2020年血液粘度检测分析报告

血液粘度检测分析报告

1血液粘度计的选择

重复性：指所测数值重复性程度。取同一血样，压积在40%～45%范围内，按照仪器操作规程测量10次，在高剪切率200s-1时，血液表观粘度的变异系数应小于2%；低剪切率1s-1时，变异系数应小于5%。血样用量应根据仪器的样品用量而定，并应严格控制样品计量的精度。样品量的过多或过少都将对测量结果产生影响，同时，标本在吸入时不要产生气泡。为保证仪器的正常工作和精确性，要做好日常维护和定期保养，并做好保养维护记录。同时对仪器的准确度、分辨率和重复性应定期标定。

准确度：指所测数值与真值（给定）符合的程度。测定时建议以国家计量标准油为标准，在剪切率200s-1时测定低粘度油（2～

3mPa·s），在剪切率1s-1时，测定高粘度油（15～25mPa·s），一般应测定５次以上，在低粘度值时测定值与真值的相对偏差应小于5%，高粘度值时测定值与真值的相对偏差应小于3%。

分辨率：在给定条件下，测定出同一物质两种状态下的差异。取压积在40%～50%范围内的正常人全血，以自身血浆调节压积的变化。在高剪切率200s-1时，仪器应能分辨出压积变化2%时的血液表观粘度的差异，在低剪切率1s-1时，仪器应能分辨出压积变化1%时的血液表观粘度的差异。以上测量应各测5次以上，取平均值。

2样品采集、血样防凝

血液样品的采集应保持一致。采血时病人取坐位，清晨空腹安

静状态下，采集肘前静脉血。采血时应尽量缩短压脉带的压迫时间，针头刺入血管后立即松开压脉带，安静约5s后开始采血。最好用7

号以上的针头，采血过程中不宜过快。以避免过细的针头对红细胞产生一定的剪切力而破坏红细胞。

血液需经抗凝处理后才能用于测量，抗凝剂对血液流变特性的

影响不可忽视。最好用肝素或EDTA抗凝。肝素抗凝浓度一般为每毫

升全血用20～30国际单位，EDTA为每毫升全血3.4～4.8mmol/L。抗凝剂一般采用固相或液相抗凝剂。如用液相抗凝剂一般放在干燥玻璃管或玻璃瓶中，烘干后使用，烘干温度一般不超过56℃。采血完毕后，先取下针头，将血液沿管壁缓缓注入，轻轻摇匀，避免剧烈震动造成溶血。同一批实验应采用同一批号同种抗凝剂。

3血样保存

血样应随采随测。一般采血后20min即可用于测量，并应于采

集后2h以内完成流变学参数的测定。如需放置应在室温下（18～25℃）密封保存，不宜放入冰箱，存放时间以不超过4h为宜，否则将影响

血液的生理状态和流变特性。存放血在测量前要充分摇匀。以3000～3500转/min（离心力为1500～2000g）离心30min，提取上层血浆测量血浆粘度。血浆为牛顿流体。

4红细胞比积测量

常用文氏管。此法不但结果准确，且可同时观察红细胞沉降率。将血样加入，读取完红细胞沉降率后，以相对离心力2260g，离心

30min，读取红细胞柱的高度（以红细胞上层的黑线薄层为准）。红细胞压积%=红细胞柱的高度/全血高度×100，红细胞压积管必须清洁干燥，电源、电压及离心机载重均可影响离心机的转速，因此应安装稳压装置和固定离心机的载重。

5测量温度、测量顺序

血液粘度的测量应在37±0.5℃下测量。不同温度的测量结果之间不能比较。外界温度高时还应考虑液体蒸发等因素对其流变特性的影响。对于剪切率可调的仪器在测量时应考虑测量顺序的影响。测量时应采用一致的测量顺序，从低剪切率开始逐渐增加或从高剪切力开始逐渐降低均可。但应注意的是在低剪切率测量时随着测量时间的增加，血样中有形成分的沉降对测量结果的影响。两种测量顺序的结果不可互相比较。每次测定时，样品池都应清洗干燥，血样及测量系统应保持恒温。加样时不能有气泡产生。

6测量报告、正常值

检测报告中应给出高剪切力200s-1、中剪切力50s-1、低剪切力1s-1下的血液表观粘度值及血浆粘度（单位为mPa·s）、压积、血沉、红细胞的聚集性、变形性等指标。直接测量数据和经公式计算得到的数据应区别列出，同时要注明测定的温度、检测日期及操作人员签名。血液粘度是血液流变特性的主要参数。正常值具有相对性，没有普遍适用的正常值。即使采用通用的仪器和标准操作也是如此［1］。各实验室应根据生物体的个体差异、地区差异、仪器差异等原因，建立自己的正常值。正常值应按男女、年龄等合理分组。当测

定值与正常值之差（绝对值）大于2倍正常值标准差时，可以认为是血液粘度异常。