红掌组织培养与快速繁殖

参考文献：
[1] 曹孜义,等. 实用植物组织培养技术教程[M]. 兰州: 甘肃科学技术出版社, 1996. 46-48. [2] 李志芳,等. 花烛的组织培养与快速繁殖[J]. 植物生理学通讯, 1997,33(3): 197.
26
13
0.4d
22
5
5
0.1d
注：1）标有不同英文字母者为差异达 0.05 显著水平。以下各表同。
生长素和细胞分裂素对红掌幼叶组织的诱导和分化的影响也比较明显。从表 2、表 3 可 以看出，生长素 IAA、NAA、2,4-D 及细胞分裂素 6-BA、KT 和 2-ip 对愈伤组织诱导和芽分 化的影响都有明显差异。
2002,31(3):66-68. Ｓｕｂｔｒｏｐｉｃａｌ Ｐｌａｎｔ Ｓｃｉｅｎｃｅ
红 掌 组 织 培 养 与 快 速 繁 殖
蔡维藩
（汕头经济特区龙达建设总公司，广东 汕头 515041）
摘 要：红掌叶片在新代培养基上的分化能力与品种和叶片部位有关。组织培养试验表明，最 佳诱导培养基为改良 Nitsch (NH4NO3 200mg/L) + 6-BA 1.0mg/L + 2,4-D 0.1mg/L；芽增殖培养基 Nitsch (NH4NO3 720mg/L) + 6-BA 0.5mg/L；生根培养基为 Nitsch (NH4NO3 720mg/L)。 关键词：红掌；组织培养；快速繁殖
32.1a
6-BA 0.5
20
34.1a
KT 0.5
18
9.1b
2-ip 0.5
20
2.6b
2.4 生根与移栽 在新代培养中和愈伤组织次代培养中，有时产生芽体形成小苗，同时基部形成根。在光
照下培养，生根能力强。这样，红掌的培养在一步内即可完成。如要获得快速生根的效果， 应将小苗转入生根培养基中，2 周之内即可开始生根。在光照条件下，4 周完全生根，根数 可达到 2 条/株，此时可移栽下土。移栽基质为发酵过的锯末﹕沙（3﹕1）混合；环境最适 温度 25～30℃；湿度 85%左右。移栽一个月后，小苗产生新叶，完成了过渡炼苗，即可薄 施复合肥。3 个月后上盆管理，18 个月始花。一般开花年龄在 18～24 个月，然后每 40d 左 右开出一支花，第 4～5 次花时，可达到母株常规花的大小。
Ａｂｓｔｒａｃｔ： The differentiation of Anthurium scherzerianum explants (leaves) is related to the varieties and different parts of leaf. The experimental results of suggested that the optimal media for different culture stages were: (1) Induction of adventitious buds: modified Nitsch (NH4NO3 200mg/L) + 6-BA 1.0 + 2,4-D 0.1; (2) Successive transfer culture and propagation of shoots: modified Nitsch (NH4NO3 720mg/L) + 6-BA 0.5; (3) Differentiation of roots: modified Nitsch (NH4NO3 720mg/L). Ｋ ｅ ｙ ｗ ｏ ｒ ｄ ｓ ： Anthurium scherzerianum; tissue culture; rapid propagation
光源由冷质荧光灯提供，光强为 3 000 lx。在愈伤组织诱导产生小芽时，提前 4 周将愈伤组 织由黑暗转入上述光暗周期培养。
2 结果与讨论
2.1 外植体新代培养 在新代培养中，培养基成分及各种因素对愈伤组织诱导和芽的形成影响较大，在继代培
养的增殖中，则影响较小。4 个品种的叶片在诱导培养基上培养后，结果差异很大：1 个品 种不能分化，2 个品种产生愈伤组织，还有 1 个品种直接生成芽丛。在产生芽丛的品种中， 每块叶外植体所产生的芽数差别较大；个别的叶外植体不能产生芽，而有些叶外植体可产生 43 个芽点，平均芽数为 5.3。
1 材料与方法
1.1 试材 2 月份从温室内盆栽红掌上取刚展开的新叶，用自来水冲洗，然后浸入 70%酒精中消毒
4～5s，再浸入 5‰次氯酸钠溶液中（加少许吐温-20）10～15min，然后用无菌水冲洗三次， 无菌滤纸吸干后，切取 10～14mm2 叶片置于愈伤组织诱导培养基上培养。 1.2 培养方法及条件[1]
试验还发现，虽然 NH4NO3 浓度对愈伤组织诱导有较大影响，但对愈伤组织的增殖和芽 的产生没有明显的影响。 2.3 芽丛增殖[2]
将愈伤组织转入芽分化培养基上，可产生绿色芽丛。芽的发生成丛成簇，在芽的周围愈 伤组织也较容易产生新芽。有时在小苗的叶腋，腋芽发生形成小苗，而有时则是在愈伤组织 上以不定芽形式产生。
这种差异主要是由叶片不同部位的分化能力不同引起。试验中，将外植体分为近轴（柄） 端、中轴端和远轴端进行取材，结果发现，远轴端的分化能力较强，平分化能力每外植体 8.5 个芽点，近轴端和中轴端分化能力较弱，平均芽数仅为 2.3 个。这与白掌试验中不同部 位的叶外植体的生芽能力无明显差异的结果不同。
NH4NO3 浓度对红掌不同品种的叶片分化能力有显著的影响（表 1）。
NAA(0.5)
38
95
79
4.1b
2,4-D(0.1)
36
97
89
8.6a
﹒68﹒
第 31 卷
表3
细胞分裂素(mg/L)
6-BA 1.0 KT 1.0 2-ip 1.0
细胞分裂素对叶外植体诱导率的影响（AS-1 品种）
外植体数
诱导率(%)
愈伤组织
小芽
每个外植体平均芽数
18
89
83
17
71
71
18
61
39
15.4a 11.5a 2.6b
2.2 愈伤组织扩繁 为了快速增殖试材，将愈伤组织进行扩大繁殖。AS-1 品种幼叶接种于诱导培养基上，
两个月开始产生少量愈伤组织，第 3 个月进行第一次转瓶（次代培养），然后每 45d 转瓶一 次。在以后的试验中发现，前 4 次的次代培养愈伤组织产生芽的能力较强。因此，愈伤组织 转瓶四代后，应全部用于芽的诱导，而不应长期扩繁下去。此外，愈伤组织的质量对小苗的 发生也有较大影响，零星、松散的愈伤组织生芽的质量较差。而质地紧密的愈伤组织（有时 带有亮绿点）发生芽的能力较强。
基本培养基为改良的 Nitsch 培养基，根据不同培养要求调整 NH4NO3 浓度及加入不同
收稿日期：2002-01-22 作者简介：蔡维藩(1969-)，男，广东汕头人，工程师，学士，主要从事园林绿化设计、施工、花木栽培等工作。
第3期
蔡维藩：红掌组织培养与快速繁殖
﹒67﹒
浓度配比的生长调节剂。培养基 pH5.8，琼脂 6.5g/L，于 121℃1.1kPa 压力下杀菌 20min。 培养条件：愈伤组织诱导及扩大培养于 25±1℃黑暗培养，小苗分化和生根为光照 14h/d，
中图分类号：S682.1+4; Q943.1
文献标识码：A
文章编号：1009-7791(2002)03-0066-03
Tissue culture of Anthurium scherzerianum
CAI Wei-fan
(Shantou Longda Construction Company, Shantou 515041, Guangdong China)
红掌（Anthurium scherzerianum）是天南星科花烛属植物，原产地中海一带，近年来引 入我国。红掌花枝独特，全年开花，花保鲜期长，既可用作盆花又可用于切花，是一种很受 欢迎的高观赏价值的植物。红掌喜高温高湿，适合我国南方地区栽培，也较耐荫，盆花非常 适合庭院厅堂及宾馆酒楼室内摆设。为扩大红掌的繁殖，自 1996 年起我们开始采用组织培 养技术进行快速繁殖，以满足装饰工程上的需要。
品种 AS-1
表 1 NH4NO3 对不同品种叶分化能力的影响
NH4NO3 浓度(mg/L)
外植体数
形成的 愈伤组织数
形成的 小芽数
200
77
70
56
720
44
4
0
每个外植体 平均芽数 1)
3.2c
0.00d
R-2
200
720
15
93
93
20.9a
17
53
47
8.3b
AS-10C
200
720
23
综合表 2、表 3 结果可以认为，红掌最佳诱导培养基配方为：改良 Nitsch（NH4NO3 200） + 6-BA 1.0 + 2,4-D 0.1。
表 2 不同生长素对叶诱导率的影响（AS-1 品种）
生长素（mg/L）
外植体数
诱导率(%)
愈伤组织
小芽
每个外植体平均芽数
IAA(0.5)
33
24
21
1.0c
细胞分裂素的种类和浓度对芽的增殖有明显影响，从表 4 看出，在 3 种细胞分裂素中， 以 6-BA 0.2～0.5 对芽的分化最有效，在 15 周内增殖 30 倍。
表 4 不同细胞分裂素对芽增殖的影响（AS-1 品种）
Байду номын сангаас
细胞分裂素种类(mg/L)
愈伤组织数(块)
平均芽数/愈伤组织数
6-BA 0.2
20