常用全身麻醉剂:1. 乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法,各种动物都可应用。
其麻醉量和致死量相差大,所以其安全度大。
但由于乙醚局部刺激作用大,可刺激上呼吸道粘液分泌增加;通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动,并且容易引起窒息,在麻醉过程中要注意。
但总起来说乙醚麻醉的优点多,如麻醉深度易于掌握,比较安全,而且麻醉后恢复比较快。
其缺点是需要专人负责管理麻醉,在麻醉初期出现强烈的兴奋现象,对呼吸道又有较强的刺激作用。
因此,需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品(基础麻醉),通常在麻醉前20-30分钟,皮下注射盐酸或硫酸吗啡(每公斤体重1~2mg)及阿托品(每公斤体重)。
盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性,提高痛阈,还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。
阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用,可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞,或手术后发生吸入性肺炎。
进行手术或使用过程中,需要继续给予吸入乙醚,以维持麻醉状态。
慢性实验预备手术的过程中,仍用麻醉口罩给药,而在一般急性使用,麻醉后可以先进行气管切开术,通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。
在继续给药过程中,要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小(如发现角膜反射消失,瞳孔突然放大,应立即停止麻醉。
并施行必要的人工呼吸。
动物实验麻醉方法
动物实验麻醉方法
动物实验对于推动科学研究和医学进步起着至关重要的作用啊!而在动物实验中,麻醉方法可是非常关键的一环呢!就好像我们人要做手术得先麻醉一样,动物们也需要合适的麻醉来减少它们的痛苦呀。
你知道吗,常用的吸入麻醉就像是给动物罩上了一个神奇的“睡眠罩”!让它们在不知不觉中就进入了麻醉状态。
这种方法快速生效,而且还比较容易控制麻醉的深度呢。
还有注射麻醉,就像是给动物打了一针“魔法药水”,能让它们迅速安静下来。
就拿戊巴比妥钠来说吧,它可是个厉害的角色呢!通过静脉注射,能让动物很快进入麻醉状态,就好像它们一下子进入了一个宁静的梦乡。
但这可不能随便用哦,得掌握好剂量,不然可就麻烦啦!这不就跟我们人吃药一样嘛,多了少了都不行。
还有啊,氯胺酮也是常用的麻醉剂呢。
它能让动物产生一种奇特的“恍惚感”,仿佛它们置身于一个虚幻的世界。
这多神奇呀!但用它的时候也要小心谨慎,要密切观察动物的反应呢。
动物实验的麻醉方法选择可不能马虎呀!这就好比是给动物建一个舒适的“小窝”,得让它们安心地在里面度过麻醉的时光。
要是选不好,那动物得多遭罪呀!我们可不能这么残忍对不对?我们要尽可能地减少它们的痛苦,让它们也能感受到我们的关爱和尊重呢。
所以呀,在进行动物实验时,一定要认真选择合适的麻醉方法,就像我们精心挑选礼物送给重要的人一样。
要考虑到动物的种类、体重、健康状况等等好多因素呢。
只有这样,才能让动物们在实验中既安全又舒适,为我们的科学研究做出更大的贡献呀!总之,动物实验麻醉方法真的太重要啦,我们一定要重视起来呀!。
动物实验的基本技术操作方法
动物实验的基本技术操作方法动物实验是一种科学研究的重要手段,也是科学发展和医学进步的必要步骤之一、在进行动物实验时,研究人员需要掌握一系列基本的技术操作方法。
下面将介绍几种常见的动物实验技术操作方法。
1.动物麻醉操作:动物麻醉是进行动物实验的前提条件,可以减少动物的痛苦和压力,保证实验结果的可靠性。
常用的麻醉方法包括静脉麻醉、吸入麻醉和局部麻醉。
研究人员需要掌握药物的剂量、给药途径和监测动物麻醉深度的方法。
2.动物手术技术:在进行一些复杂的实验时,需要进行动物手术操作。
手术技术操作包括皮肤消毒、手术切口、血管或器官的外露和缝合等。
研究人员需要掌握无菌操作的技巧和手术操作的规范,以确保手术的成功和动物的生存率。
3.器械使用和数据记录:在动物实验中,研究人员需要掌握各种生物学实验仪器的使用方法,如离心机、显微镜、血液分析仪等。
同时,需要准确记录实验过程中的数据,包括动物身体指标、实验参数和操作步骤等。
4.体内注射技术:动物实验中常用的一项技术是体内注射,包括静脉注射、皮下注射和腹腔注射等。
研究人员需要掌握注射针头的选择、皮肤局部麻醉的方法和注射位置的确定等。
5.血液采集技术:在一些实验中需要进行动物的血液采集,以获取血液样本进行化验或分析。
血液采集技术包括尾脉、静脉和心脏穿刺等。
研究人员需要掌握相应的采血器具的使用方法,以及合理的采血量和采血速度。
6.器官取材和组织处理技术:在一些器官相关的实验中,需要对动物进行器官取材和组织处理。
器官取材技术包括猝死动物器官取材和活体器官取材。
组织处理技术包括固定处理、包埋和切片等。
研究人员需要掌握无菌操作技术和组织处理的标准流程,以获得有效的实验结果。
7.动物分组和饲养技术:在进行动物实验前,需要对动物进行分组和饲养。
分组技术包括随机分组和对照组的设计等。
饲养技术包括提供适宜的饲料和水源、维持良好的生活环境等。
研究人员需要了解动物的生理特点和各种实验动物的饲养要求,以保证动物的健康状态和实验的可靠性。
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四、做好麻醉后的动物监护
为了防止麻醉后的动物(主要是猪、犬等大动物)因呼吸道阻塞而窒息死亡,最好在麻醉后,实验前进行气管插管,以保持其呼吸道通畅。在需要动物长时间处于麻醉状态的实验中,追加麻醉药物要严格控制剂量(一般不超过麻醉剂量的1/3),因为有了基础麻醉,麻醉药物稍微过量,便可超过动物的耐受域值,导致麻醉过深。为了预防动物的麻醉过深,实验室应备有常用的抢救药物,如尼可刹米、肾上腺素等,以及呼吸机、心电监护仪等设备。
二、合理选择麻醉途径
1、简单易行
小鼠、大鼠、豚鼠等动物体型小,易于保定,腹腔注射容易,且起效较快。兔耳缘静脉明显,且温顺,不需保定即可进行静脉注射乌拉坦。猫、猴、猪可肌肉注射氯胺酮或安定,待其不具有反抗力时,再视麻醉程度和实验需要,对其进行静脉麻醉。犬一般通过后肢的小隐静脉注射或前肢的胫前静脉注射。猪一般通过耳缘静脉注射或前腔静脉留置导管注射。
(5)根据不同麻醉途径选择麻醉药物
戊巴比妥钠、盐酸氯胺酮均通过静脉注射,速眠新通过肌肉注射,而乙醚作为吸入性麻醉剂,必须在密闭容器中,通过吸入方式麻醉。实验者应根据实验动物的特点和动物实验的需求,选择合理的麻醉途径后,再根据麻醉途径选择相应的麻醉药物。
(6)复合麻醉的药物选择
复合麻醉可以减少每种药物的剂量和副作用,避免单纯使用一种麻醉药物时麻醉过深或长时间大量使用对机体可能带来的不利因素。在保护实验动物的同时,更好地达到实验预期的目的。根据不同实验动物的生理特点,对不同药物的敏感性以及不同的麻醉途径等,以戊巴比妥钠、盐酸氯胺酮、速眠新、安定等相互配伍,经比较发现,以肌松型的速眠新、安定和镇痛性麻醉剂氯胺酮相配合,可以避免动物的中枢抑制,从而大大减少动物因麻醉过深、呼吸抑制导致的死亡。另外,抗胆碱药阿托品作为麻醉辅助药,可解除麻醉药物导致的平滑肌痉挛,抑制腺体分泌等症状,用于复合麻醉中,能更好地预防麻醉过深的发生。
2、 动脉快速注射高渗葡萄糖液
一般常采用经颈动脉逆血流加压、快速、冲击式的注入40%葡萄糖溶液。注射量根据动物而定,如狗可按2~3ml/kg体重计算。这样可刺激动物血管内感受器,反射性地引起血压呼吸的改善。
3、 注射呼吸中枢兴奋药
可从静脉注射山梗莱碱或尼可刹米。给药剂量和药理作用如下:
犬:静脉注射 30mg/kg体重
乌拉坦:
兔:静脉注射 1000mg/kg体重
六、麻醉注意事项
1、配制的药物浓度要适中,便于计算给药。如:3%或6%戊巴比妥钠做犬的麻醉静脉给 药,每公斤为1ml或0.5ml。静脉注射2/3剂量后,必须缓慢推注,同时观察肌肉紧张性、睫毛反射和皮肤针刺的反应。当这些活动明显减弱或消失时,立即停止注射。
尽量选择安全范围大而且麻醉效果好的药物。在用药前要检查药物的生产日期和使用期限,即使未超出使用期限,如发现药物溶液有沉淀浑浊现象,也应弃用。对于新引进的药物,要先根据说明书推荐的使用方法和剂量,以不同的实验动物测试其麻醉效果,可行后,再应用于正式的动物实验。
3、根据不同实验动物选择麻醉药物
2、尽量减少实验动物的痛苦
上述对犬、猪和猫的麻醉方法,除了对操作者简单易行,对实验动物也尽可能地减少了痛苦。另外,如果实验需动物长时间保持麻醉状态,为了避免反复静脉穿刺,可以用留置套管针进行静脉穿刺,其后连接医用三通接头。这不仅对于给动物补加麻醉药物和输液都非常方便,也减少了动物的痛苦。
3、尽快发挥药物的麻醉效果
(3)即使同一种甚至是同一只实验动物,其生理状态不同,对麻醉药物的选择也不尽相同。如 氯胺酮,可通过胎盘传播给胎儿,因此不宜用于对怀孕动物的麻醉;乙醚易引起呼吸道分泌物增多,不宜用于哮喘等呼吸疾病的动物模型的麻醉。
(4)根据不同动物实验选择麻醉药物
如动物实验需要动物保持较长时间麻醉状态,麻醉程度较深,可选择戊巴比妥钠;如实验时间较短,可选择盐酸氯胺酮及速眠新。而更多情况下,使用不同药物的复合麻醉,可更好地达到不同动物实验所需的麻醉效果。
常用实验动物的麻醉
实验者在进行动物实验过程中,常遇到麻醉过深或过浅的问题。麻醉过浅,一方面使实验动物遭受过多痛苦,另一方面影响实验进程和部分实验结果。而麻醉过深,轻者需抢救影响实验进程,重者可导致实验死亡,对实验的损失更大,把握好麻醉的合适尺度是对实验动物工作人员的基本要求。由于不同动物对同一麻醉药物的敏感性、同一动物对不同的麻醉药物的敏感性存在差异;不同的麻醉药物有不同的使用途径,同一药物在以不同的途径对动物进行麻醉时效果也不同,所以,真正掌握好对每一种实验动物的麻醉并非易事。
3、 动物在麻醉前应禁食、禁水,以防止误吸。
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4、 注射强心剂
可以静脉注射0.1%肾上腺素1ml,必要时直接作心脏内注射。肾上腺素具有增强心肌收缩力,使心肌收缩幅度增大与加速房室传导速度、扩张冠状动脉、增强心肌供血、供氧及改善心肌代谢、刺激高位及低位心脏起搏点等作用。
当动物注射肾上腺素后,如心脏已搏动但极为无力时,可从静பைடு நூலகம்或心腔内注射1%氯化钙5ml。钙离子可兴奋心肌紧张力,而使心肌收缩加强,血压上升。
5、 动脉快速输血、输液
在动物股动脉插一软塑料套管,连接加压输液装置快速从股动脉输血和输液。
6、 人工呼吸
可采用双手压迫动物胸廓进行人工呼吸。如有人工呼吸机,可行气管插管或气管切开后,连接人工呼吸机进行人工呼吸。一旦动物自主呼吸恢复,即可停止人工呼吸。
常用麻醉剂的用法及剂量
戊巴比妥钠:
2)从麻醉途径上可分为:吸入性麻醉剂,主要为醚类或烷类麻醉剂;静脉注射麻醉剂,如戊巴比妥钠、氯胺酮等;肌肉注射麻醉剂,如速眠新、安定等。
3)从作用机制上可分为:中枢抑制性麻醉剂,如乙醚;镇静催眠药,如巴比妥类麻醉剂;镇痛麻醉剂,如氯胺酮;复方制动剂,如速眠新等。
合理选择麻醉药物
2、以安全性、有效性作为选择麻醉药物的中心原则
一、合理选择麻醉药物
1、常用的麻醉药物及其作用特性
大多数的动物实验过程中,为了使动物免受痛苦,同时保护实验者,通常需要对实验动物进行全身麻醉,因此所用的药物也多选用全身麻醉药。
常用的全身麻醉药
1)从物理性质上可分为:挥发性麻醉剂,如:乙醚、氟烷、甲氧氟烷等;非挥发性麻醉剂,如:巴比妥类、氯胺酮、水合氯醛、安定和一些新型的复合麻醉剂如速眠新等。
五、实验动物的急救措施
当实验进行中因麻醉过量、大失血、过强的创伤、窒息等各种原因,而使动物血压急剧下降甚至测不到。睫毛反射消失,呼吸极慢而无规则甚至呼吸停止等临床死亡症状时,应立即进行急救。急救的方法可根据动物情况而定。对狗、兔、猫常用的急救措施有下面几种。
1、 针刺
针刺人中穴对挽救家兔效果较好。对狗用每分钟几百次频率的脉冲电刺激膈神经效果较好。
一般来说,各种途径给药后,其产生药效所需的时间为:静脉注射最快,腹腔注射次之,肌肉注射最慢。
三、掌握好麻醉深度
这是麻醉的关键环节。麻醉者要根据动物体重、药物浓度仔细计算好所需的麻醉药物剂量,为了方便计算,通常将戊巴比妥钠配成3%或6%的溶液,按照通常的剂量30mg/kg可换算成1ml/kg或0.5ml/kg体重。盐酸氯胺酮按1:5稀释成10mg/ml,使用剂量为1ml/kg体重。在静脉注射麻醉时,不可将药物一次性快速推入,而是间歇性地缓慢推进,在注射到预定剂量2/3后,更要减慢推进速度,一边注射,一边观察动物的睫毛反射、肌松程度及呼吸,达到实验所需麻醉状态时,立即停止药物注射。
2、麻醉时密切注意呼吸、血压、脉愽等变化,同时需注意保温。麻醉期间,动物的体温调节机能往往受到抑制,出现体温下降,可影响实验的准确性。此时常需采取保暖措施。保温的方法有:实验桌内装灯、电褥、台灯照射等,无论用哪种方法加温都应根据动物的肛门体温而定。常用实验动物正常体温:猫为38.6℃±1.0℃;兔为38.4℃±1.0℃;大鼠为39.3℃±0.5℃ 。
(1)不同实验动物对同一麻醉药物的敏感性存在差异,就速眠新(846)而言,若使动物达到麻醉状态,猴只需0.1~0.15ml/kg体重的剂量;对犬、兔、猫需0.2~0.3ml/kg体重;而对小鼠和大鼠,则需要0.3~0.8ml/kg体重。实验中应选用对实验动物较为敏感的、相对安全的麻醉药物。
(2)同一实验动物对不同麻醉药物的敏感性存在差异。如:相对于其它实验动物,小鼠和大鼠对速眠新的敏感性较低,但对其它麻醉药物如盐酸氯胺酮、戊巴比妥钠等,其敏感程度与其它动物相比基本相同。
尼可刹米:每条动物一次注射25%1ml。此药可直接兴奋延髓呼吸中枢,使呼吸加速加深;对血管运动中枢的兴奋作用较弱。在动物抑制情况下作用更明显。
山梗莱碱:每条动物一次可注入1%0.5ml。此药可刺激颈动脉体的化学感受器,反射性地兴奋呼吸中枢;同时此药对呼吸中枢还有轻微的直接兴奋作用。作为呼吸兴奋药,它比其他药作用迅速而显著。呼吸可迅速加深加快,血压亦同时升高。