临床微生物项目与样本采集规范

合集下载

临床微生物检验采集手册

微生物标本采集第一章微生物样本采集及要求1.患者准备（采集前）1.1.采集标本前,采样人员根据检验申请单检验项目的要求，确认采样计划并进行适当的准备工作，包括核对医嘱、打印条形码、选择合适的标本容器、粘贴条形码及指导患者做好采样前的准备工作等。

1.2.样本采集依检验项目的申请，检验申请单提供的信息包括：●a) 患者姓名；●b) 患者性别；●c) 患者年龄或出生日期；●d) 患者唯一性标识，如病历号；●e) 就诊病区和病房；●f) 检验申请者姓名；●g) 检验申请者科室；●h) 标本类型；●i) 标本采集部位；●j) 检验项目；●k) 标本采集日期和时间；●l) 临床诊断和主要临床表现；●n) 患者和检验申请者的联系电话。

1.3.认真核对患者、标本容器和检验申请是否一致，严防出现差错。

1.4.住院患者1.4.1.申请单开具：分泌物、脓液、关节液、痰液等开“细菌涂片+培养”，尿液标本开“尿培养及菌落计数”，血培养开“无菌体液细菌培养”（血培养需要开一对，也就是两个医嘱），怀疑厌氧菌开“厌氧菌涂片+培养”。

1.4.2.检验人员接种标本后，当日报告涂片结果（尿液标本不涂片），以接收标本之日起3-5天报告培养结果，如有特殊情况需要延长检测时间，将与临床沟通。

1.4.3.如样本培养阳性，需要后续检测，则由检验人员开具“细菌鉴定+药敏”并扣除相应费用。

1.5.门诊患者1.5.1.申请单开具：分泌物、脓液、关节液、痰液等开“细菌涂片+培养”，尿液标本开“尿培养及菌落计数”，血培养开“无菌体液细菌培养”（血培养需要开一对，也就是两个医嘱），怀疑厌氧菌开“厌氧菌涂片+培养”。

1.5.2.门诊标本在送达医学检验中心时应留下患者或家属的常用联系方式，检验人员接种标本后，当日报告涂片结果（尿液标本不涂片），以接收标本之日起3-5天报告培养结果，如有特殊情况需要延长检测时间，将与临床沟通。

1.5.3.如样本培养阳性，需要后续检测，则由检验人员通知主治大夫后，联系患者前往医学检验中心开具“细菌鉴定+药敏”并扣除相应费用。

临床微生物样本采集规范

临床微生物样本采集规范临床微生物样本采集规范1. 范围和目的本规范适用于临床微生物样本的采集、处理和管理，旨在保证样本采集的质量和规范性，确保临床微生物诊断结果的准确性和可靠性。

2. 术语和定义（1）微生物：指包括细菌、真菌、病毒、支原体、立克次体、螺旋体等在内的微小生物体。

（2）临床样本：指从患者体内采集的各种生物标本，如血液、口腔、鼻咽部、骨髓、尿液、痰液、脑脊液等。

（3）采集容器：指用于采集临床样本的容器，如血液采集管、尿样瓶、培养皿等。

（4）采集套装：指一次完整的样本采集过程中所需的所有采集工具和材料。

3. 采集前准备（1）确定采集部位、时间和采集方式，注意患者的生命体征和病情变化。

（2）准备好所需的采集套装和采集容器，在样本采集前做好标签，并核对患者信息。

（3）认真阅读所有相关规范和实验室要求，确保样本采集符合要求。

4. 采集操作步骤（1）根据采集部位和样本类型选择合适的采集套装。

（2）采集前应让患者了解采集的目的和过程，并获得其同意。

（3）采集前要检查采集部位，患者的身体状态和生命体征，确保采集过程安全和无痛苦。

（4）采血时应注意采血量、采血速率、采血部位、采血方式等。

（5）尿样采集时应注意尿样的采集量、采集时间、采集方式、保护好样本的完整性和纯度。

（6）痰液采集时应注意痰液的颜色、黏度、量和纯度，选择合适的采集器具和采集方式。

（7）脑脊液采集时应注意采集部位、采集方式、采集量、采血顺序和样本处理标准等。

（8）其他临床样本采集时，应根据具体要求和操作规范，选择合适的采集方法和器具。

5. 样本运输和储存（1）在采集后，立即将样本放入相应的采集容器中，尽快送至实验室进行处理。

（2）若无法立即处理样本，应按要求在采集容器中注明采集时间和采集者信息，并存储在规定温度下，以便后续处理。

（3）运输过程中应遵循规范，确保样本不泄漏、不污染，并尽快送至目的地。

（4）储存过程中应保持样本的纯度和完整性，控制储存温度，在保质期内使用。

临床微生物标本的采集与运送图文

临床微生物标本的采集与运送在医学临床的诊断过程中，微生物检验是不可缺少的一环。

临床微生物标本的采集与运送是保证准确诊断的关键步骤之一。

本文将介绍临床微生物标本的采集与运送的一些注意事项。

1. 标本类型临床微生物标本通常包括血液、尿液、粪便、血培养瓶、脑脊液、切口分泌物等。

2. 采集方法2.1 血液标本采集血液标本时，一定要做好消毒工作。

选择采血部位后，用酒精或碘酒消毒，再用无菌针头采血，避免受污染。

血液标本采集后可以分成两份，一份用于血常规，另一份用于血培养。

2.2 尿液标本收集尿液标本时，要让患者用清洁肥皂清洁外阴部，再用无菌尿杯收集尿液，避免手部直接触摸尿杯和尿液。

尽量将尿液标本送至检验室的时间控制在2小时之内。

2.3 粪便标本采集粪便标本时，要确定所采集的粪便样本来自于患者的肛门临近处。

最好不要使用纸巾，而是用无菌容器收集粪便。

粪便标本采集窗口为3天。

2.4 血培养瓶标本采集血培养瓶标本时，首先要选择采血部位进行消毒，然后将血培养瓶插入采血针器上，打开外部装置，使血液顺利流入血培养瓶中。

采集集中在早晨时段，每次采集2-3个血培养瓶。

2.5 脑脊液标本采集脑脊液标本需要医生进行，患者应严格卧床休息，医生在患者腰部，采用穿刺的方式进行脑脊液的采集。

2.6 切口分泌物标本采集切口分泌物标本时，需要选择无菌医用棉签，消毒采集部位。

在采集过程中，应尽量避免被采集部位感染污染到。

3. 运送方法临床微生物标本的运送是重要的环节。

标本在采集后应及时送至细菌学检验实验室。

并且在运送过程中需要遵循以下几点：3.1 收集后尽早送检临床微生物标本的采集窗口不长，应尽早将标本送至检验室进行分析。

3.2 标本容器和包装标本容器必须选择无菌容器，容器体积大小要相应合适。

送检前，要核对标本标签与标签上的医学记录是否一致。

标本包装时，应采取干燥、保温、防震、防漏、防碎的原则。

3.3 运输温度不同种类的标本，其运输温度介于4-25摄氏度之间。

临床微生物标本采集规范

01
02
03
04
无菌操作
在采集微生物标本时，必须严格遵守无菌操作原则，避免污染标本和引入外源性微生物。
正确选择采集部位
根据不同的病原体和感染类型，选择正确的采集部位，以提高标本的阳性率和准确性。
采集足量标本
采集足够量的标本，以保证检测的准确性和可靠性。
及时送检
采集后的微生物标本应及时送检，避免延误诊断和治疗。
指导治疗
根据微生物标本的检测结果，医生可以选择针对性的治疗药物和方法，提高治疗效果。
监测病情变化
通过对微生物标本的连续检测，可以及时了解患者病情的变化情况，为医生调整治疗方案提供依据。
预防和控制感染
通过对微生物标本的检测和分析，可以及时发现和控制感染源，防止感染的扩散和传播。
微生物标本采集原则
不同类型标本的采集方法和处理流程
微生物实验室安全防护措施
临床微生物标本采集意义再认识
准确诊断和治疗感染性疾病的基础
指导临床合理使用抗生素的依据
01
02
03
监测医院感染和流行趋势的重要手段
04
推动临床微生物学科发展的关键因素
提高临床微生物标本采集质量策略探讨
01 加强医护人员培训，提高标本采集技能
根据采集部位和微生物种类指导患者进行相应的准备工作，如清洁皮肤、保持空腹等。
鼓励患者在采集过程中保持放松状态，配合医护人员的操作。
04 微生物标本运输、保存和处理流程
微生物标本运输要求及注意事项
微生物标本运输需使用专用运输箱，确保密封性良好，防止
标本外泄。
运输人员需接受专业培训，了解标本运输的相关知识和操作技能。

标本采集、运送标准操作规程

4 7
血培养淋球菌培养
立即 30分钟
1小时 30分钟
阳性结果3天以上，阴性结果7天 2天
8
真菌培养
1小时
2小时
3天后
细菌室项目检验周期表
9 解脲、人型支原体培养及药敏、衣原体培养 1小时 2小时 2天后
11
一般涂片革兰氏染色
1小时
2小时
5小时
当天下午
12
涂片找抗酸杆菌
1小时
2小时
5小时
当天下午
Байду номын сангаас
查询申请医师，补足标本信息。
仅有申请单而无标本或无菌容器内无标本
与原送检部门联系，退回申请单，要求重送标本
标本外漏及明显受污染（如开塞）标本收集不符合采集要求样本混入消毒液或防腐剂
与原送检部门联系，退回申请单，建议重送标本。退回申请单，及时通知临床，告知正确收集方法，要求重送标本退回申请单，及时通知临床，建议重送标本。
13
新型隐球菌墨汁染色
1小时
1小时
5小时
当天下午
• 注： 1. 细菌室正常上班时间为周一至周六
全天、周日上午；其他时间（包括中午、夜班、周日下午、）常规培养请送急诊化验室。 • 2．各类血清学检测周一至周五做；支原体、衣原体检查周一至周六上午做，其余时间标本一律不接收。 • 3．空气培养、物表监测周六、周日不做，于周一至周五打电话给细菌室告之数量。
【标准操作程序】
• 3. 粪便样本
养：
• 5.1采集指征： • 当腹泻患者出现以下任何一种情况时建议采集粪便标本，进行细菌培
粪便涂片镜检白细胞＞5/HP 体温＞38.5℃ 重症腹泻血便或便中有脓液未经抗菌药物治疗的持续性腹泻病人

2024版年度临床微生物标本采集规范总结

优化采集方法和工具
根据不同类型的标本和采集需求，选择合适的采集方法和工具，确保采集到足够的标本量。
规范标本运输和保存
制定详细的标本运输和保存规范，包括温度、光照等环境条件的控制，确保标本在运输和保存过程中保持质量稳定。
2024/2/2
31
未来发展趋势预测
2024/2/2
自动化和智能化技术应用随着科技的不断发展，自动化和智能化技术将在临床微生物标本采集中得到更广泛的应用，提高采集效率和准确性。
节。
2024/2/2
关键控制点分析
对标本采集过程中的关键控制点进行了深入剖析，如无菌操作技术、标本采集时机、采集量等因素对标本质量的影响。
成功经验总结
总结了在实际操作过程中取得的成功经验，如合理选用采集工具、正确保存和运输标本等。
29
存在问题及原因分析
标本污染问题
分析了标本污染的主要原因，包括采集过程中未严格执行无菌操作、采集容器不洁净等。
2024/2/2
重症患者样本
对于重症患者，其样本也应优先处理，以便医生及时了解患者病情。
特殊项目样本
对于某些特殊项目，如细菌培养、药敏试验等，也应优先处理，以缩短检验周期。
26
及时反馈问题并改进工作流程
反馈问题
分析原因
在接收和处理过程中发现的问题，应及时反馈给相关科室和人员。
对反馈的问题进行分析，找出问题产生的原因。
临床微生物标本采集规范总结
2024/2/2
1
目录
2024/2/2
• 标本采集重要性 • 标本采集前准备 • 不同类型标本采集方法 • 标本采集过程中质量控制措施 • 实验室接收和处理流程优化建议 • 总结反思与未来展望

临床微生物标本规范化采集和送检

2 本需要清除正常菌群和标签和申请单信息要完整
4
严格无菌操作
1.在抗菌药物使用前采集标本。
临床疑似感染的患者, 必须先采集微生物标本送检, 再使用抗菌药物进
行治疗。
2.无菌部位的标本更具有临床价值, 有菌部位采集的标本需要清除正常菌群和定植细菌才有意义。
应尽量送检无菌部位的标本, 尤其是血培养。有菌部位标本应避免 “正常菌群导致标本的污染”。人体很多部位, 如下呼吸道（痰液标本）、鼻窦、皮肤伤口等处的正常菌群极易污染标本。因此, 从这些部位采集标本, 要尽可能降低这些部位正常菌群或定植细菌对标本污染的可能性。有菌部位的标本不是最理想的微生物标本。
临床微生物标本规范化采集和送检
总则
疾病的正确诊治需要以正确的病原学检测作为指导, 而正确的病原学检测其前提是采集和送检合格标本。因此, 必须规范微生物标本的采集和运送, 避免因标本的不合格, 产生错误的病原学检测结果而误导临床治疗。
微生物标本采集基本原则
1
在抗菌药物使用前采集标本
无菌部位的标本更具有临床价值, 有菌部位采集的标
粪便标本采集法
1.自然排便法
患者在干燥清洁便盆（避免使用坐式或蹲式马桶）内自然排便后, 挑取有脓血、黏液部分的粪便2-3g（液体粪便则取絮状物1-3ml）放入无菌便盒内送检。若无黏液、脓血, 则在粪便上多点采集送检。此为常规方法。
2. 直肠拭子法
用肥皂水将肛门周围洗净, 将占有无菌生理盐水的棉拭子插入肛门4-5cm （儿童为2-3cm）。棉拭子与直肠粘膜表面接触, 轻轻旋转拭子, 可明显在拭子上见到粪便。将带有粪便标本的棉拭子插入运送培养基, 立即送检。本方法仅适用于排便困难的患者或婴幼儿, 不推荐使用拭子做常规标本。

临床微生物检验标本采集规范要求★

24小时尿
记录尿量，将尿液混匀后取适量用于检验。
粪便标本采集
自然排便
排便后用干净竹签取粪便表面部分。
直肠拭子
在特殊情况下，如肠道感染，可用直肠拭子采集粪便。
粪便量
一般需采集足够量的粪便用于检验。
呼吸道标本采集
痰液
患者自行咳出痰液，避免唾液和鼻咽部分泌物。
支气管肺泡灌洗
在特殊情况下，如重症肺炎，可通过支气管肺泡灌洗采集呼吸道标本。
确定采集时间
根据患者的病情和检验目的，选择最佳的采集时间，如空腹采集、餐后采集等。
注意采集时间与用药时间的间隔，避免药物对检验结果的影响。
采集人员防护措施
采集人员应穿戴符合要求的防护服、手套、口罩等，确保自身安全。
采集过程中应遵循无菌操作原则，避免交叉感染和环境污染。
02
标本采集方法
足或采集方法不当导致检验结果出现偏差。
03
标准化采集时间
根据疾病类型和病情发展，选择合适的采集时间可以提高检验准确性。
例如，对于急性感染患者，应在发热期采集标本；对于慢性感染患者，
应选择在疾病活动期采集。
保障患者安全
减少交叉感染风险
遵循无菌操作原则可以降低交叉感染的风险，保护患者安全。
避免患者不适
采集过程中，应避免接触非检验部位，确保标本不受污染。
采集后应及时送检，避免长时间存放导致污染。
防止标本变质
采集的标本应尽快送检，避免长时间存放导致变质。
保存过程中应定期检查，确保标本质量。
对于需要长时间保存的标本，应采取适当的保存措施，如低温、干燥等。
其他注意事项
采集前应了解患者病情和用药情况，避免干扰检验结果。

临床微生物标本采集与送检规范(试行)

临床微生物标本采集与送检规范(试行)临床微生物标本采集与送检是临床实验室诊断质量保证中的关键环节，影响着感染样本中致病菌的分离培养的阳性率和医院感染病原体监控。

正确的微生物标本送检和检验方法对于合理选用抗菌药物、降低耐药菌的产生、提高感染的治愈率以及预测和及时发现医院感染的暴发流行等都具有十分重要的意义。

因此，希望临床各科能按照本操作规范采样送检。

在医院感染标本的采集和运送中，应遵循以下原则：1.发现医院感染应及时采集微生物标本作病原学检查，我院总的医院微生物标本送检率应不低于40％。

2.尽量在抗菌药物使用前采集标本。

3.采集标本时应严格执行无菌操作，减少或避免机体正常菌群及其他杂菌污染。

4.采集标本后应立即送至实验室，床旁接种可提高病原菌检出率。

5.以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭子或伤口拭子，应立即送检。

6.盛标本须经灭菌处理，但不得使用消毒剂。

7.送检标本应注明来源和检验目的，使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境，必要时应注明选用何种抗菌药物。

常见的医院感染标本送检方法包括：1.血液与骨髓：通常采血部位为肘静脉，但疑似细菌性心内膜炎时，以肘动脉或股动脉采血为宜。

采血前应严格消毒，每次采血量应控制在一定范围内，采血后应立即送至实验室。

2.尿液：采集中段尿时，女性应先冲洗外阴部及尿道口，男性须翻转包皮冲洗，采集前应用消毒液消毒尿道口。

灭菌纱布擦干后收集标本。

以上是临床微生物标本采集与送检的一些基本规范和方法，希望医务人员能够严格按照操作规范执行，以提高微生物检测的准确性和有效性，为临床诊断和治疗提供更加可靠的依据。

导尿管导尿采样是减少污染的有效方法。

对于留置导尿者，可以用碘酒消毒尿道口处的导尿管壁，用空针细针头斜穿管壁抽吸尿液。

或消毒后解开接口，弃去导尿管前段尿液，留无污染的膀胱内尿液数毫升送检。

不可从集尿袋的下端管口留取标本。

对于尿厌氧菌培养、婴幼儿中段尿采集困难或培养结果与病情不符的情况，可以经耻骨上皮肤穿刺采集无污染的膀胱内尿液。

临床微生物学检验标本的采集

快速运输
03
在运输过程中应尽量缩短时间，选择适当的交通工具，保持容
器密封、避光、防震，以确保标本质量不受影响。
05
临床微生物学检验标本采集的常见问
题及解决方案
采集方法不当
总结词
采集方法不正确可能导致微生物污染或样本质量下降，影响检验结果的准确性。
详细描述
采集过程中应遵循无菌操作原则，正确使用采集工具，避免交叉感染。对于不同种类的标本，应采用不同的采集方法和注意事项。
尿液标本
尿常规检查
检测尿液中的蛋白质、糖、酮体等成分，辅助诊断肾脏疾病和糖尿病等。
尿培养
用于检测尿液中的病原菌，如尿路感染等。
粪便标本
粪便常规检查
检测粪便中的红细胞、白细胞、寄生虫等，辅助诊断消化道疾病。
粪便培养
用于检测粪便中的病原菌，如细菌性痢疾等。
呼吸道标本
痰液检查
通过痰液中的细胞和病原菌，辅助诊断呼吸道感染。
THANKS
感谢观看
采集时机不当
总结词
采集时机不合适可能影响微生物的存活和繁殖，进而影响检验结果。
详细描述
应根据检验目的和要求选择合适的采集时机，如空腹采集血液、尿液等。同时，应注意采集过程中的时间控制，避免长时间暴露在空气中。
采集容器选择不当
总结词
采集容器选择不当可能导致微生物死亡或繁殖受限，影响检验结果。
详细描述
量。
减少外界干扰
在采集过程中应尽量减少外界因素的干扰，如避免过度挤压、避免接触非采集部位等，以降低外
界微生物的混入。
采集后的保存和运
及时处理
01
采集后的标本应及时进行处理，避免长时间放置，以免影响微

临床微生物标本的采集与送检

采用无菌方法用注射器抽取体内可疑感染部位的液体，注入无菌试管立即送检注意事项：
①一般要求常温下15-30分钟内接种培养皿，尤其是脑脊液和心包液；除了做结核杆菌、真菌培养的标本应在4℃下保存外，做其他项目的应常温保存。
②严格无菌穿刺。
③为了防止穿刺液的凝固，最好在无菌试管中预先加入灭菌肝素，再注入穿刺液
考虑到方便操作，建议常规血培养应尽量在使用抗菌药物前，于病人寒战或发热开始时30-60分钟内同时于不同部位采集2-3份血培养。
3.采血次数
①.留置深静脉导管且怀疑导管相关血流感染：
至少同时采集2套血培养，其中至少一套来自外周静脉，另一套从导管采集。（1套血培养定义：
从一个部位如静脉穿刺或静脉导管所获血液的培养，不论被接种在1个还是多个血培养瓶内都只能算是1套）
先以无菌生理盐水清洗外阴部或外生殖器，将无菌试管对准尿道口，待尿排出后送检注意事项严格进行无菌操作，因为尿液标本的采集和培养中最大的问题是污染杂菌通常应取晨起第一次尿液送检多数药物均通过尿液排泄，因此采集尿液应在用药前进行长期留置导尿管的患者应在更换新管时留取尿标本。导尿留取尿液时，集尿袋内的尿液和导尿管末端的尿液不能用于培养。
发热(≥38℃)或低温(≤36℃),寒战,白细胞增多,皮肤黏膜出血、昏迷、多器官衰竭,血压降低,C反应蛋白升高及呼吸加快,血液病患者出现粒细胞减少,血小板减少等,或同时具备上述几种体征时而临床可疑菌血症应采集血液培养。新生儿可疑菌血症,应该同时做尿液和脑脊液培养。
2.采血时机：
据研究表明：
细菌通常在病人寒战和发烧前1小时进入血流，因此规范规定在病人发热高峰前1小时抽血。
（二）、微生物检查的标本采集、运送原则
1.及时采集微生物标本作病原学检查。

微生物样本采集基本原则

微生物样本采集基本原则微生物样本采集基本原则微生物样本采集是临床微生物诊断的重要环节之一。

严格遵循采集原则对确诊疾病、选择适当用药等方面都有着重要的意义。

本文将从采集方式及注意事项两方面，分述微生物样本的采集基本原则。

一、采集方式1.标本类型不同的临床疾病需要专门的样本采集。

如呼吸道感染应选择痰液、咽拭子和鼻咽拭子等样本；中枢神经系统感染应选择脑脊液等样本。

采样时应选择合适的标本类型以提高检测率和准确性。

2.采集部位除了标本类型外，不同疾病的采集部位也各异。

如下呼吸道感染应集成深喉部或痰栓所在部位痰液或咽拭子，而不是口腔或鼻腔的分泌物。

应针对不同疾病得出相关采集部位。

3.采集数量样本数量的不足会导致诊断结果的不确定性。

在采集样本的时候，必须收集足够的样本数量，确保微生物诊断的可靠性和准确性。

二、注意事项1.避免污染样本采集时候的卫生防护十分重要。

手套、口罩和防护衣等装备必须佩戴得当，避免污染。

在采集样本时也应该离开源头，避免空气中的颗粒污染。

2.采集前应进行预处理采集前应进行处理，如使用无菌消毒剂处理采集部位、使用无菌设备采集样本等方法，以保障采集样本的质量。

3.采集后迅速送检采集完成后应迅速将样本送往实验室进行检测。

样本放置时间不宜过长，一般在采集后1小时内送至实验室为妥。

总结微生物样本采集是临床微生物诊断过程中不可或缺的一部分，正确的采集方式和采集后注意事项在临床诊断中起着至关重要的作用。

临床医生应深刻了解微生物样本采集基本原则，提高采集样本的质量，为准确诊断、确定治疗方案等方面提供重要保障。

医院感染临床微生物检查标本采集与送检规范

• 标本接种后轻轻上下颠倒混匀防止血液凝固 • 切勿冷藏
•
血培养标本采集与运送
•
血培养的指征是什么? ? ? ?
血培养的指征是什么? 答案
• 1. 当怀疑血流感染或脓毒症时，应常规行血培养 • 2. 怀疑患者有血流感染的症状有： • – – 不明原因的发烧( ( ＞ 36 ℃) ) 或体温过低( ( ＜ 36 ℃) ) • – – （白细胞增多（＞ 10,000/ul ），粒细胞减少（＜ 1,000ul ） • – – 休克，寒颤，僵直 • – – 严重的局部感染( ( 脑膜炎，心内膜炎，肺炎，肾盂肾炎，腹部术后
针对如此严重的分析前误差微生物室能做什么？
• • 提供准确的“标本采集输送的标准操作程序” • • 持续的临床教育和交流
三、常见标本的采集与运送规范
做好病原学检查要特别重视标本质量
基本原则: • 及时采集微生物标本作病原学检查 • 在抗菌药物使用前采集标本 • 采样时严格执行无菌操作 • 采样后立即送检
应该采集多少血液? ? ? ?
• 采血量是影响灵敏度最关键因素 • 成人一份标本2 个培养瓶（需氧＋厌氧），每瓶8 －10ml ，共
20ml ；要求至少采两份标本，即 40ml 。 • 儿童一般只需采集需氧瓶，在保证采集血量＜1 1 ％总血量下，
一般为1 － 3ml • 新生儿一般0.5ml • 采血量不足时应优先保证需氧瓶，因临床 90 ％以上的感染为需
• 近年来由各种不同细菌引起的感染性疾病越来越多，导致抗生素的过度使用，其结果是耐药菌株的增加。
• 临床微生物室应如何帮助临床医生合理治疗感染性疾病成为我们共同目标。
检验误差发生率哪个阶段最高？
微生物结果的影响因素

临床微生物标本采集和运送规范

19
脓液或伤口分泌物标本采集运送标准
❖ 本卷须知 ❖ 迅速送往实验室，1小时内不能培养应将标本冷藏。 ❖ 皮肤消毒对培养结果至关重要。 ❖ 不要仅送检脓液。脓液不能代表伤口特点，应在病灶
活动区域或基底部采集标本。 ❖ 除非有渗出物，枯燥、结痂伤口一般不做培养 ❖ 标记：不要只写“伤口〞标记标本，应有专门的描述
5
二、临床各类标本的采集、运送及保存标准
6
血培养的采集、运送标准
❖ 采集程序: ❖ 皮肤消毒程序：推荐三步法〔酒精→碘伏→酒精〕 ❖ 培养瓶消毒程序：75%酒精消毒 ❖ 静脉穿刺和培养瓶接种程序
❖ 采血量：成人8-10ml，儿童1-3ml。骨髓采集量1-2ml ❖ 采血时间和数量: ❖ 采血时间:在寒战或体温顶峰到来之前0.5-1h，或于寒战
储存环境
标本来源
4℃冰箱
痰、尿液、粪便、气管冲洗物、导尿管、静脉导管、脓液和伤口分泌物细菌或真菌培养；无菌体液（胸腹水、心包液、关节液、鞘膜积液、胆汁）真菌培养；支原体培养；衣原体检查；血清学检查（包括ASO、RF、肥达反应）
室温脑脊液、生殖道、眼、耳、鼻、喉、血培养、血管导管尖、活检组织细
❖ 注意：从静脉取血；不要与血气和血沉标本一起采血；不推荐血入瓶前换针头；不推荐静脉血直接入瓶；不宜在静脉导管或静脉留置口采血〔除非疑心导管相关性血流感染〕。
8
血培养的采血量
❖ 成人采血量5-10ml〔最好8-10ml〕，儿童采血量1-3ml 〔不超过总血量的1％〕。血液和肉汤之比为1：5~1： 10。骨髓采集量1-2ml。
❖ 应注明具体标本来源如眼标本注明是眼睑、结膜还是角膜，并注明左眼还是右眼。
18
脓液或伤口分泌物标本采集运送标准

【VIP专享】临床微生物标本的采集与送检

【VIP专享】临床微生物标本的采集与送检临床微生物标本的采集与送检主要内容：标本采集、运送意义与原则血液标本采集尿标本采集粪便标本采集痰标本采集咽拭子标本采集标本拒收的标准与处理方法一、（一）标本采集、运送规范化的意义正确的标本采集、运送、保存和处理对于提高培养结果的阳性率以及保证细菌室的工作质量至关重要正确的标本采集和运送是准确的病原学诊断的前提不规范的标本采集、保存和运送是导致细菌培养阳性率低、临床符合率差的重要原因。

规范的标本采集和运送是细菌培养成功的关键！（二）、微生物检查的标本采集、运送原则1.及时采集微生物标本作病原学检查。

2.尽量在抗菌药物使用前或停药一周后采集标本，如不能停用抗菌药物，应于下次抗菌药物应用前采集。

应在感染的急性期或伤口局部治疗前采集标本。

3.选择正确的部位，并以适当的技术、方法与容器收集足量的标本。

4.采样时严格执行无菌操作，将污染情形降至最低。

5.收集真正感染病灶处的标本，且避免邻近区域微生物的污染。

6.采用无菌器材收集标本，并装于坚固且密合性佳的无菌容器中。

容器须灭菌处理，防止渗漏，但不得使用消毒剂。

标本中不可添加防腐剂。

7.采样后立即送检，最好在2h内。

如不能及时送检，应将标本置于适当的储存环境待送，但存放一般不能超过24h。

8.尽量不要以棉花拭子收集标本。

以棉拭子采集的标本如咽拭子、伤口拭子等宜插入恰当的运送培养基送检。

淋球菌培养等标本应使用专用的纤维拭子，不得使用一般棉拭子。

9.混有正常菌群的标本如痰、尿液等，不可置肉汤培养基内送检。

10.每份标本都应贴上标签并标明必要信息，在检验申请单上填写足够的有关临床资料。

包括病人情况（病区、病人姓名、住院号）和标本情况（标本类型、检验目的、采集部位、采集方法、采集时间等）11.同一天同一检测目的的标本（血液标本除外）一般只需检测一次（份）。

涂片检查最好和细菌培养同时做！（三）、如何提高细菌阳性检出率？1、标本采集时机；2、标本采集方法；3、标本的质与量；4、标本的运送与保存；5、筛选合格标本（退检制度）；6、高质量、多种分离培养基；7、培养环境；8、合理的收费制度（四）、临床常见标本血液（生化、免疫及微生物检验）尿液粪便痰及上呼吸道标本穿刺液标本（脑脊液、胆汁、胸腹水等）脓液及创伤感染分泌物标本生殖道标本组织标本（五）、血标本检验的意义血液是临床最常见的检验项目它可以反映血液系统本身的病变还可判断病人病情进展程度为治疗疾病提供参考。

培训护士临床微生物标本采集规范

完善培训内容
根据护士的反馈和实际需要，完善培训内容，增加实用性和针对性。
加强实践操作训练
针对操作不规范、不准确的护士，加强实践操作训练，提高其操作技能。
建立持续跟踪机制
建立持续跟踪机制，定期对护士进行考核和评估，以确保培训效果的持续性。
THANKS
感谢观看
效果评估
操作规范性
01
评估护士在采集微生物标本时是否符合规范要求，如无菌操作
、正确取样等。
准确性
02
评估护士采集的微生物标本是否准确反映患者情况，如细菌种
类、数量等。
及时性
03
评估护士能否及时采集微生物标本，以确保检测结果的时效性
。
改进措施
针对问题制定改进计划
根据跟踪和评估结果，针对存在的问题制定改进计划，以提高培训效果。
培训场地应足够大，能够容纳所有参加培训的护士，并提供足够
的空间进行模拟操作。
场地布局
场地应合理布局，包括理论教学区、模拟操作区、休息区等，以满足不同培训环节的需求。
场地设施
场地应提供必要的设施，如投影仪、白板、音响等，以支持培训过程中的讲解和演示。
培训设施配备
模拟器材
提供临床微生物标本采集所需的模拟器材，如模拟患者、模拟微
03
CATALOGUE
培训效果评估
理论考试
01
02
03
考核内容
微生物标本采集的理论知识，包括微生物学基础、标本种类、采集方法、保存和运输等方面的知识。
评估方式
通过闭卷考试或在线测试，检验护士对理论知识的掌握程度。
反馈与改进
根据考试成绩，对护士在微生物标本采集理论知识方面的不足进行针对性辅导和补充学习。

临床微生物标本采集规范_2022年学习资料

6.血培养标本的运送-要求：1采集后的血培养瓶应在1小时之内-送往实验室。-2血培养瓶在接种前和接种后均不冷藏和-冷冻。-说明：血培养瓶冷藏或冷冻会将一些微生物杀-灭。
二痰培养-标÷苛养菌检出率极低-结果重复性差-冬报告速度慢-·感染菌与污染菌不易区分药敏结果与治疗反应存在差距
三-恤焙养标本采来和运送-1.采集时间-要求：对怀疑菌血症、真菌血症的患者，在考虑使用-抗菌药物之前，应立采集血培养标本。必须同时-或间隔短时间内采集2套（每套包括1只普通血培养-瓶及1只厌氧血培养瓶以上血培养标。-说明：实验数据表明细菌入血后约1小时，寒战和发-烧开始出现2小时内，此时为采集血培养标本进行-病原菌培的最佳时机。在不同的时间点采血只有-在以下情况才有必要：疑似感染性心内膜炎或其他-血管内（如导管相关性感染感染患者的连续性菌-血症。
双相培养瓶-aue。-地查城-血-并瓶-可民
要求：-严格无菌操作，不允许在皮肤消毒后用手按-压静脉，除非带有完菌手套。-不推荐采血和接种血培养瓶更换注器针头，-采用真空采血装置能降低污染率-说明：无论采用何种采血方法，血培养可接受-的污染率通常是≤3%。研表明，经过专门-培训的熟练抽血者采集血培养的污染率为3%，-而未经培训的住院医生和护士污染率则达-11%。此对临床护士就血培养标本采集进-行专门的、严格的培训是非常必要的。
国内微生物标本的采集目前存在的问题：-标本送检率低-从全国来看，抗感染治疗-前，送检相关标本可能只占应送标的一半-左右，与扰菌药物应用率之高形成鲜明的反-差。一些医师在经验性治疗受挫后方送标本-此时已失去阳性培养机会。-标本有缺陷-正确收集各种临床标本，-关注特检标本采样与送检的方法和条件，是-完成病原学诊断的先决条。
2.采集部位-要求：从两侧上肢静脉采血，“双瓶双侧”采血-培养。至少做到“双侧双瓶”。必要时从下肢静-脉采做第三套血培养。-说明：不建议采集-1动脉血，-因其诊断价值没有比静脉血更大；-2静脉留置导管，因其常伴有污染率。如果-必须从留置导管内采血，也应同时从外周静脉采-集另外一个血培养标本，以帮助阳性结果的判读