分离纯化的前期步骤优秀课件

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❖ 进一步提纯,一般使用层析法包括凝胶过滤, 离子交换层析,吸附层析以及亲和层析等。
❖ 必要时还可选择电泳法。
8.2 材料的选择与处理
❖ 含量高 ❖ 容易得到 ❖ 干扰物质少 ❖ 价格便宜 ❖ 容易分离 ❖ 安全性好
❖ 清理除杂 ❖ 冷冻 ❖ 干燥 ❖ 浓缩
❖ 含量高 ❖ 容易得到 ❖ 干扰物质少 ❖ 价格便宜 ❖ 容易分离 ❖ 安全性好 ❖ 提取工艺简单 ❖ 有综合利用价值
❖ 对动物材料的效果比微生物材料和植物材料要 好。
(3)渗透压法(高渗或低渗处理)
❖ 渗透压就是用来抗衡渗透倾向所需的一种力。
❖ 先将细胞置于高渗溶液(如蔗糖溶液)中平衡 一段时间后,突然将其转入到低渗缓冲液和水 溶液中,则细胞壁会因渗透压的突然变化而破 碎。
❖ 此法只适于处理细胞壁比较脆弱的细胞。
8.3 细胞破碎
❖ (1)碾磨法/组织捣碎法 ❖ (2)超声波破碎法(10-15KHz) ❖ (3)渗透压法(高渗或低渗处理) ❖ (4)冻融法
❖ (5)表面活性剂处理法(SDS、Tween、TritonX) ❖ (6)细胞自溶法(利用细胞自身的酶) ❖ (7)丙酮法(冷丙酮脱水抽提) ❖ (8)酶处理方法
(1)碾磨法/组织捣碎法
❖ 是最普通和常见的细胞破碎方法。 ❖ 既可以使用普通的高速组织捣碎机、细胞匀浆
器,也可使用专门的用于微生物细胞破碎的细 菌磨等。
(2)超声波破碎法
❖ 使用专一的超声波破碎仪,利用仪器所产生的 超声波(10~15kHz)机械震动后对组织细胞产 生的空化作用(Cavitation)使细胞破碎。
❖ 当蛋白质混合物提取液获得后,选用一套适当 方法,将所要的蛋白质与其他杂蛋白质分离开 来。
❖ 一般这一步的分级用盐析、等电点沉淀和有机 溶剂分级分离等方法。
❖ 第三步是细分级(fine fractionation),也就是样品 的进一步提纯。
❖ 样品经粗分级以后,一般体积较小,杂蛋白大 部分已被除去。
❖ 提取的温度要视有效成份性质而定。
❖ 一方面,多数蛋白质的溶解度随着温度的升高 而增大,因此,温度高利于溶解,缩短提取时 间。
❖ 但另一方面,温度升高会使蛋白质变性失活, 因此,基于这一点考虑提取蛋白质和酶时一般 采用低温(5度以下)操作。
❖ 为了避免蛋白质提以过程中的降解,可加入蛋 白水解酶抑制剂(如二异丙基氟磷酸,碘乙酸 等)。
分离纯化的前期步骤优秀课件
生化物质的制备和分离纯化
❖ 分离纯化的一般步骤 ❖ 选材 ❖ 细胞破碎 ❖ 抽提 ❖ 分离纯化 ❖ 结晶 ❖ 纯度鉴定 ❖ 保存
8.1 分离纯化的一般步骤
❖ 选材 ❖ 细胞破碎 ❖ 抽提 ❖ 分离(沉淀法、离子交换法) ❖ 纯化 (分子筛、电泳) ❖ 结晶 ❖ 纯度鉴定 ❖ 保存
❖ 分离提纯某一特定蛋白质的一般程序可以分为 ❖ 前处理 ❖ 粗分级 ❖ 细分级
❖ 第一步是前处理(pretreatment)。
❖ 分离提纯某一蛋白质,首先要求把蛋白质从原 来的组织或细胞中以溶解的状态释放出来,并 保持原来的天然状态,不丢失生物活性。
❖ 第二步是粗分级(rough fractionation)。
蛋白质(包括酶)的提取
❖ 大部分蛋白质都可溶于水、稀盐、稀酸或碱溶 液,少数与脂类结合的蛋白质则溶于乙醇、丙 酮、丁醇等有机溶剂中,因些,可采用不同溶 剂提取分离和纯化蛋白质及酶。
(一)水溶液提取法
❖ 稀盐和缓冲系统的水溶液对蛋白质稳定性好、 溶解度大、是提取蛋白质最常用的溶剂,通常 用量是原材料体积的1-5倍,提取时需要均匀的 搅拌,以利于蛋白质的溶解。
选材
❖ 微生物、植物和动物都可做为制备蛋白质的原材料, 所选用的材料主要依据实验目的来确定。对于微生物, 应注意它的生长期,在微生物的对数生长期,酶和核 酸的含量较高,可以获得高产量,
❖ 以微生物为材料时有两种情况:
❖ (1)得用微生物菌体分泌到培养基中的代谢产物和胞 外酶等;
❖ (2)利用菌体含有的生化物质,如蛋白质、核酸和胞 内酶等。
❖ 植物材料必须经过去壳,脱脂并注意植物品种和生长 发育状况不同,其中所含生物大分子的量变化很大, 另外与季节性关系密切。
❖ 对动物组织,必须选择有效成份含量丰富的脏器组织 为原材料,先进行绞碎、脱脂等处理。
❖ 另外,对预处理好的材料,若不立即进行实验,应冷 冻保存,对于易分解的生物大分子应选用新鲜材料制 备。
(6Fra Baidu bibliotek细胞自溶法
❖ 利用细胞自身的酶
(7)丙酮法(冷丙酮脱水抽提)
❖ 丙酮等脂溶性溶剂可溶解细胞膜上的脂质化合 物,从而使细胞膜的结构破坏。
❖ 一般是将细胞制成丙酮干粉后,再加提取酶。
(8)酶处理方法
❖ 用外源的溶菌酶或细胞壁分解酶(如蛋白酶、脂 肪酶、核酸酶等)在一定条件下作用于细胞而使 细胞壁破碎。
❖ 但这种方法因需外加酶制剂,因此可能会对后 续目的酶的提取产生不利的影响。
8.4 抽提
❖ 物质的抽提常常和细胞破碎步骤协同进行 ❖ 根据被提取物质的溶解特性,选择适当的溶剂 ❖ 始终保持低温操作,防止生物活性物质变性 ❖ 提取的原则是“少量多次” ❖ 尽量去除干扰物质 ❖ 防止水解酶的作用 ❖ 加入一定的保护试剂 ❖ 其他影响因素:pH、溶剂极性与离子强度等
❖ 下面着重讨论提取液的pH值和盐浓度的选择。
❖ 1、pH值

蛋白质,酶是具有等电点的两性电解质,提取液 的pH值应选择在偏离等电点两侧的pH 范围内。
❖ 用稀酸或稀碱提取时,应防止过酸或过碱而引起蛋白 质可解离基团发生变化,从而导致蛋白质构象的不可 逆变化,
❖ 一般来说,碱性蛋白质用偏酸性的提取液提取,而酸 性蛋白质用偏碱性的提取液。
(4)冻融法:
❖ 将细胞在低温(-15℃)下冰冻后再在室温下融化, 如此反复多次就能使细胞壁破裂。此法也只适 用于胞壁易破的细胞。
(5)表面活性剂处理法:
❖ 在适当的温度、pH及低离子强度下,表面活性 剂(如SDS、Tween、TritonX)能与脂蛋白形 成微泡,使膜的渗透性改变或使之溶解。
❖ 此法对膜结合的酶的提取是相当有效的,但对 其他蛋白质则易使之变性,甚至切断肽链。
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