花青苷(花色苷)种类、提取及检测
果汁中的花青苷化学分析方法
果汁中的花青苷化学分析方法花青苷是一类在自然界中广泛存在的天然色素，具有强大的抗氧化性能和保健作用。
果汁作为一种流行的饮品，其中含有丰富的花青苷。
因此，对果汁中花青苷的化学分析方法的研究，不仅有助于评估果汁的品质，还有助于揭示其保健功效的科学机制。
目前，对果汁中花青苷的化学分析方法主要包括色谱法、质谱法和光谱法等。
下面将分别对这些方法进行介绍。
色谱法是一种常用的分离分析方法，包括高效液相色谱（HPLC）和气相色谱（GC）。
其中，HPLC是目前分析果汁中花青苷最常用的方法之一、该方法通过将果汁中的花青苷化合物与色谱柱固定相进行相互作用，实现对花青苷的有效分离和测定。
HPLC色谱柱的选择，如C18柱、C8柱等，以及不同的流动相组成和温度条件都会影响花青苷的分离效果和检测灵敏度。
此外，还可以结合质谱检测器对花青苷进行鉴定和定量。
质谱法是一种分析样品化学组成和结构的强大工具，常用的质谱方法包括质谱仪（MS）和飞行时间质谱仪（TOF-MS）。
质谱法可以通过对花青苷分子的分子量、碎片离子和碎片离子比例进行分析，来鉴定和定量花青苷。
此外，质谱法还可以结合色谱法进行联用，实现对花青苷的完整分析。
光谱法是通过测量化合物在特定波长下的吸光度来定量分析的方法。
对于花青苷的分析，最常使用的光谱法是紫外-可见分光光度法（UV-Vis）。
通过设置特定波长下的吸光度峰，可以对花青苷进行定量分析。
此外，近红外光谱（NIR）和荧光光谱等光谱技术也可以用于花青苷的鉴定和定量。
总的来说，这些化学分析方法在果汁中花青苷的检测和定量方面具有各自的优势和适用范围。
选择合适的方法需要考虑样品复杂性、分析要求和设备条件等因素。
未来，可以通过方法的改进和优化，进一步提高对果汁中花青苷的分析灵敏度和准确性，以满足不同需求的科学研究和工业应用。
花青苷 显色 玉米 测试方法
花青苷显色玉米测试方法全文共四篇示例，供读者参考第一篇示例：花青苷是一种具有抗氧化作用的植物色素，常见于紫色和蓝色的水果和蔬菜中，具有显色的作用。
在玉米中也含有一定量的花青苷，可以使玉米变得更加鲜艳和吸引人。
设计一种能够测试玉米中花青苷含量的方法非常重要。
下面我们就来探讨一种关于花青苷显色玉米测试方法的详细介绍。
一、概述：花青苷是一种存在于植物中的天然色素，具有抗氧化和抗炎作用。
在玉米中，花青苷的含量可以通过显色反应来测试。
显色是一种将特定化学物质与待测样品发生反应后产生可见颜色变化的方法，通过观察颜色的深浅可以间接反映出待测样品中特定成分的含量。
二、材料和仪器：1. 玉米样品2. 乙醇3. 酸性乙醇4. 碳酸氢钠5. 玻璃棒6. 离心管7. 紫外可见分光光度计三、实验步骤：1.样品制备：取少量玉米样品，研磨成粉末状。
2.提取花青苷：将玉米粉末加入乙醇中，用玻璃棒搅拌均匀，静置一段时间。
然后使用离心管离心，将上清液收集。
3.显色反应：将提取得到的上清液加入碳酸氢钠溶液中，观察是否产生颜色变化。
花青苷与碱性溶液反应后会呈现出紫色或蓝色。
4.测定光密度：将反应产物用紫外可见分光光度计检测吸光度，根据吸光度值可以计算出样品中花青苷的含量。
四、结果分析：通过以上实验步骤，我们可以得到玉米样品中花青苷的含量。
根据吸光度值的不同可以判断出不同样品中花青苷的含量，从而为玉米的质量控制和改良提供参考依据。
五、注意事项：1. 实验过程中要注意避免样品污染和交叉污染。
2. 操作过程中要注意个人安全，避免酒精泼溅和气味吸入。
3. 实验室仪器要保持干净整洁，避免干扰测试结果。
六、结论：通过以上测试方法，我们可以准确测试玉米中花青苷的含量，为玉米的优化种植和后期加工提供科学依据。
希望本文能够对相关领域的科研工作者和生产人员有所帮助。
【2000字】。
第二篇示例：花青苷是一种存在于许多植物中的紫色素，特别是在玉米中含量较高。
花青苷(花色苷)种类、提取及检测
花青苷种类、提取及检测一.种类花色素均具有类黄酮的基本结构，由两个苯环和一个含氧杂环组成的(C6-C3-C6)C15化合物(如图)，根据B环羟基化和甲基化位置和数目的不同而将花色素主要分为六类:天竺葵色素((Pelargonidin)、矢车菊色素((cyanidin)、芍药色素(peonidin)(3＇-甲基矢车菊色素)、飞燕草色素(delphinidin)、矮牵牛色素(petunidin)(3＇,5＇-甲基飞燕草色素)和锦葵色素(malvidin)( 3＇,5＇-二甲基飞燕草色素)。
不同植物中花色素发生糖苷化的位点(C3、C5和C7位等)和数目的差异，及酞化程度的不同使植物中存在着不同的花色素普，其结构复杂，但都以这六种花色素为基本结构(Grotewold，2006)。
二.提取国内外学者对花青苷的提取做了大量研究，提取目的及目标花青苷不同，提取方法略有差异。
花青苷易溶于水、甲醇、乙醇等极性溶液，花青苷的稳定性受酶、温度、氧气、光、pH值、金属离子等理化性质的影响，在中性和碱性条件下不稳定。
提取过程常采用酸性溶液，酸能够破坏植物细胞膜并溶解水溶性色素，甲醇溶液提取效率高于乙醇及水溶液。
花青苷一般用于食品着色，考虑到甲醇的不安全因素，一般选用体积分数为1%的乙醇溶液。
采用盐酸酸化可保持提取液pH值较低，阻止无酰基花青苷的降解。
随着盐酸被浓缩，pH 值升高，导致花青苷的降解。
为获得更接近于天然状态的花青苷，采用弱有机酸或中性溶剂做初步提取，弱有机酸多用甲酸、乙酸、丙酸、柠檬酸和酒石酸，中性溶剂一般采用丙酮作提取剂。
粗提后的花青苷提取液浓度很低，浓缩时一般不超过40℃，时间也不宜太长。
1.2.花青苷含量的测定：用0.1%的盐酸甲醇浸提叶片2 h后,测657nm、530nm处的吸光度。
3.4.5.6.7.8.9.三.检测紫外—可见光谱是花青苷结构鉴定的经典方法，其鉴定方法为：①花青苷有2个最大吸收波长,500~540nm附近及27nm附近，据此可判定是否为花青苷色素；②若B环有邻位酚羟基，则向体积分数0.01%盐酸-甲醇溶液中滴加3~5 滴AlCl3，甲醇或乙醇溶液时会出现蓝移；③糖苷位置可据花青苷吸光度比值A440/A max判定；④在波长300~330nm间有吸收峰，表明存在酰基；⑤若在波长440n处有肩峰，则5号位羟基没被取代；⑥若在紫外光下有荧光，表明在5号位有取代基。
液相色谱使用方法(花色苷)
一、摘要⑴、葡萄皮色素来源较为丰富。
葡萄果皮花色苷不但含量高, 而且种类多,葡萄花色苷作为一种天然食用色素, 安全、无毒，且具有降低肝脏及血清中脂肪含量、抗氧化、抗肿瘤、延迟血小板凝集等多种生理和药用活性功能对葡萄皮花色苷的提取技术及稳定性的研究具有重要意义⑵、目前为止花色苷的定量分析方法主要有直接比色法、pH示差法、亚硫酸脱色法、色谱法，本次实训我们采用液相色谱法对花色苷进行提取。
⑶、用于液相色谱法提取葡萄酒中的花色苷前要进行样品的预处理，再测定其中的花色苷来判断葡萄酒或者葡萄皮中的花色苷，标定是否合格以及是否符合国家标准。
二、关键词⑴花色苷⑵液相色谱⑶分光光度计三、正文引言花色苷的提取方法有溶剂浸提法、微波辅助萃取法、酶解法超高压辅助提取法、本次我们是利用微波萃取，微波是一种频率300～300 000 MHz的电磁波。
在微波场中吸收微波能力的差异使得基体物质的某些区域或萃取体系中的某些组分被选择性加热，从而使得被萃取物质从基体或体系中分离，进入到介电常数较小、微波吸收能力相对较弱的萃取剂中。
由于传统提取过程中能量累积和渗透过程以无规则的方式发生，萃取的选择性较差，只能通过改变溶剂性质或延长溶剂萃取时间来获得，同时又受限于溶解能力和扩散系数，效果不够理想；微波因其能对萃取体系中不同组分进行选择加热，因而能使目标组分直接从基体分离萃取。
微波萃取受溶剂亲和力的限制较小，可供选择的溶剂较多。
另外，微波加热则利用分子极化或离子导电效应直接对物质进行加热，避免了传统加热过程因热传导、热辐射造成的热量损失，加热效率高、升温快速均匀，缩短了萃取时间。
具有设备简单、适用范围广、重现性好、萃取效率高、萃取时间短、能耗低、污染轻等特点。
用液相色谱法来检测葡萄酒及葡萄皮中的花色苷，用等度及梯度检测花色苷的存在来判断其营养成分。
⑴、材料及方法①仪器及试剂材料：葡萄皮仪器：超声波提取器、紫外-可见分光光度计、安捷伦-高效液相色谱仪试剂：甲醇、甲酸、水②实验方法葡萄皮花色苷提取液的制备干葡萄皮→粉碎→加入提取液→超声波辅助提取→花色苷提取液称取 1g 粉碎过的干葡萄皮，按 1:40（g/mL）的料液比加入酸性乙醇提取液，用超声波清洗器辅助提取。
葡萄皮花色苷的提取及稳定性研究（一）
葡萄皮花色苷的提取及稳定性研究（一）论文关键词：葡萄皮花色苷提取稳定性研究论文摘要：葡萄皮花色苷是一种天然色素，具有溶解性好、色彩鲜艳、易与食品结合上色等特点，是替代合成色素的一类重要食品添加剂。
本实验利用超声波辅助酸性乙醇溶剂法对葡萄皮花色苷的提取进行了研究，获得葡萄皮花色苷提取的最优工艺，并研究了花色苷对外界环境的稳定性。
实验结果表明，葡萄皮中花色苷的最适提取条件为：提取温度60℃，提取液的乙醇浓度80%，提取液 pH 0.5。
提取液的pH对花色苷提取率有显著性影响。
稳定性实验结果表明，低温条件下的花色苷较为稳定，随着温度的升高葡萄皮花色苷降解速度加快，稳定性逐渐下降；避光保存时花色苷稳定性最好，当葡萄皮花色苷溶液处于光照条件下，花色苷降解速率加快；蔗糖、防腐剂、亚硫酸钠对葡萄皮花色苷的稳定性无明显影响；H2O2对葡萄皮花色苷的稳定性有较大影响。
Keywords: grape skin; anthocyanins; extraction; stability test Abstract ：Anthocyanins are natural technicolored pigments and are bright-coloured， which can dissolve in water and combine with food easily. They are important food additives instead of artificial colour.The anthocyanins were extracted from grape skin by ultrasonic wave and the stability of anthocyanins from grape skins were studied. The results showed the optimal temperature for extraction was 60℃， the concentration of ethanol was 80% and the pH was 0.5. The pH ofextraction had significantly influence on the ratio of extraction. The stability test showed that anthocyanins from grape skins with low temperature were stable and the rate of degradation was rapid when temperature was high. Light affected the stability of anthocyanins from grape skins and it was stable when anthocyanins were out of light. Glucose， aseptic， Na2SO3 had little influence on the stability of anthocyanins from grape skins;while H2O2 had great influence on the stability of anthocyanins from grape skins.1 绪论1.1 花色苷的概述花色苷是自然界中最庞大的一类水溶性色素，日常生活中人们食用的被子植物和开花植物中，至少有27个科，73个属和很多个种的植物中含有花色苷类物质[1]。
实验四 葡萄果实中花色苷提取与测定
实验四葡萄果实中花色苷提取与测定一、实验目的1、了解并掌握葡萄果皮中花色苷提取的原理和操作；2、掌握葡萄果皮重花色苷含量的测定方法和步骤。
二、实验原理花色苷是红色葡萄果实中一类非常重要的呈色物质，并且多数情况下主要存在于果皮当中，只有极少数染色品种的果肉中存在花色苷。
花色苷主要有花色素（包括花翠素、花青素、甲基花青素、甲基花翠素及二甲花翠素）经过羟基化后以单体糖苷的形式存在。
三、实验材料红色葡萄果实、吸水纸、研钵、研杵、液氮、分光光度计等四、主要项目和方法1、果皮花色苷提取把每个样本（20粒）的葡萄果皮取下，然后用蒸馏水冲洗果皮，除去果皮粘连的部分果肉与糖分等并用吸水纸吸干，进行称重（M），然后再液氮中将果皮研磨成粉末，准确称取3.0000g粉末放入50ml离心管中，加入30ml酸化甲醇溶液（1mol/L HCl/MOH/水，1/80/19，v/v/v），在100%功率条件下超声辅助提取30min，温度控制在25摄氏度，然后将其只置于低温离心机中离心（8000r/min）15min，收集上清液。
向残渣中继续加入30ml酸化甲醇溶液，在此按照上述步骤进行提取，重复4次，合并所有上清液（120ml）于细口瓶中，-20摄氏度避光保存。
2、花色苷含量测定和计算采用pH示差法，提取液分别用pH值为1.0盐酸-氯化钠缓冲液稀释20倍。
然后分别在510nm与700nm下测定两种稀释液的吸光度。
吸光度A为：A=(A510nm-A700nm)pH1.0 - (A510nm-A700nm)pH4.5花色苷含量用矢车菊素-3葡萄糖苷（R CGE , mg/g）表示，即R CGE=（A × MW × DF × Ve × 1000）/（ε× 1 × M）式中 MW-矢车菊素-3葡萄糖苷相对分子量，取449DF-稀释倍数Ve-提取液总体积M-葡萄皮质量ε–摩尔吸光系数，取29600五、实验结果A=0.9007-0.0087-(0.0813-0.0065)=0.8172nmR CGE=因此该葡萄果实中，花色苷含量为 mg/g。
PH示差法测量花青素含量
PH示差法测定火棘果花青素含量原理：花青素是具有2-苯基苯并吡喃阳离子结构的衍生物，广泛存在于植物中的水溶性天然色素。
花青素在自然状态下常与各种单糖形成糖苷，称为花色苷。
溶液PH不同，花色苷的存在形式也不同。
对于一个给定的PH值，在花色苷的4种结构之间存在着平衡：蓝色的醌式（脱水）碱，红色的花烊正离子，无色的甲醇假碱和查尔酮。
花色苷在PH值很低时，其溶液呈现最强的红色。
随着PH值的增大，花色苷的颜色将褪至无色，最后在高PH值时变成紫色或蓝色。
PH示差法测定花色苷含量的依据是花色苷发色团的结构转换是PH的函数，起干扰作用的褐色降解物的特性不随PH变化。
因此在花青素最大吸收波长下确定两个对花青苷吸光度差别最大但是对花色苷稳定的PH值。
原料与仪器原料：火棘果花青素提取液，乙醇95%（AR），盐酸仪器：PHs-3B型酸度计，紫外分光光度计实验步骤：1，火棘果的定性分析取提取液稀释至一定的体积，用稀氢氧化钠和稀盐酸调节PH，观察提取液在不同PH下的颜色变化。
对提取液进行200~800nm全波长扫描，绘制光谱图2，测定波长的选择取火棘果花青素提取液用5%HCL-EtOH（15:85）溶液稀释至一定体积，进行光谱扫描，确定最大吸收波长。
紫外可见吸收光谱3，PH示差法中PH的选择在选定PH时应考虑以下因素：在此两个PH处测定的花青素的吸收值差异应是最显著的；单一PH的轻微变动，对花青素吸光值的影响是极小的；花青素在所处的两个PH下，应是相当稳定的。
由于花青素只有在酸性介质中是稳定的，因此只测定PH小于7条件下花青素吸光值的变化。
PH为1.0时，花青素以红色的2-苯基苯并吡喃的形式存在PH为4.5时，花青素以无色的甲醇假碱的形式存在。
因此选择PH为1.0和4.5。
4，平衡时间的确定因为花青素在溶液介质中存在4种结构形式，这4种结构形式在某一PH下处于动态平衡，当PH改变时，动态平衡发生转移，总的趋势是PH降低时，平衡向红色的2-苯基苯并吡喃阳离子移动；PH 升高时平衡向蓝色醌式移动。
花青苷的实验报告
一、实验目的1. 学习花青苷的提取方法。
2. 掌握花青苷的鉴定方法。
3. 了解花青苷在植物中的生理作用。
二、实验原理花青苷是一类广泛存在于植物中的水溶性色素，具有丰富的生物学活性。
在酸性条件下呈红色，碱性条件下呈蓝色。
花青苷的提取方法有酸提取法、碱提取法、有机溶剂提取法等。
本实验采用碱提取法提取花青苷，并利用紫外-可见分光光度法进行鉴定。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：紫甘蓝叶片、NaOH溶液、乙醇、盐酸、硫酸铜、无水乙醇、蒸馏水等。
2. 实验仪器：紫外-可见分光光度计、电子天平、研钵、烧杯、试管、移液器、滴定管等。
四、实验步骤1. 花青苷提取（1）称取紫甘蓝叶片2g，放入研钵中。
（2）加入10mL 1mol/L NaOH溶液，研磨至叶片成浆状。
（3）将研磨好的浆状物倒入烧杯中，加入10mL 95%乙醇，搅拌均匀。
（4）用滴定管加入10mL盐酸，使溶液pH值为1，静置过夜。
（5）用滤纸过滤，收集滤液。
2. 花青苷鉴定（1）取3支试管，分别加入1mL、2mL、3mL提取液。
（2）向3支试管中分别加入0.5mL 1%硫酸铜溶液，摇匀。
（3）观察溶液颜色变化，记录实验结果。
五、实验结果与分析1. 提取结果经过实验，从紫甘蓝叶片中成功提取出花青苷。
2. 鉴定结果在紫外-可见分光光度计下，观察溶液颜色变化。
结果显示，随着硫酸铜溶液的加入，溶液颜色由无色逐渐变为蓝色，证明提取液中含有花青苷。
3. 结果分析通过实验，成功提取并鉴定了紫甘蓝叶片中的花青苷。
花青苷在植物中具有多种生理作用，如调节植物生长发育、增强植物抗逆性、改善植物品质等。
本实验为花青苷的研究提供了实验依据。
六、实验结论1. 本实验采用碱提取法成功提取了紫甘蓝叶片中的花青苷。
2. 通过紫外-可见分光光度法鉴定，提取液中含有花青苷。
3. 花青苷在植物中具有多种生理作用，值得进一步研究。
七、实验讨论1. 本实验中，提取花青苷的方法较为简单，但提取效率可能不高。
花青苷(花色苷)种类、提取及检测(2020年10月整理).pdf
花青苷种类、提取及检测一.种类花色素均具有类黄酮的基本结构，由两个苯环和一个含氧杂环组成的(C6-C3-C6)C15化合物(如图)，根据B环羟基化和甲基化位置和数目的不同而将花色素主要分为六类:天竺葵色素((Pelargonidin)、矢车菊色素((cyanidin)、芍药色素(peonidin)(3＇-甲基矢车菊色素)、飞燕草色素(delphinidin)、矮牵牛色素(petunidin)(3＇,5＇-甲基飞燕草色素)和锦葵色素(malvidin)( 3＇,5＇-二甲基飞燕草色素)。
不同植物中花色素发生糖苷化的位点(C3、C5和C7位等)和数目的差异，及酞化程度的不同使植物中存在着不同的花色素普，其结构复杂，但都以这六种花色素为基本结构(Grotewold，2006)。
二.提取国内外学者对花青苷的提取做了大量研究，提取目的及目标花青苷不同，提取方法略有差异。
花青苷易溶于水、甲醇、乙醇等极性溶液，花青苷的稳定性受酶、温度、氧气、光、pH值、金属离子等理化性质的影响，在中性和碱性条件下不稳定。
提取过程常采用酸性溶液，酸能够破坏植物细胞膜并溶解水溶性色素，甲醇溶液提取效率高于乙醇及水溶液。
花青苷一般用于食品着色，考虑到甲醇的不安全因素，一般选用体积分数为1%的乙醇溶液。
采用盐酸酸化可保持提取液pH值较低，阻止无酰基花青苷的降解。
随着盐酸被浓缩，pH 值升高，导致花青苷的降解。
为获得更接近于天然状态的花青苷，采用弱有机酸或中性溶剂做初步提取，弱有机酸多用甲酸、乙酸、丙酸、柠檬酸和酒石酸，中性溶剂一般采用丙酮作提取剂。
粗提后的花青苷提取液浓度很低，浓缩时一般不超过40℃，时间也不宜太长。
1.2.花青苷含量的测定：用0.1%的盐酸甲醇浸提叶片2 h后,测657nm、530nm处的吸光度。
3.4.5.6.7.8.9.三.检测紫外—可见光谱是花青苷结构鉴定的经典方法，其鉴定方法为：①花青苷有2个最大吸收波长,500~540nm附近及27nm附近，据此可判定是否为花青苷色素；②若B环有邻位酚羟基，则向体积分数0.01%盐酸-甲醇溶液中滴加3~5 滴AlCl3，甲醇或乙醇溶液时会出现蓝移；③糖苷位置可据花青苷吸光度比值A440/A max判定；④在波长300~330nm间有吸收峰，表明存在酰基；⑤若在波长440n处有肩峰，则5号位羟基没被取代；⑥若在紫外光下有荧光，表明在5号位有取代基。
花色苷含量计算吸附量
花色苷含量计算吸附量
摘要：
1.引言
2.花色苷含量的测定方法
3.吸附量的计算方法
4.结论
正文：
【引言】
花色苷是一类广泛存在于植物果实和种子中的天然色素，其具有强大的抗氧化作用，对于人体健康具有诸多益处。
在食品工业中，花色苷被广泛应用于饮料、糖果等食品的添加剂，以增加其色彩和营养价值。
然而，花色苷的含量往往受到提取工艺和加工环境的影响，因此，对其含量的精确测定以及吸附量的计算至关重要。
【花色苷含量的测定方法】
花色苷含量的测定方法通常采用光谱分析法，如紫外- 可见光谱法和红外光谱法。
其中，紫外- 可见光谱法是最常用的方法，其原理是花色苷在紫外- 可见光区域有特定的吸收峰，通过测量其吸收峰的强度，可以推算出花色苷的含量。
【吸附量的计算方法】
吸附量是指单位质量的吸附剂能够吸附的花色苷的量，通常用mg/g 表示。
吸附量的计算方法通常采用比色法，即将吸附后的吸附剂与已知浓度的花
色苷溶液进行比色，通过测量比色后的吸光度，可以推算出吸附量。
【结论】
花色苷含量的测定和吸附量的计算是评估花色苷提取效率和产品质量的重要手段。
花色苷研究——精选推荐
花⾊苷研究花⾊苷的研究状况引⾔花⾊苷⼜称花青素，属酚类化合物中的类黄酮，是构成花瓣、果实等颜⾊的主要⽔溶性⾊素，⾃然界中已知的花⾊素有22⼤类。
⾷品中重要的花⾊素有⽮车菊⾊素、天竺葵⾊素、飞燕草⾊素、芍药⾊素、牵⽜⾊素和锦葵⾊素等6类[1]。
花⾊苷作为⼀种天然⾷⽤⾊素，安全、⽆毒、资源丰富，⽽且具有⼀定的营养和药理作⽤，在⾷品、化妆品和医药领域有着巨⼤应⽤潜⼒[2]。
花⾊苷对⼈体具有许多保健功能如清除体内⾃由基、抗肿瘤、抗癌、抗炎、抑制脂质过氧化和⾎⼩板凝集、预防糖尿病、减肥、保护视⼒等。
⽬前花⾊苷作为⼀种天然⾊素，安全、⽆毒，且对⼈体具有许多保健功能，已被应⽤于⾷品、保健品、化妆品、医药等⾏业，随着⼈们崇尚⾃然消费观念的转变，花⾊苷必将得到更加⼴泛的应⽤。
摘要本⽂对花⾊苷的资源分布、结构性质、稳定性研究、提取、定性定量分析⽅法以及发展前景进⾏了综述。
1.花⾊苷的资源分布花⾊苷⼴泛存在于被⼦植物的花、果实、茎、叶、根器官的细胞液中，分布于27 个科，72 个属的植物中。
⼴泛存在于紫⽢薯、葡萄、⾎橙、红球⽢蓝、蓝莓、茄⼦⽪、樱桃、红橙、红莓、草莓、桑葚、⼭楂⽪、紫苏、⿊(红)⽶、牵⽜花等植物的组织中。
2.花⾊苷的结构及性质花⾊苷的结构如右图所⽰，不同的R1、R2代表不同的花⾊苷类型。
⾷品中重要的6中花⾊苷如表1。
表1花⾊苷溶于⽔和⼄醇，不溶于⼄醚、氯仿等有机溶剂，花⾊苷在酸性溶液中存在4种平衡转换如图1：⾃然界中的游离态花⾊苷极其少见，通常常与 1 个或多个葡萄糖（glucose）、⿏李糖（rhamnose）、半乳糖（galactose）、⽊糖（xylose）、阿拉伯糖（arabinose）等通过糖苷键连接形成花⾊苷，3-单糖苷、3-双糖苷、3，5-⼆糖苷和3，7-⼆糖苷是4类最常见的花⾊素配糖形式，其中⽮车菊素-3-葡萄糖苷在⾃然界中分布最⼴[3]。
3.花⾊苷的稳定性研究影响花⾊苷稳定性的因素有很多，pH值、氧⽓、温度、花⾊苷浓度和结构、光、⾦属离⼦、酶，以及其他辅助因素等均能使花⾊苷的颜⾊产⽣变化。
花青素(花青苷)简介
花青苷是极性化合物，易溶于水和乙醇、甲醇等极性化合物，不溶于氯仿、正己烷、乙
醚等非极性有机溶剂。在 pH 小于或等于 3 的酸性条件下稳定，其颜色随 pH 值的变化而变
化，pH<7 时为红色，pH 在 7-8 时呈紫色，pH>11 时呈蓝色。因此，很多植物的色素可以作
为酸碱指示剂，例如：紫甘蓝、心里美萝卜、玫瑰茄子、牵牛花、紫草、苏木等的色素。花
花青素（花青苷）简介
天然色素应用技术推广实验室
花青苷的分布、结构和分类
花青苷是一类广泛存在于自然界植物的花、果、茎、叶和种子中的水溶性天然色素，属
于黄酮多酚类化合物。最初使用花青苷名称的人是 Marguart(1835)，1905 年 Molish 首次获
得了花青苷晶体。此后在致力于花青苷研究的人士中，贡献最大是 Harbone 等人。花青苷是
通过糖苷键形成一般的花青苷，由于与花色素成苷的糖的种类、位置、数量的不同，形成的
花色苷种类也不同。只结合一个糖时，一般结合于花色素骨架的 3 位羟基上；与两个糖结合
时，一般分别结合于 3 位和 5 位的羟基处，有时也发生 3 位和 7 位的结合。有的花青苷中糖
分子的羟基还可以与一个或几个分子的对香豆酸、阿魏酸、咖啡酸、丙二酸、芥子酸和琥珀
见表 1-1。
表 1-1 常见的花色素、糖类和参与酰化的有机酸的分子量
Table 1-1 Molecular weight common anthocyanidins,sugars,and acylated groups found in
anthocyanins
化合物
英文名称
摩尔质量（MW）
MW-H2O
花色素
R1
R2
花青苷(花色苷)种类、提取及检测
花青苷种类、提取及检测一.种类花色素均具有类黄酮的基本结构，由两个苯环和一个含氧杂环组成的(C6-C3-C6)C15化合物(如图)，根据B环羟基化和甲基化位置和数目的不同而将花色素主要分为六类:天竺葵色素((Pelargonidin)、矢车菊色素((cyanidin)、芍药色素(peonidin)(3＇-甲基矢车菊色素)、飞燕草色素(delphinidin)、矮牵牛色素(petunidin)(3＇,5＇-甲基飞燕草色素)和锦葵色素(malvidin)( 3＇,5＇-二甲基飞燕草色素)。
不同植物中花色素发生糖苷化的位点(C3、C5和C7位等)和数目的差异，及酞化程度的不同使植物中存在着不同的花色素普，其结构复杂，但都以这六种花色素为基本结构(Grotewold，2006)。
二.提取国内外学者对花青苷的提取做了大量研究，提取目的及目标花青苷不同，提取方法略有差异。
花青苷易溶于水、甲醇、乙醇等极性溶液，花青苷的稳定性受酶、温度、氧气、光、pH值、金属离子等理化性质的影响，在中性和碱性条件下不稳定。
提取过程常采用酸性溶液，酸能够破坏植物细胞膜并溶解水溶性色素，甲醇溶液提取效率高于乙醇及水溶液。
花青苷一般用于食品着色，考虑到甲醇的不安全因素，一般选用体积分数为1%的乙醇溶液。
采用盐酸酸化可保持提取液pH值较低，阻止无酰基花青苷的降解。
随着盐酸被浓缩，pH 值升高，导致花青苷的降解。
为获得更接近于天然状态的花青苷，采用弱有机酸或中性溶剂做初步提取，弱有机酸多用甲酸、乙酸、丙酸、柠檬酸和酒石酸，中性溶剂一般采用丙酮作提取剂。
粗提后的花青苷提取液浓度很低，浓缩时一般不超过40℃，时间也不宜太长。
1.2.花青苷含量的测定：用0.1%的盐酸甲醇浸提叶片2 h后,测657nm、530nm处的吸光度。
3.4.5.6.7.8.9.三.检测紫外—可见光谱是花青苷结构鉴定的经典方法，其鉴定方法为：①花青苷有2个最大吸收波长,500~540nm附近及27nm附近，据此可判定是否为花青苷色素；②若B环有邻位酚羟基，则向体积分数0.01%盐酸-甲醇溶液中滴加3~5 滴AlCl3，甲醇或乙醇溶液时会出现蓝移；③糖苷位置可据花青苷吸光度比值A440/A max判定；④在波长300~330nm间有吸收峰，表明存在酰基；⑤若在波长440n处有肩峰，则5号位羟基没被取代；⑥若在紫外光下有荧光，表明在5号位有取代基。
主茎花青甙显色
主茎花青甙显色
主茎花青甙是一种天然色素，可以用于显色。
要使主茎花青甙显色，可以按照以下步骤进行操作：
1. 准备材料：首先需要准备好主茎花青甙提取物或含有主茎花青甙的植物材料。
你可以购买现成的提取物或自己提取。
2. 提取主茎花青甙：如果你选择自己提取主茎花青甙，可以使用溶剂（如酒精）将植物材料浸泡一段时间，然后进行滤液分离，得到提取物。
3. 准备显色试剂：根据需要，可以选择不同的显色试剂来与主茎花青甙反应以产生颜色。
例如，可以使用酸性条件下的铁离子作为显色试剂。
4. 反应：将提取物与显色试剂混合，观察反应结果。
如果主茎花青甙存在并且反应成功，你应该能够看到显色现象，通常呈现出蓝色或紫色。
需要注意的是，主茎花青甙的显色效果可能会受到其他
因素的影响，如pH值、温度和反应时间等。
因此，在进行显色实验之前，最好先做一些试验以确定最适合的条件。
此外，如果你需要更详细的步骤或特定的显色方法，请提供更多信息，我将尽力为你提供帮助。
花色苷提取及纯化研究进展
花色苷是花青素在自然界状态下的天然糖基化产物，是存在于许多植物组织中的重要水溶性色素。
它们赋予植物根、茎、叶、花、果实等不同器官紫红、兰、红等色彩。
花色苷属于类黄酮化合物，由于其结构中含有多个酚羟基，因而具有良好的抗氧化功效，能够清除体内自由基、抑制脂质过氧化，同时具有预防肿瘤、抗炎杀菌、调节血糖等功效。
中国是水果生产大国，年产量达2400万吨，其中水果加工占水果产量的38%左右，产生的果渣下脚料近千万吨，果实与果渣中都有着丰富的花色苷资源，且果渣废弃物的高值化利用是当前食品加工开发的热点，因此，利用果渣提取花色苷，不仅可以提高果渣综合利用率，解决工业废料处理问题，减轻环保压力，而且可得到高附加值产品以提高经济效益。
花色苷的高效提取与纯化是实现其工业化应用的前提。
本文介绍了近年来国内外关于花色苷提取技术和纯化方法的主要研究进展，为花色苷类天然色素和功能性食品的提取、制备和工业化应用提供参考和指导。
摘要：花色苷属于黄酮类化合物，广泛存在于各种植物的器官中，它不仅是自然界重要的水溶性色素，还同时具有良好的抗氧化、抗癌、预防疾病等多种生物活性，因而被广泛应用于食品、制药、化妆品等行业。
天然植物花色苷的提取和纯化是花色苷应用的前提。
该文综述了花色苷提取与纯化的最新研究进展，分析比较了不同提取和纯化方法对产品提取率及纯度的影响，为进一步开展植物花色苷研究，实现花色苷的高效提取与高值化利用提供参考。
结论影响浆果及果渣中花色苷提取的因素主要为样品基质特征（如样品的水分活度、植物细胞壁刚性等）以及提取工艺参数（如pH、溶剂、温度、时间等）。
目前，提取方法已经从传统溶剂法发展到了低共熔溶剂提取、超声辅助提取、微波辅助提取、超临界流体提取等新兴技术。
与传统溶剂提取相比，新技术在提取率、能耗、提取时间、保护环境等方面均具有非常明显的优势，但也存在一些不足，比如设备要求高、工艺优化标准高等。
从工业化角度出发，微波与超声辅助提取已有工业应用；超临界流体萃取、高压脉冲电场辅助提取法等因设备成本问题工业化较为困难。
四种观赏植物花青苷分析及其花色形成机制
四种观赏植物花青苷分析及其花色形成机制花色是观赏植物重要的观赏性状之一,扩大花色变异和选育新奇花色品种一直是花卉育种家的努力目标。
花色素的研究是花色改良的基础,花色与花色素关系的阐明使花色育种工作更具有方向性。
然而,自然界花色多样性、花色素结构复杂性以及二者之间存在密切的关系,使得观赏植物的花青苷成分分析及其花色形成机制的研究具有一定的难度,为观赏植物的花色定向改良提出的切实可行方案也不鲜见。
为了探讨观赏植物花色形成机制的一些共性问题或者一般规律,本文选取了几种代表性植物类群—丁香(Syringa spp.)、贴梗海棠(Chaenomeles speciosa)、早开堇菜(V. yedoensis)、紫花地丁(V. prionantha)和圆叶牵牛(Ipomoea purpurea)(丁香和贴梗海棠为木本灌木类,堇菜为草本地被类,圆叶牵牛为草本藤本类)为研究对象,采用国际通用的CIEL*a*b*表色系统、高效液相色谱-质谱联用技术(HPLC-DAD-ESI/MS)及多元线性逐步回归分析方法,系统地开展了不同结构修饰的花青苷成分分析鉴定及其花色形成化学机制研究。
在探明几种代表性植物类群的花色形成化学机制的基础上,对观赏花卉的色素结构与花色的关系的一般规律进行总结。
此外,推定了丁香的花青苷代谢途径,对至今稀有的红色丁香育种提出了具体的思路,并推及其他观赏植物的蓝色系及红色系花卉的育种策略。
主要结果如下:1.花青苷分析方法的建立和优化通过筛选流动相体系,调节洗脱梯度、温度、流速等参数,建立了一套微量、快速、高效、定性、定量分析早开堇菜和紫花地丁花青苷成分的HPLC方法。
线性(R = 0.9997)及精密度(RSD < 3.67%)实验证明HPLC方法稳定,可靠。
2.花青苷成分的多样性利用HPLC-DAD/ESI-MS技术,在四种观赏植物中共分析鉴定出29种结构多样的花青苷成分,包括多种花青苷元、糖苷化及酰基化的花青苷。
植物花色苷的研究进展
植物花色苷的研究进展植物花色苷是一种天然存在于植物体内，赋予植物花色的物质。
它们是一类具有花色和抗氧化特性的化合物，可在许多植物中找到，包括葡萄、蓝莓、茶叶等。
植物花色苷不仅赋予了植物美丽的颜色，还具有非常高的营养和药用价值。
在过去的几十年里，研究人员对植物花色苷进行了广泛的研究，发现了它们在人类健康和疾病预防中的潜在作用。
本文将介绍植物花色苷的研究进展，包括其在抗氧化、抗炎、抗癌、心血管健康等方面的作用，以及其在药物开发和生物技术领域的应用前景。
一、植物花色苷的分类和结构植物花色苷是一类多酚化合物，通常分为花色素、类黄酮和花青素三类。
它们的基本结构都是由苯丙素（C6-C3-C6）单元组成，以不同的方式连接而成。
花色苷通常以糖苷键或酯键与糖分子结合，形成花色苷苷或花色苷酯的形式存在于植物细胞中。
这些结构的多样性使得植物花色苷具有不同的生物活性和生理功能。
二、植物花色苷的抗氧化作用植物花色苷被广泛认为是一种强效的抗氧化剂，可以清除自由基，减少氧化损伤，保护细胞和器官免受氧化应激的影响。
研究表明，植物花色苷可以有效抑制人体内的氧化应激反应，降低血清中的氧化物质含量，减轻氧化损伤引起的疾病，如动脉粥样硬化、癌症、糖尿病等。
植物花色苷还可以促进抗氧化酶的活性，增强细胞的自我修复能力，保护细胞核酸和蛋白质不受氧化伤害。
植物花色苷被认为是预防和治疗氧化应激相关疾病的有效天然物质。
除了抗氧化作用外，植物花色苷还具有显著的抗炎作用。
研究表明，植物花色苷可以抑制炎症介质的释放，减少炎症细胞的浸润，降低组织损伤和疼痛。
其作用机制可能与抑制炎症信号途径、调节炎症相关基因表达有关。
植物花色苷在抑制慢性炎症反应、减轻关节炎、肠炎、皮肤炎等炎症性疾病方面显示出良好的潜力，为炎症相关疾病的治疗提供了新的思路。
近年来，研究人员发现植物花色苷对癌症具有一定的抑制和防治作用。
其抗癌作用主要体现在抑制肿瘤细胞的增殖、诱导肿瘤细胞凋亡、抑制肿瘤血管生成、阻断肿瘤转移等方面。
花青苷 显色 玉米 测试方法
花青苷显色玉米测试方法花青苷，一种自然界中广泛存在的黄酮类化合物，尤其在玉米中含量丰富。
它不仅为玉米等作物提供了独特的蓝色或紫色，还具有多种生物活性功能。
在科研和工业应用中，准确测试玉米中花青苷的显色特性至关重要。
本文将详细介绍几种常见的花青苷显色测试方法。
一、可见光分光光度法可见光分光光度法是测定花青苷含量和显色特性的一种常用方法。
该方法的原理是利用花青苷在可见光区的特定波长处有吸收特性。
具体操作步骤如下：1.将玉米样品粉碎，提取花青苷。
2.将提取液适当稀释，以消除溶液的吸光度过高或过低的影响。
3.使用分光光度计，在花青苷的最大吸收波长（通常为530-540nm）处测量吸光度。
4.根据标准曲线计算花青苷含量。
二、高效液相色谱法（HPLC）高效液相色谱法是另一种用于测定花青苷显色特性的方法，具有较高的准确性和重复性。
具体步骤如下：1.将玉米样品中的花青苷提取出来。
2.使用HPLC对提取液进行分离，根据不同花青苷的保留时间进行定性分析。
3.采用外标法或内标法进行定量分析，计算花青苷含量。
三、紫外-可见光谱法紫外-可见光谱法可以用于分析花青苷的显色特性，通过对不同浓度花青苷溶液的紫外-可见光谱扫描，可以得到其吸收特性。
具体步骤如下：1.准备不同浓度的花青苷溶液。
2.使用紫外-可见分光光度计进行光谱扫描。
3.分析扫描图谱，确定花青苷的显色特性。
四、荧光光谱法荧光光谱法是研究花青苷显色特性的另一种方法，通过检测花青苷的荧光特性，可以了解其结构变化。
具体步骤如下：1.提取玉米样品中的花青苷。
2.使用荧光光度计进行光谱扫描。
3.分析荧光图谱，了解花青苷的显色特性。
结论：以上四种方法均可用于测试玉米中花青苷的显色特性。
在实际应用中，可根据实验条件和设备选择合适的方法。
花色苷的提取的研究进展
[6] 刘清玮 , 赵权 , 毛欣欣 . 酶对黑 果腺肋花楸中花色苷提取率的影响 [J]. 食品工业 ,2018,39(11):158-162.
[7] 戚家栋 . 莲雾花色苷提取工艺 [J]. 食品工业 ,2020,41(3):49-51.
[3] 王 鑫 , 韩 茜 宇 , 薛 宏 坤 . 山 葡 萄皮花色苷提取工艺优化及其组分分 析 [J]. 食品工业 ,2020,41(6):55-59.
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食品科技
花色苷的提取的研究进展
摘 要：归纳花色苷提取方法，为进一步优化花色苷提取工艺提供理论依据。 关键词：花色苷提取；溶剂浸润；超声辅助提取；微波辅助提取；酶法
□ 徐诗音 西北农林科技大学
花 色 苷 属 于 黄 酮 类 化 合 物， 存 在 于很多植物体内。花色苷具有抗氧化、 抗糖尿病和减肥等生理活性功能。在 生物、食品及医药等方面有一定的应 用价值。本文旨在综述近年来关于各 种植物中花色苷的提取方法，为花色 苷的利用提供一定的参考。 1 溶剂浸润提取法
超声辅助提取法相比普通的溶剂 浸提法，克服了浸提时间长、溶剂量大、 浸提温度高等缺点，避免了由这些缺 点可能引起的花色苷生物活性结构被 破坏或降解。超声波的热效应、机械 效应和空化效应可以使植物组织细胞 壁快速破碎，加速所添加的提取溶剂 进入细胞内与被提取物质混合的速度， 促进提取物从细胞中溶出、扩散。王 鑫等 [3] 的研究发现随着超声功率和超 声时间的增加，提取效果增加后又下 降。在超声波辅助提取过程中，超声 功率过大色素结构会被超声波热效应 产生的热量破坏分解，超声时间过长 色素容易发生降解。故在利用超声辅 助提取法时，必须确定最佳的超声功
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花青苷种类、提取及检测
一.种类
花色素均具有类黄酮的基本结构，由两个苯环和一个含氧杂环组成的(C6-C3-C6)C15化合物(如图)，根据B环羟基化和甲基化位置和数目的不同而将花色素主要分为六类:天竺葵色素((Pelargonidin)、矢车菊色素((cyanidin)、芍药色素(peonidin)(3＇-甲基矢车菊色素)、飞燕草色素(delphinidin)、矮牵牛色素(petunidin)(3＇,5＇-甲基飞燕草色素)和锦葵色素(malvidin)( 3＇,5＇-二甲基飞燕草色素)。
不同植物中花色素发生糖苷化的位点(C3、C5和C7位等)和数目的差异，及酞化程度的不同使植物中存在着不同的花色素普，其结构复杂，但都以这六种花色素为基本结构(Grotewold，2006)。
二.提取
国内外学者对花青苷的提取做了大量研究，提取目的及目标花青苷不同，提取方法略有差异。
花青苷易溶于水、甲醇、乙醇等极性溶液，花青苷的稳定性受酶、温度、氧气、光、pH值、金属离子等理化性质的影响，在中性和碱性条件下不稳定。
提取过程常采用酸性溶液，酸能够破坏植物细胞膜并溶解水溶性色素，甲醇溶液提取效率高于乙醇及水溶液。
花青苷一般用于食品着色，考虑到甲醇的不安全因素，一般选用体积分数为1%的乙醇溶液。
采用盐酸酸化可保持提取液pH值较低，阻止无酰基花青苷的降解。
随着盐酸被浓缩，pH 值升高，导致花青苷的降解。
为获得更接近于天然状态的花青苷，采用弱有机酸或中性溶剂做初步提取，弱有机酸多用甲酸、乙酸、丙酸、柠檬酸和酒石酸，中性溶剂一般采用丙酮作提取剂。
粗提后的花青苷提取液浓度很低，浓缩时一般不超过40℃，时间也不宜太长。
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花青苷含量的测定：用0.1%的盐酸甲醇浸提叶片2 h后,测657nm、530nm处的吸光度。
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三.检测
紫外—可见光谱是花青苷结构鉴定的经典方法，其鉴定方法为：①花青苷有2个最大吸收波长,500~540nm附近及27nm附近，据此可判定是否为花青苷色素；②若B环有邻位酚羟基，则向体积分数0.01%盐酸-甲醇溶液中滴加3~5 滴AlCl3，甲醇或乙醇溶液时会出现蓝移；
③糖苷位置可据花青苷吸光度比值A440/A max判定；④在波长300~330nm间有吸收峰，表明存在酰基；⑤若在波长440n处有肩峰，则5号位羟基没被取代；⑥若在紫外光下有荧光，表明在5号位有取代基。
（取代基位置参考下图）。