富血小板血浆制备技术及其组分的研究进展

合集下载
  1. 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
  2. 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
  3. 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。

富血小板血浆制备技术及其组分的研究进展
付维力李棋李箭
【摘 要】目的总结富血小板血浆(platelet rich plasma,PRP)的制备技术及其组分的研究进展。

方法广泛查阅近年国内外有关PRP的作用机制、制备方法以及组成等相关文献,并进行总结分析。

结果 PRP促进生物学修复作用的发挥依赖于一系列序贯发生的级联细胞分子事件。

PRP中含有高浓度血小板,其激活后释放大量活性因子,还含有少量的白细胞和红细胞。

PRP的制备基于血小板的浓缩技术,不同的制备技术获得的血小板浓度、复苏率和组分也不相同。

结论 PRP的制备技术目前尚无统一标准,不同的制备方法获得的不同成分和不同浓度的PRP,为临床患者选择最适合的个体化PRP产品奠定基础。

【关键词】富血小板血浆制备技术组分
RESEARCH PROGRESS OF PREPARATION AND COMPONENTS OF PLATELET RICH PLASMA/FU Weili, LI Qi, LI Jian. Department of Orthopaedics, West China Hospital, Sichuan University, Chengdu Sichuan, 610041, P.R.China. Corresponding author: LI Jian, E-mail: hxlijian.china@
【Abstract】Objective To review the research progress of the preparation and components of the platelet rich plasma (PRP). Methods The recent literature concerning the biological mechanism, preparation, and components of PRP was analyzed and summarized. Results The biological function of PRP depends on a series of intricate cascade of cellular and molecular events. PRP contains diff erent concentrations of platelets, which would release a large number of the activated molecules, and also contains a small amount of white blood cells and red blood cells. The preparation of PRP is based on platelet concentration. Diff erent preparation techniques would lead to diff erent platelet concentrations, recovery ratios, and components. Conclusion There is no uniform standard for the preparation of PRP. Diff erent preparation methods and technical parameters of PRP will get diff erent components and diff erent concentrations of PRP, which also provide a reference for clinicians to select the most appropriate PRP for individual patient.
【Key words】 Platelet rich plasma Preparation method Component
Foundation items: National Natural Science Foundation of China (81301560); China Post-doctoral Science Foundation (2012M521698)
富血小板血浆(platelet rich plasma,PRP)含有超过生理浓度数倍的血小板,作为一种自体血来源的产品,因获取过程创伤较小、制备简便及具有生物学治疗潜能等方面的优点,被广泛用于组织再生、创面修复、感染治疗和功能重建等领域[1-2]。

PRP不仅能释放大量生长因子和细胞因子发挥重要的生物学修复功能,还参与了血小板凝固和纤维蛋白产生的止血和免疫应答进程。

PRP发挥生物学治疗作用有赖于血小板分泌的蛋白分子和血浆信号蛋白等组分。

目前,对于用于临床的PRP制备技术尚无统一标准,不同制备技术获
DOI:10.7507/1002-1892.20140337
基金项目:国家自然科学基金资助项目(81301560);中国博士后科学基金资助项目(2012M521698)
作者单位:四川大学华西医院骨科(成都 610041)
通讯作者:李箭,教授,博士生导师,研究方向:运动医学/关节镜外科,E-mail: hxlijian.china@
网络出版时间:2014-11-21 17:12:28;网络出版地址:http://www. /kcms/detail/51.1372.R.20141121.1712.020.html 得的PRP所含的血小板浓度和组分也不同,导致生物学治疗效果各异[3-8]。

现就PRP的作用机制、制备、组分等相关研究热点作一总结。

1 PRP的作用机制
PRP生物学作用的发挥依赖于一系列序贯发生的级联细胞分子事件,通过多层次旁分泌/自分泌的蛋白因子介导损伤修复和组织再生过程。

具体作用机制为:PRP激活后,血小板释放大量的活性因子促进组织形成,活性因子首先锚定相关细胞的增殖和迁移,再介导炎性反应和血管发生,然后调控细胞外基质蛋白合成和组织重塑[9]。

PRP能用于组织修复,与其能释放大量信号分子构建有利于组织重建的微环境有关[10]。

此外,PRP包含的生长因子和细胞因子在创伤愈合和组织重塑过程中也发挥了重要作用[11-12]。

这些因子通过激活细胞表面受体来调控基因表达,介导细胞增殖、分化,以及参与基质降解和组织重建过程[13]。

PRP提供的生长因子还能刺激新生血管形成,并为受损组织
的再生增加血供和营养物质,尤其是血供有限和细胞更新较缓慢的肌肉骨骼组织,如软骨、肌腱、韧带等[14]。

新生的血管将带来新的细胞并清除受损组织的碎片。

PRP 促进组织愈合的生物学机制及临床相关性见表1。

表1 PRP 的生物学机制及其临床相关性
Tab.1 The biological mechanism of PRP and their clinical correlations
生物学机制Biological mechanism
涉及的活性分子Active molecule
临床意义Clinical value
止血[15-16]
Ⅶ、Ⅷ、Ⅸ、Ⅹ因子,血管性血友病因子,Ca 2+
和凝血 酶
防止血液丢失和减
少异体输血免疫应答
[17-20]
趋化因子,包括CXCL7、CCL5、MCP-1和IL-8;生长因子,包括 HGF 和TGF-β1
介导炎性反应,控制感染和缓解疼痛血管生成[21-23]
VEGF ,TGF-β1,bFGF ,PDGF ,EGF ,IL-8,血管生成素,CXCL12,基质金属蛋白酶1、2、9,内皮抑素,纤维连接蛋白,血管内皮抑制因子和α2-巨球蛋白
改善血供,治疗缺性血坏死疾病合成代谢[24]
TGF-β1、PDGF 、脑源性神经营养因子、IGF-1促进基质合成,重塑组织结构
2 PRP 的组分
PRP 中含有高浓度血小板,血小板激活后能释放大量活性分子,以及少量的白细胞和红细胞[25]。

血小板是PRP 中最主要成分,其在止血、凝血及炎性反应等生理及病理过程中发挥重要作用。

PRP 中血小板浓度过高或过低都不利于组织愈合,有学者提出最有利于组织愈合的血小板浓度为(1.5~3.0)× 106/μL ,约为全血血小板生理浓度的3~8倍 [26]。

在损伤炎症期后立即使用血小板对组织愈合可发挥最大作用,因此一些学者认为PRP 给药时机选择的重要性甚至高于所含血小板的数量[27]。

PRP 还含有对组织愈合存在潜在促进作用的其他细胞类型。

CD34+细胞是来源于循环血单核细胞的一类干细胞,能为组织愈合创造最佳微环境
[28]。

由于白
细胞对健康组织存在潜在的损伤,PRP 制备时是否保留白细胞仍存在争议。

一方面,白细胞在组织重建和免疫应答过程中发挥重要功能;另一方面,白细胞可能加剧炎性反应,例如在损伤炎症期,白细胞中的中性粒细胞产生过量的基质金属蛋白酶和IL ,可能引起肌肉损伤。

中性粒细胞是对抗病原微生物和局部炎性反应主要的防御系统,它还释放大量的蛋白酶和活性氧来对抗微生物[29]。

另一类白细胞即单核-巨噬细胞,来源于循环血单核细胞,有助于组织损伤至修复过程中
坏死物质的清除。

白细胞如单核和多核粒细胞可锚定局部炎性反应,适当的炎性反应有利于组织修复进程;再者适当浓度的中性粒细胞还能控制感染[30]。

含有一定浓度白细胞的PRP 常用于预防关节置换和其他外科手术操作中可能发生的感染[31]。

PRP 中通常含有少量的红细胞,红细胞的主要功能是携带氧气,有利于组织修复。

此外,PRP 中的PDGF 、VEGF 、bFGF 等蛋白浓度较高[32],因此有学者提出含有特定浓度生长因子的PRP 有利于组织修复[33]。

PDGF 是组织愈合初期最关键的生长因子,能促进相关组织细胞,尤其是干细胞、成纤维细胞和软骨细胞的趋化和有丝分裂,还能趋化炎性细胞产生级联生长因子释放;TGF-β能促进细胞增殖和分化,基质合成;VEGF 与内皮细胞表面受体结合后促进内皮细胞迁移和有丝分裂,刺激血管生成;HGF 能协同VEGF 促进血管化,但其促进骨分化作用尚不明确;bFGF 和IGF 在组织修复、成熟和重塑阶段都发挥重要作用[34-35]。

PRP 中还包括促迁移、黏附、增殖和分化的细胞因子和黏附分子等,如基质细胞衍生因子1α激活介导细胞迁移和归巢到修复区。

PRP 中各种生长因子在组织愈合的不同阶段和不同部位发挥不同的作用,形成错综复杂的信号分子调控网络。

此外,PRP 还能释放一些表现抑制作用的蛋白,如TGF-β1。

PRP 中凝血酶的准确作用尚不明确,凝血酶是纤维蛋白原向纤维蛋白转化的前提条件,还包括血小板分泌生长因子,有研究表明外源性凝血酶激活PRP 可能降低脱钙骨基质诱导成骨的能力[36]。

纤维蛋白也是PRP 重要成分,它能产生一个合适的三维结构,为修复细胞提供良好支架,有利于生长因子的分泌和组织修复,还可收缩创面,促进凝血,刺激组织再生,促进创面闭合[37]。

3 PRP 的制备
3.1 PRP 的分离及采集方法
PRP 的制备是基于血小板浓缩过程,根据全血不同成分的密度经梯度离心分离获得。

首先无菌条件下采集自体静脉血于抗凝管中。

PRP 制备中最常用的抗凝剂是枸橼酸钠,它是一种较弱的钙螯合剂,可通过抑制凝血和血小板功能达到抗凝效果,用于PRP 制备副作用较小[38-39]。

将采集的自体静脉血采用2次离心血浆提取法获得PRP :第1阶段为相对低速离心(100 × g ,离心10 min ),使血浆和血小板与红细胞和白细胞分开;第2阶段为相对高速离心(400 × g ,离心10 min ),进一步浓缩PRP 和分离贫血小板血浆组分,获得最佳的血小板浓度[40]。

离心后,
各成分根据比重
不同分为3层:下层为红细胞,中间层为白细胞和血小板,上层为淡黄色血浆层,吸取中间层混匀即为PRP。

PRP在抗凝状态下一般可保存8 h。

但目前对是否需要进行第2阶段离心仍存在争议,部分商业化产品均无这一步骤[41]。

3.2 血小板激活载体的选择
PRP必须通过激活血小板来释放生长因子,因此血小板激活载体的选择非常重要。

既往研究采用牛凝血酶作为血小板激活载体,但近年研究表明其所含的抗牛凝血因子V抗体可与人凝血因子V交叉反应,引起凝血功能障碍,因此已不再使用[42]。

目前较常用的血小板激活载体为氯化钙,其优点是安全、无朊蛋白或病毒暴露风险,但激活速度较慢,活化血小板至少需要20 min[43]。

近年来,自体凝血酶试剂盒被认为是安全、快速、高效的血小板激活载体,它是通过将10%氯化钙和制备的少量PRP或血液混合装于带有负电荷粒子(例如玻璃纤维)的注射器中,室温条件下孵育10~15 min,然后过滤去除细胞和纤维蛋白成分,即可作为血小板激活载体用于激活血小板。

采用该方法制备的自体凝血酶,常通过双针筒注射器与PRP同时注射[36],经自体凝血酶活化血小板后,TGF-β
1
和PDGF-AB等生长因子会立即释放[44]。

3.3 不同制备方法对PRP组分的影响
目前,对于用于临床的PRP产品的制备技术尚无
统一标准,主要涉及3个基本技术:①重力血小板封存(gravitationalplatelet sequestration,GPS)技术;②标准的细胞分离技术;③自体选择性细胞过滤技术(血小板过滤)。

不同方法制备的PRP,其组分有一定差异[45-47]。

目前已有多种商业化PRP制备装置,获得的血小板浓度、复苏率和组分均不相同(表2)。

任何PRP产品最终的血小板浓度取决于采集全血的体积、制备系统、离心力与温度和时间、血小板复苏率、悬浮一定浓度血小板的血浆体积、白细胞和/或红细胞的相对浓度、凝血酶的沾染、保存方法与时间,此外还与患者个体因素有关,如外周静脉血的参数、有无并发症、年龄和循环血中生长因子和细胞组分等,如血脂高将增加血小板浓度[48- 49]。

4展望
目前,不同的制备方法和技术参数可获得不同组分和不同浓度的PRP,为临床医生根据不同患者需要选择最适合的PRP产品奠定了基础。

除了制备方法外,PRP的有效性还取决于使用方法、患者个体差异及适应证的选择等因素。

相信随着这些问题的解决,PRP 将更好地向临床转化。

5参考文献
1 Arshdeep, Kumaran MS. Platelet-rich plasma in dermatology: boon or
a bane? Indian J Dermatol Venereol Leprol, 2014, 80(1): 5-14.
表2 PRP的制备装置、血小板浓度、复苏率和组分
Tab.2 PRP preparation devices, platelet concentration, recovery ratio, and components
制备装置Device
增加的血小板浓度
Platelet concentration increase
复苏率
Recovery ratio
组分
Component
Biomet GPS TM 3.2倍70%富血小板血浆,白细胞,少量红细胞Harvest® 4.6倍65%~72%富血小板血浆,白细胞,少量红细胞
SmartPrep2 4.0倍—富血小板血浆,白细胞,少量红细胞
BMAC TM 4.0倍—富血小板血浆,白细胞,少量红细胞Symphony TMⅡ——富血小板血浆,白细胞,少量红细胞3i PCCS——富血小板血浆,白细胞,少量红细胞
Haemonetics®4~6倍75%浓缩血小板,没有血浆、白细胞和红细胞Angel TM 4.3倍70%浓缩血小板,白细胞,少量红细胞MAGELLAN® 5.1倍76%浓缩血小板,白细胞,少量红细胞
AutoloGel System1~2倍78%低浓度血小板血浆,少量白细胞Smart Prep——低浓度血小板血浆,少量白细胞
Cascade Medical FIBRINET System1~2倍78%富血小板纤维蛋白膜Choukroun1~2倍70%富血小板纤维蛋白,白细胞
GenesisCS6倍68%浓缩血小板,白细胞
Secquire 1.6倍31%血小板和血浆
Arthrex ACP®——血小板和血浆
Vivostat®6倍65%富血小板纤维蛋白S&N’s Caption TM 4.3倍—浓缩血小板,没有血浆
ATR®-curasan Set ——浓缩血小板,没有血浆
2 Dhillon MS, Behera P, Patel S, et al. Orthobiologics and platelet rich
plasma. Indian J Orthop, 2014, 48(1): 1-9.
3 Magalon J, Bausset O, Serratrice N, et al. Characterization and com-
parison of 5 platelet-rich plasma preparations in a single-donor model.
Arthroscopy, 2014, 30(5): 629-638.
4 Andia I, Maff ulli N. Platelet-rich plasma for muscle injury and tendi-
nopathy. Sports Med Arthrosc, 2013, 21(4): 191-198.
5 Charousset C, Zaoui A, Bellaïche L, et al. Does autologous leukocyte-
platelet-rich plasma improve tendon healing in arthroscopic repair of large or massive rotator cuff tears? Arthroscopy, 2014, 30(4): 428-435.
6 Braun HJ, Wasterlain AS, Dragoo JL. The use of PRP in ligament and
meniscal healing. Sports Med Arthrosc, 2013, 21(4): 206-212.
7 Abrams GD, Frank RM, Fortier LA, et al. Platelet-rich plasma for ar-
ticular cartilage repair. Sports Med Arthrosc, 2013, 21(4): 213-219.
8 Willits K, Kaniki N, Bryant D. The use of platelet-rich plasma in or-
thopedic injuries. Sports Med Arthrosc, 2013, 21(4): 225-230.
9 Andia I, Abate M. Platelet-rich plasma: underlying biology and clinical
correlates. Regen Med, 2013, 8(5): 645-658.
10 Andia I, Sanchez M, Maffulli N. Tendon healing and platelet-rich
plasma therapies. Expert Opin Biol Ther, 2010, 10(10): 1415-1426.
11 Russell RP, Apostolakos J, Hirose T, et al. Variability of platelet-rich
plasma preparations. Sports Med Arthrosc, 2013, 21(4): 186-190.
12 Boswell SG, Cole BJ, Sundman EA, et al. Platelet-rich plasma: a milieu
of bioactive factors. Arthroscopy, 2012, 28(3): 429-439.
13 Browning SR, Weiser AM, Woolf N, et al. Platelet-rich plasma increas-
es matrix metalloproteinases in cultures of human synovial fi broblasts.
J Bone Joint Surg (Am), 2012, 94(23): e1721-e1277.
14 Sánchez M, Anitua E, Azofra J, et al. Comparison of surgically repaired
Achilles tendon tears using platelet-rich fi brin matrices. Am J Sport Med, 2007, 35(2): 245-251.
15 Bloomfi eld MR, Klika AK, Molloy RM, et al. Prospective randomized
evaluation of a collagen/thrombin and autologous platelet hemostatic agent during total knee arthroplasty. J Arthroplasty, 2012, 27(5): 695-702.
16 Diiorio TM, Burkholder JD, Good RP, et al. Platelet-rich plasma does
not reduce blood loss or pain or improve range of motion after TKA.
Clin Orthop Relat Res, 2012, 470(1): 138-143.
17 Sheth U, Simunovic N, Klein G, et al. Effi cacy of autologous platelet-
rich plasma use for orthopaedic indications: a meta-analysis. J Bone Joint Surg (Am), 2012, 94(4): 298-307.
18 Cervellin M, de Girolamo L, Bait C, et al. Autologous platelet-rich
plasma gel to reduce donor-site morbidity after patellar tendon graft harvesting for anterior cruciate ligament reconstruction: a random-ized, controlled clinical study. Knee Surg Sports Traumatol Arthrosc, 2012, 20(1): 114-120.
19 Sánchez M, Fiz N, Azofra J, et al. A randomized clinical trial evaluat-
ing plasma rich in growth factors (PRGF-Endoret) versus hyaluronic acid in the short-term treatment of symptomatic knee osteoarthritis.
Arthroscopy, 2012, 28(8): 1070-1078.
20 Mei-Dan O, Carmont MR, Laver L, et al. Platelet-rich plasma or hyal-
uronate in the management of osteochondral lesions of the talus. Am J Sports Med, 2012, 40(3): 534-541.
21 Dionyssiou D, Demiri E, Foroglou P, et al. The eff ectiveness of intral-
esional injection of platelet-rich plasma in accelerating the healing of chronic ulcers: an experimental and clinical study. Int Wound J, 2013, 10(4): 397-406.
22 Martinez-Zapata MJ, Marti-Carvajal AJ, Solà I, et al. Autologous plate-
let-rich plasma for treating chronic wounds. Cochrane Database Syst Rev, 2012. DOI: 10. 1002/14651858. CD006899. pub2.
23 Guadilla J, Fiz N, Andia I, et al. Arthroscopic management and plate-
let-rich plasma therapy for avascular necrosis of the hip. Knee Surg Sports Traumatol Arthrosc, 2012, 20(2): 393-398.
24 Cervelli V, Scioli MG, Gentile P, et al. Platelet-rich plasma greatly
potentiates insulin-induced adipogenic differentiation of human adipose-derived stem cells through a serine/threonine kinase Akt-dependent mechanism and promotes clinical fat graft maintenance.
Stem Cells Transl Med, 2012, 1(3): 206-220.
25 Arnoczky SP, Shebani-Rad S. The basic science of platelet-rich plasma
(PRP): what clinicians need to know. Sports Med Arthrosc, 2013, 21(4): 180-185.
26 Giusti I, Rughetti A, D’Ascenzo S, et al. Identifi cation of an optimal
concentration of platelet gel for promoting angiogenesis in human en-dothelial cells. Transfusion, 2009, 49(4): 771-778.
27 Rodeo SA, Delos D, Williams RJ, et al. The eff ect of platelet-rich fi brin
matrix on rotator cuff tendon healing: a prospective, randomized clinical study. Am J Sport Med, 2012, 40(6): 1234-1241.
28 Nguyen RT, Borg-Stein J, McInnis K. Applications of platelet-rich
plasma in musculoskeletal and sports medicine: an evidence-based ap-proach. PM R, 2011, 3(3): 226-250.
29 Lopez-Vidriero E, Goulding KA, Simon DA, et al. The use of platelet-
rich plasma in arthroscopy and sports medicine: optimizing the heal-ing environment. Arthroscopy, 2010, 26(2): 269-278.
30 Li H, Li B. PRP as a new approach to prevent infection: preparation
and in vitro antimicrobial properties of PRP. J Vis Exp, 2013. DOI: 10.
3791/50351.
31 Moojen DJ, Everts PA, Schure RM, et al. Antimicrobial activity of
platelet-leukocyte gel against Staphylococcus aureus. J Orthop Res, 2008, 26(3): 404-410.
32 Amable PR, Carias RB, Teixeira MV, et al. Platelet-rich plasma prepa-
ration for regenerative medicine: optimization and quantifi cation of cytokines and growth factors. Stem Cell Res Ther, 2013, 4(3): 67.
33 Dhillon RS, Schwarz EM, Maloney MD. Platelet-rich plasma therapy—
future or trend? Arthritis Res Ther, 2012, 14(4): 219.
34 Hall MP, Band PA, Meislin RJ, et al. Platelet-rich plasma: current
concepts and application in sports medicine. J Am Acad Orthop Surg, 2009, 17(10): 602-608.
35 Mishra A, Harmon K, Woodall J, et al. Sports medicine applications of
platelet rich plasma. Curr Pharm Biotechnol, 2012, 13(7): 1185-1195.
36 Han B, Woodell-May J, Ponticiello M, et al. The effect of thrombin
activation of platelet-rich plasma on demineralized bone matrix osteo-inductivity. J Bone Joint Surg (Am), 2009, 91(6): 1459-1470.
37 吕汝举, 刘美静. 富血小板血浆 (PRP) 治疗技术及应用. 中国医疗器
械信息, 2013, 19(10): 50-55.
38 Pietrzak WS, Eppley BL. Platelet rich plasma: biology and new technol-
ogy. J Craniofac Surg, 2005, 16(6): 1043-1054.
39 May JA, Heptinstall S. Eff ects of anticoagulants used during blood
collection on human platelet function. Platelets and Megakaryocytes, 2004, 272: 3-11.
40 Perez AG, Lana JF, Rodrigues AA, et al. Relevant aspects of centrifu-
gation step in the preparation of platelet-rich plasma. International Scholarly Research Notices, 2014, 2014: 1-8.
41 Mazzocca AD, McCarthy MB, Chowaniec DM, et al. Platelet-rich plas-
ma diff ers according to preparation method and human variability. J Bone Joint Surg (Am), 2012, 94(4): 308-316.
42 Anitua E, Andia I, Ardanza B, et al. Autologous platelets as a source of
proteins for healing and tissue regeneration. Throm Haemost, 2004, 91(1): 4-15.
43 Man D, Plosker H, Winland-Brown JE. The use of autologous platelet-
rich plasma (platelet gel) and autologous platelet-poor plasma (fi brin glue) in cosmetic surgery. Plast Reconstr Surg, 2001, 107(1): 229-239.
44 Harrison S, Vavken P, Kevy S, et al. Platelet activation by collagen pro-
vides sustained release of anabolic cytokines. Am J Sports Med, 2011, 39(4): 729-734.
45 Kevy SV, Jacobson MS. Comparison of methods for point of care
preparation of autologous platelet gel. J Extra Corpor Technol, 2004, 36(1): 28-35.
46 Hsu WK, Mishra A, Rodeo SR, et al. Platelet-rich plasma in orthopae-
dic applications: evidence-based recommendations for treatment. J Am Acad Orthop Surg, 2013, 21(12): 739-748.
47 Alsousou J, Ali A, Willett K, et al. The role of platelet-rich plasma in
tissue regeneration. Platelets, 2012, 24(3): 173-182.
48 Boswell SG, Schnabel LV, Mohammed HO, et al. Increasing platelet
concentrations in leukocyte-reduced platelet-rich plasma decrease col-lagen gene synthesis in tendons. Am J Sports Med, 2014, 42(1): 42-49.
49 Dohan Ehrenfest DM, Bielecki T, Jimbo R, et al. Do the fi brin architec-
ture and leukocyte content infl uence the growth factor release of plate-let concentrates? An evidence-based answer comparing a pure platelet-rich plasma (P-PRP) gel and a leukocyte- and platelet-rich fi brin (L-PRF). Curr Pharm Biotechno, 2012, 13(7): 1145-1152.
(收稿:2014-03-12 修回:2014-10-11)
(本文编辑:刘丹)
·读者·作者·编者·
本刊入编《中国核心期刊要目总览》(2011年版)
接《中文核心期刊要目总览》2011年版编委会通知,依据文献计量学的原理和方法,经研究人员对相关文献的检索、统计和分析,以及学科专家评审,本刊入编《中文核心期刊要目总览》2011年版(第六版)之临床医学/特种医学类的核心期刊。

《中文核心期刊要目总览》核心期刊的评选是对各种刊物在一定时期内所刊载论文的学术水平和学术影响力进行综合评价,采用定量评价和定性评审相结合的方式。

定量评价指标体系采用了被索量、被摘量、被引量、他引量、被摘率、影响因子、被国内外重要检索工具收录、基金论文比、Web下载量等9个评价指标,选作评价指标统计源的数据库及文摘刊物达60余种,统计到的文献量共计221 177余万篇次,涉及期刊14 400余种。

参加核心期刊评审的学科专家达8 200多位。

经过定量筛选和专家定性评审,从我国正在出版的中文期刊中评选出1 982种核心期刊。

再次入编《中文核心期刊要目总览》是对我刊学术质量的认可,也标志我刊学术质量在全国同类科技期刊中走到了前列;同时对我刊进一步扩大学术影响,提高办刊质量提出了更高层次的要求。

在此诚挚感谢各位读者、作者、编委对我刊的关心与支持,希望在今后的工作中,我们一起努力争取更多进步。

本刊编辑部
2014-11-14。

相关文档
最新文档