细胞内蛋白质定位信号序列

细胞内蛋白质的定位信号序列
1.内质网信号序列(ER signal sequence)
2.驻留信号( retention signal):
①ER驻留信号(包括KDEL即Lys-Asp-Glu-Leu和HDEI即His-Asp-Glu-Ile两个4肽信号序列)；
②ER回收信号(ER retrieval signal，可溶蛋白的KDEL和ER膜蛋白上的KKXX)
3.核输入信号(nuclear import signal):也称NLS，常含Pro-Lys-Lys-Lys-Lys-Arg-Val
4.核输出信号(nuclear export signal)：核糖体蛋白上相间排列的疏水性氨基酸
5.过氧化物酶体引导信号(peroxisomal targeting signal, PTS):C端的SKL即Ser-Lys-Leu
6.转运肽(transit peptide):即导肽，进入线粒体蛋白的N端的带正电的氨基酸(Arg)和不带电的氨基酸(Ser)构成的信号序列
一、内质网信号肽
内质网蛋白定位信号总体可以分为返回信号和保持信号。

内质网逃逸的蛋白主要通过COPⅠ有被小泡将其返回内质网，因此区分保持信号与返回信号一个很重要的手段是研究信号片段与运输小泡COPⅠ各亚基的相互作用情况。

例如在研究甲硫蛋白（TPN）定位信号过程中，Paulsson 等通过Co－IP 发现具有“KKXX＞”序列的TPN 能与COPI 相互作用，而C 端突变后的GFP－TPN－aa 不与COPI 发生相互作用，提示“KKXX＞”为TPN 定位信号，且该信号通过COPI返回于内质网。

蛋白转运到高尔基体后会被修饰，人们可以利用不同的糖基程度区分保持信号与返回信号。

例如在酵母[6]中，高尔基复合体有N－寡糖转移酶（OTase活性，并可将底物蛋白α－1，6－苷露糖基化，被α－1，6－苷露糖基化的蛋白则通过返回信号返回内质网。

而哺乳动物[7]中运出的内质网蛋白被N－已酰氨基半乳糖转移酶
（GnT）修饰和十六烷基化，然后被岩藻糖转移酶修饰，因此可被N－乙酰氨基半乳糖（GalNAc）的亲合素识别并着色的蛋白为返回信号介导定位。

此外，经过高尔基体修饰的蛋白能抵抗内切糖苷酶H（endo H）的酶切效应，因此这些蛋白的定位也依赖返回信号。

1、内质网定位信号
如前所述，内质网蛋白定位信号可分为保持信号和返回信号。

保持信号中研究较多的是适用于Ⅱ型内质网膜蛋白的双精氨酸信号［＜X（2，3）－RR］，返回蛋白研究较多的为适用于内质网腔蛋白的“H／KDEL＞”信号及适用于Ⅰ型内质网膜蛋白的双赖氨酸信号（UUUX＞，其中3 个U 中至少2 个为赖氨酸，X 为任意氨基酸）。

1.1内质网保持信号
双精氨酸信号［＜X（2，3）－RR］最早发现于组织相容性复合体Ⅱ（MHCⅡ），Zerangue 进一步确定了双精氨酸信号的有效信息，此外该信号一般与双亮氨酸信号并存，并在复合体的形成及转运中起调节作用。

双精氨酸信号存在于大多数膜表面功能复合体的亚基（多为Ⅱ型跨膜蛋白）中。

如G－蛋白偶联γ－氨基异丁酸受体亚基（GABAB1）利用双精氨酸信号定位于内质网，当GABAB1 与GABAB2 结合后双精氨酸信号被掩盖或被去除，复合体被运出内质网并在膜表面形成功能复合体。

此外TRAM、钾离子通道亚基Kir1．1等都通过双精氨酸信号调节膜表面功能复合体的运出。

既然双精氨酸信号主要存在于细胞膜表面功能复合体中，必然存在信号失活机制，以调节膜表面复合体的量[20]。

双精氨酸信号的失活机制可总结为5 种：①与复合体其他亚基形成功能复合体掩盖双精氨酸信号，如MHCⅡβ链；
②通过与14－3－3家族蛋白结合，如ADAM22 蛋白；③通过选择性剪接形成能与信号区相互作用的PDZ 结合结构域，如N－甲基－D－门冬氨酸受体亚基NR1－1（NMDAR）和红藻氨酸／海藻酸受体（KAR）；④通过蛋白激酶A（PKA）和蛋白激酶C（PKC）的磷酸化，如NMDA受体NR1 亚基；⑤通过双亮氨酸信号或溶酶体定位信号抵消双精氨酸信号。

由于COPⅠ在“K（X）KXX＞”信号的识别与返回中起重要作用，同时α与β＇亚基中的WD40结构域在识别中起重要作用，那么COPⅠ在双精氨酸信号识别中是否具有作用呢？研究表明COPⅠ复合体在某些带有双精氨酸信号蛋白的返回中起一定作用，但是作用并不明显，且涉及的蛋白数量有限。

Hardt 等通过研究双精氨酸信号蛋白糖基化修饰情况，发现仅有极少数的蛋白有糖基化修饰，证明该信号为保持信号而非返回信号。

是什么机制将具有双精氨酸信号的蛋白保留在内质网中，还有待进一步研究。

1.2返回信号
逃逸的内质网蛋白进入运输小泡并在膜囊结构中被修饰后，能介导其重新运回内质网的信号称为返回信号。

1.2.1内质网腔蛋白的返回信号
内质网腔蛋白返回信号的主要代表是“H／KDEL＞”，在哺乳动物中为“KDEL＞”，而在酵母中则为“HDEL＞”。

内质网中许多蛋白依靠此类信号返回定位于内质网，比如“HDEL＞”介导蛋白二硫键异构酶（PDI）的返回，“ADEL ／DDEL ／HDEL＞”介导免疫球蛋白重链结合蛋白（BiP）的返回，“HIEL ／KDEL＞”介导甘油三酯水解酶（TGH）返回等。

此外，也有人报道“KDEL＞”信号存在于Ⅱ型跨膜蛋白中，但此类蛋白数量较少。

此类蛋白可能通过“H／KDEL＞”信号与COPⅠ的间接相互作用返回内质网腔。

如相对分子质量为39 000 的受体相关蛋白（RAP）是一种定位于内质网的分子伴侣，可保证低密度脂蛋白受体（LDLR）正确折叠，其C 端的“HNEL ／KDEL”能保证RAP 返回内质网。

由于高尔基体和内质网腔中具有不同的pH 值，ERD2p 在高尔基体中结合RAP 的“H／KDEL”基序[39]，并在内质
网中将蛋白释放。

此外，对蛋白ERD2．1、ERD2．2 的表达进行干扰
后，RAP 的定位明显受到影响。

这表明含有“H／KDEL＞”信号的蛋
白可通过ERD 蛋白介导，并与COPⅠ发生相互作用，从而返回
内质网腔。

1.2.2内质网膜蛋白的返回
双赖氨酸信号（UUUX＞，其中3 个U 中至少2 个为赖氨酸，X 为任意氨基酸）是Nilsson 等在腺病毒3 中发现的，主要存在于Ⅰ型内质网膜蛋白中，该信号在不同种属间具有一定的保守性。

研究表明，该信号中的－4 位赖氨酸可以转移到－5 位，但精氨酸和组氨酸不能取代－4 位的赖氨酸。

事实上赖氨酸附近的氨基酸也会影响定位效率，如果两侧氨基酸为丝氨酸或丙氨酸时能介导蛋白定位，但如果是氨基乙酸或脯氨酸时则介导定位效率较弱，此外该信号靠近跨膜结构域时介导定位效率较高。

许多内质网蛋白通过此信号定位于内质网，如TPN C 端“KKXX”序列可保证其定位于内质网，将双赖氨酸突变为双丙氨酸后，则TPN 不定位于内质网中，提示“KKXX＞”是TPN 的定位信号。

双赖氨酸信号主要通过直接与运输囊泡COPⅠ亚基作用使蛋白质返回内质网。

COPⅠ是一个蛋白复合体，由α、β、β＇、ε、γ、ζ、δ等7 个亚基组成，Crosslinking 交联实验证明双赖氨酸信号与γ亚基作用，酵母双杂实验证明信号与α亚基作用，遗传突变证明α、β＇、γ、δ和ζ等5 个亚基与双赖氨酸信号作用。

2.其他定位信号
内质网蛋白中，有许多具有不明确序列特点的定位信号或多种定位信号，总体来说这些定位信号不具有明确性和广泛性。

内质网定位信号中一类重要的信号为跨膜结构域，根据蛋白的不同要求可分别利用跨膜的二级结构、跨膜的长度或疏水性等作为定位信号。

如Ryanodine 受体（RyR）通过其第4 个跨膜区与第1 个跨膜结构域定位于内质网。

跨膜结构被Rer1p识别而返回内质网，Rer1p 由188 个氨基酸残基组成，定位于高尔基体，包含4 个跨膜结构域。

如Rer1 蛋白识别Sec12p、γ－分泌酶等跨膜结构域，并辅助COPⅠ将其返回内质网。

也有少数蛋白通过特异的二级结构定位。

如成熟的T－细胞抗原受体（TCR）由6 个不同的多肽亚基组成，即α、β、γ、ε、δ和ζ，一般情况下ε、ζ稳定存在于内质网。

Mallabiabarrena 等利用点突变的方式发现Lyr177、Leu180 和Arg183 在CD3－ε的定位中具有保守性，同时核磁共振显示以Lyr177 及其下游Leu180 为基础形成的α螺旋使Lyr177 和Leu180 并列靠近，紧接着为β转角，使Arg183靠近Leu180，此二级结构可能是保证蛋白内质网定位的真正原因。

有些蛋白同时存在2 种定位信号。

如C 端的“KDEL”与N 端的疏水区共同帮助钙网蛋白（CRT）实现定位；N 端信号区和C端疏水区都能单独完成Secl2p 的内质网定位；C 端定位信号和疏水区的长度保证细胞色素b5 定位于内质网；CLN6 通过C端疏水区和N 端胞质区定位于内质网等。

此外，有些蛋白通过与其他内质网蛋白作用而定位于内质网。

如BAP31 在很多内质网膜蛋白的定位中起作用，Szczesna－Skorupa 等发现，CYP2C2 前29 个氨基酸的膜结构通过与BAP31 作用而定位于内质网；C－反应蛋白（CRP）与具有“HIEL ／HTEL＞”信号的羧酸酯酶（CE）相互作用而定位于内质网；UGT通过与神经酰胺半乳糖转移酶（cer－GalT）相互作用而定位于内质网等。

二.线粒体信号肽
线粒体蛋白的转运
指导前体蛋白进入线粒体的信号肽是目前被研究的最多和相对最清楚的(Alberts 等2007)。

绝大多数线粒体定位的前体蛋白在其N端存在一段可以被剪切的信号序列, 称为前导序列(presequence)或前导肽(prepeptide)。

它们一般是由10~80个氨基酸组成的带有一段疏水序列和一段正电荷序列(表面)的两亲多肽螺旋。

研究表明, 不仅N端前导肽本身对线粒体前体蛋白的转运是必需的, 其所处的位置也至关重要。

将前导肽从N端转移到C端之后, 虽然蛋白还可以转运至线粒体中, 但是蛋白在转运时C端与N端的方向却颠倒了(Fölsch 等1998)。

线粒体基质蛋白的转运是由位于外膜的TOM蛋白复合体[translocase of the outer mitochondrialmembrane (TOM) complex]和位于内膜上的TIM23蛋白复合体(translocase of the inner mitochondrialmembrane 23 complex)共同完成的。

TOM 蛋白复合体能够识别胞质中的前体蛋白并使其与伴侣分子解离, 使前体蛋白通过TOM 复合体自身形成的通道而进入线粒体膜间隙(intermembrane space, IMS),或者介导一些外膜定位的蛋白的跨膜。

它由7 亚基构成, 其中Tom20 亚基和Tom70 亚基是识别前体蛋白的主要受体, 并与伴侣分子Hsp70 或者Hsp90 相互作用, 在ATP 提供能量的前提下, 使前体蛋白与伴侣分子解离并使其进入TOM 复合体形成的跨膜通道(Young 等2003)。

核磁共振结构分析显示, Tom20亚基的胞质面与前体蛋白相互作用处存在一个结合前导肽表面疏水结构的沟槽(Abe等2000), 所以一般认为, Tom20 亚基是前体蛋白N 端前导肽的主要受体。

而Tom22 亚基则辅助Tom20 亚基与前体蛋白结合(Neupert 和Herrmann2007)。

其他的4 个亚基Tom40、Tom5、Tom6 和Tom7组成了TOM 复合体的跨膜通道结构。

TIM23复合体也是多由亚基组成, 它转运所有的线粒体基质蛋白、大部分的内膜定位的蛋白及一些膜间隙定位的蛋白(Neupert 和Herrmann 2007), 由TIM23复合体介导的跨膜转运需要两种来源的能量供应——ATP 水解供能和膜两侧电位而形成的电势能(∆ψ) (Mokranjac 和Neupert 2005)。

前体蛋白通过TOM复合体进入线粒体膜间隙之后, TIM23复合体通过Tim50亚基和Tim23亚基与其前导肽结合,并在能量供应的前提下使其通过内膜。

由Tim44亚基将其呈递给基质中结合A TP的mtHsp70, mtHsp70就像TIM23 的一个亚基结合在其靠线粒体基质的一面, 而且mtHsp70对未折叠的蛋白有着很高的亲和力, 一旦前体蛋白从TIM23 复合体中出现在基质中时, mtHsp70 就牢牢的结合上去(Alberts等2007)。

Tim14 亚基继而诱导ATP 水解, 导致Hsp70亚基与TIM23 复合体解离。

mtHsp70 的结合不仅起稳定前体蛋白的作用, 还防止正在转运进基质的蛋白“ 缩回” 膜间隙中(Neupert 和Herr-mann 2007)。

一般情况下, 当前体蛋白的前导肽酶切位点进入基质的时候, 就会在基质信号肽酶(mitochondrial-processingpeptidase,MPP)的作用下将其切除(Braun和Schmitz 1997; Gakh 等2002)。

线粒体外膜定位的蛋白都是在细胞质中合成的, 包含β- 桶状蛋白和α 螺旋蛋白两种类型。

线粒体β-桶状蛋白的前体由TOM复合体转运至膜间隙之后与一些小Tim蛋白结合, 继而由另外一种位于线粒体外膜的转运子介导其跨膜定位, 这个转运子被命名为TOB (topogenesis of mitochondrial outer embrane β-barrel)复合体(Paschen等2003)或SAM(sorting and assembly machinery)复合体(Wiedemann等2003)。

α 螺旋蛋白根据其定位信号序列在多肽中的位置的不同有着不同的转运机制。

信号序列位于N末端的α螺旋蛋白通过Mim1 (mitochondrialimport 1)插入外膜; 而有些信号序列位于中部和C 末端的α 螺旋蛋白则与β-桶状蛋白有着相同的转运机制, 另一些的转运机制目前尚不了解(Schmidt 等2010)。

线粒体内膜定位的蛋白质绝大多数来自细胞质, 通过TOM复合体进入膜间隙后, 主要以三种不同的方式定位于内膜(Neupert和Herrmann 2007)(图2)。

第一种是依赖TIM22 的方式, 即进入膜间隙的前体蛋白与小Tim 蛋白结合并被传递给TIM22复合体, 由TIM22 介导其跨膜定位,这个过程依赖膜两侧的电位差。

第二种被称为转移终止方式the stop-transfer pathway), 采用这种方式的多数为单次跨膜蛋白。

因为在前体蛋白的中部存在能被IM23复合体识别的
一段水性序列, 所以当前体蛋白在N 端前导肽的引导下以N →C 的顺序进入线粒体基质时, 跨膜转移就会终止, 从而形成跨膜蛋白。

以第三种方式跨膜的一般是一些多次跨膜蛋白, 这种机制目前还不是很了解, 即蛋白先被转运至基质中与mtHsp70结合, 在内膜上的OXA1复合体介导下进行线粒体内膜跨膜定位。

另外, 线粒体膜间隙中也存在着许多具有重要功能的蛋白, 它们一般没有可以被剪切的信号肽序列, MI A(mitochondrial intermembrane space assembly)复合体在这些富含半胱氨酸残基的膜间隙蛋白的定位过程中发挥了重要的作用。

MIA 由Mia40 和Erv1(essential for respiration and viability 1)两种组分构成。

Erv1 能够通过转移二硫键给Mia40 从而使其发生氧化, 而Mia40 能够识别通过TOM 复合体进入膜间隙的前体蛋白蛋白中所包含的疏水序列或半胱氨酸残基等信号序列(Sideris 等2009), 并能通过形成的瞬时二硫键与其结合。

Mia40 就像一个二硫键载体, 通过将二硫键转移给前体蛋白从而促进其氧化形成成熟的构象(Schmidt 等2010)。

三、入核信号肽
与其他一些采用翻译后转运机制的蛋白不同的是, 在细胞质中合成的核定位蛋白一般通过镶嵌在双层核膜上的核孔复合体(nuclear pore complex,NPC)进入细胞核, 而核定位信号序列(nuclear localizationsignal,NLS)在该过程中发挥了重要的作用。

与一般蛋白的信号肽不同,核定位蛋白的NLS几乎可以位于蛋白序列的任何部位, 而且一般情况下不被切除, 因为其参与了蛋白质行使功能的过程。

研究得最多的是依赖于核转运受体Importinα/β 的经典蛋白质入核机制(Gasiorowski 和Dean2003; 周鸣等2006; Lange 等2007)。

首先Importinβ-RanGDP复合体在NPC的胞质面与RanBP2结合(图3-A), 继而货物蛋白通过Importin α 结合在Importin β 和RanBP2 上, 在RanGTP 酶活化因子、RanBP1 和RanGAP1 等作用下, 形成RanGDP-Importin α-Importin β- 货物蛋白的转运复合体; 转运复合体在核孔蛋白和转运因子2 (NTF2)等的参与下通过NPC 进入胞核内(图3-B) (Ribbeck 等1998); 在鸟苷酸交换因子RCC1的作用下, RanGDP转换成RanGTP, 使得Importin α 和货物蛋白从上述转运复合体中解离, 完成货物蛋白的核内转运过程(图3-C); 与货物蛋白解离后的Importin β 仍然与Ran-GTP 结合并被转运出核。

而Importin α 与RanGTP 及核输出受体(nuclear export receptor,CAS)结合形成Importin α-CAS-RanGTP 复合体运出细胞核, 在RanBP1 及RanGAP1 等的作用下Importin α从复合体重新解离释放到细胞质中进入下一轮循环(图3-D)(Kutay 等1997)。

经典的核输入过程的能量由Ran提供, Ran蛋白是小ras蛋白家族成员, 它有RanGTP和RanGDP两种形态(Quimby 和Dasso 2003)。

RanGTP主要存在于细胞核中, 而RanGDP 主要存在于细胞质中, 这种不对称分布可以使Ran作为一个分子开关控制货物蛋白运输的方向, 调节其与载体蛋白的结合与释放。

因此, 在RanGTP 含量较低的细胞质中, 核转运受体可以结合带有N L S 的待运蛋白, 而在细胞核高浓度RanGTP 的情况下释放货物蛋白(Kalab 等2002;Smith 等2002)。

四、叶绿体信号肽
叶绿体自身的遗传信息有限, 大部分的叶绿体蛋白由核基因组编码, 在细胞质中合成后转运进叶绿体, 拟南芥中大约有3 000种核基因组编码蛋白被预测为叶绿体定位(vanWijk 2004)。

绝大多数叶绿体定位的前体蛋白在其N端含有可被剪切的信号序列: 转移肽(transit peptides)。

与定位于内质网的“ 信号肽” 和定位于线粒体的“前导肽”一样, 转移肽在氨基酸组成及长度等一级结构上没有明显的相似性, 但一般都包含使它们具有相似功能的结构域, 这些功能包括与脂膜、叶绿体受体及信号肽酶等的相互作用(Bruce 2000)。

有趣的是, 目前至少约50种蛋白质在同一信号序列的引导下既可定位于叶绿体也可定位于线粒体(Carrie等2009)。

与线粒体相似, 叶绿体中的蛋白也是在位于双层脂膜上的转运蛋白复合体的共同作用
下进行正确定位的, 它们分别是位于叶绿体外膜的易位子TOC (translocon at the outer envelope membrane of chloroplasts)复合体和位于叶绿体内膜的易位子TIC (translocon at the inner envelope membrane of chloroplasts)复合体。

Toc159和Toc34是位于叶绿体外膜的GTPases,且它们具有同源的GTP 结合区域。

Toc34 是最先接触待运蛋白的受体, 它受GTP 和磷酸化的调节(Sveshnikova 等2000)。

Toc159 不仅是外膜上的受体蛋白, 而且在GTP供能的情况下作为分子马达促进前体蛋白穿过TOC复合体所组成的通道(Schleiff等2003), 它由三个功能域组成: N 末端的A 区域、C末端与质膜结合的M区域及中间具有GTPase活性的G区域。

与Toc159 和Toc34 相连的是具有β-桶状结构的通道蛋白Toc75。

由这三种蛋白所组成的TOC核心复合体在体外就足以将前体蛋白转运进脂质囊泡中(Schleiff 等2003)。

此外, Toc64 和Toc12也被证实为TOC复合体的组分, 它们的功能分别涉及前体蛋白的识别和将膜间隙中的伴侣分子Hsp70 招募至TOC 复合体处并促进其与前体蛋白的相互作用(Sohrt 和Soll 2000; Becker 等2004)。

目前已有8 种TIC复合体的组分被鉴定, 它们分别是Tic110、Tic40、Tic20、Tic21、Tic22、Tic55、Tic62 和Tic32。

Tic110 的N 末端作为在叶绿体基质中的受体与前体蛋白转移肽有一个紧密结合的过程, 而其C末端或者位于整个基质侧的功能域则可以结合Hsp93 和Tic40。

Tic20/Tic21 组成了蛋白质通过叶绿体内膜的转运通道。

Tic40和基质伴侣分子Hsp93作为马达复合体(motor complex)在A TP 供能的情况下为蛋白的转入提供驱动力。

Tic55、Tic62 和Tic32 通过其对氧化还原势敏感的基团来对蛋白质的转运进行氧化还原调节(Kovács-Bogdán 等2010)。

此外, Toc64、Toc12、Tic22和伴侣分子Hsp70所组成的“膜间隙复合体”(inter-membrane space complex)在促进和引导前体蛋白在两个转运复合体之间的转运中发挥了重要的作用(Becker 等2004)。

前体蛋白与伴侣分子在胞质中结合并被转运至叶绿表面之后, 其转移肽就被GTP 结合态的Toc159 所识别, 然而这种识别和向通道蛋白Toc75
的呈递却似乎是通过Toc34水解GTP来调节的(Li和Chiu 2010)。

需要指出的是, 前体蛋白穿过叶绿体外膜需要细胞质或者膜间隙中存在低浓度的ATP 和GTP (低于100 μmol·L-1), 而穿过叶绿体内膜则需要在基质中存在高浓度的ATP (约1 000 μmol·L-1)(Jarvis 和Soll 2001; Li 和Chiu 2010)。

当低浓度A TP 时, 转移肽首先通过Toc75 进入膜间隙中, 继而通过内膜上的Tic20复合体并与位于叶绿体基质侧的Tic110 N末端结合。

当基质中的ATP足够时,与转移结合的Tic110 就会招募Tic40 的结合,Tic40 在Hsp93 的作用下刺激ATP 水解, 从而将前体蛋白释放至叶绿体基质中, 并进一步接受转移肽酶(stromal processing peptidase, SPP)的剪切。

ATP水解后, Tic40 与Hsp93 解离。

在正常光照条件下,当基质中的ATP浓度较高时, 与Hsp93结合的ADP会迅速转变为A TP, 从而开始下一轮蛋白转运的循环(Li 和Chiu 2010)。

叶绿体外膜蛋白的定位主要有五种途径(具体参见Hofmann 和Theg 2005), 但与线粒体类似, 所有的转运途径一般都会通过一个中心通道来进行蛋白跨膜转运(Li 和Chiu 2010)。

研究表明, 嗜热菌蛋白酶能够消化Toc159 和Toc34, 但是不能消化Toc75, 然而一些叶绿体外膜蛋白的正确定位对嗜热菌蛋白酶的处理并不敏感, 说明Toc159和Toc34没有参与这个过程。

例如PsOEP14 蛋白就可以高效的镶入只含有Toc75 的脂蛋白体(Tu 等2004)。

有趣的是, Toc75本身作为一种外膜定位的蛋白, 在其N端和C端分别具有一段转移肽序列, 位于N端的转移肽指导Toc75 通过TOC/TIC 复合体转运至叶绿体基质, 并在SPP 的作用下将其剪切, 而位于C端的转移肽序列阻止了Toc75在叶绿体基质中的进一步转运(Tranel和Keegstra 1996), 最后被质体I信号肽酶(plastid type I signal peptidase, Plsp1)切除(Inoue 等2005)。

叶绿体内膜蛋白定位的第一种方式称为转移终止途径, 即转运中止在前体蛋白穿过内膜转运子的过程中, 继而插入叶绿体内膜。

Arc6 及PPT、IEP37 等就是采用这种途径进行内膜定位的(Tripp等2007; Firlej-Kwoka 等2008)。

而Tic110 和Tic40等采用的另外一种内膜定位
方式则为后镶入(postimport)途径。

采用这种方式定位的前体蛋白一般先通过TOC/TIC途径转运至叶绿体基质中, 然后再进行内膜定位(Lübeck等1997; Li和Schnell 2006)。

但是叶绿体膜间隙蛋白的具体转运机制仍不清楚,目前研究的膜间隙定位蛋白Tic22与MGD1 (monogalactosyldiacyl glycerol synthase)都通过TOC复合体转运至膜间隙, 但是到达膜间隙后它们却面临不同的定位方式:MGD1在膜间隙定位前先会转运至叶绿体基质中, 并在SPP的作用下切除其转移肽; 而Tic22 并无这一过程(Vojta 等2007)。