临床微生物检验标本的正确采集及注意事项.
微生物标本的正确采集运送及注意事项PPT课件
缺乏完善的标本采集、运送和保存流程，以及有效的监督和质量控制 机制。
针对性解决方案提
01
加强人员培训
提高操作人员对微生物标本采集和运送规范的认识和技能水平。
02
完善设备设施
提供适当的采集工具、保存容器和运送设备，确保标本质量。
03
优化管理流程
建立完善的标本采集、运送和保存流程，加强监督和质量控制，确保标
标本标识不清
导致无法准确识别标本来源和 采集时间，影响后续检测和诊 断。
运送条件不符合要求
如温度控制不当、运送时间过 长等，可能导致标本中微生物
的死亡或增殖。
问题产生原因分析
人员操作不规范
缺乏专业培训或经验不足的操作人员可能导致标本采集和运送过程 中的问题。
设备设施不完善
缺乏适当的采集工具、保存容器和运送设备，可能导致标本质量下 降。
微生物标本的正确采 集运送及注意事项 PPT课件
REPORTING
目录
• 微生物标本采集概述 • 微生物标本采集方法 • 微生物标本运送与保存 • 微生物标本处理与检测 • 微生物标本采集运送中常见问题及解决方案 • 总结与展望
PART 01
微生物标本采集概述
REPORTING
采集目的与意义
01
采样方法
使用无菌铁锹或土壤钻进行土壤采 集，将土壤样品装入无菌袋中并标 记相关信息。
人体微生物采集
采样部位选择
根据研究目的选择合适的采样部位，如皮肤、口腔、肠道等。
采样方法
使用无菌棉签或拭子进行皮肤或口腔粘膜的擦拭；或使用无菌粪便收集器进行 肠道微生物的收集。注意避免使用消毒剂或抗生素等药物影响微生物的活性。
标本处理
微生物检验标本的正确采集及注意事项
微生物检验标本的正确采集及注意事项正确采集临床微生物标本，直接影响到微生物培养鉴定结果。
可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗，为临床科学用药和成功的感染控制提供依据，是正确、合理使用抗菌药物，延缓细菌耐药，减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步，也是最重要的一步。
为此应正确采集各种细菌学标本。
一、血液标本的采集1、采集方法（1）75%酒精清洁局部皮肤。
（2）待皮肤干后，再用2%—2.5%碘酒从穿刺点中心部位开始消毒，范围不应小于5cm（直径），且不能用手指触摸消毒后的皮肤。
（3）皮肤碘酒干后（约1min），穿刺采集血液，采血量成人5-10ml，婴幼儿1-5ml。
（4）采血后立即在床旁接种培养瓶，并迅速轻摇，充分混匀防止凝固，但又不可剧震以防溶血。
2、注意事项（1）怀疑菌血症应尽早采血，体温上升（38.5℃）采血可提高阳性率，但也要防止因等待而延误时机。
（2）对已经使用抗菌药物，而又不能停药者，也应在下次用药前采血。
切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本，也不能从静脉导管及动脉插管中取血。
（3）培养基与血液之比以10:1为宜，以稀释血液中的抗生素，抗体等杀菌物质；有人主张对接受抗菌药物治疗的病人，培养基与采血量之比可为20:1或大于这个比例。
（4）近年研究表明，将血液注入血培养基前，更换针头反而易导致污染。
（5）每例至少采血两次，间隔0.5-1h，以利于提高阳性率和区分感染菌与污染菌。
（6）疑为细菌性心内膜炎及布鲁氏病的病人，以肘动脉或股动脉采血为宜，除在发热期采血外，并要多次采血（24h 3-4次）和增加采血量（可增加10ml）。
（7）采血后立即送检，如不能立即送检可置室温，而不能放置冰箱。
（8）如临床表现很似败血症，而血培养多次阴性者，提示考虑厌氧菌和真菌感染的可能。
二、骨髓的采集1、采集方法在病灶部位或髂前（后）上脊处严格消毒后抽取骨髓1ml，注入血培养瓶内。
2、注意事项（1）骨髓内含有大量的单核巨噬细胞系统的细胞，因而骨髓培养对伤寒病人的诊断较血培养优越。
微生物标本采集
微生物标本采集是一项基础且重要的工作，对于临床诊断、疾病防控以及科学研究都具有至关重要的作用。
本文将详细介绍微生物标本采集的基本原则、采集方法、注意事项以及标本的保存与运送。
一、微生物标本采集的基本原则1.及时性：微生物标本采集应在患者出现症状或怀疑感染微生物时尽快进行，以便获取具有代表性的标本。
2.无菌操作：采集微生物标本时，必须遵循无菌操作原则，避免污染标本，确保检测结果的准确性。
3.适量：采集的微生物标本应足够进行所需检测，同时避免过量采集，减少对患者造成的不适。
4.适宜的标本类型：根据微生物的生长特性、感染部位以及检测目的，选择适宜的标本类型。
5.标本标识：采集的微生物标本应进行清晰、准确的标识，包括患者姓名、标本类型、采集时间等信息。
二、微生物标本采集方法1.皮肤、黏膜表面：使用无菌棉签或无菌注射器，轻轻擦拭或抽取皮肤、黏膜表面的分泌物。
2.血液：采用无菌注射器抽取静脉血，避免皮肤消毒剂污染。
3.呼吸道标本：采用无菌吸痰管或纤维支气管镜采集呼吸道分泌物；咳痰患者应采集清晨第一口痰。
4.尿液：采集清洁中段尿，必要时可采用导尿术。
5.粪便：采集粪便标本时，应避免粪便与尿液混合，采用无菌容器。
6.生殖道分泌物：男性患者采用无菌拭子采集尿道口分泌物；女性患者采集宫颈分泌物。
7.组织标本：在无菌条件下，切取感染部位的组织，放入无菌容器。
三、微生物标本采集注意事项1.采集前准备：了解患者的病情、用药情况以及采集部位，确保采集时机适宜。
2.消毒：采集部位应进行充分消毒，避免污染标本。
3.避免污染：采集过程中，避免触及非无菌部位，确保无菌操作。
4.采集量：根据检测需求，采集适量的标本。
5.标本保存：采集后的微生物标本应尽快送检，无法及时送检的标本应妥善保存。
四、微生物标本保存与运送1.温度：根据微生物的生长特性，选择适宜的保存温度。
一般而言，细菌标本应在4℃保存，病毒标本应在-70℃保存。
2.时间：微生物标本应在采集后尽快送检，如无法及时送检，应按照相关规定保存。
微生物检验标本的正确采集及注意事项
微生物检验标本的正确采集及注意事项正确采集临床微生物标本，直接影响到微生物培养鉴定结果。
据相关统计：微生物标本的检测误差来源：80%来源于分析前20%来源于分析中和分析后其它检验样本的检测误差来源：45%分析前10%分析中（仪器））45%分析后.检验标本采集质量控制的重要性,分析前的误差来源所占比例的这个数据是惊人的，在我们的大型医院都存在这个问题，而在我们医院应该不会低于这个数据。
可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗，为临床科学用药和成功的感染控制提供依据，是正确、合理使用抗菌药物，延缓细菌耐药，减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步，也是最重要的一步。
为此应正确采集各种细菌学标本。
一、血液标本的采集1、采集方法（1）75%酒精清洁局部皮肤。
（2）待皮肤干后，再用2%—2.5%碘酒从穿刺点中心部位开始消毒，范围不应小于5cm （直径），且不能用手指触摸消毒后的皮肤。
（3）皮肤碘酒干后（约1min），穿刺采集血液，采血量成人5-10ml，婴幼儿1-5ml。
（4）采血后立即在床旁接种培养瓶，并迅速轻摇，充分混匀防止凝固，但又不可剧震以防溶血。
2、注意事项（1）怀疑菌血症应尽早采血，体温上升（38.5℃）采血可提高阳性率，但也要防止因等待而延误时机。
（2）对已经使用抗菌药物，而又不能停药者，应在抗菌药物浓度最低时采集也即在下次用药前采血。
切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本，也不能从静脉导管及动脉插管中取血。
（3）培养基与血液之比以10:1为宜，以稀释血液中的抗生素，抗体等杀菌物质；有人主张对接受抗菌药物治疗的病人，培养基与采血量之比可为20:1或大于这个比例。
（4）近年研究表明，将血液注入血培养基前，更换针头反而易导致污染。
（5）每例至少采血两次，间隔0.5-1h，以利于提高阳性率和区分感染菌与污染菌。
（6）疑为细菌性心内膜炎及布鲁氏病的病人，以肘动脉或股动脉采血为宜，除在发热期采血外，并要多次采血（24h 3-4次）和增加采血量（可增加10ml）。
临床微生物标本的采集与运送图文
临床微生物标本的采集与运送在医学临床的诊断过程中，微生物检验是不可缺少的一环。
临床微生物标本的采集与运送是保证准确诊断的关键步骤之一。
本文将介绍临床微生物标本的采集与运送的一些注意事项。
1. 标本类型临床微生物标本通常包括血液、尿液、粪便、血培养瓶、脑脊液、切口分泌物等。
2. 采集方法2.1 血液标本采集血液标本时，一定要做好消毒工作。
选择采血部位后，用酒精或碘酒消毒，再用无菌针头采血，避免受污染。
血液标本采集后可以分成两份，一份用于血常规，另一份用于血培养。
2.2 尿液标本收集尿液标本时，要让患者用清洁肥皂清洁外阴部，再用无菌尿杯收集尿液，避免手部直接触摸尿杯和尿液。
尽量将尿液标本送至检验室的时间控制在2小时之内。
2.3 粪便标本采集粪便标本时，要确定所采集的粪便样本来自于患者的肛门临近处。
最好不要使用纸巾，而是用无菌容器收集粪便。
粪便标本采集窗口为3天。
2.4 血培养瓶标本采集血培养瓶标本时，首先要选择采血部位进行消毒，然后将血培养瓶插入采血针器上，打开外部装置，使血液顺利流入血培养瓶中。
采集集中在早晨时段，每次采集2-3个血培养瓶。
2.5 脑脊液标本采集脑脊液标本需要医生进行，患者应严格卧床休息，医生在患者腰部，采用穿刺的方式进行脑脊液的采集。
2.6 切口分泌物标本采集切口分泌物标本时，需要选择无菌医用棉签，消毒采集部位。
在采集过程中，应尽量避免被采集部位感染污染到。
3. 运送方法临床微生物标本的运送是重要的环节。
标本在采集后应及时送至细菌学检验实验室。
并且在运送过程中需要遵循以下几点：3.1 收集后尽早送检临床微生物标本的采集窗口不长，应尽早将标本送至检验室进行分析。
3.2 标本容器和包装标本容器必须选择无菌容器，容器体积大小要相应合适。
送检前，要核对标本标签与标签上的医学记录是否一致。
标本包装时，应采取干燥、保温、防震、防漏、防碎的原则。
3.3 运输温度不同种类的标本，其运输温度介于4-25摄氏度之间。
采集微生物学标本时有哪些注意事项？
采集微生物学标本时有哪些注意事项？
微生物学标本的正确采集直接关系到培养结果的准确性。
采集标本前，临床医生首先应考虑是否有适应证和禁忌证。
正确采集微生物学标本，需要明确以下几方面内容：①选择适当的时机，最好在病原体浓度最高的时间点。
②留取感染的正确部位。
部位不正确，结果无法解释。
③留取标本时，注意不能造成体内感染播散或人际传播。
④避免标本被污染，且应防止标本污染环境。
⑤采集标本量要足够，以提高检出率。
⑥选择无菌、无消毒剂、无污染、密封好的容器进行运送。
⑦准确标识患者信息、标本类型和检查目的。
⑧不同标本有不同的运送要求，温度、湿度和送检时限都应符合相关要求。
⑨采集和运送过程要遵循生物安全规范。
在保证适应证、可行性和必要性的前提下，考虑进行微生物学检查不是盲目的。
检查有针对性，临床诊断才有利无弊。
临床微生物学检验标本的采集
答：不同类型的微生物对保存温度的要求不同。一般来说，细菌、真菌等可在4℃或-20℃冰箱中保存数天至数周；病毒等则需要 使用-80℃超低温冰箱进行长期保存。在选择保存温度时，应根据具体微生物类型和实验要求进行选择。
问题解答与经验分享
如何确保标本运输安全？
答：在运输前应仔细检查容器是否密封良好，并使用足够的吸收材料包裹容器以防意外泄漏。同时，在运 输过程中应确保标本处于适当的低温环境中，并标识清晰以便实验室准确接收和处理。
结果分析
考虑患者为败血症，革兰氏阴性杆菌为致病菌。结合患者临床表现和 实验室检查结果，制定相应的治疗方案。
案例二：尿路感染诊断思路探讨
1 2
病例介绍 患者女性，60岁，因尿频、尿急、尿痛就诊。查 体显示尿道口红肿，有脓性分泌物。
实验室检查 尿常规结果显示白细胞增多，细菌培养阳性。
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诊断思路
根据患者临床表现和实验室检查结果，初步诊断 为尿路感染。进一步进行细菌鉴定和药敏试验， 以指导临床治疗。
保存时间 不同类型的微生物标本保存时间不同，应根据具体要求进 行保存。一般来说，细菌、真菌等可保存数天至数周，病 毒等则需要长期保存。
标本运输注意事项
保持低温
在运输过程中，应确保标本处于适当的低温环境中，以防止微生 物死亡或变异。
防止泄漏
运输前应检查容器是否密封良好，防止标本泄漏。同时，应使用 足够的吸收材料包裹容器，以防意外泄漏。
为临床诊断和治疗提供准确、可靠 的微生物学依据，指导合理用药。
微生物学检验目的
01
02
03
确定病原体种类
通过检验标本中的微生物， 明确病原体种类，为针对 性治疗提供依据。
评估病情严重程度
临床微生物标本采集和运送基本原则
临床微生物标本采集和运送基本原则有：
第一，要及时采集微生物标本，做病原学检查。
第二，严格执行无菌操作，减少和避免污染。
第三，标本采集之后，要立即送到实验室，床旁接种可以提高病原菌的检出率。
第四，尽量的在使用抗菌药物之前采集标本，这样对于结果的影响比较小一些。
第五，以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭子或伤口拭子要立刻送检。
第六，盛标本容器须经灭菌处理，不要使用消毒剂。
第七，送检标本应注明来源和检验目的，使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境，必要时应注明选用何种抗菌药物。
第八，对于混有正常菌群的污染标本，要做定量或半定量培养，然后判断是感染菌和定植菌。
第九，对分离到的病菌，要做药敏实验，提倡分级报告和现实报告。
微生物标本采集的一般原则
微生物标本采集的一般原则以微生物标本采集的一般原则为标题，本文将介绍微生物标本采集的基本原则和注意事项，以帮助医务人员正确采集标本，提高微生物检测的准确性和可靠性。
一、采集前准备1.了解患者病史和临床表现，确定采集标本的类型和数量。
2.告知患者采集标本的目的和方法，以及可能的不适和风险。
3.准备好采集工具和消毒液，保证采集过程的无菌和安全。
二、采集标本的基本原则1.选择合适的采集部位和方法，避免污染和误诊。
2.采集前要进行局部消毒，避免细菌和病毒的污染。
3.采集标本时要避免空气污染和手部污染，保证标本的纯度和可靠性。
4.采集后要及时送检，避免标本变质和误诊。
三、常见标本的采集方法和注意事项1.血液标本采集方法：选择合适的采血部位和针头，按照规范的采血程序进行采集。
注意事项：采集前要进行局部消毒，避免细菌和病毒的污染；采集时要避免空气污染和手部污染，保证血液的纯度和可靠性；采集后要及时送检，避免血液变质和误诊。
2.尿液标本采集方法：让患者用清洁的容器收集中段尿液，避免污染和误诊。
注意事项：采集前要告知患者正确的收集方法，避免尿液污染和误诊；采集时要避免手部污染和空气污染，保证尿液的纯度和可靠性；采集后要及时送检，避免尿液变质和误诊。
3.呼吸道标本采集方法：选择合适的采集部位和方法，如咽拭子、鼻拭子、痰液等，按照规范的采集程序进行采集。
注意事项：采集前要告知患者正确的采集方法，避免误诊和污染；采集时要避免手部污染和空气污染，保证标本的纯度和可靠性；采集后要及时送检，避免标本变质和误诊。
4.皮肤和软组织标本采集方法：选择合适的采集部位和方法，如切口分泌物、脓液、组织等，按照规范的采集程序进行采集。
注意事项：采集前要进行局部消毒，避免细菌和病毒的污染；采集时要避免手部污染和空气污染，保证标本的纯度和可靠性；采集后要及时送检，避免标本变质和误诊。
四、采集后的处理和保存1.采集后要及时送检，避免标本变质和误诊。
临床微微生物标本的采集注意事项接种及涂片染色
导管尖端阳性培养结果
第三十一页，共67页
6、脑脊液标本
⑴ 培养基：5%羊血琼脂、5%兔血巧克力琼脂、
葡萄糖肉汤
⑵ 培养环境：置5 % CO2、35℃环境培养。
第三十二页，共67页
7、胆汁或胸水或腹水标本
⑴ 培养基：如标本量大时可按血液培养方法直接
取16-20ml分别种入需氧和厌氧培养瓶。如标本
的外生殖器包括包皮内，然后用清水冲洗。
5、长期留置导尿管的患者应在更换新管时留取
尿标本。
第四页，共67页
（三）分泌物的采集
1、对开放性病灶的采集：如眼结膜脓性分泌物、扁桃
体、外耳道、手术后切口、导管治疗感染、瘘管内脓液、 生殖道分泌物等均属于开放性病灶。应先用灭菌生理盐 水冲洗表面污染菌，去除旧的分泌物，用灭菌拭子采集 病灶深部的分泌物，也可取感染部位下的组织送检。
宜做培养的标本；
当白细胞≤10个／L ，上皮细胞≤25个／L时再参照油
镜观察标本中细菌分布作出判断。
第四十八页，共67页
痰镜检的判断标准：
当标本中细菌种类超过3种以上，未见到钎毛拄状上 皮细胞，作为不合格标本；如见到数量不等的白血
胞或钎毛拄状上皮细胞或两者同在，含1-2种不同细
菌，可考虑继续培养，结果可根据病情再作分析；当 涂片中见到1-3种细菌，少量的扁平上皮细胞，少量 或较多钎毛拄状上皮细胞均可按合格标本继续培养。
10ml）。 9、粪标本培养，放置时间过长，已干。
第十七页，共67页
三、分离培养基本操作规范
合格的标本是保证培养成功的重要条件，但如 果没有适宜的分离培养基、培养环境以及正确 的处理方法同样不能获得好的结果，为此制定
如下基本操作规范以保证致病细菌分离成功 。
临床微生物检验标本采集规范要求★
24小时尿
记录尿量，将尿液混匀后取适量用于 检验。
粪便标本采集
自然排便
排便后用干净竹签取粪便 表面部分。
直肠拭子
在特殊情况下，如肠道感 染，可用直肠拭子采集粪 便。
粪便量
一般需采集足够量的粪便 用于检验。
呼吸道标本采集
痰液
患者自行咳出痰液，避免唾液和 鼻咽部分泌物。
支气管肺泡灌洗
在特殊情况下，如重症肺炎，可通 过支气管肺泡灌洗采集呼吸道标本 。
确定采集时间
根据患者的病情和检验目的，选择最 佳的采集时间，如空腹采集、餐后采 集等。
注意采集时间与用药时间的间隔，避 免药物对检验结果的影响。
采集人员防护措施
采集人员应穿戴符合要求的防护服、手套、口罩等，确保自 身安全。
采集过程中应遵循无菌操作原则，避免交叉感染和环境污染 。
02
标本采集方法
足或采集方法不当导致检验结果出现偏差。
03
标准化采集时间
根据疾病类型和病情发展，选择合适的采集时间可以提高检验准确性。
例如，对于急性感染患者，应在发热期采集标本；对于慢性感染患者，
应选择在疾病活动期采集。
保障患者安全
减少交叉感染风险
遵循无菌操作原则可以降低交叉感染的风险，保护患者安全。
避免患者不适
采集过程中，应避免接触非检 验部位，确保标本不受污染。
采集后应及时送检，避免长时 间存放导致污染。
防止标本变质
采集的标本应尽快送检，避免长时间 存放导致变质。
保存过程中应定期检查，确保标本质 量。
对于需要长时间保存的标本，应采取 适当的保存措施，如低温、干燥等。
其他注意事项
采集前应了解患者病情和用药情 况，避免干扰检验结果。
临床微生物标本采集和送检指南
二、临床微生物标本采集和送检的挑战
在临床微生物标本采集和送检过程中，可能会遇到以下挑战和问题： 1、如何正确采集微生物标本
二、临床微生物标本采集和送检的挑战
2、如何妥善保存标本，避免污染和交叉感染 3、如何及时、安全地将标本运送至实验室 4、如何与实验室保持密切，确保检测结果的准确性
三、临床微生物标本采集和送检 的具体方法和步骤
三、标本运送
2、防止污染：在运送过程中，应确保标本不受污染。使用清洁、干燥的容器 存放标本，并封闭容器以防止细菌、病毒等微生物的侵入。
三、标本运送
3、及时送达：标本应在采集后尽快送至实验室进行检测，以确保检测结果的 准确性。如有特殊情况需延迟送检，应告知实验室技术人员并妥善保存标本。
三、标本运送
四、临床微生物标本采集和送检的建议
3、建立有效的沟通渠道，加强与实验室、医生之间的协作和信息共享，及时 调整治疗方案。
四、临床微生物标本采集和送检的建议
4、针对具有传染性的标本，应严格遵守相关规定，确保运输、处理等过程的 安全性。
5、借助信息化手段，如电子病历、远程诊断等，提高临床微生物标本采集和 送检的效率和质量。
4、记录信息：在运送过程中，应记录标本的相关信息，包括采集时间、送检 时间、接收人员等，以便实验室技术人员对标本进行跟踪和管理。
四、常见问题及处理方法
四、常见问题及处理方法
1、采血困难：如遇采血困难，可适当调整采血部位或改变采血方式，如更换 采血针或调整患者体位。如仍无法采血，可咨询医生或实验室技术人员寻求帮助。
四、常见问题及处理方法
4、标识错误：如遇标识错误，应立即纠正并重新标识标本。同时，对可能造 成标识错误的原因进行分析和总结，以避免类似错误再次发生。
临床微生物检验标本的采集、运送及接种要点
检查采集器具和试剂的有效期
在采集前，检查采集器具和试剂的生产日期和有 效期，确保采集过程中使用的物品符合质量要求。
无菌操作技术规范培训
01
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培训采集人员
对采集人员进行无菌操作 技术规范的培训，确保他 们掌握正确的采集方法和 注意事项。
报告审核
由经验丰富的专业人员对报告进行审核，确 保报告的准确性和可靠性。
报告存档
对出具的报告进行存档管理，以备后续查询 和追溯。
07 注意事项与常见问题解答
采集过程中注意事项
严格无菌操作
采集标本时应避免污染，确保无菌操作，以免影响检验 结果。
采集适量标本
采集标本量应适中，过多或过少均可能影响检验结果。
定期监测
定期对保存条件进行监测和记录，确保标本保存环境稳定可靠。
超出保存期限处理
对于超出保存期限的标本，应按照相关规定进行处理，避免误用 或浪费。
05 标本接种操作要点
接种前培养基准备工作
选择合适培养基
根据待检微生物种类选择合适的培养基，确保能 够提供其生长所需的营养物质和环境条件。
培养基灭菌
对培养基进行高压蒸汽灭菌或干热灭菌，以消除 杂菌和污染。
将拭子插入鼻腔至鼻咽部，轻轻旋 转后取出。
03
02
咽拭子
用无菌拭子擦拭咽后壁及两侧扁桃 体，避免触及舌部。
采集容器
应使用无菌、有盖、干燥的容器， 痰标本也可使用无菌痰杯。
04
其他类型标本采集
脑脊液标本
由医生进行腰椎穿刺采集，过程中需严格无 菌操作。
穿刺液标本
临床微生物检验标本的正确采集及注意事项科普
临床微生物检验标本的正确采集及注意事项科普在临床中各类感染性疾病中，微生物检验是与诊断、治疗、用药密切相关的重要检查项目之一，而检验标本的采集是整体检验链中的第一环，采集工作质量的高低与后续检验结果质量密切相关，如下将对临床微生物检验标本的采集工作进行分析探讨，罗列其采集工作注意事项。
一、采集前准备采集容器是微生物检验标本采集的主要物品之一，此外，生物安全防护用具也不可少，一般临床常见常用防护用具包括一次性医用手套、一次性防护隔离衣、一次性医用隔离帽、一次性口罩等，其他还有根据具体检验采集样本类型使用的防护眼镜、鞋套以及器材等，这些都是防止病原微生物扩散以及采集人员自我防护的重要用品。
二、不同病原微生物的采集甲类传染病——鼠疫、霍乱、天花中，鼠疫的疾病早期主要采集患者痰液、血液以及淋巴结的穿刺液进行检查，后续发展则需要根据病灶的不同区分采集；霍乱患者的病原微生物标本采集通常采用粪便或肛拭子的方式进行检验，其他如细菌性痢疾、甲型肝炎发病早期、脊髓灰质炎早期、均为粪便、肛拭子作为标本采集、检验方式，其中甲型肝炎也可使用采集静脉血的方式进行检验，而伤寒、流行性脑脊髓膜炎发热期、流行性感冒、麻疹发病中后期均可采用静脉血采集的方式进行检验，其中流行性感冒、流行性脑脊髓膜炎也可使使用咽拭子的方式进行采集，炭疽可采用血液、粪便、痰液、脑脊液等多方面采集进行检验。
三、采集注意事项各类传染病、感染性疾病患者的微生物检验标本采集工作均应在接受抗菌药物治疗前进行，主要目的在于防止抗生素的应用导致病原微生物数量减少、难以检测；采集前的准备工作中除物品准备外，也应提前将受采集者信息、检验项目、检验目的、采集日期、标本来源等基础信息填写至采集带或标本瓶上，防止由于放入采集物、采集标本后由于包装表面平整度欠佳等因素导致标记不清的状况，同时可以在采集前多次反复核对患者信息，降低采集错漏情况的发生；采集过程中则需要严格执行无菌操作原则，其目的不仅在于防止病原微生物扩散，更重要的是医护人员的自我防护；在采集量的选择上，一般宜取多不取少，避免由于采集病菌过少导致难以检验、需要再次采集检验情况的发生，在血液采集量的选择上应注意，由于儿童的一次能够采集的血液量较少，所以在采集前的准备工作中要完善充分，做好小儿安抚工作，选择整体情况良好的静脉血管尽心采集；采集开始前的备皮、消毒工作也十分重要，一般在血液、脑脊液等采集工作中都需要严格遵守消毒工作，如患者本人无制动需求，并且具有自主活动能力，则可提前嘱患者使用清水、肥皂简单清洁局部皮肤，一些尿液、粪便病原生物标本的采集工作前，一般都可嘱患者使用温水简单清洁外阴、生殖器等处，防止生殖系分泌物误入标本收集容器内影响检验结果，四、结束语由上可见，在临床病原微生物的采集工作中包含且十分重要的操作原则即为无菌原则，其意义是双向的，一方面是医疗防护目的，在另一些外伤性微生物检验采集工作中也是为了保护患者，防止进一步感染的发生，但也需要注意患者的消毒剂过敏史；另外，如患者体表感染、外伤性感染病灶不止一处时，应对每一处病灶进行分别采集收纳，并且在标本容器上进行详尽描述记录，以在后续复查采集时能够与上次采集位置一一对应，减少其中误差；在各类痰液、尿液、粪便的采集工作中，由于标本的采集操作者通常为患者本人，所以医疗工作者的从旁协助与操作指导是必不可少的，如最为常见的晨尿留取原则、粪便留取前一天的饮食注意事项、痰液收集方法等；而所有标本采集后都应尽快转送入检验室进行检验，如不能立即送检时，应严格把控采集标本的保存环境清洁程度、光线、温度、湿度等项目，防止由于保存不当导致的检验异常。
临床微生物标本的正确采集与运送图文
临床微生物标本的正确采集与运送图文微生物学在临床上发挥着重要作用，正确的采样和运送过程对于准确诊断和治疗具有决定性影响。
本文将介绍临床微生物标本采集和运送的基本原则。
一、标本采集前的准备工作1.1 了解患者的情况在进行采样之前，了解患者病史、症状、用药情况等可以帮助选择合适的采样部位和方法。
例如，对于胸腔感染，应在患侧插入穿刺针进行胸腔穿刺；对于泌尿系感染，应在初尿流进行尿液采集。
1.2 选择合适的采样部位和方法选择合适的采样部位和方法可以提高标本的阳性率。
下面介绍一些常见的采样部位和方法：血液标本血液标本是诊断血液感染和细菌性心内膜炎的关键。
采血前需要消毒采血部位，并选择合适的采血管和采血顺序。
常见的采血部位有手腕、肘窝、背侧手腕、踝部，而采血顺序为无菌采血管先于常规采血管。
尿液标本尿液标本是诊断泌尿系感染的重要手段。
采样前需要让患者清洁外阴，并选择合适的采样时机。
中段尿和早晨起床第一次排尿的尿液最为理想。
呼吸道标本呼吸道标本可用于诊断呼吸道感染、肺炎等疾病。
采样前需要清洁口腔和鼻腔，并采用合适的方法进行采样。
常见的方法有喉拭子和气管切开。
胃肠标本胃肠标本可用于诊断肠道感染、胃溃疡等疾病。
采样前需要清洁口腔和肛门，并选择合适的采样方法。
常见的方法有粪便标本、肠内容物吸取和胃液抽取。
1.3 配置必要的采样器材采集标本需要用到一些专门的器材，例如无菌采血针、采尿器、拭子、鱼雷管等。
采集前需要进行消毒和验证，并确保器材无损坏和过期。
二、标本采集时的注意事项2.1 彻底消毒采样部位对于需要皮肤穿刺的采样部位，必须进行彻底的消毒，以避免细菌污染。
消毒前应先清洁采样部位，并使用适宜的消毒剂进行消毒。
2.2 采样过程中遵循无菌原则采样过程中必须遵循无菌原则，以防止其他有害细菌或病毒的污染。
进行采样操作前，应先进行手卫生并配备隔离装备。
2.3 避免污染和误差在采集标本的过程中，必须避免污染和误差。
应严格按照标本类型、采样方法和储存条件进行操作，防止错误或污染发生。
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标本质量的好坏直接影响诊断结果的正误, 不当标本可导致假阴性。
假阳性结果的出现。
因此正确采集临床微生物标本, 直接影响到微生物培养鉴定结果。
可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗,为临床科学用药和成功的感染控制提供依据,是正确、合理使用抗菌药物, 延缓细菌耐药, 减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步, 也是最重要的一步。
为此应正确采集各种细菌学标本。
一、血液标本的采集1、皮肤消毒程序:a.75%酒精清洁局部皮肤 30s 以上。
b. 待皮肤干后, 再用1%-2.%碘酊作用 30s 或 10%碘伏作用 90s 以上,从穿刺点中心部位向外画圈消毒,范围不应小于 3cm (直径 , 且不能用手指触摸消毒后的皮肤。
c. 皮肤碘酒干后 (约1min , 穿刺采集血液, 采血量成人 10-20ml ,婴幼儿 1-2ml 。
儿童 3-5ml 。
d. 培养瓶消毒程序:70%酒精擦拭血培养橡皮塞,作用 60s ;用无菌棉签清除橡皮塞表面残余酒精。
用注射器无菌采血后立即在床旁接种培养瓶,并迅速轻摇,充分混匀防止凝固,但又不可剧震以防溶血。
立即送检,切勿冷藏。
一般情况下可把血培养瓶放 20-22℃。
不放冰箱。
2、注意事项:a. 怀疑菌血症应尽早采血,体温上升(38.5℃采血可提高阳性率, 但也要防止因等待而延误时机。
b. 对已经使用抗菌药物,而又不能停药者,也应在下次用药前采血。
切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本, 也不能从静脉导管及动脉插管中取血。
c. 培养基与血液之比以 10:1为宜,以稀释血液中的抗生素,抗体等杀菌物质;有人主张对接受抗菌药物治疗的病人, 培养基与采血量之比可为 20:1或大于这个比例。
d. 近年研究表明, 将血液注入血培养基前, 更换针头反而易导致污染。
e. 每例至少采血两次,间隔 0.5-1h , 以利于提高阳性率和区分感染菌与污染菌。
f. 疑为细菌性心内膜炎及布鲁氏病的病人,以肘动脉或股动脉采血为宜,除在发热期采血外,并要多次采血(24h3-4次和增加采血量(可增加 10ml 。
g 采血后立即送检,如不能立即送检可置室温,而不能放置冰箱。
h 如临床表现很似败血症,而血培养多次阴性者,提示考虑厌氧菌和真菌感染的可能。
二、呼吸道痰标本1、采集方法:a. 清晨起床后用凉开水漱口多次,以除去口腔内大量杂菌,用力咳出肺深部的脓痰, 置于清洁干燥容器中送检。
b. 痰量极少者可用 45℃ 3%-5%的氯化钠溶液约 5ml 雾化吸入 min, 进行导痰。
对于咯痰量少的幼儿,可轻轻压迫胸骨上部的气管,当其咯痰后用无菌棉棒采集标本。
c. 咳嗽无力或昏迷病人,可用吸痰管经鼻腔或口腔经气管腔内吸引痰液送检。
d. 气管切开者可以深入透气孔中取痰。
e. 可用支气管镜直接在病灶部位采集高浓度的病原菌。
f. 用无菌导管经鼻腔插入气管镜内,缓慢注入无菌蒸馏水 5ml ,取出导管。
留取患者在 3h 内咳出的痰液,放入无菌容器中送检。
2、注意事项:a. 痰标本的采集以晨痰为准,此时患者痰量较多且含菌量也多。
b. 标本采集后立即送检,若不能及时送检者,可暂存 4℃冰箱。
若晚 1-2h 接种,会失去苛氧菌,并使得革兰阴性菌过分生长。
c. 可接受的标本:痰;支气管灌洗液,支气管刷,支气管活检;肺吸出物和肺活检。
不能接受的标本:唾液; 24h 留的痰(结核杆菌培养除外 ;拭子。
d. 痰标本的质量评价:(用显微镜筛选在低倍镜下,检查鳞状上皮细胞,至少 10个视野,集中在有白细胞处,合格标本为白细胞与鳞状上皮细胞比例大于 2:1。
三、鼻咽喉拭子标本A. 用湿的拭子(生理盐水 ;需插两个鼻孔;深入 3.3cm 左右,转动 4-5次;以上用于诊断金黄色葡萄球菌暴发时的鼻带菌者。
B. 咽拭子、口腔拭子(1采集方法(到细菌室取专用拭子 a. 患者清水漱口后, 由检查者将其舌外拉, 用棉拭子将咽后壁或悬雍垂的后侧反复擦拭数次; b. 化脓性扁桃体炎、口腔念珠菌病时, 直接用棉拭子在病灶部位擦拭; c 插入运送培养基中立即送检, 防止干燥。
(2注意事项 a. 棉拭子应避免触及舌、口腔黏膜和唾液 ;b. 采集标本前数小时不可用消毒药物漱口或接触病灶局部。
六、胃肠道1、粪便 a. 采集方法选取脓血、黏液粪便 2-3g ,液体粪便取絮状物 1-2ml 。
盛于灭菌瓶中或蜡纸盒中及时送检。
b. 注意事项①标本要采集新鲜的,陈旧标本影响阳性检出率; ②切忌粪尿混合; ③若要分离阿米巴, 标本要立即送检并注意保温; ④运送培养基可提高阳性率;⑤分离难辨梭菌时需选不成形或水样便;⑥霍乱弧菌、大肠杆菌Ο157感染的腹泻便则为水样便或血性便; ⑦标本在病理早期或治疗前采集;⑧一般认为用抗菌药三天后, 标本培养病原菌阴性。
2、肛拭子在无法获得粪便的情况下,可用经无菌甘油水或无菌生理盐水湿润的肛拭子插入肛门 4-5cm (幼儿 2-3cm 处,轻轻旋转擦取直肠表面黏液后取出,置运送培养基中送检。
七、泌尿道根据卫生部《医学感染诊断标准》 (试行通知,泌尿系统临床诊断为:患者出现尿频、尿急、尿痛等尿路刺激症状,或有下腹触痛、肾区叩痛、伴或不伴发热,并具有下列情况之一:(1尿检白细胞男性≥ 5个 /高倍视野,女性≥ 10个 /高倍视野,插导尿管患者应结合尿培养; (2临床已诊断为泌尿道感染,或抗菌治疗有效而认定的泌尿道感染。
1、中段尿 (1 采集方法①女性采样前用肥皂水或 0.1%的高锰酸钾溶液冲洗外阴, 留取中段尿 10ml 于灭菌容器内。
②男性用肥皂水清洗尿道口, 或 0.1%的碘伏溶液消毒尿道口,灭菌纱布擦干,留取中段尿 10ml 于灭菌容器内。
(2注意事项①导尿虽然可以减少污染, 但是多次重复导尿可以造成逆行性感染, 因此近年来大多采用中段尿。
②女性病人最好采取膀胱截石位由护士采取标本, 减少污染。
③采集标本以晨起第一次尿液为佳。
④采集标本后,若不能在 1h 内送检,暂放 4℃冰箱,但不能超过 8h 。
若尿液标本在室温下放置超过 2h ,即使接种培养结果细菌数≥ 104 cfu/ml获 103cfu/ml,也不能作为诊断依据,应重新留取标本送检。
⑤疑为尿道炎时可将最初 3-4ml 尿液收集在灭菌容器内。
该尿中即使有少数细菌, 如反复检查为同一细菌,也应考虑为病原菌。
⑥儿童在多数情况下,仅冲洗外阴是不够的, 故采集标本较为困难。
如果尿内细菌明显增多,可以高度怀疑为尿路感染,无菌则可否定。
⑦若细菌培养结果为两种或两种以上细菌, 需考虑污染可能, 建议重新留取标本送检。
⑧尿液中不得加入防腐剂,消毒剂否则影响阳性检出率。
2、膀胱穿刺采集法避免污染是很困难的,培养结果与病情不符时,或尿厌氧菌培养,或婴幼儿中段尿采集困难时,可以用耻骨上穿刺膀胱内采尿。
3、留置导尿者采集法拔去闭式引流的集尿袋,弃去导尿管前段尿液,留无污染的膀胱内尿液 10ml 送检。
不可从集尿袋下端留取标本。
八、脑脊液1、采集方法由临床医师以无菌方法收集脑脊液 3-5ml (细菌 1ml , 真菌 2ml 抗酸杆菌 2ml ,病毒 1ml 盛于无菌试管或小瓶中立即送检。
2、注意事项(1采集标本后立即送检,因脑膜炎奈瑟菌离体后迅速自溶,肺炎链球菌及流感嗜血杆菌也易死亡; (2 疑为上述细菌感染时,应注意保温,不可置冰箱或低温保存。
十、穿刺液标本穿刺液包括胸水、腹水、心包液、关节液、鞘膜液。
1、采集方法由临床医师行穿刺术抽取。
胸腹水可收集 5-10ml, 心包液、关节液收集2-5ml ,置于无菌含抗凝剂的试管或小瓶中,充分混匀后,立即送检。
抗凝剂10%EDTA二钠盐,标本与抗凝剂之比 10:1。
2、注意事项:⑴标本采集应在患者用药之前或停止用药 1-2天后进行;⑵不能立即送检可置 4℃冰箱保存;⑶疑为淋病性关节炎患者的关节液,采集后立即送检,或床旁培养为佳;⑷不能用棉拭子浸蘸标本送检。
十一、脓汁及病灶分泌物1、伤口:⑴表面伤口拭子采集方法及注意事项①仅限于皮肤与皮下组织, 包括手术切口、褥疮溃疡、新生儿脐炎、婴儿脓疮病。
②用无菌生理盐水或 75%的酒精擦去病灶表面渗液; ③用无菌棉拭子抹去及较深部的脓汁分泌物或组织送检; ④采集褥疮溃疡标本时应采集褥疮边缘的脓性分泌物, 拭子放在运送培养基中立即送检, 不要采集创口表面的渗液。
⑵伤口、脓肿、窦道、坏疽组织采集方法及注意事项①闭锁性脓肿用碘酒和酒精消毒皮肤后, 用灭菌注射器穿刺抽取全部脓液送检, 疑为厌氧菌感染时, 排去针管内空气将针头插入灭菌橡胶塞内送检; ②伤口处若有脓及渗出物要用无菌棉签深入各种窦道中擦拭, 用小刀刮取,穿刺抽吸或手术切除获得深处伤口标本;③当创伤出血时,敷有药物在 2h 以内及烧伤在 12h 内均不应采集标本, 此时获得阳性结果机会甚少。
④采集标本注意观察脓汁及分泌物性状、色泽、气味等。
可为培养鉴定提供依据。
⑶烧伤创面①烧伤创面需要脓性分泌物, 焦痂迅速分离变棕黑、黑或紫罗兰色, 烧伤边缘水肿。
患者发烧 >38℃或低体温 <36℃,合并低血压。
②用无菌生理盐水冲洗伤口创面。
③由于创面部位不同, 细菌种类也不尽相同, 要用灭菌棉拭子采集多个部位的炎症区送检。
④采集痂下变黑或变性的不健康区边缘或引流液等做定量培养及组织活检。
2、厌氧伤口拭子⑴厌氧专用棉棒或玻璃棒触及深部脓汁;⑵可用注射器抽吸,排去针管内空气将针头插入灭菌橡胶塞内送检; ⑶立即送检, 送检过程中必须保持在无氧条件; ⑷不宜做厌氧菌培养的有痰、喉拭子、鼻咽拭子、齿龈拭子、直肠、阴道和宫颈拭子以及回肠、结肠造瘘术的流出物,胃、小肠及大肠内容物等。
3、尿道口分泌物拭子⑴男性用无菌纱布擦拭和清洗尿道口,然后采取从尿道口溢出的脓性分泌物; ⑵采集前列腺液时, 先将尿道、膀胱冲洗, 然后从肛门用手指按摩前列腺, 促使前列腺液溢出; ⑶女性病人先用灭菌纱布或棉拭子仔细擦拭或清洗尿道口, 然后从阴道内诊压迫尿道, 使分泌物溢出; ⑷取子宫颈分泌物,先用内窥镜扩张阴道, 然后从宫颈口用灭菌棉拭子采取分泌物,尽量避免被阴道宫颈附近正常菌群的污染。
4、蜂窝织炎⑴用无菌生理盐水或酒精消毒皮肤;⑵用细针在炎症最显著处穿刺吸引⑶抽少量灭菌生理盐水在针管内;⑷注入无菌试管内送检。
5、组织标本⑴活体组织采取的微量标本,可直接接种在培养基内;⑵表浅组织可直接用棉拭子擦拭、小刀刮去;⑶较大组织块的表面可采用烧灼或浸入沸水中 5-10s ,然后用灭菌剪刀切开, 取其中的脓汁; ⑷深部组织标本可经皮肤穿刺或手术切取送检; ⑸组织标本不可用福尔马林固定;⑹有时也可将沾有脓汁的最内层敷料放入无菌平皿内送检。