安徽农业大学茶叶生物化学与生物技术重点实验室——省部共建国家重点实验室培育基地教育部、农业部和安

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安徽农业大学简介

安徽农业大学简介

安徽农业大学简介安徽农业大学是安徽省省属重点高校,坐落于“三国故地、包拯家乡”省会合肥市市区,占地3100亩。

学校源于1928年创立的省立安徽大学,1935年成立农学院,1954年建院,1995年经原国家教委批准更名为安徽农业大学,是国务院学位委员会首批学士、硕士学位授权单位,1998年被国务院批准为博士学位授权单位。

教职工1400多人,专任教师700多人,其中教授112;博士生、硕士生导师200多人,享受国家和省政府特殊经贴的专家117人次。

学校现设17个学院及研究生学院、职业技术学院、成人教育学院、现代农业管理与技术学院,58个本科专业。

现有全日制在校26000多人,其中校本部研究生、本科生18000多人。

安徽农业大学是一所以农林学科为优势,以生命学科为特色,农、理、经、管、法、医等多学科协调发展的教学研究型大学。

现有10个博士点,1个博士后科研流动站,66个硕士学位授权点;设有“皖江学者奖励计划”4个特聘教授岗位和3个讲席教授岗位。

有生物物理学、作物遗传育种学、森林保护学、农业经济管理学、木材科学与技术、植物病理学与农业昆虫与害虫防治、茶学、动物遗传育种与繁殖学、农业机械化工程等9个省(部)级重点学科。

有茶叶生物化学与生物技术、微生物防治、农产品安全、木材学等4个省部级重点实验室,茶叶生物化学与生物技术实验室是国家重点实验室培育基地;1个省级人文社会科学研究基地——农科教结合研究中心。

长期以来,学校坚持以育人为本,以教学为中心,以质量为生命线,不断深化教育教学改革,为社会培养了大批高素质的创新型人才。

先后承担了“863”、“973”、国家自然科学基金、国家攻关项目等国家级项目,以及“948”、省自然科学基金、省攻关项目等省部级项目和其它各类科研课题数千项,获省自然科学一等奖、省科学技术进步一等奖、国家科技进步二等奖等省级以上成果奖励200多项。

近年来,学校积极开展国际合作与交流,先后与美国、加拿大、澳大利亚、德国、香港等30多个国家地区的高校、研究机构建立了合作交流关系。

类黄酮及茶儿茶素生物合成途径及其调控研究进展

类黄酮及茶儿茶素生物合成途径及其调控研究进展

中国农业科学 2009,42(8):2899-2908 Scientia Agricultura Sinica doi: 10.3864/j.issn.0578-1752.2009.08.031收稿日期:2009-01-06;接受日期:2009-04-24基金项目:国家“973” 计划前期项目(2007CB116211)、国家自然科学基金项目(30771755)、安徽省自然科学基金项目(090411006) 作者简介:夏 涛(1962-),男,安徽滁州人,教授,研究方向为茶叶加工、生化及天然产物。

E-mail :xiatao62@类黄酮及茶儿茶素生物合成途径及其调控研究进展夏 涛1,高丽萍2(1安徽农业大学农业部茶叶生物化学与生物技术重点实验室,合肥 230036;2安徽农业大学生命科学学院,合肥 230036)摘要:类黄酮化合物是植物的次生代谢产物,广泛分布于植物界且具有较强的生物活性。

儿茶素是主要的类黄酮化合物之一,其含量占茶树鲜叶干重的12%~25%。

作为茶叶的主要风味物质,儿茶素还具有抗氧化、抗诱变与防癌、抗心血管疾病、抗紫外线辐射等功能。

本文从类黄酮及茶儿茶素的生物合成途径、组织化学定位、合成调控措施等方面,综述有关茶树儿茶素的生物合成代谢及其调控的研究进展,旨在为茶儿茶素生物合成的基因调控、代谢工程提供新的思路。

关键词:类黄酮;茶;儿茶素;生物合成途径;调控Advances in Biosynthesis Pathways and Regulation ofFlavonoids and CatechinsXIA Tao 1, GAO Li-ping 2(1Key Laboratory of Tea Biochemistry and Biotechnology, Ministry of Agriculture, Anhui Agricultural University, Hefei 230036;2School of Biology Science, Anhui Agricultural University, Hefei 230036)Abstract: Flavonoids are the major secondary metabolites with diverse biological activities in high plant. As one of the main subgroups of flavonoids, catechins usually account for 12%-25% dry weight in fresh leaves of tea plant [Camellia sinensis (L.) O. Kuntze]. Catechins are not only the most important components in tea flavor, but also possess a lot of physiological functions, such as antioxidant activity, antimutagenic and anticarcinogenic potential ,anti-cardiovascular diseases, anti-ultraviolet radiation and so on. This paper reviewed the progresses in the flavonoids or tea catechins branch pathway and regulation, subcellular localization and organization of flavonoid enzymes, and may provide additional insights into regulating gene expression and engineering the catechins biosynthesis in tea plant.Key words: flavonoids; tea; catechins; biosynthesis pathway; regulation0 引言类黄酮(flavonoids )化合物是植物的次生代谢产物,广泛分布于植物界且具有较强的生物活性。

揭秘茶香之谜r——安徽科学家破解中国种茶树全基因组密码

揭秘茶香之谜r——安徽科学家破解中国种茶树全基因组密码

揭秘茶香之谜r——安徽科学家破解中国种茶树全基因组密码陆婉清【期刊名称】《安徽科技》【年(卷),期】2018(000)006【总页数】3页(P52-54)【作者】陆婉清【作者单位】安徽省科学技术情报研究所【正文语种】中文茶树起源于我国西南地区,并通过古丝绸之路传播至世界各地,目前全世界已有50多个国家引种茶树。

茶之所以广受欢迎,除了有迷人的香气和令人愉悦的滋味,还因为茶叶中含有许多对人们健康有益的特征性成分,诸如茶多酚、茶氨酸、咖啡因、茶多糖、维生素、芳香油和矿物质等。

我国现存最早的中医医药典籍《本草经》记载:“神农尝百草,日遇七十二毒,得荼(茶)而解之。

”这说明了茶的神奇功效。

一、茶组植物制茶的奥秘茶树属于山茶科属植物,该属有100多个种植物,但只有茶组植物的叶子适合制茶,而非茶组植物,如茶花、油茶和金花茶等的叶片不能作为茶饮。

原因在于茶树和其他茶组植物富含茶多酚、茶氨酸和咖啡因等。

除此之外,茶树近期(3000万年~4000万年前)曾经发生过一次全基因复制事件,加上大量的特异基因家族的扩增,导致茶树基因组里与茶叶的香气、风味与品质密切相关的基因显著扩增,扩增的结果不仅促进茶树适应全球多样化环境,还通过优胜劣汰的自然选择促进了茶树抗病基因家族的增长,使其成为世界性饮料植物。

二、中国种茶树基因组为何难以破译世界主要栽培的茶树分属两个变种:中国种(CSS)和阿萨姆种(CSA)。

前者叶小,灌木型,抗寒性强,分布广泛,适合制绿茶等六大茶类;后者叶大,乔木型,抗寒性较弱,主要分布在热带和冬季温暖的亚热带地区,适合制红茶和普洱茶。

中国拥有3000多年的饮茶历史,是世界上最大的茶叶种植国。

来自国际茶树委员会的数据显示,2016年,全球茶叶产量546.3万吨,其中中国产茶量235万吨。

然而,在世界三大饮料植物中,咖啡和可可的基因组相继被欧美国家完成了测序,世界栽培最广的中国种茶树基因组却迟迟未被破译。

茶树是一种自交不亲和的异交植物,种间频繁杂交导致基因组杂合度高(2.8%)。

中压制备液相色谱快速分离制备儿茶素单体

中压制备液相色谱快速分离制备儿茶素单体

中压制备液相色谱快速分离制备儿茶素单体林丹;李春苗;鲜殊;王玺;宛晓春;凌铁军;李大祥【摘要】以反相中压制备液相色谱为工具,甲醇-水作为洗脱溶剂,通过C18 (ODS-AQ)填料从茶多酚中一步分离出表没食子儿茶素(EGC)、表没食子儿茶素没食子酸酯(EGCG)、表儿茶素(EC)、表儿茶素没食子酸酯(ECG)等四种儿茶素单体.1.0g纯度为92.6%的茶多酚经过中压色谱,制备得到了90 mg EGC、355 mg EGCG、23 mgEC和92mg ECG,它们的纯度分别为91.8%、97.6%、97.7%、99.3%,纯品得率56.0%,四种单体总回收率达到68.2%.四种儿茶素单体的结构经核磁共振氢谱、碳谱以及高分辨质谱加以确证.%With advances in columnparticles,preparative medium pressure Liquid chromatography (MPLC) isan potential alternative to preparative HPLC for purifying active botanical compounds on reverse phase. To obtain high-purity cat-echin monomers,a MPLC system with online real-time operation software (DR FLASH Ⅱ)was introduced to separate catechin monomers from tea polyphenols with the methanol-water elution on two serial connected C18 (ODS-AQ) columns (125 mm × 26 mm, 30-50 μm,40 g) at 120-150 psi. With loadingof 1. 0 g of tea polyphenols with the purity of 92. 6% , the four catechin monomers as epigallocatechin ( EGC), epigallocatechin gallate ( EGCG), epicatechin (EC) and epicatechin gallate (ECG) were separated and purified at only one step in one time. 90 mg of EGC,355 mg of EGCG,23 mg ofEC ,92 mg of ECG were harvested and their purities were 91.8% ,97.6% ,97.7% and 99.3% respectively. The yields and recovery of total four catechins monomers were up to 56.0% and 68.2% respectively. Thestructures of the four catechins were subsequently confirmed by analysis of their H NMR,13C NMR and HRESI-MS. Those indicate that MPLC could be helpful to the rapid and efficient preparation of catechin monomers from tea polyphenols.【期刊名称】《天然产物研究与开发》【年(卷),期】2013(025)001【总页数】5页(P92-95,100)【关键词】儿茶素单体;中压制备液相色谱;核磁共振谱;高分辨质谱【作者】林丹;李春苗;鲜殊;王玺;宛晓春;凌铁军;李大祥【作者单位】安徽农业大学教育部茶叶生物化学与生物技术重点实验室,合肥230036【正文语种】中文【中图分类】O629.9茶叶中的多酚类物质占茶叶干重的18%~36%。

固相萃取-液相色谱测定复杂基质蔬菜中9种烟碱类残留

固相萃取-液相色谱测定复杂基质蔬菜中9种烟碱类残留

固相萃取-液相色谱测定复杂基质蔬菜中9种烟碱类残留侯如燕;卞红正;赵秀霞;胡祎芳;苏婷;王孝辉;宛晓春【摘要】建立了韭菜、洋葱、大蒜等复杂基质蔬菜样品中呋虫胺、烯啶虫胺、氟啶虫酰胺、噻虫嗪、吡虫啉、噻虫胺、氯噻啉、啶虫脒、噻虫啉9种烟碱类农药残留的液相色谱检测方法.对比了几种常用溶剂的提取效率以及固相萃取材料对韭菜、洋葱样品中干扰基质的去除效果.研究结果表明,样品经微波处理后,用乙腈提取,Envi-Carb/PSA固相萃取柱净化,乙腈洗脱后,经反相高效液相色谱紫外检测器检测,在0.02~0.5 mg/kg加标水平下9种烟碱类农药的回收率为67%~110%,相对标准偏差均小于18.6%.所检测的3种蔬菜样品中除噻虫啉的定量下限为0.05 mg/kg外,其他8种农药的定量下限均不大于0.02 mg/kg.方法简便、快速,可满足复杂基质蔬菜中烟碱类农药多残留分析的要求.%A simple and sensitive high performance liquid chromatographic(HPLC) method was developed for the simultaneous determination of 9 nieotinoid insecticide residues, including dinotefuran,nitenpyram, flonicamid, thiamethoxam, imidacloprid, clothianidin, imidaclothiz, acetamiprid and thiacloprid, in sulphur-containing vegetables samples. The extract efficiencies of several solvent and the cleanup capacities of different SPE cartridges were compared. The vegetables were extracted with acetonitrile and cleaned up on an Envi - Carb/PSA cartridge. The nicotinoid insecticides were eluted with acetonitrile and detected with UV detector. The calibration curves showed good linearities in the range of 0.02 - 1.0 mg/L with correlative coefficient more than 0.999. The limits of quantitation (LOQ) were 0. 02 mg/kg for all 9 pesticide except for thiacloprid with LOQ of 0.05 rog/kg. The recoveriesof 9 pesticides from vegetable sample spiked at three concentration levels of 0.02 mg/kg,0.05 rog/kg and 0.5 mg/kg ranged from 67% to 110% with RSDs less than 18.6%. The established method was simple, sensitive and accurate, and was suitable for the routine detection of nicotinoid pesticides residues in vegetables.【期刊名称】《分析测试学报》【年(卷),期】2011(030)001【总页数】6页(P58-63)【关键词】烟碱类残留;杀虫剂;高效液相色谱;固相萃取;蔬菜【作者】侯如燕;卞红正;赵秀霞;胡祎芳;苏婷;王孝辉;宛晓春【作者单位】安徽农业大学,茶与食品科技学院,教育部、农业部茶叶生物化学与生物技术重点开放实验室,安徽,合肥,230036;农业部农产品质量安全监督检验测试中心(合肥),安徽,合肥,230031;安徽农业大学,茶与食品科技学院,教育部、农业部茶叶生物化学与生物技术重点开放实验室,安徽,合肥,230036;安徽农业大学,茶与食品科技学院,教育部、农业部茶叶生物化学与生物技术重点开放实验室,安徽,合肥,230036;安徽农业大学,茶与食品科技学院,教育部、农业部茶叶生物化学与生物技术重点开放实验室,安徽,合肥,230036;安徽农业大学,茶与食品科技学院,教育部、农业部茶叶生物化学与生物技术重点开放实验室,安徽,合肥,230036;农业部农产品质量安全监督检验测试中心,合肥(安徽),合肥,230031;安徽农业大学,茶与食品科技学院,教育部、农业部茶叶生物化学与生物技术重点开放实验室,安徽,合肥,230036【正文语种】中文【中图分类】O657.72;F767.2Abstract:A simple and sensitive high perfor mance liquid chromatographic(HPLC)method was developed for the simultaneous determination of 9 nicotinoid insecticide residues,including dinotefuran,nitenpyram,flonicamid,thiamethoxam,imidacloprid,clothianidin ,imidaclothiz,acetamiprid and thiacloprid,in sulphur-containing vegetables samples.The extract efficiencies of several solvent and the cleanup capacities of different SPE cartridgeswere compared.The vegetableswere extracted with acetonitrile and cleaned up on an Envi-Carb/PSA cartridge.The nicotinoid insecticideswere eluted with acetonitrile and detected with UV detector.The calibration curves showed good linearities in the range of 0.02-1.0 mg/L with correlative coefficient more than0.999.The limits of quantitation(LOQ)were 0.02 mg/kg for all 9 pesticide except for thiacloprid with LOQ of 0.05 mg/kg.The recoveries of 9 pesticides from vegetable sample spiked at three concentration levels of 0.02 mg/kg,0.05 mg/kg and 0.5 mg/kg ranged from 67%to 110%with RSDs less than 18.6%.The established method was simple,sensitive and accurate,and was suitable for the routine detection of nicotinoid pesticides residues in vegetables.Key words:nicotinoid residue;insecticide;HPLC;SPE;vegetable烟碱类农药是一类新型高效、低毒、内吸性强、残效期长、残留量低的广谱性杀虫剂,在市场上占有很高的份额[1-2]。

茶叶、茶鲜叶及茶汤中啶虫脒残留的检测

茶叶、茶鲜叶及茶汤中啶虫脒残留的检测

茶叶、茶鲜叶及茶汤中啶虫脒残留的检测苏婷;侯如燕;赵秀霞;钱晓三;杨婷婷【期刊名称】《食品与发酵工业》【年(卷),期】2011(037)010【摘要】建立了茶叶、茶鲜叶、茶汤中的啶虫脒残留量的液相色谱检测方法。

茶叶样品经乙腈提取,碱性NaCl饱和溶液萃取,Envi—Carb/NH2固相革取柱净化,10mL乙腈洗脱,液相色谱-紫外检测器检测,茶叶,茶鲜叶啶虫脒的添加浓度为0.1~1.0mg/kg时,其平均回收率为68.5%~103.6.0%,相对标准偏差(RSD)≤13.6%。

茶汤啶虫脒的添加浓度为0.033~0.333mg/L时,其平均回收率为:73%~103.8%,相对标准偏差(RSD)≤7.6%。

用该方法最低检出浓度为分别为:0.07、0.09mg/kg、0.002mg/L,符合农药残留分析要求。

该方法可用于茶叶中啶虫脒的常规检测和啶虫脒在茶叶生产中应用的安全性评价研究。

【总页数】4页(P174-177)【作者】苏婷;侯如燕;赵秀霞;钱晓三;杨婷婷【作者单位】安徽农业大学茶与食品科技学院;教育部、农业部茶叶生物化学与生物技术重点开放实验室,安徽合肥230036;安徽农业大学茶与食品科技学院;教育部、农业部茶叶生物化学与生物技术重点开放实验室,安徽合肥230036;安徽农业大学茶与食品科技学院;教育部、农业部茶叶生物化学与生物技术重点开放实验室,安徽合肥230036;安徽农业大学茶与食品科技学院;教育部、农业部茶叶生物化学与生物技术重点开放实验室,安徽合肥230036;安徽农业大学茶与食品科技学院;教育部、农业部茶叶生物化学与生物技术重点开放实验室,安徽合肥230036【正文语种】中文【中图分类】TS272.4【相关文献】1.信阳毛尖茶不同产区茶鲜叶品质差异分析 [J], 刘冬梅;张军锋;吕立哲;曹成;赵丰华;金开美;王红旗;刘继红;尹海燕2.利用平阳特早夏、秋茶鲜叶制作早香乌龙茶 [J], 张维耿;张丽香;陈培璇3.固相萃取和分散固相净化-串联质谱测定茶鲜叶和干茶中的农药残留 [J], 杨洁;周利; 余焕; 孙荷芝; 王新茹; 张新忠; 杨梅; 陈宗懋; 罗逢健4.茶与茶制品紧密堆积密度测定仪和茶鲜叶氟素快速测定仪介绍 [J],5.酸化茶鲜叶原料对鲜茶汁压榨提取的作用 [J], 龚淑英;张堂恒因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

超微绿茶粉加工技术(案例)(精)

超微绿茶粉加工技术(案例)(精)

• 加工方法
– 日本:
– 超微茶粉在日本最为畅销,产品不仅作为茶道用抹茶的原 料,而且被广泛应用于食品和日用化工领域中。日本生产 的超微茶粉以色泽绿、粒度细而著称。究其原因一方面是 因为其采用蒸青叶作原料,更重要的一点是其在加工超微 茶粉中采用了在传统石臼碾磨基础上发展起来的电动石臼 加工设备,由于采用研磨方式加工,且加工过程中机械温 度低,从而使产品色泽绿、粒度细。
超微绿茶粉加工技术
• 超微绿茶粉是将鲜茶叶经过蒸汽杀青和干 燥处理后进行超微粉碎成200目(74μm)(气 流粉碎式加工)甚至1000目(12μm左右)以 上的茶叶超微细粉。
• 超微绿茶粉最大限度地保持了茶叶原有的 色香味品质和各种营养成分。
• 超微绿茶粉已广泛应用于食品、 果、果脯等食品的风味添加剂,赋予食品 天然的绿色(超微绿茶粉)、红色(超微 红茶粉)色泽和营养保健功能;
• 超微茶粉产品不仅在国内畅销,而且已经远销到 韩国、日本、美国等20多个国家和地区,平均售 价达到60-80元/kg。
• 超微茶粉很有可能成长为我国茶业的一个新的经 济增长点。
• 参考文献
– [1]高福成.现代食品工业高新技术[M].北京:中国轻工业出版 社,1997:2 1-56. – [2] /vertnew/showcomnewsdetail.asp ?cid=5490&nid=3547 – [3]刘树立,王华.超微粉碎技术的优势及应用进展[J].干燥技术与设 备,2007,5:35-38 – [4]郝征红,张炳文,岳风丽.超微粉碎加工技术在农产资源开发中的 应用[J].食品科技,2006(11):24-27 – [5]张憋,王亮.超微粉碎在食品加工中的研究进展[J].无锡轻工大学 学报,2003,22(4):106-110

热处理过程中表没食子儿茶素没食子酸酯变化的动力学研究

热处理过程中表没食子儿茶素没食子酸酯变化的动力学研究

热处理过程中表没食子儿茶素没食子酸酯变化的动力学研究吴平;夏涛;高丽萍;戴前颖;王云生;李钊【摘要】利用Arrhenius动力学方程,研究了不同热处理(4~100℃)条件下,表没食子儿茶素没食子酸酯(EGCG)发生降解、异构化和脱没食子化反应的变化规律,并建立了相关的动力学预测模型.结果表明:热处理过程中EGCG发生的降解、异构化和脱没食子化反应均属于一级动力学反应,可用Arrhenius方程进行拟合(R2>0.9),反应速率常数K均随着温度的升高而增加,预测模型中的Ea(活化能)和A(频率因子)分别为53.90kJ/mol和5.698×104、98.60 kJ/mol和7.315×1012、85.34kJ/mol和5.112×1010,表明EGCG易发生降解,而发生异构化反应难;各模型的预测值与实际值的相对误差<13%,因此可根据Arrltenius方程对热处理条件下EGCG的变化进行预测.【期刊名称】《食品与发酵工业》【年(卷),期】2010(036)011【总页数】6页(P34-39)【关键词】表没食子儿茶素没食子酸酯(EGCG);降解;异构化;脱没食子化;动力学模型【作者】吴平;夏涛;高丽萍;戴前颖;王云生;李钊【作者单位】安徽农业大学教育部茶叶生物化学与生物技术重点实验室,安徽,合肥,230036;安徽农业大学教育部茶叶生物化学与生物技术重点实验室,安徽,合肥,230036;安徽农业大学教育部茶叶生物化学与生物技术重点实验室,安徽,合肥,230036;安徽农业大学教育部茶叶生物化学与生物技术重点实验室,安徽,合肥,230036;安徽农业大学教育部茶叶生物化学与生物技术重点实验室,安徽,合肥,230036;安徽农业大学教育部茶叶生物化学与生物技术重点实验室,安徽,合肥,230036【正文语种】中文儿茶素是以2-苯基苯并吡喃为基础结构的类黄酮化合物中的黄烷醇类[1]。

茶树实时荧光定量PCR分析中内参基因的选择

茶树实时荧光定量PCR分析中内参基因的选择

植物学报 Chinese Bulletin of Botany 2010, 45 (5): 579–587, doi: 10.3969/j.issn.1674-3466.2010.05.007——————————————————收稿日期: 2009-12-08; 接受日期: 2010-03-30基金项目: 973计划前期项目(No.2007CB116211)、国家自然科学基金(No.30771755和No.30972401)和安徽省自然科学基金(No.09041- 1006)* 通讯作者。

E-mail: xiatao62@; gaolp62@茶树实时荧光定量PCR 分析中内参基因的选择孙美莲1, 王云生2, 杨冬青1, 韦朝领1, 高丽萍2*, 夏涛1*, 单育1, 骆洋21安徽农业大学农业部茶叶生物化学与生物技术重点实验室, 合肥 2300362安徽农业大学生命科学学院, 合肥 230036摘要 选择合适的内参基因是提高实时荧光定量PCR 分析(qRT-PCR)准确性的先决条件。

该文以茶树(Camellia sinensis )芽、叶、幼根、嫩茎、花瓣、种子和愈伤组织为材料, 应用实时荧光定量PCR 技术, 分析了18S rRNA 、GAPDH 、β-actin 和α-tubulin 4个常用内参基因在茶树不同器官组织中的表达情况。

经GeNorm 和NormFinder 软件分析发现, 当利用荧光定量PCR 分析比较茶树不同器官组织中的基因表达差异时, 可选择β-actin 作为校正内参基因; 而比较不同成熟度的叶片和愈伤组织时, 可以选择GAPDH 作为校正内参基因。

关键词 茶树, 实时荧光定量PCR, 内参基因孙美莲, 王云生, 杨冬青, 韦朝领, 高丽萍, 夏涛, 单育, 骆洋 (2010). 茶树实时荧光定量PCR 分析中内参基因的选择. 植物学报 45, 579–587.实时荧光定量PCR(real time fluorescence qua- ntitative PCR, qRT-PCR)实现了聚合酶链式反应技术(polymerase chain reaction, PCR)从定性到定量的飞跃, 具有重复性好、灵敏度高、定量准确、速度快等优点, 已成为分子生物学研究中分析基因表达的重要工具(Heid et al., 1996; Haller et al., 2004; Ransbotyn and Reusch, 2006; Yoo et al., 2009)。

茶树分子生物学研究进展_江昌俊

茶树分子生物学研究进展_江昌俊

张俊等 (2004)
黎星辉等 (2004)
谭和平等 (2004)
段红星等 (2004)
李娟等 (2005)
AFLP 分子标记技术是在 PCR 和 RFLP 技术基础 上发展的一种 DNA 指纹分析技术,被广泛用于分子 遗传图谱构建、目的基因定位、品种鉴别和分类以及 系统发育研究等方面。茶分子遗传图谱的构建落后于 许多其它作物,田中淳一等(1996,1997)以籔北种 与静-印杂 131 品种杂交 F1 代为材料,采用 RAPD 标 记,绘制了“籔北”与“静-印杂 131”的部分遗传 连锁图,分别包含 6 个连锁群。“籔北”的 6 个连锁群 共 25 个标记,“静-印杂 131”的 6 个连锁群共 36 个标 记。Hackett C A 等(2000)以 SFS150 与 TN14/3 杂交 的 F1 代群体为材料,采用 RAPD 和 AFLP 标记,构建 了母本的遗传连锁图,包括三联体及三联体以上连锁 群 15 个,还有 2 个连锁对,图谱共有 126 个标记,覆 盖总图距 1349.7cM,平均图距为 11.7cM。黄建安等 (2005)以祁门 4 号与潮安大乌叶的 F1 代群体为材料, 采用 AFLP 标记,分别构建了祁门 4 号与潮安大乌叶 的 AFLP 分子连锁图谱,母本图谱由 208 个标记组成 的 17 个连锁群,总图距为 2457.7cM,标记间平均间 距为 11.9cM。父本图谱由 200 个标记组成的 16 个连 锁 群 , 总 图 距 为 2545.3cM , 标 记 平 均 间 距 为 12.8cM。
云南主产区具代表性的野生型 古茶树、过渡型古茶树、栽培型 品种、野生种、地方品种及近源 植物-金花茶等 48 份种质
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茶叶科学

茶叶科学

茶叶科学2005,25(4):275~281Journal of Tea Science茶鲜叶中糖苷类香气前体的液质联用分析张正竹1,宛晓春1,陶冠军2(1. 安徽农业大学茶叶生物化学与生物技术教育部、农业部重点实验室,安徽合肥 230036;2. 江南大学分析测试中心,江苏无锡 214036)提要:利用Amberlite XAD-2为填料的柱层析方法,初步分离了茶鲜叶中的糖苷类香气前体。

茶叶粗酶(丙酮粉)能有效水解糖苷类香气前体,并释放出挥发性的配基,进而用气相色谱方法对其苷元部分进行了分析。

在茶树槠叶种鲜叶中,顺-3-己烯醇、芳樟醇及其氧化物(Ⅰ、Ⅱ)、香叶醇、水杨酸甲酯、苯甲醇和2-苯乙醇是糖苷类香气前体的主要苷元。

不同季节的茶树鲜叶中糖苷类香气前体在苷元组成上基本一致。

对糖苷类香气前体的液质联用分析结果表明,这类糖苷主要以双糖苷(C5-C6)形式存在,这与在其它茶树品种上(薮北种、毛蟹、水仙、槠叶种)的研究结果高度一致。

关键词:茶学;槠叶种茶树(Camellia sinensis var. sinensis cv. Zhuye);糖苷类香气前体;分析;液质联用中图分类号:S571.1; Q538 文献标识码:A 文章编号:1000—369X(2005)03—275—07Analysis of Glycosidic Aroma Precursors in Fresh Tea Leaves (Camellia sinensis var. sinensis cv. Zhuye) by the Combination of Liquid Chromatography with Mass SpectrometryZHANG Zheng-Zhu1, WAN Xiao-Chun1, TAO Guang-Jun2(1. Key Laboratory of Tea Biochemistry & Biotechnology, Ministry of Agriculture and Ministry of Education, Anhui AgriculturalUniversity, Hefei 230036, China; 2. Testing & Analysis Center of Southern Yangtze University, Wuxi 214036, China)Abstract: Glycosidic tea aroma precursors were efficiently separated by chromatography on Amberlite XAD-2 column. Incubation of the glycoside rich alcohol extracts with crude enzymes (tea leaf acetone powder) has been shown to yield aglycons which can be quantitatively analyzed by GC. Significant amounts of cis-3-hexenol, linalool oxide I (cis, furanoid), linalool oxide II (trans, furanoid), linalool, methyl salicylate, geraniol, benzyl alcohol and 2-phenylethanol were yielded. These eight kinds of glycosides were revealed to be the major bound form aroma components in fresh tea leaves of cv Zhuye. The seasonal variations of the amount of glycosidically bound volatiles were investigated by analysis of three stages of the tea leaves, and the same aglycone moieties were observed in juvenile and aged tea leaves. Additionally, glycosidic aroma precursors in leaves of cv Zhuye were shown quite similar to that in leaves of cv Maoxie, cv Shuixian and cv Yabukita that disaccharides (C5-C6) appearing to predominate by a LC-MS investigation.Key words: Tea science, Camellia sinensis var. sinensis cv. Zhuye, Glycosidic aroma precursors, Analysis, LC-MS收稿日期:2005—06—21 修订日期:2005—09—23基金项目:国家自然基金项目(批准号30571469),国家攀登计划项目“茶叶糖苷类香气前体的生物化学与分子生物学基础研究”国科基字 [1999]045号,安徽省自然科学基金研究项目(050410302)研究内容之一。

扁形茶压制式连续成型干燥机对太平猴魁茶品质的影响

扁形茶压制式连续成型干燥机对太平猴魁茶品质的影响

扁形茶压制式连续成型干燥机对太平猴魁茶品质的影响王卿;杜守平;李尚庆;岳鹏翔【摘要】选用黄山柿大茶的鲜叶为原料,以扁形茶压制式连续成型干燥机和传统手工压制分别加工太平猴魁茶.对两种方法加工的茶样进行感官审评和其内含物、香气成分的测定,探讨扁形茶压制式连续成型干燥机对太平猴魁品质的影响.结果表明:压制式连续成型干燥机加工的香气明显优于手工压制加工的太平猴魁,手工压制的香气以烷烃类化合物为主,占香气总检出量的77.54%,扁形茶压制式连续成型干燥机加工的以醇类和酯类化合物为主,分别占检出量的27.07%和20.05%;而氨基酸总量和可溶性糖明显低于传统手工压制加工的.【期刊名称】《食品与机械》【年(卷),期】2010(026)001【总页数】5页(P44-48)【关键词】太平猴魁茶;加工工艺;品质;扁茶机【作者】王卿;杜守平;李尚庆;岳鹏翔【作者单位】安徽农业大学茶叶生物化学与生物技术教育部、农业部重点实验室,安徽,合肥,230036;安徽黄山天健茶叶有限公司,安徽,黄山,245000;安徽农业大学茶叶生物化学与生物技术教育部、农业部重点实验室,安徽,合肥,230036;安徽农业大学茶叶生物化学与生物技术教育部、农业部重点实验室,安徽,合肥,230036【正文语种】中文太平猴魁茶是中国历史名茶,产于安徽黄山一带,是尖茶中最好的一种。

该茶曾于1915年在巴拿马万国博览会上荣获金质奖章。

其外形平展、整枝,挺直,两叶抱一芽,如含苞的白兰花,叶质肥壮重实,含毫而不露,色泽苍绿匀润;内质香气高爽持久,含花香,汤色青绿明净,滋味鲜醇回甜,叶底芽时肥壮,嫩匀成朵,嫩绿明亮[1]。

太平猴魁茶的采摘在谷雨至立夏,茶叶长出一芽三叶或四叶时开园。

由于采摘期的限制和市场的扩大,单纯靠手工来加工远不能满足市场的需求。

李尚庆等[2]研制了扁形茶压制式连续成型干燥机,用该机对太平猴魁的做形步骤进行改进,实现了机械化作业,大大提高了生产效率。

麻花头属植物化学成分研究进展

麻花头属植物化学成分研究进展

万方数据
36卷1期
凌铁军等麻花头属植物化学成分研究进展
在新产的卵、发育的胚胎和成虫中,这类化合物调节 着昆虫的变形、繁殖和滞育过程的各个方面。20一羟 基蜕皮松(20一hydroxyecdysone,20E,1)被认为是大 多数无脊椎动物中具有生物活性的一种主要的蜕皮 甾体‘81。
蜕皮甾体类化合物存在于所有节肢动物中,也 存在于一些种类的植物中。来源于植物的蜕皮甾体 称为植物蜕皮甾体(phytoecdystemids,PEs)。目前 人们对这类成分在植物中的作用了解得还不十分透 彻,但普遍认为这类化合物在某种程度上可以抵御 非适应性植食性昆虫和土壤线虫的侵袭。自从 1966年Nakanishi首次从Podocarpus nakaii中发现 ponasterone A,经过近半个世纪的研究探索,人们已 发现超过100个科的陆生植物含有大约250种 PEs,这些植物包括蕨类植物、裸子植物和被子植 物,有一年生植物也有多年生植物一J。在含有PEs 的植物中,PEs通常不会超过植物干重的0.1%,而 在一些植物种类中,PEs却在特定的器官中有很高 的含量。植物中哪些器官中的PEs含量最高似乎没 有普遍规律——果实,花,树皮,根茎,根和种子中都 可以存在。然而越来越多的证据表明蜕皮甾体含量 最高的部位是对于植物生存与繁衍至关重要的器 官。通常PEs的含量在植物开花时期,即每年的7、 8月份最高¨0|。虽然对PEs在植物王国中的分布 规律的研究还略显不足,但是人们已经开始注意到 含有蜕皮甾体类化合物的植物都分布于特定的属或
另外,一些缺少全部或部分侧链,而具有C。,或 c:。骨架的PEs(17—22)也曾在本属植物中被分离 到过。这类PEs由于对昆虫的活性低下,所以被认 为是其他蜕皮甾体在植物中的降解产物哺]。 1.2其他化合物

纸层析_分光光度法检测茶氨酸_马雪泷

纸层析_分光光度法检测茶氨酸_马雪泷

马雪泷等: 纸层析-分光光度法检测茶氨酸
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图1 纸层析分离茶氨酸的装置 Fig.1 Appliance of paper chromatography for separating theanine
1.5 cm), 剪碎, 投入试管, 加5 mL洗脱剂(60%乙醇), 轻摇, 40 ºC水浴中20 min, 取出冷却, 待测。 4 比色与计算 以空白为参比, 在分光光度计570 nm处测定 样品吸光度。以茶氨酸标样吸光度对质量作标准 曲线, 得出线性方程。将样品吸光度带入标方程, 求出样品茶氨酸质量。再按下面公式计算样品中 的茶氨酸含量: 茶氨酸(%)= 。其中, M
Determination of Theanine in Tea (Camellia sinensis L.) by Paper Chromatography-Spectrophotometry
MA Xue-Long1, ZOU Peng-Fei1, WANG Dang-Qiang1, CAO Shun-Li2, FANG Jiang-Yu1,3,*, WANG Chang3 1 College of Life and Environmental Sciences, Huangshan University, Huangshan, Anhui 245041, China; 2Key Laboratory of Tea Biochemistry and Biotechnology of Ministry of Agriculture, Anhui Agricultural University, Hefei 230036, China; 3Huangshan Xiannong Bio-Technology Co., Ltd, Huangshan, Anhui 245900, China
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