灌胃方法
腹腔注射灌胃实验报告
1. 掌握腹腔注射和灌胃的操作方法；2. 了解腹腔注射和灌胃的优缺点；3. 掌握实验动物的基本操作技术。
二、实验材料1. 实验动物：大鼠（体重约200-300g）；2. 实验药品：生理盐水、葡萄糖、抗生素等；3. 实验器材：注射器、针头、酒精棉球、镊子、剪刀、解剖盘、剪刀、纱布等；4. 实验环境：实验室。
三、实验方法1. 腹腔注射实验（1）准备工作：将实验动物固定在解剖盘上，用酒精棉球消毒实验动物腹部皮肤。
（2）注射操作：左手抓取大鼠腹部皮肤，右手持注射器，针头斜向上，沿腹中线方向进针，进入腹腔后回抽无血液，缓慢注入药物。
（3）注射完毕，用纱布覆盖注射部位，观察动物反应。
2. 灌胃实验（1）准备工作：将实验动物固定在解剖盘上，用酒精棉球消毒实验动物口腔及咽部皮肤。
（2）灌胃操作：左手抓住大鼠头部，右手持注射器，针头沿一侧口角进针，紧贴咽后壁，头后仰以便伸直消化道，缓慢注入药物。
（3）注射完毕，用纱布覆盖注射部位，观察动物反应。
四、实验结果1. 腹腔注射实验：注射过程中，大鼠无不良反应，注射完毕后，动物精神状态良好。
2. 灌胃实验：注射过程中，大鼠无明显不适，注射完毕后，动物精神状态良好。
1. 腹腔注射和灌胃是两种常见的实验动物给药方式，各有优缺点。
2. 腹腔注射的优点是操作简便，药物吸收迅速，但可能引起动物应激反应，且部分药物不适宜腹腔注射。
3. 灌胃的优点是给药量准确，适用于多种药物，但操作过程中可能损伤动物，且药物吸收速度较慢。
4. 在实验过程中，应严格遵守操作规程，确保动物安全。
六、实验结论1. 通过本次实验，掌握了腹腔注射和灌胃的操作方法。
2. 了解腹腔注射和灌胃的优缺点，为今后的实验研究提供参考。
3. 提高了实验动物的基本操作技能，为科研工作奠定基础。
大鼠灌胃实验报告
一、实验目的本实验旨在探究灌胃方法在动物实验中的应用效果，通过对大鼠进行灌胃实验，观察灌胃给药对大鼠生理指标、血液指标和病理组织学的影响，评估灌胃方法的可靠性和安全性。
二、实验材料1. 实验动物：SPF级SD大鼠，体重180-220g，雌雄各半。
2. 实验药物：已知药物，剂量为10mg/kg。
3. 试剂与仪器：灌胃针、注射器、电子天平、血液分析仪、病理切片机、显微镜等。
三、实验方法1. 将SD大鼠随机分为实验组和对照组，每组10只。
2. 实验组大鼠通过灌胃途径给予已知药物，剂量为10mg/kg，对照组大鼠给予等体积的生理盐水。
3. 灌胃操作：将大鼠固定在实验台上，用灌胃针将药物缓慢注入大鼠口腔，直至药物完全进入消化道。
4. 给药后，观察大鼠的生理指标、血液指标和病理组织学变化。
5. 实验结束后，对大鼠进行解剖，采集相关组织样本，进行病理切片和显微镜观察。
四、实验结果1. 生理指标：实验组大鼠在给药后出现轻微的呕吐、腹泻等症状，但症状持续时间为1-2天，未出现死亡现象。
对照组大鼠生理指标无明显变化。
2. 血液指标：实验组大鼠给药后血液白细胞计数、红细胞计数、血红蛋白浓度等指标无明显变化，与对照组相比无统计学差异。
3. 病理组织学观察：实验组大鼠胃黏膜、小肠黏膜、肝脏、肾脏等器官组织无明显病变，与对照组相比无统计学差异。
五、讨论与分析1. 灌胃方法是一种常用的动物实验给药途径，具有操作简便、给药剂量准确、对动物生理影响较小的特点。
2. 本实验结果显示，灌胃给药对大鼠生理指标、血液指标和病理组织学影响较小，说明灌胃方法在本实验中具有较高的可靠性和安全性。
3. 然而，灌胃方法也存在一定的局限性，如给药剂量难以精确控制、药物吸收速度较慢等。
在实际应用中，应根据实验目的和动物种类选择合适的给药途径。
六、结论本实验结果表明，灌胃方法在大鼠实验中具有较高的可靠性和安全性，可用于动物实验的给药途径。
在后续实验中，可根据具体实验目的和动物种类，选择合适的灌胃方法，以获得准确的实验结果。
小鼠灌胃操作要点及注意事项
小鼠灌胃操作要点及注意事项小鼠灌胃是一种常用的实验操作方法，用于给小鼠灌输物质。
以下是小鼠灌胃操作的要点和注意事项：一、操作要点：1.准备工作：a.准备所需的灌胃针、注射器、化学药品等。
b.准备小鼠，先将小鼠固定在操作台上，保持其安静。
c.为小鼠准备灌胃槽或灌胃袋，确保其质量干净。
2.前置处理：a.按照实验需要，给小鼠空腹或饥饿。
b.清理小鼠口腔，将小鼠头部固定，用湿纱布或棉签轻轻擦拭小鼠口腔内侧，以确保吞咽功能正常。
3.灌胃操作：a.对小鼠进行适当的麻醉或麻醉前处理，以减轻小鼠的压力和疼痛感。
b.将小鼠牙齿用软胶膨化剂夹住（或用手指轻轻按压），使其张嘴。
c.将灌胃针缓慢插入小鼠食道，并确保进入胃内，但不要插得太深。
可以通过咽喉喉反射来判断是否插入正确。
d.缓慢注入要灌胃的药物或液体，避免引起窒息或误吸入气管。
e.缓慢拔出灌胃针，确保药物不会被小鼠吐出。
4.恢复：a.灌胃操作完成后，放开小鼠，并观察其情况，确保其恢复正常。
b.可以给小鼠提供适当的水和食物。
二、注意事项：1.灌胃操作需要高度的细心和耐心，确保操作平稳，避免误伤小鼠。
2.选择适当的灌胃针和注射器，以确保灌胃过程顺利进行。
3.在灌胃针插入前应检查其是否被弯曲或损坏，确保能正常灌胃。
4.在灌胃操作过程中，要避免过度灌注或迅速拔出灌胃针，以免引起小鼠呕吐或误吸。
5.灌胃前可以给小鼠提供适当的水和食物，以减轻其饥饿感和不适。
6.灌胃操作结束后，要观察小鼠的情况，如有异常表现应及时处理。
7.尽量减少灌胃操作的次数和时间，以减少小鼠的压力和疲劳感。
8.在进行小鼠灌胃操作时，应遵守实验伦理规范和相关法律法规。
总之，小鼠灌胃操作是一种常用的实验方法，但需要进行细致的操作和注意事项，以确保操作的准确性和小鼠的安全性。
同时，要尊重动物福利，遵循伦理和法律规定，以保护实验动物的权益。
小鼠灌胃操作要点及注意事项
小鼠灌胃操作要点及注意事项一、操作要点。
1.准备工作：在操作前要准备好所需物品：小鼠、胃管、吸管、注射器、药品或营养液等。
同时，还要确保操作过程中的安全和舒适性，维持操作环境的清洁和温度的适宜。
2.选择合适的胃管和吸管：胃管和吸管应根据小鼠的体重和年龄选择，胃管应略长于小鼠体长的1/5，吸管要略短于胃管的长度，以便有效吸取经过胃肠道的液体。
3.固定小鼠：将小鼠取出放入操作台上，用手掌将其身体固定，让小鼠头部向上，使其舌头伸出口外，用手持注射器或吸管轻压舌头，使其张开嘴巴。
4.插入胃管：将已冲洗干净的胃管沿着舌头推入口腔内，让其顶到舌根部的位置，然后沿着颈部咽喉处缓慢推进，直到胃管穿过食管，进入胃内为止。
注意：操作过程中要避免将胃管插入气管或肺部，同时要注意不要刺伤食管，以免引起感染。
5.插入吸管：将吸管插入口腔，经过较粗的食管及胃肠道，插入胃管一端，只留下另一端露出口外。
然后，将吸管口与注射器连接，缓慢将药物或营养液注入。
6.除去胃液：将药物或营养液注入胃管后，用注射器或吸管轻吸几次，排出胃液和药物或营养液中的气泡，然后拔出胃管和吸管，松开小鼠以便排空胃肠道。
二、注意事项。
1.准确测量：在给小鼠灌胃时，必须准确测量所需药物或营养液的剂量，尽可能减少误差和副作用。
3.保护小鼠：操作时要保持小鼠的身体舒适和安全，不要让其感到惊恐或疼痛。
将小鼠固定时避免施加过大的力量，插入胃管和吸管时不能过于粗暴。
4.清洁和消毒：使用过的器材要及时清洁和消毒，以避免污染和传播病原体。
综上所述，正确的小鼠灌胃操作方法和注意事项能有效提高实验结果的准确性和可靠性，从而确保实验的科学性和严密性。
灌胃方法——精选推荐
灌胃⽅法
给药剂量按⼈与动物体质量⼀剂量换算公式：
⼤⿏的剂量(mg/kg)=W×⼈的剂量(mg／kg)
W是换算系数在这⾥约等于6．5，制备药液浓度为0．185g／ml，每天2次给药，每次2ml，共计给药四周。
⼤⿏真武汤⾼剂量每天每次灌胃3ml，37.5g/kg，每天共灌胃6ml,约合⽣药7.5g；
⼤⿏真武汤中剂量每天每次灌胃3ml，18.75g/kg，每天共灌胃6ml,约合⽣药3.75g；
⼤⿏真武汤低剂量每天每次灌胃3ml，9.37g/kg，每天共灌胃6ml,约合⽣药1.87g，
中药组予以真武汤灌胃，给药剂量按⼈和动物体质量—剂量换算公式：⼤⿏的剂量（g/kg）=W×⼈的剂量（g/kg），W是换算系数约等于6.3。
⼤⿏剂量是18.9g/kg，约合⽣药3.78g，
间等效剂量换算⽅法折算⼤⿏服⽤剂量作为中剂量，按1:2:4设⾼中低三个剂量组，（中剂量为正常剂量）。
末次注射⼀周后给予药物⼲预，空⽩对照组及模型组
予⽣理盐⽔2mL灌胃，中药组给予中药灌胃治疗。
给药剂
量按⼈与动物体质量⼀剂量换算公式障]：⼤⿏的剂量
(mg／kg)=W×⼈的剂量(rng／kg)，W是换算系数在这⾥
约等于6．5，制备药液浓度为0．1859／IIll，共计给药四周。
小鼠灌胃操作要点及注意事项
小鼠灌胃操作要点及注意事项小鼠灌胃是一种常用的实验操作方法，用于给小鼠灌输溶液、药物或其他物质。
正确的灌胃操作可以保证实验结果的可靠性，同时也要注意对小鼠的生理和行为影响。
一、灌胃操作要点：1. 预备工作：(1) 准备所需的实验器材，包括灌胃针、注射器、药物或其他物质。
(2) 确保操作环境的清洁和消毒，以防止潜在的感染。
(3) 合理安排实验时间，以避免影响小鼠正常的进食、活动和休息。
2. 小鼠准备：(1) 选择适合的小鼠，一般选择体重在20-30g之间、健康的小鼠。
(2) 在操作前，将小鼠放置在灌胃台上，尽量保持其镇静和稳定。
(3) 清洁小鼠鼻孔和口腔，以防止灌胃时出现异物或分泌物。
3. 操作步骤：(1) 抓住小鼠的脖子部位，将小鼠的口腔打开。
(2) 将灌胃针插入小鼠的食管，插入位置应当与小鼠头部姿势平行，以减少损伤食管和误入气道的风险。
(3) 慢慢注入所需的溶液或物质，注射器压力应适中，以防止液体流入气管或其他不正确的位置。
(4) 边灌胃边轻轻摇动小鼠的体部，帮助溶液更好地进入胃部。
(5) 操作结束后，保持小鼠的体位稳定，以便溶液在胃中充分混合和吸收。
4. 灌胃后的处理：(1) 在灌胃结束后，及时将小鼠放回其饲养箱内，并观察其恢复情况。
(2) 注意监测小鼠的进食、水分摄入和体重变化，以评估灌胃对其生理状况的影响。
(3) 根据实验需求，可在一定时间范围内重复灌胃操作，但要注意避免对小鼠造成过多的应激和伤害。
二、注意事项：1. 灌胃操作需要经过专业培训，并严格按照实验室的规范操作。
操作人员应掌握灌胃技巧，并了解小鼠的生理特点和行为习性。
2. 灌胃针的选择要合适，长度和直径应根据小鼠的体重和年龄来选择，以免造成食管和胃部的损伤。
3. 注射器的压力要适中，过大的压力会导致溶液迅速注入胃部，增加小鼠感受到的不适。
过小的压力则可能导致溶液无法流入胃部。
4. 灌胃操作时要注意观察小鼠的反应，如有异常反应，如嗳气、剧烈挣扎等应立即停止操作，并观察小鼠的恢复情况。
小鼠灌胃操作实验报告
一、实验目的1. 掌握小鼠灌胃的基本操作技巧。
2. 熟悉灌胃过程中可能遇到的问题及解决方法。
3. 了解灌胃操作在实验研究中的应用。
二、实验原理灌胃法是实验动物给药的一种常用方法，通过将药物灌入动物的胃中，使药物在小肠吸收，达到实验目的。
灌胃法操作简便，对动物损伤较小，适用于多种实验研究。
三、实验材料1. 实验动物：昆明小鼠（体重20-25g，雌雄不限）。
2. 实验器材：灌胃针头、注射器、生理盐水、酒精、棉球、鼠笼、天平等。
3. 实验药物：2%尼可刹米溶液（10g/0.2mL）。
四、实验步骤1. 动物准备：选取体重相近、性别相同的小鼠2只，进行编号和称重。
2. 灌胃操作：- 将小鼠固定在鼠笼中，使其头部和颈部成一直线。
- 使用酒精棉球消毒小鼠口鼻部位。
- 右手持注射器，将灌胃针头插入小鼠口角，沿着咽后壁缓慢推进至食道。
- 在推进过程中，观察小鼠的反应，如出现不适，立即停止操作。
- 当灌胃针头进入食道后，调整角度，使针头进入胃内。
- 将2%尼可刹米溶液缓慢注入小鼠胃中，注射完毕后迅速拔出灌胃针头。
3. 灌胃后观察：灌胃后，观察小鼠的反应，如出现异常，及时进行处理。
4. 实验结束：实验结束后，将小鼠放回鼠笼，并进行日常管理。
五、实验结果1. 灌胃操作顺利进行，小鼠无异常反应。
2. 灌胃后，小鼠表现正常，活动如常。
六、实验讨论1. 灌胃操作过程中，要注意保持小鼠头部和颈部成一直线，方便灌胃针头进入。
2. 操作时动作要轻柔，避免损伤小鼠食道。
3. 灌胃针头插入过程中，若小鼠出现不适，应立即停止操作，并观察小鼠反应。
4. 灌胃后，要注意观察小鼠的反应，如出现异常，应及时进行处理。
七、实验总结本次实验成功掌握了小鼠灌胃操作技巧，了解了灌胃操作在实验研究中的应用。
在实验过程中，要注意操作规范，确保实验顺利进行。
八、注意事项1. 灌胃操作前，应充分了解实验目的和操作步骤，确保实验顺利进行。
2. 操作过程中，要注意保持小鼠头部和颈部成一直线，避免损伤小鼠食道。
灌胃方法
给药剂量按人与动物体质量一剂量换算公式：
大鼠的剂量(mg/kg)=W×人的剂量(mg／kg)
W是换算系数在这里约等于6．5，制备药液浓度为0．185g／ml，每天2次给药，每次2ml，共计给药四周。
大鼠真武汤高剂量每天每次灌胃3ml，37.5g/kg，每天共灌胃6ml,约合生药7.5g；
大鼠真武汤中剂量每天每次灌胃3ml，18.75g/kg，每天共灌胃6ml,约合生药3.75g；
大鼠真武汤低剂量每天每次灌胃3ml，9.37g/kg，每天共灌胃6ml,约合生药1.87g，
中药组予以真武汤灌胃，给药剂量按人和动物体质量—剂量换算公式：大鼠的剂量（g/kg）=W×人的剂量（g/kg），W是换算系数约等于6.3。
大鼠剂量是18.9g/kg，约合生药3.78g，
间等效剂量换算方法折算大鼠服用剂量作为中剂量，按1:2:4设高中低三个剂量组，（中剂量为正常剂量）。
末次注射一周后给予药物干预，空白对照组及模型组
予生理盐水2mL灌胃，中药组给予中药灌胃治疗。
给药剂
量按人与动物体质量一剂量换算公式障]：大鼠的剂量
(mg／kg)=W×人的剂量(rng／kg)，W是换算系数在这里
约等于6．5，制备药液浓度为0．1859／IIll，共计给药四周。
实验动物的给药途径和方法及药量计算方法
一．经口给药法（一）(一)灌胃法此法给药剂量准确，是借灌胃器将药物直接灌到动物胃内的·种常用给药法。
1．鼠类：鼠类的灌胃器由特殊的灌胃针构成。
左手固定鼠，右手持灌胃器，将灌胃针从鼠的右U角中，插入口中，沿咽后壁慢慢插入食道，使其前端到达膈肌位置，灌胃針插入时应无阻力，如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出，以免损伤、穿破食道或误入气管。
2．兔、犬等：灌胃一般要借助于开口器、灌胃管进行。
先将动物固定，再将开口器固定于上下门齿之间。
然后将灌胃管(常用导尿管代替)从开口器的小孔插入动物口中，沿咽后壁而进入食道。
插入后应检查灌胃管是否确实插入食道。
可将灌胃管外开口放入盛水的烧杯中，若无气泡产生，表明灌胃管被正确插入胃中，未误入气管。
此时将注射器与灌胃管相连，注入药液。
(二)口服法口服给药是把药物混入饲料或溶干饮水中让动物自由摄取。
此法优点是简单方便，缺点是剂量不能保证准确，且动物个体间服药量差异较大。
大动物在给予片剂、丸剂、胶囊剂时，可将药物用镊子或手指送到舌根部，迅速关闭口腔，将头部稍稍抬高，使其自然吞咽。
二、注射给药法(一)皮下注射皮卜注射一般选取皮下组织疏松的部位，大鼠、小鼠和豚鼠可在颈后肩胛问、腹部两侧作皮下注射；家兔可在背部或耳根部作皮卜注射；猫、犬则在大腿外侧作皮下注射。
皮下注射用左手拇指和食指轻轻提起动物皮肤，右手持注射器，使针头水平刺入皮下。
推送药液时注射部位隆起。
拨针时，以手指捏住针刺部位，可防止药液外漏。
(二)肌肉注射肌肉注射一般选肌肉发达，无大血管通过的部位。
大鼠、小鼠、豚鼠可注射大腿外侧肌肉；家兔可在腰椎旁的肌肉、臀部或股部肌肉注射；犬等大型动物选臀部注射。
注射时针头宜斜刺迅速人肌肉，回抽针栓如无回血，即可注射。
(三)腹腔注射给大鼠、小鼠进行腹腔注射时，以左手固定动物，使腹部向上，为避免伤及内脏，应尽量使动物头处于低位，使内脏移向上腹，右手持注射器从下腹两侧向头方刺入皮下，针头稍向前，再将注射器沿45角斜向穿过腹肌进入腹腔，此时有落空感，回抽无回血或尿液，即可注入药液。
小鼠灌胃的操作和注意事项
小鼠灌胃的操作和注意事项
答案：
在动物实验中，灌胃给药是一种常用的给药方式，尤其在生理、药理、免疫等多个学科的研究中。
本文将详细介绍小鼠灌胃给药的过程和注意事项。
灌胃给药方法适用于小鼠和大鼠等多种实验动物，操作简便，用药剂量准确。
在给药过程中，需要严格控制给药的量和次数，以确保实验结果的准确性。
首先，我们需要根据小鼠的体重和药浓度来确定给药的量。
一般来说，20g左右的小鼠可以给0.2毫升药物。
在给药过程中，我们要保持小鼠的头部和颈部成一条直线，避免药物流入口腔。
在给药时，我们用左手抓住小鼠的颈部，向下压，收紧，提起。
同时，要用右手拿着灌胃针，压着小鼠的舌头，从上颚轻轻向内进入。
在这个过程中，我们要密切关注小鼠是否有吞咽的动作。
如果遇到阻碍，我们可以轻轻晃动灌胃针，直到遇到刺空感为止。
对于大鼠的灌胃给药，我们首先要将大鼠头部固定好，使其不能随意摆动，使大鼠身体成一条直线。
然后，我们从大鼠一侧口角入针，沿上颚，咽后壁，顺着大鼠的吞咽动作将其引入胃内。
在此过程中，我们要密切关注大鼠的反应，避免其出现明显的挣扎和呛咳现象。
兔的灌胃方法
兔的灌胃方法对于兔的灌胃方法，首先需要强调的是灌胃是一种医疗技术，必须由专业的兽医或者经验丰富的兽医技师来进行操作。
在进行灌胃之前，必须对兔的病情和身体状况进行仔细的评估，以确保灌胃的安全和有效性。
以下是关于兔的灌胃方法的详细介绍。
一、灌胃前的准备工作1. 对兔的病情评估：在进行灌胃之前，必须对兔的病情进行仔细的评估，包括症状表现、体温、脉搏、呼吸等，从而确定是否需要进行灌胃。
2. 准备灌胃所需工具：灌胃需要使用特定的灌胃器具，例如塑料灌胃管、注射器等，确保这些工具是清洁和消毒的。
3. 准备灌胃液：灌胃液的配制必须符合兔的身体状况和病情，通常包括生理盐水、葡萄糖溶液等，配制过程需要严格遵循医生的指示。
二、灌胃的操作步骤1. 固定兔体：将兔体放置在固定位置上，可以使用专用的兔固定器具或者人工固定方式来确保兔体不会剧烈挣扎。
2. 清洁兔口腔：使用无菌纱布或者棉球清洁兔的口腔，确保口腔内没有食物残渣或者异物。
3. 插入灌胃管：将灌胃管缓慢而小心地插入兔的口腔直至食道，确保不会伤到兔的口腔组织，同时监测兔的反应。
4. 注入灌胃液：通过灌胃管缓慢注入预先准备好的灌胃液，注入速度要适中，确保兔能够接受并有充分的时间消化。
5. 吸出废液：在灌胃结束后，使用注射器等工具将兔体内的废液吸出，同时监测兔体的状态，确保不会出现异常情况。
6. 观察及处理：在灌胃结束后，需要对兔进行观察，确保兔能够适应并吸收灌胃液，及时处理可能出现的不良反应或并发症。
三、灌胃后的护理工作1. 细心护理：灌胃后需要对兔进行细心护理，包括保持环境清洁、观察兔体的情况、鼓励兔适度运动等。
2. 适当饮食：在兔恢复过程中，需要给予兔充足的水和适量的易消化食物，以促进兔的胃肠功能的恢复。
3. 定期复查：在灌胃结束后，需要定期复查兔的身体状况，确保病情得到控制和改善。
兔的灌胃方法需要严格遵循医生的指示和在专业人士的指导下进行，任何未经训练和专业知识的个人都不应该随意进行兔的灌胃操作，以免给兔带来更大的伤害。
药理学实训报告小鼠灌胃
一、实验目的1. 熟悉小鼠灌胃操作的步骤和技巧。
2. 掌握灌胃法在小鼠实验中的应用。
3. 观察并分析灌胃后小鼠的反应，为后续药理学实验提供参考。
二、实验原理灌胃法是一种将药物、营养剂或生理盐水等液体直接送入小鼠胃内的实验方法。
通过灌胃法，可以观察药物在小鼠体内的吸收、分布、代谢和排泄过程，以及药物对小鼠生理、生化指标的影响。
三、实验材料1. 实验动物：健康昆明种小鼠，体重20-25g。
2. 实验药物：燕滨扶正胶囊。
3. 实验器材：小鼠灌胃器、电子秤、秒表、实验记录表等。
四、实验方法1. 实验分组：将小鼠随机分为对照组、低剂量组、中剂量组和高剂量组，每组10只。
2. 灌胃操作：（1）将小鼠固定在实验板上，用酒精棉球消毒小鼠的颈部皮肤。
（2）将灌胃器插入小鼠的口腔，缓慢推进至胃部，确保灌胃液进入胃内。
（3）缓慢注入灌胃液，灌胃量以每只小鼠0.2ml计算。
（4）灌胃过程中，注意观察小鼠的反应，如出现挣扎、打喷嚏、呼吸急促等情况，应立即停止灌胃。
3. 灌胃后观察：（1）灌胃后，观察小鼠的精神状态、活动能力、进食情况等。
（2）记录小鼠的死亡情况，对死亡小鼠进行解剖，观察胃部、肝脏、肾脏等器官的病理变化。
4. 数据收集与分析：（1）统计各组小鼠的存活率、死亡时间、死亡原因等指标。
（2）对灌胃前后小鼠的生理、生化指标进行检测，如体重、血液生化指标等。
（3）分析数据，探讨燕滨扶正胶囊对小鼠的影响。
五、实验结果1. 存活率：对照组、低剂量组、中剂量组和高剂量组的存活率分别为100%、100%、90%和80%。
其中，高剂量组小鼠的存活率显著低于其他组（P<0.05）。
2. 死亡原因：高剂量组小鼠死亡原因主要为呼吸抑制和肝脏损伤。
3. 生理、生化指标：灌胃前后，各组小鼠的体重、血液生化指标等无明显差异。
六、实验讨论1. 灌胃法是一种简单、易行的小鼠实验方法，适用于观察药物对小鼠的影响。
2. 燕滨扶正胶囊对小鼠具有一定的刺激作用，高剂量组小鼠出现呼吸抑制和肝脏损伤，提示燕滨扶正胶囊的毒性作用。
灌胃方法
随着生命科学技术的发展，动物实验已成为医学实验研究的基本方法。
根据实验研究目的、实验动物的种类及药物剂型、剂量的不同，要求对实验动物实施不同的给药方法。
尤其对于药物的毒理、药效的研究和药物剂量的确定，经口灌胃给药方法是一种重要的途径。
在国内文献上却很少见到具体的描述。
在此，作者将在实践中摸索出的一套实用于小鼠、大鼠、豚鼠、家兔经口灌胃给药的方法介绍如下。
一、灌胃器具制作1.1小鼠、大鼠、豚鼠灌胃器的制作小鼠、大鼠灌胃器的来源有两个，一是从市面上购买特制的I2～l6号灌胃针。
二是自制。
自制方法为：取l2号普通注射针头，首先将针头尖部去掉，然后用细锉刀把去掉部分锉平、锉光，再用沙纸磨光滑，有条件时可在针尖处点焊成球型。
加工成有20度弧度的灌胃针，连接1ml或5ml的注射器，即成为大小鼠的灌胃器。
在打磨针头或加工弧度时用力一定要均匀，否则就会将针管弄扁，影响针管畅通。
豚鼠灌胃器，可采用大鼠灌胃器。
1.2家兔灌胃器的制作取12号腰椎穿刺针。
加工方法同小鼠、大鼠灌胃器的制作，针体长约9cm，并连接10ml或20ml注射器，即家兔灌胃器。
二、灌胃操作方法2.1小鼠经口灌胃给药方法先保定动物,即用右手将小鼠尾巴提起，置于鼠笼或粗糙的平面上，当小鼠向前挣扎时，用左手的拇指和食指捏住小鼠两耳后颈背皮肤，翻转小鼠置于掌心，拉直后肢，以小指压住小鼠尾巴即可。
在保定小鼠过程中，不要用力过大，勿握其颈部，以免窒息死亡。
以灌胃器轻轻压其头部，使口腔与食道成一条直线，再将灌胃针沿上腭壁轻轻进入食道，当灌胃针进入约3cm左右时即达胃内。
如果灌胃针的位置插入正确，小鼠可自行吞服药，灌胃针插入位置不正确，小鼠会强烈挣扎，必须拔出重插，否则可能将药物灌入气管，造成小鼠死亡。
注完药液后轻轻抽出灌胃针。
小鼠一次最大灌胃量为：0.4ml/10g.w。
2.2大鼠经口灌胃给药方法大鼠的捕捉方法与小鼠基本相同。
根据长期的实践经验，我们发现如用一块湿的纱布盖在大鼠身上，既可以防滑，又可以给初学者一种安全感。
大鼠灌胃操作方法
大鼠灌胃操作方法灌胃是一种常用的实验操作方法，用于将试验物质直接灌入动物的胃部进行研究。
在进行大鼠灌胃操作时，需要注意以下步骤和操作技巧。
1. 实验前准备在进行大鼠灌胃操作前，首先要准备好所需的工具和材料，包括：大鼠、灌胃针、灌胃管、药物或试剂、麻醉剂、手套、擦皮纸、酒精等。
同时，还需要准备好实验室动物的伦理审查文件，并且根据实验设计制定相应的实验操作流程。
2. 动物选择和准备选择健康的大鼠进行实验，并提前进行饲养和适应。
在灌胃操作过程中，需要将大鼠固定在操作台上以保证操作的准确性和安全性。
饲养中的大鼠应该保持精神健康、无任何疾病症状，并且在实验前进行禁食，通常禁食时间为12-24小时。
3. 麻醉在进行灌胃操作时，大鼠需要处于麻醉状态下，以减少疼痛和不适。
常用的麻醉剂包括乙醚、异氟醚等。
使用麻醉剂时，应该注意剂量的控制，避免过量而导致动物的不适。
4. 准备灌胃针和灌胃管灌胃针和灌胃管是灌胃操作中的关键工具，需要提前准备好。
灌胃针用于将药物填充到灌胃管内，而灌胃管则是将药物导入动物胃部的工具。
选择合适大小的灌胃管，根据大鼠的大小来选择灌胃针的长度和直径。
5. 灌胃操作（1）将大鼠固定在操作台上，保持头部稍微仰起的姿势，以便于导管插入。
（2）用酒精擦拭大鼠口腔和颈部的皮肤，保持操作区域清洁。
（3）用手指托开大鼠口腔，将灌胃针或灌胃管插入大鼠喉咙。
（4）缓慢地将灌胃针或灌胃管插入食道，直至其达到胃部。
在插入过程中，要轻轻旋转导管，以便顺利通过食道。
（5）将需要灌胃的药物缓慢注入灌胃针或灌胃管中，确保药物充分进入大鼠胃部。
（6）在药物灌入后，将灌胃针或灌胃管缓慢取出，避免损伤大鼠食道和胃部。
6. 观察和处理在灌胃结束后，应该观察大鼠一段时间，以确保其复苏良好，并及时给予适当的处理。
根据实验的要求，可能需要给予大鼠液体和食物来帮助其恢复。
总结起来，大鼠灌胃操作属于一种常用的实验方法，需要仔细准备工具和材料、选择合适的动物以及进行适当的麻醉。
实验动物的给药途径和方法及药量计算方法
一．经口给药法(一)灌胃法此法给药剂量准确，就是借灌胃器将药物直接灌到动物胃内得·种常用给药法。
1．鼠类：鼠类得灌胃器由特殊得灌胃针构成.左手固定鼠,右手持灌胃器，将灌胃针从鼠得右U角中,插入口中,沿咽后壁慢慢插入食道，使其前端到达膈肌位置,灌胃針插入时应无阻力，如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出，以免损伤、穿破食道或误入气管。
2.兔、犬等:灌胃一般要借助于开口器、灌胃管进行.先将动物固定，再将开口器固定于上下门齿之间。
然后将灌胃管（常用导尿管代替）从开口器得小孔插入动物口中，沿咽后壁而进入食道。
插入后应检查灌胃管就是否确实插入食道。
可将灌胃管外开口放入盛水得烧杯中，若无气泡产生,表明灌胃管被正确插入胃中,未误入气管。
此时将注射器与灌胃管相连，注入药液.(二）口服法口服给药就是把药物混入饲料或溶干饮水中让动物自由摄取.此法优点就是简单方便,缺点就是剂量不能保证准确,且动物个体间服药量差异较大。
大动物在给予片剂、丸剂、胶囊剂时，可将药物用镊子或手指送到舌根部，迅速关闭口腔，将头部稍稍抬高,使其自然吞咽.二、注射给药法（一）皮下注射皮卜注射一般选取皮下组织疏松得部位,大鼠、小鼠与豚鼠可在颈后肩胛问、腹部两侧作皮下注射;家兔可在背部或耳根部作皮卜注射;猫、犬则在大腿外侧作皮下注射。
皮下注射用左手拇指与食指轻轻提起动物皮肤，右手持注射器,使针头水平刺入皮下。
推送药液时注射部位隆起。
拨针时,以手指捏住针刺部位,可防止药液外漏。
（二）肌肉注射肌肉注射一般选肌肉发达，无大血管通过得部位。
大鼠、小鼠、豚鼠可注射大腿外侧肌肉；家兔可在腰椎旁得肌肉、臀部或股部肌肉注射；犬等大型动物选臀部注射.注射时针头宜斜刺迅速人肌肉,回抽针栓如无回血，即可注射。
（三)腹腔注射给大鼠、小鼠进行腹腔注射时,以左手固定动物，使腹部向上，为避免伤及内脏，应尽量使动物头处于低位,使内脏移向上腹,右手持注射器从下腹两侧向头方刺入皮下,针头稍向前,再将注射器沿4５角斜向穿过腹肌进入腹腔，此时有落空感，回抽无回血或尿液,即可注入药液。
兔灌胃方法
兔灌胃方法
简介：
灌胃法是用灌胃器将所应投给动物的药灌到动物胃内，是动物实验中重要的操作方法之一。
实验目的：
熟练掌握兔灌胃方法
实验器材：
兔灌胃管或导尿管，50mL注射器
实验流程：
1、本实验须二人完成，其中一人先将兔固定，另一人将开口器固定于兔口中，压住舌头，然后讲灌胃管（常用导尿管代替）从开口器的小孔插入兔口中，再沿上颚壁顺食管方向送入胃内，插入动作要轻、慢，边插边密切关注动物的反应。
2、将灌胃管的外端侵入水中，如有气泡逸出，则说明灌胃管误入气管，需拔出重新插，插好后将注射器连于灌胃管慢慢将药液推入，如很通畅，动物不挣扎，则说明已进入胃内。
3、为避免灌胃管内残留药液，需再注入5mL生理盐水，然后拔出胃管，取下开口器。
注意事项：
1、此方法会对动物造成一定程度的机械性损伤和心理上的影响，为了尽量减少这些不良影响，必须熟练掌握灌胃技术。
2、灌胃前须用灌胃管大致测量一下从口腔至胃内的位置（最后一根肋骨后）的长度，根据此距离估计灌胃管插入的深度。
成年兔插入的深度一般约为15cm。
3、事先将灌胃管在水或生理盐水中泡一下，使其容易插入而不损伤食管。
4、常用灌胃量：80--150ml。
灌胃给药的注意事项是什么
灌胃给药的注意事项是什么灌胃给药是指将药物直接灌入胃部进行给药的一种方法。
灌胃给药主要用于急救以及部分消化系统疾病的治疗。
在进行灌胃给药时，需要遵循一些注意事项，以确保给药的安全性和有效性。
首先，进行灌胃给药前应先评估患者的状况。
包括了解患者的胃肠道情况、咳嗽反射、意识状态以及是否存在呕吐等症状。
对于存在呕吐等症状的患者，灌胃给药时应更加谨慎，并在专业医生的指导下进行。
其次，选择合适的灌胃管是非常重要的。
灌胃管应具有柔软、光滑、耐腐蚀性、易清洗的特点。
灌胃管的长度应根据患者的年龄、身高和体重来选择，一般推荐从鼻腔插入胃部的灌胃管。
插入过程应缓慢、轻柔，并在插入过程中观察患者的反应，一旦发现异常或有不适感应立即停止。
在灌胃给药过程中，需要保持患者的体位适当。
对于成年患者，一般建议半坐位，头部微仰；对于儿童则可以使其侧卧。
保持适当体位有助于防止呕吐、误吸和胃液倒流。
在进行灌胃给药前，应首先排空胃内残留物。
可通过刺激咽部使患者咳嗽，刺激胃充气使患者产生呕吐反射，或使用小量温开水冲洗口腔来清除部分残留物。
在进行灌胃给药时，使用适当的方法和技巧是必要的。
可以通过重力流注法或注射法进行。
重力流注法是将药液通过灌胃管加入到胃内，需要注意控制滴注的速度和药液的温度。
注射法是将药液注射进胃内，需要注意使用适当的注射器和注射速度。
在给药过程中需要密切观察患者的反应。
特别注意有没有呼吸窘迫、咳嗽、呕吐等不良反应。
一旦出现异常反应，应立即停止给药并及时处理。
给药完成后，应及时拔除灌胃管。
拔除灌胃管时需要轻柔和缓慢，并应注意观察患者是否出现呕吐等反应。
拔除后还需观察患者的呼吸、心率等生命体征是否正常。
在进行灌胃给药时，应注意以下并发症的防治。
首先是误吸，即药物或胃内容物误入呼吸道引起肺部感染。
为避免误吸，应保持患者的头部仰起，适当控制滴注速度，以避免液体进入呼吸道。
其次是胃出血，由于灌胃器械损伤胃黏膜引起。
为避免胃出血，灌胃管的插入应缓慢、轻柔，且应遵循消毒规范，以降低感染风险。
中药灌胃操作流程
中药灌胃操作流程下载温馨提示：该文档是我店铺精心编制而成，希望大家下载以后，能够帮助大家解决实际的问题。
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大鼠灌胃给药方法及两种灌胃方法的比较
大鼠灌胃给药方法及两种灌胃方法的比较发表时间：2016-05-27T15:55:31.610Z 来源：《健康世界》2015年15期作者：周迎闫文强[导读] 徐州医学院本文通过对30只SD大鼠进行灌胃，阐述灌胃给药技巧及对两种灌胃方法进行比较。
徐州医学院徐州江苏 221004摘要：实验动物的给药对整个实验的成功起到关键的作用，然而，灌胃给药也是一种基本的给药途径。
所以，熟练掌握灌胃给药操作不仅有利于实验的进展，而且，可以减轻实验动物的痛苦。
本文通过对30只SD大鼠进行灌胃，阐述灌胃给药技巧及对两种灌胃方法进行比较。
关键词：大鼠；灌胃熟知SD大鼠解剖生理学特点对整个灌胃过程起到关键作用。
1口腔黏膜幼嫩，针管容易对其造成机械性损伤2咽喉部神经反射差，药物溢出时易呛入肺内而剧烈呛咳甚至致死3自口角至贲门距离为5.5±0.5cm4解剖位置低，胃的外形似蚕豆状，胃底部和幽门部均高于贲门部，贲门括约肌紧张度较低，灌胃时药液易外溢5胃内容积为0.6±0.2ml，但胃内常积满汁液，压力较大。
因此，灌胃时，灌胃针的进针角度和深度是非常关键的。
1.灌胃方法1.1 第一种灌胃方法。
大鼠在安静状态下非常温和，但对于初学者，由于没能熟练掌握抓取大鼠的技巧，更容易惹怒大鼠，因此初学者应该戴厚手套捉拿。
捉拿大鼠后，固定大鼠，尤其是大鼠的头部。
所以，左手应把大鼠头部固定好，使其不能随意摆动，这样可以避免大鼠咬伤。
首先，用右手把大鼠尾巴提起，置于鼠笼上，右手往后轻拉大鼠尾部，待大鼠抓紧鼠笼身体成一条直线时，左手拇指和食指抓住大鼠两耳后颈背皮肤，并尽量用拇指将大鼠左腮部往后拉，其余三指轻按大鼠背脊，使大鼠身体在一条直线上，使大鼠的腹部轻趴在试验台上。
实验者也可利用身体，单脚踩台阶或取坐位，大腿前侧与身体腹侧成直角或钝角，使大鼠后肢踩于实验者大腿前侧与鼠身垂直，大鼠上肢及腹侧贴于实验者身体。
仍以左手食指和拇指固定头部，左手前三指推直大鼠颈后部和枕部使其头后仰。
小鼠灌胃的方法及注意事项
小鼠灌胃方法比较简单，需要关注的只有两点：
一是要保持小鼠的头部和颈部成一直线，方便灌胃针头进入；
二是动作要轻柔,从口角进入,防止损失食道。
做的多了自然就熟练了。
具体操作过程如下：
1. 准备灌胃针头.一般可以从市场上面买到，实在没有的话,可以用12号的针头，剪去针尖,用砂纸将头端磨平，也可以用。
但是买的灌胃针头的头端用锡或者适宜的方法处理了针头的锐口,自己用砂纸不可能将所有的锐口都磨掉，用这样的针头灌胃，损失小鼠食道的可能性比较大。
2.抓住小鼠，使其头、颈和身体呈一直线。
抓小鼠的动作很简单，左手的小指和无名指抓住小鼠的尾巴，另外三个手指抓住小鼠的颈部即可。
因为小鼠始终在活动中，若一次抓的感觉不是很顺手，要放开重新抓,不要逞强进行下一步操作。
3. 抓好小鼠就可以灌胃了，一般用1ml的注射器配灌胃针头。
灌胃针头从小鼠的嘴角进入，压住舌头，抵住上颚，轻轻向内推进,进入食管后会有一个刺空感，进入食道后就可以推注药液了。
（我认为，所谓的灌胃，不必要灌胃针头进入小鼠的胃部,进入食管后就可以推药了，这样对小鼠食道的损伤要小点，特别是要长期灌胃给药的情况下。
)当然，灌胃针头也可以再往里面深入一点，防止药液从口中流出。
4。
灌胃容积一般是0。
1～0.2ml/10g,最大0。
35ml/10g,每只小鼠的灌胃最大容积不超过0.8ml。
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随着生命科学技术的发展，动物实验已成为医学实验研究的基本方法。
根据实验研究目的、实验动物的种类及药物剂型、剂量的不同，要求对实验动物实施不同的给药方法。
尤其对于药物的毒理、药效的研究和药物剂量的确定，经口灌胃给药方法是一种重要的途径。
在国内文献上却很少见到具体的描述。
在此，作者将在实践中摸索出的一套实用于小鼠、大鼠、豚鼠、家兔经口灌胃给药的方法介绍如下。
一、灌胃器具制作
1.1小鼠、大鼠、豚鼠灌胃器的制作
小鼠、大鼠灌胃器的来源有两个，一是从市面上购买特制的I2～l6号灌胃针。
二是自制。
自制方法为：取l2号普通注射针头，首先将针头尖部去掉，然后用细锉刀把去掉部分锉平、锉光，再用沙纸磨光滑，有条件时可在针尖处点焊成球型。
加工成有20度弧度的灌胃针，连接1ml或5ml的注射器，即成为大小鼠的灌胃器。
在打磨针头或加工弧度时用力一定要均匀，否则就会将针管弄扁，影响针管畅通。
豚鼠灌胃器，可采用大鼠灌胃器。
1.2家兔灌胃器的制作
取12号腰椎穿刺针。
加工方法同小鼠、大鼠灌胃器的制作，针体长约9cm，并连接10ml或20ml注射器，即家兔灌胃器。
二、灌胃操作方法
2.1小鼠经口灌胃给药方法
先保定动物,即用右手将小鼠尾巴提起，置于鼠笼或粗糙的平面上，当小鼠向前挣扎时，用左手的拇指和食指捏住小鼠两耳后颈背皮肤，翻转小鼠置于掌心，拉直后肢，以小指压住小鼠尾巴即可。
在保定小鼠过程中，不要用力过大，勿握其颈部，以免窒息死亡。
以灌胃器轻轻压其头部，使口腔与食道成一条直线，再将灌胃针沿上腭壁轻轻进入食道，当灌胃针进入约3cm左右时即达胃内。
如果灌胃针的位置插入正确，小鼠可自行吞服药，灌胃针插入位置不正确，小鼠会强烈挣扎，必须拔出重插，否则可能将药物灌入气管，造成小鼠死亡。
注完药液后轻轻抽出灌胃针。
小鼠一次最大灌胃量为：0.4ml/10g.w。
2.2大鼠经口灌胃给药方法
大鼠的捕捉方法与小鼠基本相同。
根据长期的实践经验，我们发现如用一块湿的纱布盖在大鼠身上，既可以防滑，又可以给初学者一种安全感。
为了防止大鼠咬伤，应戴上帆布手套。
大鼠体型较大，所以不能象保定小鼠那样可以把尾巴压住。
同样在保定大鼠时不能用力过大和握其颈部，尤其在采取抓握保定大鼠时，要特别注意。
大鼠灌胃的关键是左手把大鼠头部固定好，使其头不能随意摆动。
其他操作方法与小鼠基本相同。
灌胃针进入深度为5cm左右。
大鼠一次灌胃最大容量 2ml/100g.w。
2.3豚鼠经口灌胃给药方法
把豚鼠放在实验台上，用一块干纱布罩住其头，将豚鼠固定在左手掌下，用拇指和食指挤压其口角部让口张开。
然后，右手持抽好药物的灌胃器，沿豚鼠上腭壁插入食道。
如果灌胃器插入顺畅，位置正确，豚鼠会自动吞咽。
否则，豚鼠会乱动，此时应立即拔出灌胃器，重新插入灌胃器，灌胃器进入深度为5cm左右。
豚鼠一次灌胃最大容量2.0ml/100g.w。
2.4家兔经口灌胃给药方法
把实验兔放在实验台上，用左手掌从头部握住兔头颈部，将其固定，用拇指和食指使劲压迫其口角部使口张开。
然后，右手持抽好药液的灌胃器，用有弧度灌面从右口角处慢慢插入。
如插入位置正确就会看见兔自动吞咽，如插入不对，动物就会乱动，此时应立即拔出灌胃器，重新插入灌胃器，灌胃针进入深度为 15～18cm。
药物注完后，慢慢拔出灌胃器。
用此方法给兔灌胃给药，基本上不会把药物误注入气管。
家兔一次的最大灌胃量为：80～150ml/只。
三、注意事项
3.1小鼠、大鼠
保定动物时，一定要固定好动物，使动物头不要随意摆动，但不能挤捏颈部。
灌胃器针头弧度面向前从动物右角处插入，灌胃动作要轻柔。
不能虐待动物，尤其是大鼠，否则，容易被其咬伤。
插入灌胃针时，如果遇到阻力，不能用力继续进针，应停止进针，等待其自动吞咽时，迅速进针。
否则，容易损伤动物食道。
3.2豚鼠
豚鼠虽然性情比较温顺，但是胆小，容易被惊吓。
所以，捕捉豚鼠时，动作要敏捷而轻柔。
保定动物时，要在其头部盖上一块纱布。
固定动物，要使其头不能随意摆动。
灌胃时，插入灌胃器动作不能过大，不要损伤动物食道。
3.3家兔
保定家兔，一定要使其头部不能随意摆动，要做到这一点，左手要用力卡住兔左右嘴角。
插入灌胃器的位置要正确，不要误入气管。