外植体消毒方法比较
2-2外植体
衰败型
NH4+ 生长素
保守分裂型
NH4+ 生长素
细胞分裂素 NO3-
亢进分裂型
成功案例:王海波(1989)通过调整培养基中 2,4-D的水平建立了小麦胚性愈伤组织无性系, 诱导了松脆愈伤组织,建立了悬浮系,游离原 生质体
六、愈伤组织的细胞分化
维管组织是最先分化的组织。
1 影响维管组织分化的因子 (1)生长素 (2)蔗糖(麦芽糖、海藻糖) (3)细胞分裂素 (4)温度、光照
栽培胡萝卜: 培养基中不含还原氮,只要氧化氮浓度相 当高,也能形成体细胞胚,但发生率低。 还原氮和氧化氮的最适合比是 10mmol/L : 40mmol/L
只以还原氮为氮源时,经常调节培养基的 PH值使其保持在5.4,胚胎发生率可与两种 氮比例适宜时相当。但当PH在4天内降到 4-3.5,对胚胎发生有抑制。 最低数量的内源还原氮量:5mmol/kg鲜组 织。
1%
2% 2.5-3.5% 4%
很少形成
形成 形成 很少或不形成
不形成
很少或不形成 形成 形成
但葡萄糖、果糖、其它单糖无作用。生长 素对维管组织分化所起的作用在很大程度 上取决于糖的存在。
第六节
愈伤组织中的形态发生
一、器官发生(organogenesis)(茎芽分化) 二、体细胞胚发生(somatic embryogenesis) 三 人工种子
禾谷类植物
外植体 诱导培养基(2,4-D) 愈伤组织
再生培养基(分化培养基)
(不含2,4-D或含IAA或NAA) 茎芽分化
苜蓿
外植体 诱导培养基(2,4-D,激动素) 愈伤组织
再生培养基(分化培养基)
植物组培外植体消毒详解
植物组培外植体消毒详解外植体的消毒植物组织培养用的外植体大部分取自田间,表面上附着大量的微生物,这是组织培养的一大障碍。
因此在材料接种培养前必须要消毒处理,消毒一方面要求把材料表面上的各种微生物杀灭,同时又不能损伤或只轻微损伤组织材料而不影响其生长。
因此,外植体的消毒处理是植物组织培养工作中的重要一环。
(1)常用的消毒剂常用的消毒剂如下表所示。
理想的消毒剂应具有消毒效果好,易被无菌水冲洗掉或能自行分解,对材料损伤小,对人体及其他生物无害,来源广泛,价格低廉。
常用消毒剂的使用方法及效果①酒精酒精是最常用的表面消毒剂,以70%~75%酒精杀菌效果最好,95%或无水酒精会使菌体表面蛋白质快速脱水凝固,形成一层干燥膜,阻止了酒精的继续渗入,杀菌效果大大降低。
酒精具有较强的穿透力,使菌体蛋白质变性,杀菌效果好。
同时它还具有较强的湿润作用,可排除材料上的空气,利于其他消毒剂的渗入。
但酒精对植物材料的杀伤作用也很大,浸泡时间过长,植物材料的生长将会受到影响,甚至被酒精杀死,使用时应严格控制时间。
但酒精不能彻底消毒,一般不单独使用,多与其他消毒剂配合使用。
②升汞又称氯化汞,Hg2+可以与带负电荷的蛋白质结合,使蛋白质变性,从而杀死菌体。
升汞的消毒效果极佳,但易在植物材料上残留,消毒后需用无菌水反复多次冲洗。
升汞对环境危害大,对人畜的毒性极强,使用后应做好回收工作。
③次氯酸钠次氯酸钠是一种较好的消毒剂,它可以释放出活性氯离子,从而杀死菌体。
其消毒能力很强,不易残留,对环境无害。
但次氯酸钠溶液碱性很强,对植物材料也有一定的破坏作用。
④漂白粉漂白粉的有效成分是次氯酸钙[Ca(ClO)2],消毒效果很好,对环境无害。
它易吸潮散失有效氯而失效,故要密封保藏。
⑤过氧化氢也称双氧水,消毒效果好,易清除,又不会损伤外植体,常用于叶片的消毒。
⑥新洁尔灭这是一种广普表面活性消毒剂,对绝大多数植物外植体伤害很小,杀菌效果好。
(2)消毒方法①茎尖、茎段及叶片等的消毒消毒前先对植物组织进行修整,去掉不需要的部分,然后用自来水冲洗。
外植体灭菌
外植体灭菌
对材料的表面浸润灭菌。
要在超净台或接种箱内完成,准备好消毒的烧杯、玻璃棒、酒精、消毒液、无菌水、手表等。
用酒精浸10-30s。
由于酒精具有使植物材料表面被浸湿的作用,加之酒精穿透力强,也很易杀伤植物细胞,所以浸润时间不能过长。
有一些特殊的材料,如果实、花蕾、包有苞片、苞叶等的孕穗,多层鳞片的休眠芽等等,以及主要取用内部的材料,则可只用酒精处理稍长的时间。
升汞是由重金属离子汞来达到灭菌的,一般处理5-8min,用无菌水冲3-10次。
吐温是表面活性剂,主要作用使药剂更容易展布,更容易浸入到灭菌的材料表面。
但吐温加入后对材料的伤害也在增加,应注意吐温的用量和灭菌时间。
处理完的材料在无菌条件下,取用内部材料。
最新植物组培外植体消毒详解
植物组培外植体消毒详解外植体的消毒植物组织培养用的外植体大部分取自田间,表面上附着大量的微生物,这是组织培养的一大障碍。
因此在材料接种培养前必须要消毒处理,消毒一方面要求把材料表面上的各种微生物杀灭,同时又不能损伤或只轻微损伤组织材料而不影响其生长。
因此,外植体的消毒处理是植物组织培养工作中的重要一环。
(1)常用的消毒剂常用的消毒剂如下表所示。
理想的消毒剂应具有消毒效果好,易被无菌水冲洗掉或能自行分解,对材料损伤小,对人体及其他生物无害,来源广泛,价格低廉。
常用消毒剂的使用方法及效果①酒精酒精是最常用的表面消毒剂,以70%~75%酒精杀菌效果最好,95%或无水酒精会使菌体表面蛋白质快速脱水凝固,形成一层干燥膜,阻止了酒精的继续渗入,杀菌效果大大降低。
酒精具有较强的穿透力,使菌体蛋白质变性,杀菌效果好。
同时它还具有较强的湿润作用,可排除材料上的空气,利于其他消毒剂的渗入。
但酒精对植物材料的杀伤作用也很大,浸泡时间过长,植物材料的生长将会受到影响,甚至被酒精杀死,使用时应严格控制时间。
但酒精不能彻底消毒,一般不单独使用,多与其他消毒剂配合使用。
②升汞又称氯化汞,Hg2+可以与带负电荷的蛋白质结合,使蛋白质变性,从而杀死菌体。
升汞的消毒效果极佳,但易在植物材料上残留,消毒后需用无菌水反复多次冲洗。
升汞对环境危害大,对人畜的毒性极强,使用后应做好回收工作。
③次氯酸钠次氯酸钠是一种较好的消毒剂,它可以释放出活性氯离子,从而杀死菌体。
其消毒能力很强,不易残留,对环境无害。
但次氯酸钠溶液碱性很强,对植物材料也有一定的破坏作用。
④漂白粉漂白粉的有效成分是次氯酸钙[Ca(ClO)2],消毒效果很好,对环境无害。
它易吸潮散失有效氯而失效,故要密封保藏。
⑤过氧化氢也称双氧水,消毒效果好,易清除,又不会损伤外植体,常用于叶片的消毒。
⑥新洁尔灭这是一种广普表面活性消毒剂,对绝大多数植物外植体伤害很小,杀菌效果好。
(2)消毒方法①茎尖、茎段及叶片等的消毒消毒前先对植物组织进行修整,去掉不需要的部分,然后用自来水冲洗。
一种组织培养中外植体消毒的方法与流程
一种组织培养中外植体消毒的方法与流程本发明涉及组织培养技术领域,更具体地说,涉及一种组织培养中外植体消毒的方法。
背景技术:植物组织培养用的外植体材料大部分取自田间,但因为在植物表面上附着大量的微生物。
因此在植物材料接种前必须要进行消毒处理,目的是既要求把材料表面上的各种微生物杀灭,同时又不能损伤或只轻微损伤植物材料而不至于影响其生长。
因此,外植体的消毒处理是植物组织培养工作中的重要的一环。
目前在组织培养中常用的外植体消毒过程中主要存在以下突出问题:外植体处理不当,导致外植体成活率低或外植体消毒不彻底,导致污染率高,影响了组培繁殖的效率和产量。
技术实现要素:有鉴于此,本发明提供一种组织培养中外植体消毒方法,该消毒方法对外植体消毒彻底,且损伤率降低。
一种组织培养中外植体消毒的方法,包括:清洗干净外植体表面,得到清洗后外植体;将所述清洗后外植体浸泡在70%的酒精中,在第一设定温度条件下超声波震荡第一预设时间,得到第一预处理外植体;将所述第一预处理外植体浸泡在5%-10%的NaClO溶液中,在所述第一设定温度条件下超声波震荡第二预设时间,得到第二预处理外植体;将所述第二预处理外植体浸泡在无菌水中,在所述第一设定温度条件下超声波震荡第二预设时间,得到第三预处理外植体;冲洗所述第三预处理外植体,得到消毒后外植体。
优选地,清洗干净外植体表面实现为:将外植体用自来水冲洗5-7次,再将所述外植体材料切成段或块或片状,自来水清洗外植体表面达到10-15min。
优选地,在第一设定温度条件下超声波震荡第一预设时间实现为:升温至40℃,并在40℃条件下,同时利用120W的超声波震荡10-20s。
优选地,在所述第一设定温度条件下超声波震荡第二预设时间实现为:升温至40℃,并在40℃条件下,同时利用120W的超声波震荡5-10min。
优选地,冲洗所述第三预处理外植体包括:利用无菌水冲洗所述第三预处理外植体材料10-15min。
不同外植体的消毒方法
不同外植体的消毒方法1茎段和叶片的消毒植物的茎和叶多暴露于空气中,并且常带有毛、刺等附属物,在栽培上又受到泥土、肥料中杂菌污染,因此在消毒前要用自来水流水冲洗较长时间,然后用沾有肥皂粉或洗洁精的软毛刷刷洗,吸干水分后,再用75%的酒精浸泡10~30s,立即用次氯酸钠溶液浸泡10~15min消毒(按照材料的老嫩和枝条的坚实程度而定);或用0.1%的升汞浸泡5~12min。
如果材料表面不平或者有绒毛,可在灭菌液中加几滴Tween-80以强化灭菌效果。
材料灭菌后应立即取出,用无菌水冲洗3~5次,用升汞处理的冲洗5~8次,然后用无菌滤纸擦拭干净或沥干,再进行切割和接种。
2果实及种子的消毒消毒前,果实或者种子先用自来水清洗,清洗时间根据材料的洁净程度而定。
一般10~20min,然后用纯酒精迅速漂洗一次。
果实用2%的次氯酸钠溶液浸泡10min后反复用无菌水冲洗,再剖出内部的种子或组织进行接种。
对于单个的种子灭菌时先用10%次氯酸钠溶液浸泡20~30min,再用10g/L溴水浸泡5min,然后用无菌水漂洗几次,最后剖出胚或胚乳进行接种。
3根及地下储藏器官的消毒这类材料可先用自来水冲洗干净,然后用软毛刷刷洗,用滤纸吸干后再用纯酒精漂洗,接着用20g/L次氯酸钠溶液浸泡20~30min消毒,最后用无菌水漂洗3~4次,滤纸吸干后即可进行接种。
4花药的消毒用于组织培养的花药,按小孢子发育时期要求,实际上大多数没有成熟,花药外面有萼片、花瓣或颖片保护着,通常处于无菌状态。
所以一般只对整个花蕾或幼穗进行表面消毒。
消毒时先去掉花蕾的萼片,用70%酒精擦洗花瓣,然后将整个花蕾浸泡在饱和漂白粉上清液中10min,再经无菌水清洗2~3次,即可接种。
文章来自《植物组织培养》,由易生组培整理。
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外植体的消毒与无菌苗的培养
外植体的消毒与无菌苗的培养一、目的通过在超净工作台上进行无菌操作训练,初步掌握组织培养的无菌操作技术及外植体的消毒灭菌技术二、原理灭菌是组织培养中重要的工作环节之一,是指采用理化手段杀死物体表面及其孔隙内的一切微生物,包括细菌的芽孢和真菌的孢子。
组织培养中要求无菌室、超净工作台达到无菌状态,植物材料也要经过消毒灭菌后再接种,接种人员的双手同样如此。
无菌室和超净工作台可采用甲醛、高锰酸钾混合薰蒸,结合紫外灯照射20~30分钟;外植体可采用70%酒精和10%的次氯酸钠杀菌;双手可用70%的酒精棉球擦拭;接种工具可采用70%酒精棉球擦拭,再经火焰灼烧灭菌。
MS培养基中包含有植物生长所需的各种营养元素,可为离体培养的生物材料提供近似于生物体内及外界生长生存的营养环境。
当植物材料灭菌后即可在适宜的培养基、适宜的温度条件下生长。
三、试剂及器材超净工作台、酒精灯、镊子、无菌培养皿、无菌滤纸、无菌蒸馏水、无菌小烧杯、10%次氯酸钠、70%乙醇、废液缸、酒精棉球、打火机四、操作(1)准备工作:配制MS基本培养基,备用。
(2)用酒精棉球将超净台的操作表面擦拭干净。
(3)将实验器材及试剂放入超净工作台中,紫外灭菌25-30min。
(4)灭菌后打开超净风,吹5min。
(5)洗净双手,进入无菌室。
在超净台内点燃酒精灯,用酒精棉球反复擦拭双手,尤其要注意关节部位;超净台的表面也要用酒精棉球单方向擦拭(一般由里到外)。
(6)取适量种子置于100/50ml烧杯中,用70%的乙醇消毒30s-1min,然后将酒精倒入废液缸中,加入无菌水,轻轻晃动,清洗1-2min后,将无菌水倒入废液缸中。
(7)将10%次氯酸钠(NaClO)加入烧杯中,消毒10 min,期间不时晃动烧杯,使种子充分接触消毒剂;然后将NaClO溶液倒入废液缸中,加入无菌水,轻轻晃动,清洗3-4min后倾去,如此重复3-4次。
(8)将种子置于垫有滤纸的无菌培养皿中,吸干种子表面的水分。
实验二 外植体消毒和接种
实验三的准备工作
• 另外,任一组帮忙配:配YEB培养基 500mL(固体)
• 配方:牛肉浸膏 5.0 g/L
•
酵母浸膏 1.0 g/L
•
蛋白胨 5.0 g/L
•
蔗糖 5.0 g/L
•
MgSO4.7H2O 0.002 mol/L
•
pH7.0
• 分装至菌种培养瓶
实验三的准备工作
• 每组需另准备: • 无菌水 8瓶 • 空瓶 2个,其中一个
重新消毒后才能使用。 • 6、不要用手直接接触无菌的物品。
在超静工作台上接种植物材料
注意坐姿?不要说话? 无菌操作? 避免交叉感染?
标签格式(例)
材料名称:烟草(叶),其它(待定) 培养基名称:例如:MS+NAA2mg/L+6-BA1mg/L 接种日期:2010.4.26 姓名:xxx
其它图案标志等少用,如三角形,脸谱, 卡通图
动等进行增效。
不同外植体的消毒方法:
• 茎尖,叶片及茎段等的消毒:取材—自来水冲洗(肥 皂水)---75%EtOH浸泡10-30秒---无菌水冲洗----2%或 10% NaClO或0.1%HgCl2浸泡10-15 min—无菌水冲洗34次----接种。(升汞浓度与消毒时间的关系)
• 种子消毒,与此类同。 • 根及地下部器官的消毒: • 根(来自土壤,水冲洗充分)---0.1%升汞或NaClO浸
• 颜色 • 质地 ➢ 诱导率(%)=形成愈伤组织的材料数/接种总材料数×100
如污染严重或没有诱导出愈伤组织,则需重做实验!
请大家“给力”,精心呵护你的“宝贝”(被培养材料)
其它实验内容
• 为第三周发根农杆菌遗传转化作准备
实验三,毛状根的诱导和培养 的准备工作
不同处理对凤梨和油梨的外植体消毒效果
不同处理对凤梨和油梨的外植体消毒效果罗晟昇,廖韦卫,韦海球(广西南亚热带农业科学研究所,广西 龙州 532400)[摘 要]植物组织培养中外植体消毒是首要环节,选用不同的消毒剂对外植体消毒,除需考虑消毒效果外,还需考虑消毒剂对环境的影响。
影响植物外植体消毒关键因素包括消毒剂的种类和消毒时间。
为提高凤梨和油梨的繁殖率提供参考依据,用凤梨裔芽和油梨茎段作为外植体,设置不同消毒剂和处理时间,比较分析外植体的污染率和成活率,以探明不同种类消毒剂处理对凤梨和油梨的外植体消毒效果。
结果表明:使用0.1%HgCl 2对凤梨和油梨的外植体消毒,适合的处理时间均为10 min ,其污染率较低分别为19%、62%,而成活率均为57%。
使用5%NaClO 对凤梨和油梨的外植体消毒,随着消毒时间延长,凤梨污染率明显下降且外植体成活率高于油梨外植体。
合适的处理时间均为16 min ,凤梨污染率为57%、成活率为67%,油梨污染率为71%、成活率为48%,外植体消毒效果较好,且受影响较轻。
由于凤梨外植体受NaClO 影响较小,因此凤梨外植体应选择对环境危害较小的NaClO 作为消毒剂。
油梨受NaClO 影响较大,成活率较低,因此油梨外植体可选择HgCl 2作为消毒剂。
[关键词]凤梨;油梨;外植体;消毒[中图分类号]S661.2[文献标识码]A [文章编号]1004-8421(2024)02-0039-0044-04植物组织培养技术在提高植物繁育速度、植物脱毒、离体保存、次生代谢产物生产等方面具有积极作用,已广泛应用于农业、林业等领域[1]。
植物外植体消毒处理是植物组织培养的第一步,是决定植物组织培养能否成功的前提条件[2]。
影响植物外植体消毒关键因素包括消毒剂的种类和消毒时间。
HgCl 2、NaClO 是植物组织培养中常用的消毒剂,其中HgCl 2消毒效果良好,但其为剧毒物质,对环境危害较大,而NaClO 消毒效果一般,但对环境影响较小[3]。
植物叶片外植体的处理方法
植物叶片外植体的处理方法
植物叶片外植体的处理方法是指将植物的叶片作为外植体进行培养和繁殖的技术方法。
以下是一种常用的外植体处理方法:
1. 叶片的选择:选择健康、无病虫害和损伤的叶片作为外植体,通常选择中部或基部偏下的叶片,利于进行组织培养。
2. 表面消毒:将采集好的叶片放入含有漂白粉或酒精的消毒液中,进行表面消毒。
消毒时间和浓度需根据具体植物种类来确定。
3. 切割叶片:用无菌手术刀将表面消毒好的叶片切割成适当大小的外植体,每个外植体应保留一个叶脉。
4. 培养基接种:将切割好的外植体置于含有适当激素和营养物质的培养基上进行接种,接种时需注意无菌操作,避免细菌和霉菌污染。
5. 培养条件控制:对接种好的外植体进行培养,控制适当的光照、温度、湿度和培养基pH值等条件,不同植物种类对培养
条件的要求也不同。
6. 外植体延长:外植体经过一段时间的培养后,可以在培养基上产生新的根、茎或叶,使外植体逐渐发育壮大。
7. 移栽:外植体生长到一定程度后,可以将其移栽到适宜的生长环境中,如土壤中继续生长。
需要注意的是,外植体处理方法的具体步骤可能会因植物种类、培养目的和实验设计等因素而有所不同,所以最好根据具体情况做出相应的调整和改进。
植物组织培养实务--外植体的选择与消毒
植物组织培养实务--外植体的选择与消毒1、外植体的选择外植体是指植物组织培养中的各种接种材料。
从理论上讲,植物细胞都具有全能性,能够再生新植株,任何器官、任何组织、单个细胞和原生质体都可以作为外植体。
但实际上,不同品种、不同器官之间的分化能力有巨大差异,培养的难易程度不同。
为保证植物组织培养获得成功,选择合适的外植体是非常重要的。
(1)选择优良的种质及母株无论是离体培养繁殖种苗,还是进行生物技术研究,培养材料的选择都要从主要的植物入手,选取性状优良的种质、特殊的基因型和生长健壮的无病虫害植株。
尤其是进行离体快繁,只有选取优良的种质和基因型,离体快繁出来的种苗才有意义,才能转化成商品;生长健壮无病虫害的植株及器官或组织代谢旺盛,再生能力强,培养后容易成功。
(2)选择适当的时期组织培养选择材料时,要注意植物的生长季节和生长发育阶段,对大多数植物而言,应在其开始生长或生长旺季采样,此时材料内源激素含量高,容易分化,不仅成活率高,而且生长速度快,增殖率高。
若在生长末期或已进入休眠期时采样,则外植体可能对诱导反应迟钝或无反应。
花药培养应在花粉发育到单核靠边期取材,这时比较容易形成愈伤组织。
百合在春夏季采集的鳞茎、片,在不加生长素的培养基中,可自由地生长、分化;而其他季节则不能。
叶子花的腋芽培养,如果在1月至翌年2月间采集,则腋芽萌发非常迟缓;而在3-8月间采集,萌发的数目多,萌发速度快。
(3)选取适宜的大小培养材料的大小根据植物种类、器官和目的来确定。
通常情况下,快速繁殖时叶片、花瓣等面积为5mm2,其他培养材料的大小为0.5~1.0cm。
如果是胚胎培养或脱毒培养的材料,则应更小。
材料太大,不易彻底消毒,污染率高;材料太小,多形成愈伤组织,甚至难以成活。
(4)外植体来源要丰富为了建立一个高效而稳定的植物组织离体培养体系,往往需要反复实验,并要求实验结果具有可重复性。
因此,就需要外植体材料丰富并容易获得。
(5)外植体要易于消毒在选择外植体时,应尽量选择带杂菌少的器官或组织,降低初代培养时的污染率。
植物组培外植体消毒详解
植物组培外植体消毒详解Modified by JACK on the afternoon of December 26, 2020植物组培外植体消毒详解外植体的消毒植物组织培养用的外植体大部分取自田间,表面上附着大量的微生物,这是组织培养的一大障碍。
因此在材料接种培养前必须要消毒处理,消毒一方面要求把材料表面上的各种微生物杀灭,同时又不能损伤或只轻微损伤组织材料而不影响其生长。
因此,外植体的消毒处理是植物组织培养工作中的重要一环。
(1)常用的消毒剂常用的消毒剂如下表所示。
理想的消毒剂应具有消毒效果好,易被无菌水冲洗掉或能自行分解,对材料损伤小,对人体及其他生物无害,来源广泛,价格低廉。
常用消毒剂的使用方法及效果①酒精酒精是最常用的表面消毒剂,以70%~75%酒精杀菌效果最好,95%或无水酒精会使菌体表面蛋白质快速脱水凝固,形成一层干燥膜,阻止了酒精的继续渗入,杀菌效果大大降低。
酒精具有较强的穿透力,使菌体蛋白质变性,杀菌效果好。
同时它还具有较强的湿润作用,可排除材料上的空气,利于其他消毒剂的渗入。
但酒精对植物材料的杀伤作用也很大,浸泡时间过长,植物材料的生长将会受到影响,甚至被酒精杀死,使用时应严格控制时间。
但酒精不能彻底消毒,一般不单独使用,多与其他消毒剂配合使用。
②升汞又称氯化汞,Hg2+可以与带负电荷的蛋白质结合,使蛋白质变性,从而杀死菌体。
升汞的消毒效果极佳,但易在植物材料上残留,消毒后需用无菌水反复多次冲洗。
升汞对环境危害大,对人畜的毒性极强,使用后应做好回收工作。
③次氯酸钠次氯酸钠是一种较好的消毒剂,它可以释放出活性氯离子,从而杀死菌体。
其消毒能力很强,不易残留,对环境无害。
但次氯酸钠溶液碱性很强,对植物材料也有一定的破坏作用。
④漂白粉漂白粉的有效成分是次氯酸钙[Ca(ClO)2],消毒效果很好,对环境无害。
它易吸潮散失有效氯而失效,故要密封保藏。
⑤过氧化氢也称双氧水,消毒效果好,易清除,又不会损伤外植体,常用于叶片的消毒。
外植体表面消毒
外植体表面消毒
1)取健康,无病害的植株三株,每株剪取5mm-10mm茎尖,根尖,嫩叶先取
一株实验
无菌水冲洗3次—70%H2O2中浸泡10min—无菌水冲洗3次
c:自来水冲洗—75%乙醇浸泡1min—无菌水冲洗3次—2%NaOCl 25-30min—无菌水冲洗3次
3)将消毒后的外植体放入MS培养基中进行培养,记录(外植体形态,长菌)
4)每一表面消毒方案,设置以下三种对照检验,记录
a:不做消毒的外植体直接接种,做对照组检验表面消毒效果
b:空白培养基对照
c:最后一次淋洗的无菌水取0.1ml涂布到培养基上,做对照组检验表面消毒效果操作不规范未取到或超过1ml
对外植体伤害相对较小的方案
培养基消毒,采用先配好分装,最后灭菌的方式,若MS培养基需要加激素等,则等灭菌完用过滤注射器注入
操作设备:超净台(对外植体消毒过程),高压灭菌锅(器皿,用具,培养基杀菌),恒温培养箱(培养观察)
前期准备步骤:1用具灭菌2配制培养基MS,无菌水3消毒剂配制
用具:镊子,培养皿,锥形瓶,剪刀,量筒,烧杯,玻棒,(封口膜,手套,口罩),酒精灯,脱脂棉,滤纸。
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外植体消毒方法比较
组培实验室是生命科学及相关学科实验室建设中必备的实验室。
组
培实验室的消毒是实验室日常管理工作的重要环节,直接关系着组培实
验的成功与否和组培幼苗的质量高低。
组培实验室的消毒一般又可分为
环境消毒、培养基消毒和外植体的消毒。
培养基的消毒主要是在高压灭
菌锅中进行,在此不再赘述。
环境消毒和外植体的消毒则有多种方法,这些方法各有优劣,使用不当时还会对人体产生伤害,为此,笔者特对
这些典型方法进行分析比较,为组培实验室的科学管理提供一些参考。
1 组培实验室的环境消毒
保持组培实验室的空气清洁度是减少组培污染的重要条件,用于实
验室消毒的常规消毒方法包括紫外线照射法、甲醛熏蒸法、新洁尔灭(苯
扎溴铵溶液)法等,比较新的方法有中草药消毒法。
1.1 紫外线照射法
紫外线是波长在10-400 nm之间辐射光的总称,能引起细菌、病毒
等微生物遗传物质的结构发生变化,从而影响DNA复制、RNA转录和
蛋白质的翻译,导致病菌或病毒死亡。
此外,紫外线辐射所产生的臭氧
和各种自由基可损伤蛋白质和酶分子,导致功能改变。
紫外线消毒具有
广谱性,可杀灭细菌、病毒、真菌、支原体等各种微生物。
紫外消毒具
有较高的杀菌效率,且由于未使用化学药剂,消毒过程中不会产生对人
体和环境有害的副产物。
该技术运行维护简单,费用较低。
采用室内悬
吊式紫外线消毒时,室内安装紫外消毒灯的数量为每平方不少于1. 5 W,照射时间不少于30 min。
但需要指出的是,过量的紫外线照射对人体有
一定的危害乃至致癌作用。
紫外线作用于中枢神经系统,可出现头痛、头晕、体温升高等症状。
过量辐射会诱发皮肤癌。
紫外辐射对眼睛的损
伤特别明显,严重时可能诱发白内障。
因此,当组培实验室在用紫外消
毒期间,工作人员不要呆在正消毒的空间内,切忌用眼睛注视紫外灯。
特别的,如超净工作台内的紫外灯打开消毒时,应避免将手长时间暴漏
于紫外灯下。
一般在接种室用紫外线消毒后,不要立即进入接种室,此时室内充满高浓度的臭氧,会对人体,尤其是呼吸系统造成伤害。
应在关闭紫外线灯15-20 min后再进入室内。
1.2 甲醛熏蒸法
甲醛是一种无色且具有强烈刺激性的气体,可与蛋白中的氨基结合使其变性或使蛋白质分子烷基化,对细菌、真菌、病毒等均有效,可广谱杀菌,且效率较高。
在实际操作中,经常采用甲醛溶液和高锰酸钾按2∶1的比例进行薰蒸消毒,即甲醛(40%)10ml / m3,高锰酸钾5g / m3。
KMnO4具有强氧化性,与甲醛发生反应,产生大量热量,使甲醛以气体形式挥发,扩散于空气和物体表面,消毒时间一般为20-30 min。
但甲醛本身对人体来说,也是一种有害物质。
皮肤直接接触甲醛可引起过敏性皮炎,产生色斑。
吸入高浓度甲醛,可诱发过敏性哮喘。
高浓度甲醛还是一种基因毒性物质,实验动物在实验室高浓度吸入的情况下,可引起鼻咽肿瘤。
长期呼吸含有高浓度甲醛的空气还会使妇女月经紊乱,影响生育,并引起新生儿体质下降与染色体异常。
特别地,当室内甲醛严重超标时还会引发白血病,导致死亡。
为此,用该法消毒时,应注意:消毒时,工作人员须佩戴口罩、手套;消毒容器离门的距离要近一些,以便消毒人员迅速撤离;熏蒸前要密闭空间,一经开始,所有人员必须马上离开;消毒容器应选用耐腐蚀的陶瓷容器,容器容积比药液量至少大4倍,以免药液沸腾时溢出;消毒期间,不可进入消毒空间;消毒后通风换气,等气味散尽后再出入;药液次序要正确,先将水倒入容器内,然后加入高锰酸钾,均匀搅拌,再加入福尔马林,切忌将福尔马林中加入高锰酸钾,以免福尔马林溅出,造成危险。
1.3 新洁尔灭(苯扎溴铵溶液)
新洁尔灭(苯扎溴铵溶液)为十二烷基二甲基苄基溴化铵,是一种阳离子表面活性剂。
这类消毒剂可吸咐在细菌的表面,从而改变细菌细胞壁和细胞膜的透性,使菌体内的酶、辅酶和代谢产物漏出,妨碍细菌的呼吸及糖酵解过程,并使菌体蛋白变性。
此类消毒剂具有杀菌力强,无腐蚀性及漂白性,易溶于水等特点。
新洁尔灭消毒时一般按照1∶1 000进行稀释,如果瓶装的新洁尔灭已稀释,按1∶500配置即可。
具体使用时,可参照使用配比参数正确使用,但不能在使用时与肥皂液混合,
以防失去药效。
新洁尔灭在酸性、中性介质中杀菌力强。
对结核杆菌、绿脓杆菌、芽胞、真菌和病毒效用差,甚至无效。
基本而言,新洁尔灭对人体的毒害较低,目前还没有致癌和致畸的报道。
但应注意,重复或长期接触本品,有可能对心血管系统、消化系统、特别是生殖系统造成伤害。
此外,过敏体质接触可能发生过敏反应。
因此,在用新洁尔灭进行喷洒消毒时,依然要注意戴好手套和口罩。
1.4 艾叶和苍术熏蒸
艾叶为菊科植物艾的干燥叶,是临床常用中药之一。
药理研究表明,艾叶水煎液和艾叶油有抗细菌和真菌作用。
苍术亦为菊科植物,中药学上认为其有抗溃疡、抗炎、抗腹泻等作用。
艾叶和苍术混用,对组培室进行熏蒸,是一种新型的空气灭菌方式。
艾叶用量为0. 5 g/ m3,苍术用量为2. 0 g/ m3 。
干燥艾叶可直接点燃,苍术要先用95%酒精浸泡24 h,用时再用酒精为助燃剂点燃,每间培养室分3-5个点均匀点燃,熏蒸30 min。
艾叶和苍术为我国常见中草药,资源丰富,价格低廉,消毒操作简单易行,效果持续时间较长,且使用时对人体无毒害作用,但应注意防火。
2 用于外植体表面消毒的消毒剂
用于外植体表面消毒的消毒剂次氯酸盐、过氧化氢、溴水、氯化汞、酒精等。
其中次氯酸盐和氯化汞更为常用,且在使用过程中容易出事故,现仅对此进行阐述。
2.1 次氯酸盐
次氯酸盐主要有次氯酸钠和次氯酸钙(又名漂白粉)2种。
但次氯酸钙在空气中容易吸水潮解,影响灭菌效果,所以在外植体的消毒中,次氯酸钠更为多见。
次氯酸钠为含氯消毒剂,高效广谱,为国内外广泛使用[8]。
次氯酸钠合适的消毒浓度为2%,消毒时间约为20 min左右,不易残留,但次氯酸钠溶液碱性很强,对植物材料有一定的破坏作用。
含氯消毒剂的杀菌作用主要包括次氯酸的作用、新生氧作用和氯化作用。
次氯酸的氧化作用是含氯消毒剂的最主要的杀菌机理,含氯消毒剂在水中形成次氯酸,作用于菌体蛋白质,次氯酸不仅可与细胞壁发生作用,且因分子小,不带电荷,故侵入细胞内与蛋白质发生氧化作用或破坏其磷酸脱氢酶,使糖代谢失调而致细胞死亡。
该消毒剂高效广谱,对细菌、
真菌、芽胞及病毒都有效。
虽然次氯酸钠最后分解为氯气和氧气而散逸,因而易于除去,不留残毒,但产生的刺激性气体如氯气和氯化氢却对人体有毒害作用。
这些气体强烈刺激眼角膜、上呼吸道粘膜等,可引起喉痉孪、喉水肿、支气管炎和急性脑炎等。
利用次氯酸钠对外植体进行表面消毒时,应注意:采用封闭的容器对外植体进行消毒;消毒结束后应将消毒废液及时倒掉,防止有害气体挥发;消毒操作时须戴好口罩,不宜用手揉眼摸脸等动作,以免对眼睛或皮肤造成伤害。
2.2 氯化汞
氯化汞(HgCl2)是一种重金属盐类,Hg2+可与带负电的细菌蛋白质结合,使蛋白变性,酶蛋白失活。
氯化汞是一种极强的杀菌剂,实验室常用浓度为0. 1%~0. 2%,消毒时间为15min左右,消毒效果极佳,但其主要对细菌和真菌有效,对芽胞、病毒的效力差,甚至无效。
此外,用该药品消毒后,须用无菌水对外植体反复多次冲洗。
无机汞中毒后,Hg2+可与体液中的阴离子结合,形成可扩散的分子,造成内脏器官组织细胞受损,表现出各种中毒症状如腹泻、便血、肾脏水肿,严重时导致死亡。
氯化汞是一种极为有效的杀菌剂,但也是一种剧毒药品,因而在实验室管理中应采取以下严格的方法:实行“双人双锁”管理制度,即氯化汞药品由至少2名实验管理人员负责;依据实验要求,精确计算药品用量,按需供给,定量领取,并严格执行药品领用制度,每次进货入库及使用时要登记详细,防止私人带出实验室;采用专门的药匙、烧杯、量简来配制,称量后的垫在天平盘上的纸应及时清除,配制完后要清洗干净玻璃器皿和手;在消毒操作过程中应小心谨慎,避免接触皮肤,更不能在搅拌或振荡消毒液时溅入五官;消毒完成后,切不可将废液随意倾倒,应统一回收,然后交由专门的环保公司处理(该公司须具备由国家环保部门认定的资质)。
3 结语
针对组培实验室的污染源进行消毒是植物组织培养的重要环节,高效安全、低毒无害、环境友好是组培实验室消毒的本质要求和发展趋势。
结上所述,我们可以看出,用中草药及新洁尔灭进行环境消毒更为低毒友好,对外植体进行消毒时,综合考量,次氯酸钠比氯化汞更为合适。