实验家兔主动脉神经放电.
实验家兔主动脉神经放电
生命科学学院蒙嵘40508088
【实验目的】
1.复习家兔的耳缘静脉麻醉方法
2.学习颈部脉神经及血管分离术
3.学习在体主动脉神经冲动的引导方法
4.观察主动脉神经放电特点及药物对神经冲动发放的影响
【实验原理】
1. 家兔主动脉区的主动脉弓压力感受器的传入神经在颈部单独成一束，称为减压神经或主动脉弓神经。减压神经具有稳定动脉血压的作用。当动脉血压升高或降低时，压力感受器的传入冲动也随之增多或减少，使减压反射相应地增加或减弱，以保持动脉血压相对稳定。
2. 家兔的减压神经所处方位位于颈部的颈动脉下，这里有3条神经，其中一条最为粗大的是迷走神经，相对于最细的神经即为我们需要的减压神经。
3.心电图导联
心脏除极，复极过程中产生的心电向量，通过容积导电传至身体各部，并产生电位差，将两电极置于人体的任何两点与心电图机连接，就可描记出心电图，这种放置电极并与心电图机连接的线路，称为心电图导联（lead）。常用的导联如下：标准导联亦称双极肢体导联，反映两个肢体之间的电位差。
1. 导联将左上肢电极与心电图机的正极端相连，右上肢电极与负极端相连，反映左上肢（L）与右上肢（r ）的电位差。当l 的电位高于r 时，便描记出一个向上的波形；当r 的电位高于l 时，则描记出一个向下的波形。
2. 导联将左下肢电极与心电图机的正极端相连，右上肢电极与负极端相连，反映左下肢（F）与右上肢（r ）的电位差。当f 的电位高于r 时，描记出一个向上波；反之，为一个向下波。
3. 导联：将左下肢与心电图机的正极端相连，左上肢电极与负极端相联，反映左下肢（F）与左上肢（l ）的电位差，当f 的电位高于l 时，描记出一个向上波；反之，为一个向下波。
4．心电图
P波：心房除极化
QRS：心室去极化
T波：心室复极化T > 1/10R
P-R间期：< 0.20s （60-90次/分）兴奋通过房室交界和房室束传导所需的时间S-T段：< 0.05 ~ 0.1 mV 心室肌细胞均处于复极化缓慢进行阶段，各部分之间没有电位差。
u波：T后0.02 ~ 0.04s，与T波方向一致，蒲肯野细胞复极化
【实验对象】家兔（雌雄不拘）
【实验器材和药品】
1.仪器生物机能实验系统（或生物信号记录分析系统）、监听器、双极引导电极及其固定支架。
2．器械哺乳类动物手术器材一套、气管插管、注射器（20ml、5ml各一只，1ml 两只）、针头、玻璃分针。
3．药品生理盐水、医用液体石蜡、3%戊巴比妥钠、10-4去甲肾上腺素溶液、10-4乙酰胆碱溶液。
4．其它兔手术台、纱布。
【实验步骤】
1.麻醉动物
2.固定与剪毛：背位固定，剪去颈部手术野的被毛。
3.实验装置连接：神经放电引导，心电图引导，监听
4.切开颈部皮肤，分层分离颈部肌肉。
5.分离主动脉神经，用保护电极引导主动脉神经放电。
6．进入实验系统，通道1记录主动脉神经放电（采样频率20KHz，扫描速度100ms/div，灵敏度50uV，时间常数0.001s，滤波3KHz）。
7.通道2引导心电图将针形电极插入动物四肢，选择II导联记录（右上肢负极绿，左下肢正极-红，左上肢接地）。（采样频率20KHz，扫描速度100ms/div，灵敏度1mV，时间常数0.2s，滤波500Hz）。
8．实验观察：
1）选择适宜的扫描速度和增益（灵敏度），用比较显示的方式观察主动脉神经冲动发放与心电图的相干性。
2）从耳缘静脉注入0.1~0.3ml肾上腺素溶液，观察主动脉神经放电、心率变化。
3）待恢复后，同法注入0.1~0.2ml乙酰胆碱溶液，观察主动脉神经放电、心率变化。
【实验结果及分析】
实验名称：实验日期：2008-05-14
实验评注：
通道1：(上图)
显示的是减压神经的放电情况的电位记录（生理条件）
加压神经（又称主动脉神经）是一条神经干，即由许多神经纤维束，它是主动脉血压变化感受器的传入神经，客观反映了主动脉血压的变化。图中所见的呈现的三角形的波形实际上是不同程度的神经兴奋造成的复合波，幅度较大的区域表明更多的神经元兴奋，每一次循环图形反映了一次血压的变化过程，间接反映了心脏的活动情况。
通道2：（下图）
显示的是在生理条件下心电导联记录图，每个心电的完整波形反映了心脏兴奋，传导和兴奋恢复过程中的综合生物电变化，图本身与心脏的机械活动无直接联系，但心电出现的频率可以反应心率变化。
实验分析：
通道1：（上图）
该图显示的是为向兔耳缘静脉注射肾上腺素溶液后的减压神经放电情况。
加入肾上腺素一段时间以后可以观察到相对较微弱的变化。放电电位的幅度增大可以反映初主动脉血压的升高，表明肾上腺素对血压有升高作用。
电位变化不是十分明显，原因可能有以下几个
（1）肾上腺素溶液受污染，溶液中浓度下降，导致作用效果下降。
（2）回心静脉中可能存在血栓，或血管可能在注射时受损，使肾上腺素的作用没有完全达到动脉。
（3）实验用的家兔本身存在疾病，病理状态中往往不易观察到正常的现象。（4）神经干的综合电位变化比较难以分辨
（5）观察时间不足。
通道2：（下图）
该图为注射肾上腺素增加心率的作用，但作用机制比较复杂，很难从这些机制中分析心电变化，在加上心电图所示的心电本身就是一种复合的复杂电位，单一变量的影响会比较那一分析。所以无论是波的形态还是心率变化相比正常情况没有太大的变化。
当然也存在着肾上腺素作用不足的影响，基本情况和放电图近似。
实验分析：
通道1：（上图）所示的是向兔的耳缘静脉注射乙酰胆碱，可以看到有不太明显的电位减小现象，原因和肾上腺素的分析一样，还有一个原因是没有等做够时间让神经恢复正常的，所以显示的不够准确。
心电的变化和肾上腺素分析基本一致。
【实验注意事项】
1. 麻醉应适量，过浅易骚动，过深不灵敏。
2. 手术过程中应尽量减少出血，分离神经应小心以免损伤神经。
3. 待前一实验的心电、神经冲动恢复正常后，再进行下一项目的观察。
4. 实验中注射药物较多，注意保护血管。
家兔颈部动脉和神经的分离及减压神经放电的引导实验报告
中央民族大学生命与环境科学学院 生理学实验报告 2011年10月28日 家兔颈部动脉和神经的分离及减压神经放电的引导 和 家兔动脉血压的神经与体液调节
【目的与要求】 1.学习家兔颈部手术与分离主动脉神经的方法。 2.学习在体神经冲动引导与记录的方法，理解主动脉神经的生理功能。 3.掌握记录和测量家兔动脉血压的直接测量方法。 4.观察神经和体液因素改变对家兔动脉血压调节的影响，并分析该些因素的作用机制。【实验原理】 主动脉神经是主动脉弓压力感受器的传入神经，又称减压神经。神经传入冲动的频率，在一定范围内随主动脉血压的升高或降低而相应增加或减少，从而使压力感受性反射增强或减弱，以维持动脉血压的相对稳定。由于家兔主动脉神经独成一束，易于分离，故常用家兔为实验动物，进行主动脉神经冲动的引导与血压实验。 在正常的生理情况下，人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。这种相对稳定性是通过神经和体液因素的调节而实现的，其中以颈动脉窦-主动脉弓压力感受器反射尤为重要。此反射即可使升高的血压下降，又可使降低的血压升高，故有血压缓冲反射之称谓。家兔的主动脉神经在解剖上独成一支，易于分离与观察其作用。 【实验动物及器材】 家兔、兔手术台，常用手术器械，止血钳、眼科剪、支架、气管插管、Pc-Lab生物信号采集系统、保护电极、纱布、棉球、丝线、20ml注射器、20%-25%氨基甲酸乙酯，肝素，去甲肾上腺素，生理盐水；RM6240生物信号采集系统，手术剪1把，眼科剪1把，止血钳，镊子，电刺激连线，兔手术台，注射器及针头，血管插管，动脉夹，血压换能器，铁架台，婴儿秤，输液装置，照明灯，有色丝线； 【实验步骤】 1、实验动物准备 1）麻醉：取家兔一只称重，按4-5ml/Kg(1g/Kg)耳缘静脉注射20%-25%氨基甲酸乙酯进行麻醉。 2）固定剪毛：背位固定在兔手术台上，剪去颈部手术视野中的被毛。 3）手术分离血管与神经 A、颈部皮肤切口5-7cm，分离皮下组织 B、分离肌肉层：钝性分离
家兔血压调节实验报告解读
实验报告 专业班级：康复治疗技术2班实验小组：第四组姓名：卢锦锟实验日期：2015年11月10日 （一）实验项目：家兔动脉血压调节 （二）实验目的： 1、掌握神经体液因素及受体阻断或兴奋药物对家兔心血管活动的影响机制。 2、掌握动脉血压作为心血管功能活动的综合指标及其相对恒定的调节原理和重要意义。 3、掌握家兔实验的基本方法和技术（静脉麻醉、静脉输液、动脉插管、分离神经等）。 4、掌握压力生物信号采集与处理系统的使用。 （三）基本原理：（要求对写出关键点） 动脉血压是心血管功能活动的综合指标。正常心血管的活动在神经、体液因素的调节下保持相对稳定，动脉血压相对恒定。动脉血压的相对恒定对于保持各组织、器官正常的血液供应和物质代谢是极其重要的。通过实验改变神经、体液因素或施加药物，观察动脉血压的变化，间接反映各因素对心血管功能活动的调节或影响。 实验仪器与试剂：BL-420生物信号采集与处理系统、血压换能器、刺激电极、哺乳类动物手术器械、注射器（5mL 、1mL ）等；3%戊巴比妥钠、0.3%肝素、1:10000盐酸肾上腺素、1:10000去甲肾上腺素、1:1000异丙肾上腺素、 0.01%多巴胺、1%酚妥拉明、0.01%普萘洛尔、0.001%乙酰胆碱、0.01%阿托品
1、夹闭颈总动脉血压升高，心跳加快。这是由于颈动脉窦管壁的外膜下分布有丰富的感觉神经末梢，是动脉张力感受器。这个感受器位于兔颈总动脉的远心端，颈内动脉与颈外动脉的分叉交界处。夹闭颈动脉后，远心端的颈动脉窦张力感受器感受到血压下降，传出神经冲动的频率减慢。信息沿窦神经上传至延髓孤束核心血管中枢。使心迷走紧张减弱，心交感和心缩血管紧张加强，作用于心脏，使心率加快，心输出量增加，血管收缩，血管外周阻力增加。从而血压恢复性升高。若血压下降过大，交感缩血管紧张还会扩展到静脉系统，是静脉收缩，促进血液回心，使每博输出量增加。 2、静脉注射0.01%重洒石酸去甲肾上腺素：去甲肾上腺素与血管平滑肌上的α和β2受体结合，使血管收缩，管径变小，外周阻力增加，从而使平均动脉压升高。此外，去甲肾上腺素还可以使心率增加，心收缩力变大，因此血压升高。 3、静脉注射0.005%盐酸异丙肾上腺素：异丙肾上腺素能与骨骼肌血管β2受体结合，骨骼肌血管（在全身血管中比例较大）持续舒张抵消了皮肤粘膜血管的收缩作用，因而出现后降压作用。 4、静脉注射0.01%盐酸肾上腺素：肾上腺素能与心肌β1受体结合激动心肌心肌收缩力增强，因此心率加快，传导加速，心排出量增多而导致收缩压升高。肾上腺素能激动腹腔内脏血管α1受体，使动腹腔内脏血管收缩，血压升高。 5、静脉注射1%酚妥拉明：α受体阻断剂，α受体的作用：α受体为传出神经系统的受体，根据其作用特性与分布不同分为两个亚型:α1、α2。 α1受体主要分布在血管平滑肌(如皮肤、粘膜血管，以及部分内脏血管，激动时引起血管收缩;α1受体也分布于瞳孔开大肌，激动时瞳孔开大肌收缩，瞳孔扩大。 α2受体主要分布在去甲肾上腺素能神经的突触前膜上，受体激动时可使去甲肾上腺素释放减少，对其产生负反馈调节作用。 （四）实验主要设备和仪器、药品和用品（要求分类、简洁、清晰表述）
生理学实验 家兔动脉血压的调节
实验二十 家兔动脉血压的调节 Regulation of Arterial B1ood Pressure in Rabbit 【实验目的】 学习哺乳动物动脉血压的直接测量方法，观察神经和体液因素对心血管活动的调节。 【实验原理】 心脏受交感神经和副交感神经支配。心交感神经兴奋使心跳加快加强，传导加速，从而 使心输出量增加。支配心脏的副交感神经为迷走神经，兴奋时心率减慢，心脏收缩力减弱， 传导速度减慢，从而使心输出量减少。 支配血管的自主神经绝大多数属于交感缩血管神经，兴奋时血管收缩，外周阻力增加。 同时由于容量血管收缩，促进静脉回流，心输出量亦增加。 心血管中枢通过反射作用调节心血管的活动，改变心输出量和外周阻力，从而调节动 脉血压。 心血管活动除受神经调节外，还受体液因素的调节，其中最重要的为肾上腺素和去甲 肾上腺素。它们对心血管的作用既有共性，又有特殊性。肾上腺素对α受体与β受体均有激 活作用，使心跳加快，收缩力加强，传导加快，心输出量增加。它对血管的作用取决于两种 受体中哪一种占优势。去甲肾上腺素主要激活α受体，对β受体作用很小，因而使外周阻力 增加，动脉血压增加，其对心脏的作用远较肾上腺素为弱。静脉内注入去甲肾上腺素时，血 压升高，启动减压反射，可反射性地引起心跳减慢。本实验通过动脉血压的变化来反映心血 管活动的变化。 【实验对象】 家兔。 【实验材料】 哺乳类动物手术器械，兔手术台，BL-410 生物信号采集处理系统，压力换能器，刺激 电极，照明灯，万能支台，双凹夹，烧瓶夹，试管夹，气管插管，动脉夹，三通开关，动脉 导管，注射器(1ml、5ml、20ml)，有色丝线，纱布，棉花，1.5％戊巴比妥钠，1000U/ml 肝 素生理盐水，1:10000 肾上腺素溶液，1:10000 去甲肾上腺素溶液，1:10000 乙酰胆碱溶液， 生理盐水。 【实验步骤】 1．连接实验仪器装置 将压力换能器固定在铁支架上，换能器的位置大致与心脏在同 一水平。将动脉导管经三通开关与压力换能器正中的一个输入接口相接。压力换能器的输入 信号插头与生物信号采集处理系统的信号放大器输入盒的某通道相连。 用注射器通过三通开 关向压力换能器及动脉导管内注满肝素生理盐水，排尽气泡，然后关闭三通开关备用。 将刺激电极输入端与生物信号采集处理系统的刺激输出口相连。 2．手术 (1)动物的麻醉与固定 用 1.5％戊巴比妥钠以 2.0ml／kg 的剂量由耳缘静脉缓慢注入。 动物麻醉后，仰卧位固定于手术台上。 (2)气管插管 剪去颈部的毛，沿颈正中线作5~7cm的皮肤切口。分离皮下组织及肌肉， 暴露、分离气管。在气管下方穿一丝线，于甲状软骨下方 2～3cm处作“⊥”形切口，插入 气管插管，以丝线结扎固定。 (3)分离颈部神经和血管 在气管两侧辨别并分离颈总动脉、迷走神经、交感神经和减 压神经。三条神经中，迷走神经最粗，交感神经次之，减压神经最细，常与交感神经紧贴在 一起。分别在各神经下方穿以不同颜色的丝线备用。分离时特别注意不要过度牵拉，并随时 用生理盐水湿润。颈总动脉下方穿两条线备用。 (4)插动脉插管 静脉注射肝素(1000U／kg)以抗血凝。在左侧颈总动脉的近心端夹一动
神经生理学模拟实验报告材料
实用文档专业：应用心理学 ： 学号：日期：地点：汪加诚3110102422 2016.1024 医学楼 C512 实验报告 课程名称：实验名称： 神经生理学指导老师：成绩： 同组学生：神经干不应期的测定实验类型：模拟实验 一、实验目的 了解蛙类坐骨神经干产生动作电位后其兴奋性的规律性变化。学习绝对不应期和相对不 应期的测定方法。 二、实验原理 神经组织和其他可兴奋组织一样，在接受一次刺激产生兴奋以后，其兴奋性将会发生规 律性的变化，依次经过绝对不应期、相对不应期，超常期和低常期，然后再回到正常的兴奋 水平。 采用双脉冲刺激的方法。将两刺激脉冲间隔由最小逐渐增大时，开始只有第一个刺激脉 冲刺激产生动作电位(action potential, AP)，第二个刺激脉冲刺激不产生 AP，当两刺激脉 冲间隔达到一定值时，此时第二个刺激脉冲刚好能引起一极小的 AP，这时两刺激脉冲间隔即 为绝对不应期。继续增大刺激脉冲间隔，这时由第二个刺激脉冲刺激产生的 A P逐渐增大，当 两刺激间隔达到某一值时，此时由第二个刺激脉冲刺激产生的 AP，其振幅刚好和由第一个刺 激产生的 A P相同，这时两刺激脉冲间隔即为相对不应期。 三、材料和方法 【材料】：蟾蜍或蛙；标本屏蔽盒、任氏液、微机生物信号采集处理系统。 【实验方法】： 1．系统连接和仪器参数设置 （1）RM6240 系统：点击“实验”菜单，选择“肌肉神经”或“生理科学实验项目”菜 单中的“神经干兴奋不应期的测定”或“神经干兴奋不应期的自动测定”项目。系统进入该 实验信号记录状态。仪器参数：1通道时间常数 0.02s、滤波频率 1KHz、灵敏度 4mV，采样频率 80KHz，扫描速度 1ms/p。双刺激激模式，最大刺激强度，刺激波宽 0.1ms，起始波间隔 30 ms，延迟 2ms，同步触发。
【生理学】临床机能实验讨论题--学生用有答案
临床机能实验讨论题 运动、体位变化对人体动脉血压的影响 离体心肌动作电位（模拟实验） 离子与药物对离体蟾蜍心脏活动的影响（模拟实验） MedLab生物信号采集处理系统使用 蟾蜍坐骨神经腓肠肌标本的制备 不同刺激强度和频率对骨骼肌收缩的影响 心室期前收缩与代偿间歇及不应期的测定 家兔实验基本操作胸内负压和气胸的观察 生理因素及药物对呼吸运动及膈肌放电的影响 神经、体液因素及药物对动脉血压的影响 左心室内压的测定 减压神经放电及其影响因素红细胞渗透脆性的测 定 尿生成的影响因素胃肠运动观察 1.钙离子、肾上腺素、乙酰胆碱对离体蛙心活动有何影响？为什么？ 2.心室肌动作电位的分期和产生机制？ 3.运动前后血压有何不同？机理如何？ 4.何谓期前收缩与代偿间歇？ 5.从不同刺激强度引起的反应，讨论刺激与反应的关系，出现的现象如何解释？ 6.复合收缩引起的条件？ 7为何吸入气中CO2浓度增加会使呼吸运动加强？ 8.何吸入纯氮气后会影响呼吸运动？ 9.增加无效腔，呼吸运动会有何变化，为什么？ 10.注射乳酸后影响呼吸运动？ 11切断两侧迷走神经后对呼吸有何影响，为什么？ 12实验所记录到的群集型减压冲动发放是代表血压的一级波还是二级波？试说明之。13总结减压神经放电与动脉血压的关系。 14夹闭颈总动脉，血压如何变化？为什么？ 15刺激完整减压神经及其中枢端以及外周端，动脉血压变化？为什么？ 16刺激迷走神经末梢外周端，引起血压？为什么？ 17静脉注射去甲肾上腺素，血压？为什么？ 18静脉注射大量生理盐水，尿量？为什么？ 19静脉注射1：10000去甲肾上腺素，尿量？为什么？ 20静脉注射20%葡萄糖液，尿量？为什么？ 21连续间断刺激迷走神经外周端，尿量？为什么？ 22静脉注射速尿，尿量？为什么？ 23静脉注射垂体后叶素，尿量？为什么？
家兔动脉血压的神经体液调节实验报告
家兔动脉血压的神经体液调节实验报告 (一)实验项目:家兔动脉血压的神经体液调节 (二)实验目的: 1、掌握神经体液因素及受体阻断或兴奋药物对家兔心血管活动的影响机制。 2、掌握动脉血压作为心血管功能活动的综合指标及其相对恒定的调节原理和重要意义。 3、掌握家兔实验的基本方法和技术(静脉麻醉、静脉输液、动脉插管、分离神经等)。 4、掌握压力生物信号采集与处理系统的使用。 (三)基本原理: 动脉血压是心血管功能活动的综合指标。正常心血管的活动在神经、体液因素的调节下保持相对稳定，动脉血压相对恒定。动脉血压的相对恒定对于保持各组织、器官正常的血液供应和物质代谢是极其重要的。通过实验改变神经、体液因素或施加药物，观察动脉血压的变化，间接反映各因素对心血管功能活动的调节或影响。 实验仪器与试剂:BL-420生物信号采集与处理系统、血压换能器、刺激电极、哺乳类动物手术器械、注射器(5mL、1mL)等;3%戊巴比妥钠、0.3%肝素、1:10000盐酸肾上腺素、1:10000去甲肾上腺素、1:1000异丙肾上腺素、0.01%多巴胺、1%酚妥拉明、
0.001%乙酰胆碱、0.01%阿托品 1、夹闭颈总动脉血压升高，心跳加快。这是由于颈动脉窦管壁的外膜下分布有丰富的感觉神经末梢，是动脉张力感受器。这个感受器位于兔颈总动脉的远心端，颈内动脉与颈外动脉的分叉交界处。夹闭颈动脉后，远心端的颈动脉窦张力感受器感受到血压下降，传出神经冲动的频率减慢。信息沿窦神经上传至延髓孤束核心血管中枢。使心迷走紧张减弱，心交感和心缩血管紧张加强，作用于心脏，使心率加快，心输出量增加，血管收缩，血管外周阻力增加。从而血压恢复性升高。若血压下降过大，交感缩血管紧张还会扩展到静脉系统，是静脉收缩，促进血液回心，使每博输出量增加。 2、静脉注射0.01%重洒石酸去甲肾上腺素:去甲肾上腺素与血管平滑肌上的α和β2受体结合，使血管收缩，管径变小，外周阻力增加，从而使平均动脉压升高。此外，去甲肾上腺素还可以使心率增加，心收缩力变大，因此血压升高。 3、静脉注射0.005%盐酸异丙肾上腺素:异丙肾上腺素能与骨骼肌血管β2受体结合，骨骼肌血管(在全身血管中比例较大)持续舒张抵消了皮肤粘膜血管的收缩作用，因而出现后降压作用。 4、静脉注射0.01%盐酸肾上腺素:肾上腺素能与心肌β1受体结合激动心肌心肌收缩力增强，因此心率加快，传导加速，心排出量增多而导致收缩压升高。肾上腺素能激动腹腔内脏血管α 1受体，使动腹腔内脏血管收缩，血压升高。
家兔动脉血压的神经体液调节(动静脉)
家兔动脉血压的神经体液调节 【实验目的】 1.学习直接测定和记录家兔动脉血压的急性实验方法 2.观察某些神经、体液因素对心血管活动的影响 【实验材料】 家兔 器材：手术台，止血钳，眼科剪，BL420E+生物机能分析系统，气管插管，动脉套管，动脉夹，保护电极，照明灯，纱布，棉球，丝线，注射器 试剂：生理盐水，肝素，乌来糖（麻醉剂），肾上腺素，乙酰胆碱 【实验步骤】 1.手术 （1）麻醉取家兔一只，称重，耳缘静脉注射麻醉剂（1g/kg）进行麻醉。麻醉过程要缓慢，当动物角膜反应迟钝，掐其大腿无反应，即可停止注射，避免过度麻醉致死。 （2）将动物背位交叉固定，将颈部喉结下部毛剪掉。 （3）仅靠喉结下缘，沿颈部正中线做一长约5-7cm的皮肤切口，将皮下结缔组织钝性分离，至露出气管，穿线，用手术刀在气管上做一横切口，插入气管插管，结扎。 （4）分离颈部神经血管：分离胸骨舌骨肌和胸骨甲状肌及其周围结缔组织，在接近气管外侧，有一条较细，壁厚的血管，即为主动脉血管（可看出里面血流规律性搏动）。与主动脉伴行的有两条较粗的神经，最粗的为迷走神经，其次为交感神经，两者之间有一条很细的神经，减压神经。但减压神经的位置不固定，两条较粗的神经附近的细小神经都有可能是减压神经，可以进行刺激试探。确定迷走神经和减压神经后，分离出减压神经，迷走神经，主动脉血管，分别穿线备用。 （5）动脉套管插入：动脉套管插入前，需准备好压力换能器记录血压的装置。用注射器将肝素生理盐水注入套管，至将其中所有空气由插孔处排出，用肝素生理盐水代替。注入处用止血钳将胶管夹住。保证其中不能有空气。准备好动脉套管装置后，用动脉夹夹住近心端，远心端动脉结扎，在两者之间剪一小口，迅速插入动脉套管（动作迅速，否则动脉管腔急剧收缩，难以插入套管），用线将动脉插管固定于动脉内，并挂在套管（缠一圈胶布）上，以免滑脱。 （6）松开动脉夹，即可看到少量动脉血液冲入动脉套管。此时即可开始进行试验，记录曲线。 2.曲线描记 （1）描记一段正常曲线，识别一级波（心波），二级波（呼吸波）。 （2）提起另一侧颈总动脉的备用线，动脉夹夹闭5-10s，观察记录血压变化，分析原因。（3）中等强度的点刺激刺激另一侧减压神经，观察血压变化。双结扎后切断，再刺激减压神经神经的中枢端和外周端，观察记录血压变化。 （4）对另一侧迷走神经进行同样处理，分别观察双结扎切断神经前、后的血压变化。（5）耳缘静脉注射肾上腺素，观察血压变化。 （6）耳缘静脉注射乙酰胆碱，观察血压变化。
兔子实验报告
生理兔子实验报告 主题：血压测量、呼吸运动调节 实验班级：151541 实验小组：第三组 实验日期：2016年5月31日 具体分工：主刀：李睿哲 副手：朱梦洁、周紫星 麻醉：陈海芹、谢明思 器械管理：李部 实验数据记录整理：毕长鹏 一、实验目的： 通过对兔子的观察、研究和分析，更好地了解兔子与人类一些相似的生命活动过程，更好地认识生物机体活动规律。 二、实验原理： 正常生理情况下，人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。动脉血压的相对恒定对于保持合组织、器官正常的血液供应和物质代谢极为重要，动脉血压的剧烈变化会显着影响各组织、器官的正常活动。动脉血压是心血管功能活动的综合指标。通过改变神经、体液因素或施加药物，观察动脉血压的变化情况，可以间接反映各种因素对心血管功能的自主性调节。 呼吸运动能够有节律地进行，并与机体代谢水平相适
应，主要是由于体内外各种刺激，可以通过外周或中枢化学感受器或者直接作用于呼吸中枢，反射性地调节呼吸运动的结果。 三、实验器材： 实验动物：一只健康兔子（ 实验试剂：20%的乌拉坦、肝素、生理盐水、肾上腺素? 实验设备：兔箱、电子称、手术灯、兔解剖台、压力换能器、呼吸流量换能器、金属碗、纱布、注射器、气管插管、动脉插管、动脉夹、玻璃分针、止血钳、皮钳、绳子、毛剪、镊子、输液夹、皮剪、眼科剪、托盘金属、托盘陶瓷、一次性静脉输液针 四、实验步骤 1.实验仪器的准备 首先打开计算机采集系统，通道1接通压力换能器，通道2接通呼吸流量换能器，从系统的“生理学实验”中找出“血压-呼吸的（学生)实验”，使显示器显示压力和呼吸的读数，并调节至合适比率。 2.连接压力传感器和液体传递系统 用注射器向连接动脉插管的导管内推注含有肝素的生理盐水，使之充满液体。 3.动物准备 1)术前准备
生理学实验 家兔减压神经放电
实验二十一 家兔减压神经放电 Rabbit depressor neural discharges 【实验目的】 学习引导减压神经放电的电生理学实验方法；观察动脉血压变化与减压神经放电的关 系。 【实验原理】 当动脉血压升高或降低时， 压力感受器的传入冲动也随之增加或减少， 通过中枢机制引 起心率、心肌收缩力、心输出量、血管阻力等发生相应变化，使动脉血压降低或回升，从而 调节血压相对稳定，这一反射称为减压反射。家兔降压反射的主动脉弓压力感受器的传入神 经在颈部单独成一束，称为主动脉神经或减压神经。它是减压反射的传入神经，可将感受器 感受血压变化的传入冲动传送到中枢。用电生理学实验方法可引导、显示、记录减压神经放 电，并用监听器监听减压神经放电的声音。 【实验对象】 家兔。 【实验材料】 哺乳类动物手术器械，兔手术台，BL-410 生物信号采集处理系统，压力换能器、引导 电极，电极架，注射器，玻璃分针，烧杯，棉球及丝线，纱布，滴管，液体石蜡，生理盐水， 1.5%戊巴比妥钠，1:10000 肾上腺素溶液，1:10000 乙酰胆碱溶液。 【实验步骤】 1．手术 (1)麻醉和固定 用 1.5%戊巴比妥钠，按 2ml／kg的剂量从兔耳缘静脉缓慢注入，待动 物麻醉后，取仰卧位固定于兔手术台上。 (2)分离减压神经 颈部剪毛，在颈部正中切开皮肤(约 6～8cm)，钝性分离皮下组织及 肌肉，暴露气管。沿气管两侧小心分离减压神经(如头发粗细)和颈总动脉，穿线备用。减压 神经分布（图 21－1、－2、－3） (3)颈总动脉插管。 (4)安置电极 向内滴入温热的液体石蜡，浸没神经和电极，以防神经干燥，并起绝缘、 保温作用。 将引导电极固定在电极架上， 用备用线提起减压神经并搭到引导电极的神经钩上， 注意神经不可牵拉过紧。引导电极应悬空并固定于支架上，不能触及周围组织，将接地线就 近夹在皮肤切口组织上。神经放电引导电极参见图 21－4。 2．连接实验仪器装置 (1)神经放电引导电极接到生物信号采集处理系统第 1 通道上，记录减压神经放电。 （2)颈总动脉插管通过压力换能器输入到生物信号采集处理系统第 2 通道上，记录动脉 血压曲线变化。 (3) 打开计算机启动生物信号采集处理系统，点击菜单“输入信号／1 通道／神经放 （图21－5） ，按开始按钮记录实验数据。 、 “输入信号／2通道／压力” 电”
家兔动脉血压的神经体液调节实验报告
家兔动脉血压的神经体液调节 实验报告 [目的与要求] 1 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法 2观察神经,体液因素对心血管活动的影响 [基本原理] 在正常人体内,任何高等动物的动脉血压时相对稳定的.这种相对稳定是通过神经和体液调节来实现的,其中以静动脉窦-主动脉弓压力感受性反射最为重要。 本实验应用液导系统直接测定动脉血压,即由动脉插管与压力传感器连通,其内充满抗凝液体,构成液导系统,将动脉插管插入动脉,动脉内的压力及其变化,可通过封闭的液导系统传导压力感受器。 [动物与器材] 家兔 ,手术台, 常用手术器械, 止血钳,眼科剪,支架,双凹管, 气管插管,动脉插管,三道管, 动脉夹,计算机采集系统 ,压力传感器,保护电极,照明灯,纱布,棉球,丝线,注射器(1ml,5ml,20ml),生理盐水,4%柠檬酸钠,20%-25%氨基甲酸已酯,肝素(200U/ml),肾上腺素(1:5000),已酰胆碱(1:10000) 【方法与步骤】 1、实验仪器的准备 打开计算机采集系统，接通压力传感器。从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条，使显示器显示压力读数。 2、连通液导系统并制压 将压力传感器的下方支管，通过输液管连接三通管，再连接动脉插管。上侧管供制压时排除管内空气使用。先用装有20ml 4%柠檬酸钠的注射器，通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注，使之充满液体（不要使动脉插管高过压力传感器的上方支管）后，再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。然后继续向三通管
内推注，直至充满压力传感器的上方支管，并用塞子塞住（注意：液导系统内不可有气泡）。继续向三通管内推注，同时观察显示器上压力变化。当加压到120mmHg时既可关闭三通管。观察压力是否变化，如果压力下降，则需要检查液导系统的漏液原因，并重新制压。调节血压显示器的灵敏度，使30~130mmHg的变化都能在显示器上明显的反映出来。将动脉插管端的导管内充满肝素溶液。 3、动物的准备 （1）按照实验4-9方法，麻醉家兔并进行颈部手术，插入气管插管、分离主动脉神经。同时分离迷走神经并穿线备用。再将止血钳从颈总动脉下方穿过，轻轻张开止血钳，分离出2~3cm长的颈总动脉。分离出的颈总动脉外壁应该十分光洁，外面并无结缔组织及脂肪等物。在动脉上穿两条备用棉线，分别打上活结。将两线分别拉至分离出的动脉两端备用。同样方法分离另一侧血管与神经（一侧动脉用于插管侧压，另侧动脉实验用）。由于家兔的品种不同，个体之间也有差异，常发现3条神经的解剖位置有些变异。主动脉神经的最后确认，蓄意对血压的影响为准。 （2）动脉插管首先用5ml注射器从耳缘静脉注入肝素（200U？kg体重）以防凝血。然后在一侧动脉行动脉插管术以记录血压。其方法如下：将动脉头端的备用线尽可能靠头端结扎（务必扎紧，以防渗血），然后在另一备用线的向心侧（尽可能近心端），用动脉夹夹闭。轻轻提起动脉头端的结扎线，用锐利的眼科剪在靠近扎线的稍后方，沿向心方向斜向剪开动脉上壁（注意：不可只剪开血管外膜，也切勿剪断整个动脉，剪口大小约为管径的一半）。一手持弯头眼科镊，将其一个弯头从剪口处插进动脉少许，轻轻挑起剪开的动脉上壁，另一手将准备好的动脉插管由开口处插入动脉管内。如果插入较浅，可用一手轻轻捏住进入插管的动脉管壁，另一手拿住动脉插管，顺势轻轻推进至6~8mm左右（如果手感滞涩，说明插管并未进入动脉，必须退出插管，重新剪口再插），用备用线将动脉连同进入的插管扎紧（插管不可因扎线松动而滑出，亦不可漏液），并将余线系在插管的固定侧支上，以免滑脱。注意：插管应与动脉血管的方向一致，以防插管尖端扎破动脉管壁。轻轻取下向心端动脉夹，可见动脉血与插管内液体混合。再取下通向压力传感器的止血钳，此时显示器上出现血压的波动曲线。 4、实验观察
① 减压神经放电实验报告
减压神经放电实验 2012级临七3班廖梦宇2012021320 一、实验原理： 颈动脉窦和主动脉弓压力感受性反射，（carotid sinus-arotic arch baroreceptor reflex）：即压力感受性反射（baroreceptor reflex），亦称为降压反射(depressor reflex)。动脉压力感受器是位于颈动脉窦和主动脉弓的外膜与中膜之间的一些裸露的神经末梢，可以感受血管壁的牵张度，反应血压的变化。来自压力感受器的冲动通过传入神经窦神经传导到舌咽神经，通过主动脉神经加入迷走神经，在家兔该神经则游离的较长，称为减压神经，传入神经进一步传导冲动先到达孤束核再与心血管中枢联系。减压反射是一种负反馈调节机制。它在平时经常起作用，使动脉血压维持在比较恒定的水平。 二、实验目的： 1、观察减压神经传入冲动的发放特征。 2、动脉血压变动时与减压神经传入冲动发放的相互关系。 三、实验步骤： 1．麻醉和固定 （1）麻醉：25％乌拉坦溶液(1g/kg), 4ml／kg 注射部位：耳缘静脉 注意：①速度----缓慢！！！ ②原则：“一快，二慢，三看看（观察）” 观察：肌张力、角膜反射 （2）仰卧位固定 2. 手术 （1）颈部剪毛，颈正中切口约5~7cm， （2）用止血钳纵向钝性分离颈部肌肉， （3）分离一侧减压神经 血管神经鞘：颈总动脉、迷走、交感和减压神经。 分离出一段的减压神经（长约3～5cm），清除附着的脂肪或结缔组织；加温石蜡油以防止干燥，穿线备用。 3．引导 把已游离的减压神经轻轻悬挂在引导电极上。 注意：勿过度牵拉 4．仪器调试 引导电极连接于BL420实验系统。打开计算机，从BL420实验系统主界面的“实验模块”→“循环实验”→“减压神经放电”，开始记录。 四、观察项目： 1. 记录正常减压神经冲动特征并监听声音。 2. 夹住未插管的颈总动脉15~20秒，观察减压神经冲动、监听的声音的变化。 3. 牵拉插管一侧颈总动脉15～20秒，观察减压神经冲动、监听的声音的变化。
家兔动脉血压的神经和体液调节
姓名*** 系年级********* 学号*********** 科目动物生理学实验同组者***、*** 日期*********** 家兔动脉血压的神经和体液调节 【实验目的】 1. 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验方法。 2. 观察神经、体液因素对心血管活动的影响。 【实验原理】 在正常生理状况下，人和高等动物的动脉血压（arterial blood pressure，ABP）是相对稳定的。这种相对稳定性是通过神经和体液因素的调节而实现的，其中以颈总动脉-主动脉弓压力感受性反射尤为重要。此反射既可使升高的血压下降，又可使降低的血压升高，故有血压缓冲反射之称谓。家兔的主动脉神经在解剖上独成一支，易于分离与观察其作用。 本实验是应用液导系统直接测定动脉血压。即由动脉插管与压力传感器连通，其内充满抗凝液体，构成液导系统，将动脉插管插入动脉内，动脉内的压力及其变化，可通过封闭的液导系统传递到压力传感器，并由计算机采集系统记录下来。 【实验材料】 1.材料：家兔。 2.器具：兔体手术台，常用手术器械，剪毛剪，解剖刀，咬骨钳，止血钳，气管插管，动 脉插管，三通管，动脉夹，压力传感器，计算机采集系统，照明灯，注射器，棉花，棉线，银丝电极（双电极）。 3.试剂：20﹪氨基甲酸乙酯，4﹪柠檬酸钠溶液，肝素钠溶液，生理盐水。 【实验步骤】 （一）实验仪器的准备 1. 打开计算机采集系统，接通压力传感器。从控制界面的菜单“实验项目”中选取“循环实验”的“家兔血压的调节”条，或者直接将相应采集通道的模式调整为“压力”模式。使图线显示压力读数。 2. 连接液导系统并制压 将压力传感器的下方支管，通过输液管连接三通管，再连接动脉插管。上侧管供制压时排除管内空气使用。先用装有20ml 4％柠檬酸钠的注射器，通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注，使之充满液体（不要使动脉插管高过压力传感器的上方支管）后，再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。然后继续向三通管内推注，直至充满压力传感器的上方支管，并用塞子塞住（注意：液导系统内不可有气泡）。继续向三通管内推注，同时观察显示器上压力的变化。当加压到120mmHg（1mmHg=1.33×102Pa）左右即可关闭三通管。观察压力是否变化，如果压力下降，则需要检查液导系统的漏液原因，并重新制压。调节血压显示器的灵敏度，使30~130mmHg的变化都能在显示器上明显地反映出来。将动脉插管端的导管内充满肝素钠溶液。
家兔血压实验报告-家兔血压实验报告结论
家兔血压实验报告 篇一：4.兔血压实验报告 实验题目：传出神经系统药物对家兔心血管系统的影响 班级：12级临七3班姓名：廖梦宇学号：2012021320 一、实验原理： 1. 传出神经系统药物通过作用于心脏和血管平滑肌上相应的受体而产生心血管效应，导致血压变化。 2. 本实验通过观察麻醉家兔动脉血压的变化，分析肾上腺素受体激动剂与拮抗剂之间的相互作用。 二、实验目的： 1.掌握测定麻醉动物动脉血压及心电图的实验方法. 2.观察三个肾上腺素受体激动剂和两个拮抗剂对动脉血压及心率的影响 三、实验步骤： 1. 麻醉：取家兔，称重，用25%乌
拉坦麻醉, 4ml/kg, 耳缘静脉注射； 2. 备皮：麻醉后，将家兔仰位固定于手术台上，剪去颈部的毛，正中切开颈部皮肤； 3. 气管插管：分离气管，在气管上作一倒“T”型切口，插入气管插管并以粗线固定。 4. 动脉插管：自气管左侧分离颈总动脉到2cm，动脉下穿两根丝线。结扎远心端，近心端以动脉夹夹闭。用眼科剪在结扎端与动脉夹之间剪开一小口。将连于压力传感器的动脉套管充满1%肝素生理盐水后，插入颈总动脉，并用手术线固定。松开动脉夹。 5. 记录血压：将压力传感器连接于主机前面板的1通道，打开BL-410生物机能实验系统，将1通道设置成血压和心电，点击开始记录血压。 6. 稳定5~10min，记录正常血压和心率。 7. 给药：按下列顺序静脉给药 肾上腺素/kg, 10min
去甲肾上腺素/kg, 10min 异丙肾上腺素/kg, 10min 8. 给药：按下列顺序静脉给药 酚妥拉明/kg, 5min 肾上腺素/kg, 5min 去甲肾上腺素/kg, 5min 异丙肾上腺素/kg, 10min 9. 给药：按下列顺序静脉给药 普萘洛尔/kg, 5min 肾上腺素/kg, 5min 去甲肾上腺素/kg, 5min 异丙肾上腺素/kg, 10min 四、实验结果： 1. 正常心率和血压：260次/分，115mmHg。 2. 拟肾上腺素药对血压和心率的影响（第七步给药后） 对血压的影响：（上图） 对心率的影响： 肾上腺素：加快 去甲肾上腺素：减慢 异丙肾上腺素：加快（比肾上腺素
家兔动脉血压的神经体液调节实验报告汇总
[目的与要求] 1 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法 2观察神经,体液因素对心血管活动的影响 [基本原理] 在正常人体内,任何高等动物的动脉血压时相对稳定的.这种相对稳定是通过神经和体液调节来实现的,其中以静动脉窦-主动脉弓压力感受性反射最为重要.此反射即可使升高的血压下降,又可使降低血压升高,故有血压缓冲反射之称.家兔的主动脉神经在解剖上独成一支,易于分离与观察起作用 本实验是应用液导系统直接测定动脉血压,即由动脉插管与压力传感器连通,其内充满抗凝液体,构成液导系统,将动脉插管插入动脉,动脉内的压力及其变化,可通过封闭的液导系统传导压力感受器,由计算机采集系统记录下来 [动物与器材] 家兔,手术台, 常用手术器械, 止血钳,眼科剪,支架,双凹管, 气管插管,动脉插管,三道管, 动脉夹,计算机采集系统,压力传感器,保护电极,照明灯,纱布,棉球,丝线,注射器(1ml,5ml,20ml),生理盐水,4%柠檬酸钠,20%-25%氨基甲酸已酯,肝素(200U/ml),肾上腺素(1:5000),已酰胆碱(1:10000) 【方法与步骤】 1、实验仪器的准备 打开计算机采集系统，接通压力传感器。从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条，使显示器显示压力读数。 2、连通液导系统并制压 将压力传感器的下方支管，通过输液管连接三通管，再连接动脉插管。上侧管供制压时排除管内空气使用。先用装有20ml 4%柠檬酸钠的注射器，通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注，使之充满液体（不要使动脉插管高过压力传感器的上方支管）后，再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。然后继续向三通管内推注，直至充满压力传感器的上方支管，并用塞子塞住（注意：液导系统内不可有
药物与神经调节对动脉血压的影响
药物与神经调节对动脉血压的影响 一、实验目的 1.掌握家兔动脉血压的描记和分析方法。 2.掌握家兔减压神经放电的引导方法和影响因素。 3.观察分析神经和体液因素对血压和心率的调节。 二．实验原理 1.动脉血压的影响因素： 心脏射血（每搏输出量），心率，外周阻力，血液充盈，大动脉管壁弹性。 2.心血管活动的调节 神经调节：压力感受性反射、心肺感受性反射、化学感受性反射 体液调节：RAAS，Adr，NE，ADH，内皮素），内皮舒血管因子（EDRF，NO），激肽，前列腺素（PGs）等。 3.减压反射： 血压↑→刺激压力感受器(颈动脉窦与主动脉弓)→传入神经(窦神经、减压神经)→传入冲动↑→心血管中枢整合作用→传出神经(心迷走神经兴奋，心交感神经抑制，交感缩血管纤维抑制)→心输出量和外周阻力↓→血压↓。 意义：此反射对血压变化及时纠正，对维持正常血压发挥着重要作用。 4.动脉血压的长期调节 肾-体液控制系统：细胞外液量增加→Q增多→-Bp升高→肾排水、排钠增加→-细胞外液总量减少→Bp下降。反之亦然。 影响因素：ADH、肾素—血管紧张素—醛固酮系统 三．实验步骤 1.兔称重、麻醉和固定。 2. 手术操作 （1）分离右侧减压神经、迷走神经和颈总动脉， （2）左侧颈总动脉分离、插管，记录血压。 （3）耳缘静脉留置头皮针，以备连续给药。 3.仪器连接 1道：引导电极 2道：血压换能器，动脉血压，心率 刺激输出：刺激电极与BL-420E系统的前面板相应插孔连接。 四、观察指标 1. 正常动脉血压、心率
2. 神经体液因素对血压、心率的影响 （1）减压神经放电 （2）乙酰胆碱，0.5ml，神经放电，血压 （3）去甲肾上腺素，0.5ml，神经放电，血压，撤除引导电极。 （4）牵拉左颈总动脉，5-10s, 2-5次/s, 血压、心率 （5）夹闭右颈总动脉, 5-10s，血压、心率 （6）肾上腺素，0.4ml，血压、心率 （7）刺激迷走神经外周端、中枢端，血压、心率。 五，实验注意事项 1. 保护耳缘静脉，先从耳远端进针。 2. 先分减压神经，再分颈动脉、迷走神经。 3. 每项实验后，等血压和心率恢复，再进行下一项目。 4. 注射药品后，再推注少量生理盐水，防止药物残留在局部静脉。 六，分析思考 1.注射NE、Ach时，血压、心率变化？结论？ 2.牵拉左颈总动脉，血压、心率变化？结论？ 3.夹闭右侧颈总动脉，血压的变化？结论？ 4.刺激右迷走神经外周端、中枢端，血压、心率的变化？神经调控机制？ 七、实验结果 不同因素对动脉血压的影响 刺激因素血压心率 牵拉颈总动脉↓↓ 夹紧颈总动脉↑↑ 减压神经↓↓ 迷走神经↓↓ 去甲肾上腺素↑↑ 肾上腺素↑↑ 乙酰胆碱↓↓
4.兔血压实验报告
实验题目：传出神经系统药物对家兔心血管系统的影响 班级：12级临七3班姓名：廖梦宇学号：2012021320 一、实验原理： 1.传出神经系统药物通过作用于心脏和血管平滑肌上相应的受体而产生心血管效应， 导致血压变化。 2.本实验通过观察麻醉家兔动脉血压的变化，分析肾上腺素受体激动剂与拮抗剂之间 的相互作用。 二、实验目的： 1.掌握测定麻醉动物动脉血压及心电图的实验方法. 2.观察三个肾上腺素受体激动剂和两个拮抗剂对动脉血压及心率的影响 三、实验步骤： 1.麻醉：取家兔，称重，用25%乌拉坦麻醉, 4ml/kg, 耳缘静脉注射； 2. 备皮：麻醉后，将家兔仰位固定于手术台上，剪去颈部的毛，正中切开颈部皮肤； 3. 气管插管：分离气管，在气管上作一倒“T”型切口，插入气管插管并以粗线固定。 4. 动脉插管：自气管左侧分离颈总动脉 1.5到2cm，动脉下穿两根丝线。结扎远心 端，近心端以动脉夹夹闭。用眼科剪在结扎端与动脉夹之间剪开一小口。将连于压力传感器的动脉套管充满1%肝素生理盐水后，插入颈总动脉，并用手术线固定。松开动脉夹。 5. 记录血压：将压力传感器连接于主机前面板的1通道，打开BL-410生物机能实验 系统，将1通道设置成血压和心电，点击开始记录血压。 6. 稳定5~10min，记录正常血压和心率。 7. 给药：按下列顺序静脉给药 肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 去甲肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 异丙肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 8. 给药：按下列顺序静脉给药 酚妥拉明 0.2ml/kg, 5min 肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 去甲肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 异丙肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 9. 给药：按下列顺序静脉给药 普萘洛尔 0.2ml/kg, 5min 肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 去甲肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 异丙肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 四、实验结果： 1.正常心率和血压：260次/分，115mmHg。
家兔动脉血压调节实验讲课教案
家兔动脉血压调节实 验
一、家兔动脉血压调节 （一）实验目的 本实验通过动脉血压的变化来反映心血管活动的变化。目的在于间接地观察心血管活动的神经体液性调节和学习哺乳动物动脉血压的直接测量方法。 （二）实验原理 心脏受交感神经和副交感神经支配。心交感神经兴奋使心跳加快加强，传导加速，从而使心输出量增加。支配心脏的副交感神经为迷走神经，兴奋时心率减慢，心房收缩力减弱，房室传导减慢，从而使心输出量减少。 支配血管的植物性神经，绝大多数属于交感缩血管神经，兴奋时使血管收缩，外周阻力增加。同时由于容量血管收缩，促进静脉回流，心输出量亦增加。 心血管中枢通过反射作用，调节心血管的活动，改变心输出量和外用阻力，从而调节动脉血压。 心血管活动除受神经调节外，还受体液因素的调节，其中最重要的为肾上腺素和去甲肾上腺素。它们对心血管的作用既有共性，又有特殊性。肾上腺素对α与β受体均有激活作用，使心跳加快，收缩力加强，传导加快，心输出量增加。它对血管的作用取决于两种受体中哪一种占优势。去甲肾上腺素主要激活受体α，对β受体作用很小，因而使外周阻力增加，动脉血压增加。其对心脏的作用远较肾上腺素为弱。静脉内注入去甲肾上腺素时，血压升高，可反射性地引起心动过缓。 （三）实验材料 1.实验对象：兔。
2.器材：四道生理记录仪、血压换能器、电刺激器、保护电极、兔手术台、哺乳动物手术器械、照明灯、铁支架、双凹夹、烧瓶夹、试管夹、气管插管、动脉夹、三通管、塑料动脉插管、放血插管、注射器（lml、5ml、 20ml），有色丝线、纱布、棉花、1％戊巴比妥钠、1：1000肝素、1：10000去甲肾上腺素、12．5U/ml肝素生理盐水，生理盐水。 （四）实验方法 1.实验记录装置 将血压换能器固定在铁支架上，换能器的位置大致与心脏在同一水平。将换能器电缆与二道生理记录仪的血压放大器输人插座相连（图6－18）。按照前述二道记录仪的使用方法调整记录仪。对血压放大器定标，校正选择开关拨至 13.3kPa（100mmHg），灵敏度置于50，记录描笔上移2cm。通过三通管向换器压力小室及动脉插管内注满肝素生理盐水，排尽气泡，并预先加压至 13.3kPa，检查有无漏液。 四道生理记录仪——血压换能器装置 记录仪灵敏度一般置于 50或 100档，计时置 10s，走纸速度 0.5～lmm／s。 2.手术 动物的麻醉与固定：用l％戊巴比妥钠以30～35mg／kg体重的剂量由耳缘静脉缓慢注入。动物麻醉后，背位固定于手术台上。 气管插管：剪去颈部的毛，沿颈正中线作5～7cm的皮肤切口。分离皮下组织及肌肉，暴露、分离气管。在气管下方穿一丝线，于甲状软骨下方2～3cm处作”“⊥”形切口，插入气管，以丝线结扎固定。
兔血压实验报告
实验题目：传出神经系统药物对家兔心血管系统 的影响 班级：12级临七3班姓名：廖梦宇学号： 2012021320 一、实验原理： 1.传出神经系统药物通过作用于心脏和血管平滑肌上相应的受 体而产生心血管效应，导致血压变化。 2.本实验通过观察麻醉家兔动脉血压的变化，分析肾上腺素受体 激动剂与拮抗剂之间的相互作用。 二、实验目的： 1.掌握测定麻醉动物动脉血压及心电图的实验方法. 2.观察三个肾上腺素受体激动剂和两个拮抗剂对动脉血压及心率 的影响 三、实验步骤： 1.麻醉：取家兔，称重，用25%乌拉坦麻醉, 4ml/kg, 耳缘静脉 注射； 2. 备皮：麻醉后，将家兔仰位固定于手术台上，剪去颈部的毛，
正中切开颈部皮肤； 3. 气管插管：分离气管，在气管上作一倒“T”型切口，插入气管插管并以粗线固定。 4. 动脉插管：自气管左侧分离颈总动脉 1.5到2cm，动脉下穿两根丝线。结扎远心端，近心端以动脉夹夹闭。用眼科剪在结扎端与动脉夹之间剪开一小口。将连于压力传感器的动脉套管充满1%肝素生理盐水后，插入颈总动脉，并用手术线固定。松开动脉夹。 5. 记录血压：将压力传感器连接于主机前面板的1通道，打开BL-410生物机能实验系统，将1通道设置成血压和心电，点击开始记录血压。 6. 稳定5~10min，记录正常血压和心率。 7. 给药：按下列顺序静脉给药 肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 去甲肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 异丙肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 8. 给药：按下列顺序静脉给药 酚妥拉明 0.2ml/kg, 5min 肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 去甲肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 异丙肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 9. 给药：按下列顺序静脉给药