蛋白粉测试操作规程
蛋白质检测操作规程最新
蛋白质检测操作规程最新《蛋白质检测操作规程》一、实验室安全操作规程1. 实验室应具备必要的安全设施，如安全淋浴器，消防器材，急救箱等。
2. 操作人员应穿戴好实验室服装、手套和护目镜，并在操作过程中避免接触有害物质。
3. 实验室内禁止饮食，操作台面应保持清洁整洁，避免交叉污染。
二、蛋白质检测操作规程1. 样品准备：取得待测样品，根据要求进行样品制备，如细胞抽提、蛋白质提取等。
2. 蛋白质浓度检测：采用比色法或荧光法等方法，测定待测样品中蛋白质的浓度，并根据需求稀释样品。
3. 凝胶电泳：将待测蛋白质样品加入凝胶样品槽，进行蛋白质分离，检测蛋白质的分子量。
4. Western blot：将分离的蛋白质转移到膜上，然后用特异性抗体探测需要的蛋白质。
5. 结果分析：根据Western blot结果，判断目标蛋白质的表达情况，经过定量分析，得出相应的实验数据。
三、实验记录和报告1. 操作人员应记录实验的详细过程、使用的试剂和仪器型号、操作步骤、实验数据等内容。
2. 实验完成后，应将实验记录整理成报告，包括实验目的、原始数据、结果分析和结论等部分。
四、仪器设备维护和清洁1. 实验后及时清洁和消毒使用过的实验仪器和设备，确保下次使用前的卫生安全。
2. 定期对实验室仪器进行检查和维护，保证仪器正常使用。
五、结果存档和数据管理1. 所有实验记录和报告要有相应的存档，并按照规定的时间要求保存。
2. 实验数据的管理应该做好备份，并防止数据丢失或篡改。
通过以上《蛋白质检测操作规程》，实验室可按照规程科学、规范的开展蛋白质检测工作，确保实验数据的准确性和实验室的安全运行。
凯氏定氮法检测奶粉中蛋白质质量控制及注意事项
凯氏定氮法检测奶粉中蛋白质质量控制及注意事项凯氏定氮法是一种常用的检测蛋白质含量的方法，特别适用于奶制品中蛋白质的测定。
该方法基于样品中蛋白质含氮量的测定，以计算出样品中蛋白质含量。
下面给出具体操作方法及注意事项。
1. 基本操作方法（1）样品制备将适量的奶粉称量置于干燥试管中，加入适量的去离子水，并摇均。
样品质量应在1-5g之间，加水量约为5-10mL之间。
（2）加入试剂利用滴定管，将凯氏试剂（含铜硫酸和氢氧化钠）滴入样品中，直至完全反应。
反应时需要注意有无泡沫出现。
（3）消除泡沫试管加热，中小火持续沸腾2-5分钟。
在加热过程中，需轻轻振摇试管，以消除产生的泡沫。
（4）冷却制成的样品置于水浴中冷却或自然冷却至室温。
（5）去离子水洗涤取适量去离子水入试管，加热振摇，将试管内残留的试剂冲洗出来。
重复冲洗3次，排除影响测量的干扰物。
2. 注意事项（1）试管中需加入足够的试样。
过少的试样会影响测量结果，产生误差。
（2）准确计算样品的质量。
质量不足时，需添加适量的水，过多则会影响检测结果。
（3）做定量加药时，精准操作。
加压过猛会产生大量泡沫，造成污染，影响测定结果。
（4）在加热过程中，需用玻璃棒轻轻振摇试管，以消除产生的泡沫。
否则泡沫会影响样品的都组成分析。
（5）冷却试管时，避免试管与水浴接触。
否则会导致不同温度部分的不同反应时间，进而影响测量数据的准确性。
（6）在洗涤过程中，去离子水务必多次换水。
残留的试剂会影响下一次的测量。
3. 结论通过凯氏定氮法测定样品中的蛋白质含量，能够判断奶粉的质量。
此方法灵敏、准确，可进行批次对比，规范生产过程，确保产品质量。
在实验操作过程中，需注意以上注意事项，以确保数据准确。
06 胶原蛋白粉成品检验操作规程
目的：建立一个胶原蛋白（粉）成品检验标准操作规程。
范围：胶原蛋白（粉）成品。
责任：检验员、QA监控员、质量管理部经理。
内容：[性状] 采用目测、口尝、鼻嗅方法进行。
白色或浅黄色粉末，均匀、无结块，无肉眼可见杂物，无异味。
水中可溶。
[检查]1 水分的测定按GB/T 5009.3—2003中第一法直接干燥法规定的方法测定。
2 分子量的测定（凝胶层析法）2.1 原理利用装有多孔凝胶的层析柱（也称为色谱柱）将试样按其分子大小进行分离，再用检测器对层析分离物进行检测，最后用已知分子量的标准物进行标定。
2.2 试剂2.2.10.2mol/L氯化钠溶液。
2.2.20.5mol/L氯化钠溶液。
2.2.3葡聚糖G50。
2.3 仪器2.3.1凝胶层析装置（见图1）。
2.3.2紫外分光光度计。
文件名称胶原蛋白（粉）成品检验标准操作规程文件编号JB-QC-006-A图1 凝胶层析装置图2.4 分析步骤2.4.1 配制4%的水解胶原蛋白水溶液，加热处理后，随即把溶液迅速冷却至室温，用0.25mL 的进样器上柱进样作层析。
2.4.2 层析完毕后，对收集的洗脱级份，逐个测定230nm波长下的吸光度。
2.5 数据处理2.5.1 选择5~6个范围合适、已知分子量的窄分布水解胶原蛋白样品，按常规操作条件上柱层析，测定各个试样的洗脱曲线，并由洗脱峰求级份的洗脱体积（Ve）；然后以一系列Ve值对相应的logM作图，得校准曲线。
2.5.2 用相同条件上柱，层析未知分子量试样，测出其洗脱曲线与Ve，再在校准曲线上查出Ve所对应的logM，进而计算出M值。
2.6 精密度在重复性条件下获得的两次独立结果的绝对差值不得超过算数平均值的5%。
3蛋白质的测定按GB/T 5009.5—2003中第一法规定的方法测定。
蛋白质的换算系数为6.25。
4 透过率的测定4.1 原理在45℃下，用分光光度法来测定6.67%水解胶原蛋白水溶液在波长450nm和620nm的透过率。
水解蛋白粉检测技术
水解蛋白粉检测方法一、实验仪器1、量筒10mL、100 mL、250 mL，各3个；2、具塞刻度比色管10 mL，40支；3、小烧杯50 mL，20个；4、移液管1 mL、5 mL，各10支；5、滤纸（定量或定性）ø11cm，2盒；6、比色管架（3排孔，总30-36孔），2个；7、容量瓶（棕色）250 mL、100 mL，各4个；8、小牛角勺，若干个；二、实验试剂1、X试剂(AR)2、K试剂(AR)三、试剂配制1、3‰打底标样（简称“底标”）的配制含3‰水解蛋白粉奶样配制方法，用精密天平（万分之一感量），用50mL洁净干燥小烧杯称取水解蛋白粉净重0.750g，然后用新鲜未掺假牛奶少量多次（每次30-40mL鲜奶）溶解，并无损转移至250mL容量瓶中，最后用同种鲜奶定容至250mL刻度，盖上瓶塞，反复颠倒振摇50次以上，以保证充分溶解并混匀。
2、X试剂溶液（5%）的配制用洁净小烧杯在天平上称取X（AR级）试剂12.5g，小心地用10mL量筒量取4mL浓硝酸倒入小烧杯中，进而加蒸馏水溶解，并无损转移至250mL棕色容量瓶中（用少许纯水冲洗小烧杯3-4次均转移至容量瓶中），最后定容至250mL，摇匀待用。
3、饱和K溶液的配制用小牛角勺取K试剂两小勺，小心地置入100mL棕色容量瓶中，用洗瓶冲洗试剂至瓶下部，再加入蒸馏水至刻度，反复振摇50次，并放置过夜使之达到溶解平衡即为操作温度条件下的饱和溶液（注意观察容量瓶底部始终应有固体试剂残留才为饱和状态）。
四、实验原理及相关说明1、加入5%X试剂即可使乳中蛋白质变性凝聚，通过过滤操作即可除去，但水解蛋白实际为低聚肽类，X试剂与其不发生沉淀反应，通过该步骤即可实现乳中固有蛋白与人为加入的蛋白质成分分离。
2、因K试剂具有比X试剂更强的沉淀作用，其与低聚肽中的碱性基团（氨基）作用即可形成难溶的有机盐类沉淀，故使体系出现浑浊，当水解蛋白粉在奶样中含量高于1%时，此操作步骤则会较快出现浅黄色沉淀析出的现象3、任何难溶物均具有与温度密切相关的溶度积常数，水解蛋白粉与K试剂的作用也不例外，操作中给待检样中加入“底标奶样”是为了提高检测方法的灵敏度，即通过该措施可以达到含量万分之五水解蛋白粉的奶样稳定检出阳性结果的目的。
蛋白质检测操作规程
蛋白质检测操作规程1. 背景蛋白质是生物体内最重要的分子之一，其在细胞结构、酶活性、信号传导等过程中起着关键的作用。
因此，准确、高效地进行蛋白质检测对于生物学研究至关重要。
本文将介绍一套标准的蛋白质检测操作规程，以确保实验的准确性和稳定性。
2. 实验材料•10 mM Tris-HCl缓冲液（pH 7.4）•蛋白质样品•BCA蛋白定量试剂盒•BSA标准品•离心管•96孔板•吸光度计•移液枪•显微管•离心机3. 实验步骤3.1. 样品制备1.将需要测定蛋白质含量的样品取出，并加入足够的10 mM Tris-HCl缓冲液以使样品完全溶解。
2.将样品在室温下离心10分钟，以去除可能存在的颗粒杂质。
3.将澄清的样品转移到干净的离心管中，并密封保存以备后续使用。
3.2. 标准曲线制备1.取一定体积的BSA标准品并加入相同体积的10 mM Tris-HCl缓冲液，将其稀释为一系列浓度梯度的BSA溶液，如0.1, 0.2, 0.4, 0.6和0.8 mg/mL。
2.使用BCA蛋白定量试剂盒按照说明书操作，将每个浓度梯度的BSA溶液与试剂盒中的工作试剂混合。
3.将混合液加入孔板的相应孔中（每个浓度梯度设置3个孔位），并在37°C恒温水浴中孵育30分钟。
3.3. 样品检测1.使用BCA蛋白定量试剂盒按照说明书操作，将标准曲线的吸光度测量值记录下来。
2.取出保存好的样品，并使用BCA蛋白定量试剂盒按照说明书操作进行检测。
3.将样品加入孔板的相应孔中，并在37°C恒温水浴中孵育30分钟。
4.使用吸光度计测量孔板中各孔的吸光度值，并记录下来。
4. 数据处理与分析4.1. 绘制标准曲线1.使用标准曲线中各BSA浓度对应的吸光度测量值绘制图表。
2.进行线性拟合，得到标准曲线的方程式。
4.2. 计算样品蛋白质含量1.使用样品各孔的吸光度值代入标准曲线方程式，计算出各样品的蛋白质含量。
5. 结果与讨论通过以上操作步骤，可以得到样品中蛋白质的含量。
蛋白仪器操作规程
蛋白仪器操作规程蛋白分析仪是一种用于测定溶液中蛋白质浓度的仪器。
以下是蛋白分析仪的操作规程，以确保仪器的正确操作和结果的准确性。
1. 仪器准备：a. 确保蛋白分析仪的所有部件和配件都已正确安装和连接。
b. 检查仪器是否处于干净的状态，并清除仪器表面的灰尘和污垢。
c. 检查蛋白分析仪的电源是否已正确接通，仪器的开关是否处于关闭状态。
2. 样品准备：a. 准备待测样品，并将其转移至标准的试管或比色皿中。
b. 确保待测样品中没有任何杂质或颗粒，否则可能影响蛋白质的测定结果。
c. 记录样品的标识和测定的时间，以便日后对结果进行追踪和分析。
3. 仪器校准：a. 根据仪器的说明书，进行仪器的校准操作。
确保校准的正确性和准确性。
b. 校准过程中，使用标准溶液进行校准，按照说明书中的步骤进行操作。
c. 在校准前后对仪器进行外观检查，确保没有任何故障或漏洞。
4. 分析操作：a. 将样品放入蛋白分析仪中，并按照仪器操作说明进行测定。
b. 确保所使用的操作通道和检测波长与仪器的设置相匹配。
c. 启动测定程序，并等待仪器完成测定操作。
d. 当测定完成后，仔细记录结果，并根据需要，保存结果以备后续分析和比对。
5. 仪器维护和清洁：a. 每次使用后，应及时对仪器进行清洁和维护，以保持其正常的工作状态。
b. 需要使用专门的清洁剂和布来清洁仪器表面和各个部件。
c. 避免用水直接接触仪器，防止仪器因进水而损坏。
6. 结果记录和分析：a. 对测定结果进行准确的记录和标志，包括样品标识、浓度值、测定时间等信息。
b. 分析结果时，应注意与相应的标准或参考样品进行比较，以确定样品的蛋白质浓度和质量。
7. 故障排除：a. 在使用过程中，如发现仪器出现异常或故障，应立即停止操作，并检查可能的故障原因。
b. 如无法解决故障，请及时联系仪器供应商或维修人员进行维修或更换。
通过以上操作规程的遵守，可确保蛋白分析仪的正常工作和测定结果的准确性。
在使用过程中，还应注意操作人员的安全和仪器的保养，以保证仪器的长期稳定运行。
乳清蛋白粉检验操作规程
2理化指标
蛋白质/(g/100g)按GB5009.5检验
灰分/(g/100g)按GB 5009.4检验
乳糖/(g/100g)按GB 5413.5检验
水分/(g/100g)按GB 5009.3检验
3污染物限量：按GB 2762检验
4真菌毒素限量：按GB 2761检验
5微生物限量：按GB4789.4、GB4789.10检验。
文件编码
共1页
题目
乳清蛋白粉检验操作规程
制定
制定日期
审核
审核日期
批准
批准日期
颁发部门GMP办公室颁 Nhomakorabea日期执行部门
质量部
执行日期
取代
共印
4份
分发部门
质量部、生产部、物流部
1感官要求
取10g被测样品，置于洁净的白瓷盘中，用肉眼在自然光线下观察
色泽具有均匀一致的色泽。
滋味、气味闻其气味，用温开水漱口，品尝滋味。具有产品特有的滋味、气味，无异味。
理化标准操作规范
滴定瓶的摇动是否按顺时针方向摇动。
1.滴定管如何排气？ 1分 2.滴定管怎样读数？ 1分
3
1 2 2 2 2 1 1 1 1 1 1 1 1 2 1 5 每个问题0.5分
测定结束后，用去离子水冲洗干净，再盖好电极 2）电位 上补充加液孔。 11 滴定仪 将电极放入保护液中，关机。 滴定 指示剂是否临用时混合。 应在搅拌下测定，且搅拌棒不能接触电极保证电 极安全。 测定结果是否稳定后停止测定，然后再重新测定 一次。 滴定终点的判定是否准确。 记录所读取的数据。 公式的熟练掌握。 12 计算 计算结果的准确。 记录填写是否完整。 准确性比对结果是否在误差范围内。（包括留样 13 结果 复测、人员比对、回收率实验、基准样比对等）
8
1
1.加浓硫酸的作用？ 2分 2.在配硫酸的过程中 是将水注入酸还是将 酸注入水中？1分 1.在消化过程中延长 消化时间会对检测结 果有影响吗？1分 2.蛋白质检测的原 理？3分
2
1 1 1 1
蒸馏
1.加碱量不足会对检 测结果有什么影响？ 1分
8
蒸馏
加碱量是否足够。 蒸馏完毕后是否用蒸馏水冲洗冷凝管。 是否将冷凝管放在接收瓶底部。 用完毕后是否对凯氏定氮仪进行清洗，关闭电源 。 吸收装置中氢氧化钠溶液是否定期进行更换。 滴定前先检查滴定管是否是校准过的。 滴定管的使用是否正确（涂油、试漏、排气、） 。 使用前是否用滴定液润洗2-3次滴定管。 放液时是否准确（从零开始放液）。 看管尖处是否有悬液，如何处理。 指示剂是否临用时混合。 酸氏滴定管活塞的手握方式是否正确。
1 1 1 1 1 1 3 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1
1.加碱量不足会对检 测结果有什么影响？ 1分
9 吸收
蛋白粉检测方法
蛋白粉检测方法摘要：一、蛋白粉检测方法概述二、蛋白粉检测的具体方法1.蛋白质含量检测2.氨基酸组成分析3.生物活性检测4.安全性能检测三、蛋白粉检测的实用意义四、总结正文：【一、蛋白粉检测方法概述】蛋白粉是一种常见的营养补充剂，含有丰富的蛋白质和其他营养成分。
随着蛋白粉市场的不断扩大，确保产品的质量和安全性显得尤为重要。
本文将介绍蛋白粉的检测方法，以帮助消费者和生产厂家了解蛋白粉的质量。
【二、蛋白粉检测的具体方法】1.蛋白质含量检测：蛋白质含量是评价蛋白粉质量的重要指标。
常用的检测方法有凯氏定氮法、酚试剂法等。
通过这些方法可以准确测定蛋白粉中蛋白质的含量，从而评价产品的营养价值。
2.氨基酸组成分析：氨基酸是蛋白质的基本组成单位，其组成和比例对蛋白质的营养价值和生物活性具有重要影响。
通过氨基酸分析仪等设备，可以对蛋白粉中的氨基酸组成进行精确分析，评价产品的品质。
3.生物活性检测：生物活性是评价蛋白粉功能性的关键指标。
常见的生物活性检测方法包括酶活性测定、抗氧化活性测定等。
这些方法可以反映蛋白粉对人体健康的影响程度。
4.安全性能检测：蛋白粉的安全性能检测主要包括重金属含量、农药残留、微生物污染等方面。
通过原子吸收光谱、气相色谱、高效液相色谱等仪器分析方法，可以检测蛋白粉中潜在的安全风险。
【三、蛋白粉检测的实用意义】蛋白粉检测有助于确保产品的质量和安全性，为消费者提供健康、有益的食品。
同时，通过对蛋白粉进行检测，可以促进生产厂家不断提高生产工艺，生产出更优质的产品。
此外，检测结果还可以为政策制定者提供依据，加强对蛋白粉市场的监管。
【四、总结】蛋白粉检测方法涵盖了蛋白质含量、氨基酸组成、生物活性和安全性能等方面。
通过对蛋白粉进行检测，可以全面评价产品的质量，为消费者、生产厂家和监管部门提供重要参考。
乳清蛋白粉检测标准
乳清蛋白粉检测标准一、目的本标准旨在规定乳清蛋白粉的检测方法、检测规则、判定规则等，确保乳清蛋白粉的质量和安全。
二、范围本标准适用于以牛乳清为原料制成的乳清蛋白粉，包括采用浓缩、分离、提纯等技术获得的乳清蛋白粉。
三、检测项目及标准值1.蛋白质含量：采用国家标准方法测定，含量应不低于90%。
2.氨基酸组成：采用色谱法等测定，应符合国家标准规定的氨基酸组成。
3.脂肪和碳水化合物含量：采用气相色谱法等测定，脂肪含量应低于1.5%，碳水化合物含量应低于5%。
4.生物活性成分：应含有至少10%的乳铁蛋白、免疫球蛋白等生物活性成分。
5.安全性指标：应符合国家相关规定，如重金属、农药残留等不超标。
四、检测方法及判定规则1.蛋白质含量：按照GB5009.5-2016食品安全国家标准食品中蛋白质的测定方法进行测定。
如测定结果不低于90%，判定为符合标准。
2.氨基酸组成：按照GB/T5009.124-2003食品安全国家标准食品中氨基酸的测定方法进行测定。
根据标准规定的氨基酸组成进行判定，如测定结果符合标准要求，判定为符合标准。
3.脂肪和碳水化合物含量：按照GB/T5009.6-2003食品安全国家标准食品中脂肪的测定方法、GB/T5009.10-2003食品安全国家标准植物类食品中粗纤维的测定方法进行测定。
如脂肪含量低于1.5%、碳水化合物含量低于5%，判定为符合标准。
4.生物活性成分：采用高效液相色谱法等测定乳铁蛋白、免疫球蛋白等生物活性成分含量，如含有至少10%的乳铁蛋白、免疫球蛋白等生物活性成分，判定为符合标准。
5.安全性指标：按照国家相关规定进行检测，如重金属、农药残留等不超标，判定为符合标准。
五、其他要求1.样品采集：按照随机抽样原则进行样品采集，保证样品的代表性。
2.检测环境：检测应在符合相关规定的实验室进行，确保实验室的环境条件不会影响检测结果的准确性。
3.检测设备：使用经过检定或校准的设备进行检测，确保设备的准确性和可靠性。
检验科本周蛋白检测标准操作规程
检验科本周蛋白检测标准操作规程1.【检验目的】2.为了规范本周蛋白定性检测方法, 特制定本规程。
3.【职责】2.1实验室工作人员均应熟知并严格遵守本SOP, 室负责人监督落实。
4. 2.2本SOP的改动, 可由任一使用本SOP的工作人员提出, 并报经下述人员批准签字：室负责人、科主任。
5.【样本类型及实验前准备】3.1样本类型: 新鲜尿液3.2患者准备: 患者处于安静状态精神、体力、情绪等因素的影响较小。
3.3容器添加剂类型: 配套小便试管3.5实验试剂: 2g/L磺基水杨酸溶液。
2mol/L 醋酸盐缓冲溶液(PH4.9±0.1):取醋酸钠(CH3COONa-3H2O)17.5g,加冰醋酸4.1ml,再加蒸馏水至1ml,调PH至4.9.6.【测定原理】7.本-周氏蛋白又称凝溶蛋白, 是一种免疫球蛋白的轻链或其聚合体。
此种蛋白在一定的PH条件下加热至40-60P时沉淀发生, 温度升高至1P时, 沉淀消失, 再冷却时又可重现沉淀。
8.【操作步骤】5.1将尿液用磺基水杨酸法作蛋白定性检查, 如呈阴性反应, 也需对尿液标本中本-周氏蛋白进一步检测。
9. 5.2取透明尿液4 ml于试管中, 再加入乙酸缓冲液1 ml, 混匀后放置56P水浴中15分钟, 如有浑浊或出现沉淀, 再将试管放沸水中煮沸3分钟, 观察试管中浑浊或沉淀的变化。
如浑浊变清、减弱或沉淀减少均提示本-周氏蛋白阳性。
若煮沸后, 浑浊增加或沉淀增加, 表明此尿液中还有其他蛋白质, 此时应将试管从沸水中取出, 立即过滤, 如滤液开始透明, 温度下降后浑浊, 再煮沸时又透明, 提示本-周氏蛋白为阳性。
10.【结果计算与判断】如浑浊变清, 浑浊减弱或沉淀减少, 均提示本-周氏蛋白阳性。
11.若煮沸后, 浑浊增加或沉淀增多, 表明此尿液中还有其他蛋白质, 此时应将试管从沸水中取出, 立即过滤。
如过滤开始透明, 温度下降后浑浊, 再煮沸时透明, 提示本-周氏蛋白为阳性。
玉米蛋白粉水分检测方法
玉米蛋白粉水分检测方法
玉米蛋白粉是一种优质的蛋白饲料，但它的水分含量对质量和储存
稳定性有着重要影响。
因此，精确地测定玉米蛋白粉中的水分含量是
相当关键的。
下面，我将对玉米蛋白粉水分检测方法进行详细介绍。
一、测定原理
玉米蛋白粉中水分含量的测定原理采用干燥法，即在一定条件下将样
品加热使其失去水分，根据失重量计算出水分含量的百分比。
二、实验步骤
1. 准备样品：将玉米蛋白粉样品称重。
2. 烘干样品：将称好的玉米蛋白粉样品平铺在铝皮中，在105℃下烘干至恒重。
3. 冷却样品：将烘干后的样品取出，放置在室温下冷却。
4. 称重样品：将烘干后的样品称重，记录下精确质量。
5. 干燥样品：将称重好的样品放进105℃的干燥箱中，烘干4小时左右。
6. 冷却样品：将干燥后的样品取出，放置在室温下冷却。
7. 称重样品：将干燥后的样品称重，记录下精确质量。
8. 计算结果：根据水分含量公式（样品初始质量-样品干燥后质量）/样
品初始质量×100%，计算出玉米蛋白粉样品的水分含量。
三、注意事项
1. 为避免检测结果误差，应严格按照步骤操作。
2. 在烘干时注意温度的控制，避免对样品产生影响。
3. 为防止样品变质，应储存在干燥通风处。
4. 检测前应将设备清洗干净，以防污染对检测造成干扰。
综上可得，测定玉米蛋白粉水分含量的方法是一项简单而重要的实验工作，只有准确的测量结果才能保证产品的品质和储存稳定性。
蛋白粉怎么使用方法
蛋白粉怎么使用方法
使用蛋白粉的方法如下：
1. 测量：用一个杯子或称重器将所需量的蛋白粉测量出来。
2. 搅拌：将蛋白粉和液体（如水、牛奶、酸奶等）放入搅拌器中，搅拌均匀。
3. 操作：按照您的口味加入一些香草提取物或果汁。
您还可以添加其他健康的成分，如冰块、水果、坚果或蜂蜜。
4. 饮用：将调制好的蛋白粉饮料倒入杯中，可以直接饮用或用吸管享用。
注意事项：
1. 选择高质量的蛋白粉，避免购买过期或质量不佳的产品。
2. 根据您的身体情况和目标设置蛋白质的摄入量。
一般来说，每天摄入1 克蛋白质/每磅（2.2 千克）体重是一个安全且健康的指标。
3. 如果您在使用蛋白粉后出现不适或过敏症状，应立即停止使用，并咨询医生的建议。
蛋白粉各项指标检测方法
大豆蛋白粉的各项指标测定一、持水特性（保水性）称17.6g的蛋白样品，置于400ml的烧杯中，加入264g的蒸馏水，在磁力搅拌器上搅拌均匀，成为悬浊液，然后放入均质器中进行均质2分钟，取部分均质后的浊液，用0.1-0.01当量的盐酸调PH至4.5(一般使用5ml左右的注射器针头，一滴一滴加入，应尽量的少加，要使乳浊液总质量前后变化尽量的小到忽略不计，如果悬浊液中有泡沫，可用注射器的小针头沾取少许的消泡剂加到其中)。
然后准确称取17g左右的调PH后悬浊液于预先干燥后称重的50ml的离心试管中，静止放置30分钟后在20－25℃，4200转/分的转速下离心15分钟，静置，试管倾斜450，30秒后，弃去未被蛋白吸附的水，试管称重W1。
%吸水特性（WBC）=｛W1－（W2＋W3）｝÷W3W1—离心弃水后的试管总重量，gW2—干燥空试管的重量，gW3—试管里的悬浮液中的蛋白粉的含量，g二、持油特性称44g的蛋白样品，置于400ml的烧杯中，加入247.2g的精炼植物油，用玻璃棒搅拌均匀，成为乳浊液，然后放入均质器中进行均质2分钟，然后准确称取均质均匀的乳浊液17g左右于预先干燥后称重的50ml的离心试管中，静止放置30分钟后在20－25℃，4200转/分的转速下离心15分钟，静置，用200目的细纱布扎紧管口，试管倾斜450，5分钟后，弃去未被蛋白吸附的油，试管称重W1。
%吸油特性（OBC）=｛W1－（W2＋W3）｝÷W3W1—离心弃上层油后的试管总重量，gW2—干燥空试管的重量，gW3—试管里的浮浊液中的蛋白粉的含量，g注：在用细纱布扎管口的过程中，纱布和皮筋的质量都要计算上并最后减去。
三、凝胶强度的测定称取36g分离蛋白，于400ml烧杯中加入264ml2.5%食盐水，配成12%浓度的溶液，用玻璃棒搅拌均匀（也可等量扩大倍数，放入均质器中进行高速均质2分钟，如果乳液中有气泡或泡沫，可用玻璃棒沾取少许的消泡剂，再搅拌均匀，使泡沫消失并不要有气泡，它影响强度），然后小心倒入直径为4厘米，厚为7厘米的称量瓶内高度约为4厘米，盖好盖（注意留出一定空隙），放入90℃±1℃的烘箱内，烘40分钟，取出放在室温冷却至20℃左右；去掉盖子，放入2℃的冰箱内过夜；第二天取过夜后的样品用JS-2型冻力测试仪进行测定，每个样品至少做两个平行样，其误差在5g之内，否则要进行复检。
凝胶值检测规程
1：5凝胶值检测规程1.0主题内容和适用范围本规程规定了成品蛋白粉凝胶值检测的方法2.0检测项目2.1 1：5凝胶检测3.0检测方法3.1仪器架盘药物天平量筒（500m l）、水浴锅、刀片、直尺、物性测定仪、Comb iMax700搅拌器、65mm聚乙烯肠衣等3.2样品蛋白粉、蒸馏水4.0检测4.1 操作前的检查4.1.1检查Comb iMa x700搅拌器运转是否正常4.1.2检查水浴锅的水位水温是否正常4.2检测前的准备准确称取90 g±0.1g混合均匀的蛋白粉，用500ml量筒量取450ml蒸馏水（注意视线与凹液面平齐）4.3操作步骤4.3.1首先将量取好的450ml蒸馏水Comb iMax700搅拌器中，在将称量好的蛋白粉加入Comb iMax700搅拌器中。
4.3.2打开搅拌器开关低速搅拌(2000r/m in)10s(开始速度不要太快防止蛋白粉溅出)4.3.3继续搅拌在20S内逐步提高到最大转速（14000r/m in）4.3.4继续高速搅拌1m in后，进行有关清理。
4.3.5在高速搅拌1m in,将搅拌好的乳胶体全部转移到挤花袋中。
4.3.6将挤花袋进行赶气泡后，灌入65mm的聚乙烯肠衣中（肠衣预先经过蒸馏水浸泡20min）,注意不要灌入气泡。
4.3.7将灌好的肠体设定在放入90度水浴锅中煮30分钟（肠体在55-60℃放入水浴锅），取出用流动的水冷却30分钟，然后再放入4℃的冰箱中保存12小时以上。
取出放在室温下放置1小时，待测。
.测量4.3.8测量4.3.8.1将肠体两端切掉，剥去肠衣（注意不要破坏凝胶体）4.3.8.2将物性测定仪主机打开，再将物性测定仪程序打开进入禹王蛋白检测程序4.3.7..2首先校准高度为55mm,，参数设置为，下压前5.00mm/s 下压时5.00mm/s 下压后5.00mm/s 下压距离80%4.3.7.3将肠体放在物性测定仪测定平台上进行检测5.0注意事项5.1首先对架盘药物天平进行校准，以保证称量的准确性5.2保证量取的准确性，将量筒拿平，视线要与凹液面保持水平5.3肠衣要预先用蒸馏水浸泡20min5.4要保证肠体无气泡存在。
玉米蛋白粉测定
一、蛋白粉中掺尿素的测定
（方法一）取50克蛋白粉，加200ml蒸馏水振摇2分钟，静止30秒，三层滤纸过滤，取20ml放入50ml三角烧瓶中，加入1mol/l的氢氧
化钠溶液10ml，再加入黄豆液数滴，静置2-3分钟，加奈斯勒试
剂3滴，如试样中有黄褐沉淀产生则表明有尿素存在。
（方法二）取方法一中滤液20ml，加黄豆粉少许，再加入甲酚红溶液3滴，在70℃的水浴中加热2-3分钟，如出现较深的粉红色表明有尿素
存在。
二、蛋白粉中掺铵盐的测定
除不加黄豆液外，其余步骤跟测尿素相同，如有黄褐色沉淀产生，则含铵盐。
把含有铵盐的蛋白粉溶液用硝酸银和氯化钡溶液滴定，如有白色沉淀产生则初步判定含有氯化铵和硫酸铵。
三、用1：1的盐酸滴定蛋白粉，如产生暗红色，则有不明物存在，再进行下一步的化验判断。
注：
1.奈斯勒试剂称取碘化汞23克，碘化钾1.6克溶于100ml的6mol/l氢氧
化纳溶液中，混合均匀，静置，倾取上清液置棕色瓶内保存。
2.甲酚红指示剂称取0.1克甲酚红溶于10ml乙醇中，溶解后再加乙醇至
100ml。
3.黄豆液用蒸馏水溶解黄豆粉，静置30分钟，取上清液。
4.硝酸银和氯化钡用于定性检验，浓度没有具体要求。
鸡蛋黄粉检验作业指导书
文件制修订记录1 蛋白质测定: 按GB5009.5-2003测定。
1.1原理：蛋白质是含氮的有机化合物。
食品与硫酸和硫酸铜、硫酸钾一同加热消化，使蛋白质分解，分解的氨与硫酸结合生成硫酸铵。
然后碱化蒸馏使氨游离，用硼酸吸收后以硫酸或盐酸标准滴定溶液滴定，根据酸的消耗量乘以换算系数，即为蛋白质的含量。
测定步骤：消化→蒸馏→滴定。
1.2试剂与仪器：1）硫酸铜(催化剂)、硫酸钾（提高硫酸沸点由3300C升至4000C）、浓硫酸. 2）硼酸溶液（20g/L）：20g硼酸（分析纯）溶于1000ml热蒸馏水中，混匀备用。
3）混合指示液：1份甲基红乙醇溶液（1 g/L）与5份溴甲酚绿乙醇溶液（1 g/L）临用时混合。
也可用2份甲基红乙醇溶液（1 g/L）与1份亚甲基蓝乙醇溶液（1 g/L）临用时混合。
4）氢氧化钠溶液（400g/L）：400g 氢氧化钠溶于1000ml蒸馏水中。
5）硫酸标准溶液[c(1/2H2SO4)=0.0500moL/L]或盐酸标准溶液[c(HCI)=0.0500moL/L]。
1.3操作步骤：（1）样品的制备：固体样品0.20—2.00g（如乳粉），半固体样品2.00-5.00g，液体样品10—25ml（如牛奶）。
把样品放入消化瓶中，同时加入6 g硫酸钾，0.2g硫酸铜，20ml浓硫酸。
（2）消化：先微火加热到100。
C左右，以防瓶内泡沫冲出而影响结果，当瓶内发泡停止，稍加大火力。
当内溶物的颜色逐渐转化成透明的淡绿色时，继续消化0.5—1h（若消化瓶内壁沾有碳粒时，进行摇动或待冷却后，用过氧化氢溶液冲下，继续消化至透明的兰绿色为止）。
然后从消化炉上取下放冷，小心加入20ml水。
（3）蒸馏和吸收：方法一：(依据GB/T5009.5-2003)1）将澄清的消化液放冷后，小心移入100ml容量瓶中，以水冲洗数次消化瓶，洗涤液一起并入上述容量瓶中，冷却后用蒸馏水定容至刻度，摇匀。
2）在冷凝器的下端放置一个盛有10 ml硼酸溶液1-2滴甲基红-溴甲酚绿混合指示剂的150mL的锥型瓶（接收瓶）中，使冷凝器下端的玻璃管，在液面以下。
BCA测蛋白的具体操作步骤
一. 原理BCA蛋白浓度测定试剂盒(BCA Protein Assay Kit)是根据目前世界上最常用蛋白浓度检测方法之一BCA法研制而成，实现了蛋白浓度测定的简单，高稳定性，高灵敏度和高兼容性。
检测浓度下限达到25 微克/毫升，最小检测蛋白量达到0.5微克，待测样品体积为1～20微升。
二. 试剂盒组份组份Cat: KGPBCA （250 assay酶标板/50assay 1mL比色杯）蛋白标准溶液（0. 5 μg/μL ）5 mL BCA试剂A 25 mL×2 BCA试剂B 1mL三. 操作步骤A．酶标板操作1. 标准曲线的绘制：取一块酶标板，按照下表加入试剂孔号0 1 2 3 4 5 6 7 蛋白标准溶液（μL）0 1 2 4 8 12 16 20 去离子水（μL）20 19 18 16 12 8 4 0 对应蛋白含量（μg）0 0.5 1.02.0 4.0 6.0 8.0 10.02. 根据样品数量，按50体积BCA试剂A加1体积BCA试剂B（50:1）配制适量BCA工作液，充分混匀；3. 各孔加入200μL BCA工作液；4. 把酶标板放在振荡器上振荡30sec，37℃放置30分钟，然后在562nm下比色测定。
以蛋白含量（μg）为横坐标，吸光值为纵坐标，绘出标准曲线；5. 稀释待测样品至合适浓度，使样品稀释液总体积为20μL，加入BCA工作液200μL，充分混匀，37℃放置30分钟后，以标准曲线0号管做参比，在562nm波长下比色，记录吸光值；6. 根据所测样品的吸光值，在标准曲线上即可查得相应的蛋白含量（μg），除以样品稀释液总体积（20μL），乘以样品稀释倍数即为样品实际浓度（单位：μg/μL）。
B．分光光度计测定1. 标准曲线的绘制：各管按照下表加入试剂孔号0 1 2 3 4 5 6 7 蛋白标准溶液（μL）0 5 10 20 40 60 80 100 去离子水（μL）100 95 90 80 60 40 20 0 对应蛋白含量（μg）02.5 5.0 10.0 20.0 30.0 40.0 50.02. 根据样品数量，按50体积BCA试剂A加1体积BCA试剂B（50:1）配制适量BCA 工作液，充分混匀；3. 各管加入1000μL BCA工作液；4. 各管充分混匀，37℃放置30分钟，然后在562nm下比色测定。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
蛋白粉测试操作规程
1、目的
对公司生产的大米蛋白粉含量进行检测。
2、原理和试剂、仪器设备
2.1原理：
凯氏法测定试样中的含氮量，即在催化剂作用下，用硫酸破坏有机物，使含氮物转化成硫酸铵。
加入强碱进行蒸馏使氨逸出，用硼酸吸收后，再用酸滴定，测出氮含量，将结果乘以换算系数6.25，计算出粗蛋白含量。
2.2试剂：
2.2.1 硫酸（GB 625）：化学纯，含量为98％，无氮。
2.2.2 硫酸铜，5个结晶水（GB 665），
2.2.3硫酸钾（HG 3—920）均为化学纯。
2.2.4 氢氧化钠（GB 629）：化学纯，40％水溶液（m/V）。
2.2.5 硼酸（GB 628）：化学纯，2％水溶液（m/V）。
2.2.6甲基红（HG 3—958）
2.2.7无水乙醇
2.2.8溴甲酚绿（HG 3—1220）
2.2.9盐酸（GB 622，分析纯）
2.2.10 硼酸
2.3仪器设备
2.3.1 分析天平：感量0.0001g。
2.3.2 刻度吸管10 mL。
2.3.3 滴定管：酸式，10、25mL。
2.3.4 凯氏烧瓶：250mL。
2.3.5 凯氏蒸馏装置：半微量水蒸气蒸馏式。
2.3.6 锥形瓶：150、250mL。
2.3.7 容量瓶：1000、500mL。
2.3.8 量筒：10、25mL。
2.3.9 广口瓶1000 mL。
2.3.10 带胶头滴管100 mL。
2.3.11 玻璃棒。
2.3.12 电炉。
2.3.13 电热蒸馏水器。
2.3.14 恒温干燥箱。
2.3.15 茂福炉。
3、药剂配置
3.1消煮、蒸馏药剂配置
3.1.1硼酸蒸馏水混合剂
硼酸20g加蒸馏水定容1000 mL。
3.1.2氢氧化钠蒸馏水混合剂
氢氧化钠400g加蒸馏水定容1000 mL。
3.1.3盐酸蒸馏水混合剂
盐酸9ml加蒸馏水定容1000 mL。
使用前再进行加蒸馏水50%稀释（混合剂10 mL再加蒸馏水10 mL）。
3.2指示剂配置
3.2.1溴甲酚绿----甲基红混合指示剂
溴甲酚绿乙醇混合剂
溴甲酚绿0.5g加乙醇定容100 mL。
甲基红乙醇混合剂
甲基红0.1g加乙醇定容100 mL。
使用时用吸液管把上述两种混合剂各吸10 mL混合均匀，指示剂的有效期为7天，有效期过后要重新再配（颜色为红色）。
3.2.2盐酸标准溶液指示剂
无水碳酸钠蒸馏水混合剂
无水碳酸钠0.2g加蒸馏水50 mL。
无水碳酸钠蒸馏水混合剂再加10滴溴甲酚绿----甲基红混合指示剂（颜色为绿色）。
无水碳酸钠需用茂福炉设制270～300℃的温度烘烤2小时，计时需从温度升到之后。
3.3注意事项
3.3.1上述药剂需要完全混合均匀和在密封的容器存放。
3.3.2在配置药剂时要注意安全。
3.3.3所有使用的容器均需用蒸馏水冲洗。
4、检测流程
4.1消煮
4.1.1配料
样品：硫酸铜：硫酸钾：硫酸=0.5g：0.4g ：6g：25 mL。
用凯式烧瓶装。
4.1.2操作
用电炉加热。
加热时间先用小火加热30分钟到完全溶化再用大火烧
120分钟，消化完成后把液体倒入容量瓶加蒸馏水定容100 mL（颜
色为蓝绿色）。
（需要把烧瓶内的物质冲干净）
4.1.3注意事项
4.1.3.1操作过程中因有硫酸请带胶手套和注意安全。
4.1.3.2在加热过程中会发出有害气体，一定要把气体排出室外。
4.1.3.3所有使用的容器均需用蒸馏水冲洗。
4.2蒸馏
4.2.1操作
4.2.1.1消煮后样品10 mL放入凯式烧瓶用密封胶塞密封，密封塞
上两个玻璃管一个连接凯氏蒸馏装置另一个连接用漏斗，后在电炉
上加热。
在漏斗那方加入氢氧化钠蒸馏水混合剂40 mL（颜色由蓝
绿色变成黑色）。
4.2.1.2在凯氏蒸馏装置的出液管处放置一个锥形瓶，锥形瓶内加
入硼酸蒸馏水混合剂25 mL加入4滴溴甲酚绿----甲基红混合指示
剂（颜色为橙红色）。
4.2.1.3在加热过程中出液管会有液体流出和锥形瓶的硼酸蒸馏水
混合剂25 mL加入4滴溴甲酚绿----甲基红混合指示剂的混合物发
生反应颜色由橙红色变成绿色，这时蒸馏结束。
4.2.2注意事项
4.2.2.1冷凝管的出液管要放置锥形瓶底部。
4.2.2.2冷凝管在使用时要加入自来水冷却。
4.2.2.3所有使用的容器均需用蒸馏水冲洗。
4.3滴定
4.3.1操作
4.3.1.1用滴管装好盐酸混合手滴到蒸馏好的样品内，滴到样品刚
刚由绿色变成红色时结束，记录未滴前后刻度计算出滴出的体积。
4.3.1.2用滴管装好盐酸混合手滴到稀释盐酸标准溶液指示剂内，
滴到样品刚刚由红色变成绿色时结束，记录未滴前后刻度计算出滴
出的体积。
4.3.2注意事项
4.3.2.1操作过程中因有盐酸请带胶手套和注意安全。
4.3.2.2所有使用的容器均需用蒸馏水冲洗。
4.4分析结果表述
4.4.1计算
粗蛋白质（％）=（V2-V1）·c×0.0140×6.25/（m×V＇/V）×100 式中：V2──滴定试样时所需标准酸溶液体积，mL；
V1──滴定空白时所需标准酸溶液体积，mL；
c──盐酸标准溶液浓度，mol/L；
m──试样质量，g；
V──试样分解液总体积，mL；
V＇──试样分解液蒸馏用体积，mL；
0.0140──与1.00mL盐酸标准溶液〔c（HCl）=1.000mol/L〕相当的、以克表示的氮的质量。
6.25──氮换算成蛋白质的平均系数。
4.4.2 重复性
每个试样取两个平行样进行测定，以其算术平均值为结果。
当粗蛋白质含量在25％以上时，允许相对偏差为1％。
当粗蛋白含量在10％～25％之间时，允许相对偏差为2％。
当粗蛋白质含量在10％以下时，允许相对偏差为3％。