细胞冻存细胞生物学实验报告
实验十一、细胞的冻存与复苏
实验十一、细胞的冻存与复苏细胞的冻存与复苏是一种有效的保存和传播生物样品的方法。
该方法可以通过冷冻和贮存，将生物样品保存到未来任意时候使用。
本实验将介绍细胞的冻存和复苏实验步骤及注意事项。
实验步骤：1. 细胞的收集和分装首先，需要使用无菌采集工具收集待冻存细胞，如细胞培养板上的细胞。
然后，将细胞分装到无菌冷冻管中。
注意，每个冷冻管中应该放入适量的细胞，并确保其密封性。
2. 冷冻将装有细胞的冷冻管放入无菌水浴中，降温至-80℃或更低温度。
然后，将冷冻管转移到液氮罐中，进行长期保存。
3. 冻存的解除和复苏在复苏前，需要进行以下步骤：① 快速去除细胞上的冷冻剂：将冷冻管直接转移到37℃预热好的培养基中，震荡或轻轻地摇晃，使其中的冷冻剂快速融化。
② 细胞生长：将冻存细胞转移到新的培养板中，并添加适量的培养基。
然后将培养板放入培养箱中，进行细胞的生长。
注意事项：1. 冷冻剂的熟练使用DMSO是一种常用的冷冻剂，其作用是帮助细胞避免冷冻伤害。
然而，DMSO也具有一定的毒性。
因此，在使用过程中，需要注意浓度的控制以及操作时的保护措施。
2. 细胞处理的无菌性细胞的无菌性是决定细胞冻存和复苏成功的关键。
在操作期间，需要保持实验环境的无菌性，并避免细胞样品受到污染。
3. 冷冻剂和液氮的注意事项冷冻剂和液氮是极冷的物质，具有很强的腐蚀性和危险性。
在操作过程中，需要戴上手套和护目镜等防护器具，避免皮肤接触。
同时，要注意放置位置，避免冷冻剂和液氮的泄漏。
总结：细胞的冻存和复苏是一种非常有用并且实践的实验方法。
如果正确操作和保护，可以保证样品的保存和传播，并且为后续的实验提供便利。
实验6_细胞冻存与复苏
『超低温冰箱』
制冷系统
基本采用复叠式制冷的工作原理，选用两台全封闭 压缩机作为高、低温级压缩机使用
外观
卧式，立式
-86℃超低温冰箱使用
使用90～95%能力，以延长机器寿命；设置使用温 度为-76℃
实验6 细胞冻存与复苏
1- 细胞冻存操作步骤
准备 冻存液（完全培养基配制的10%DMSO 溶液）配制 对数生长期细胞的吹打（消化）、收集、离心和计数（或估算）
1000rpm6min，去上清
用冻存液悬浮细胞使密度在～106/ml 左右 分装到冻存管
用记号笔在冻存管上加写标识（细胞株号+日期+操作者） 无菌分装到1.8ml 冻存管，装量0.5～1.0ml/支 冻存
重新悬浮 用5×体积的完全培养基悬浮细胞，铺放培养孔或培养瓶内，镜检
培养与观察 用记号笔加写标识，镜检观察 置CO2 培养箱内，培养18～24h后镜检细胞活性
3- 工作总结与评价
细胞冻存操作中影响细胞活性的因素分析 细胞复苏操作中影响细胞活性的因素分析 超低温冰箱使用与维护要点分析
影响保温的因素：门霜和冰块 使用过程中，温度升高到-60℃时必须关闭箱门
2- 细胞复苏操作步骤
准备 超净工作台消毒灭菌，无菌器材准备 准备37℃水浴 明确冻存细胞所在冻存管的存放位置，确认冻存18~24h以上
融化 在水浴中充分搅拌使在～1min 融化彻底
离心去除冻存液 无菌操作，10×体积的培养基稀释，1000rpm6miБайду номын сангаас，去上清，分 散沉淀
谢谢观赏
实验四细胞的冷冻保存
冰晶对细胞的损伤
细 胞 脱 水
电解质浓度变化 pH变化 蛋白质变性 细胞超微结构改变
细
胞
冰
晶
溶酶体膜透性变化 线粒体功能障碍
水解酶释出
损
核内DNA构型和生物学行为的变化
伤
冷冻保存原则
冷冻过程要缓慢。
冻存细胞必须处在对数生长期 细胞浓度控制在：1×107－5×107/ml 使用高浓度血清或蛋白保护剂 使用合适的细胞冷冻保护剂，以保护细胞在冷冻 过程中免受冰晶破坏。
实验四 细胞的冷冻保存
一、实验目的
掌握细胞冻存与复苏的基本原理、方法和要领
熟练进行细胞冻存与复苏的操作
二、实验原理
细胞冻存的主要目的：
保存种子细胞。 减少细胞被污染的危险性。
减少细胞因传代培养而引起的遗传变异和 形态改变。
避免有限细胞系出现衰老或恶性转化。 降低人力和物力。
简易冷冻程序
细胞冻存管放入泡Biblioteka 小盒纱布小袋中放入-70℃冰箱
3h
细胞冻存管放入
液氮表面上停留30min 放入-20℃冰箱
直接投入液氮 3h 细胞冻存管放入
细胞冻存管放入泡沫小盒 纱布小袋中 （30－40min）
放入液氮灌的液氮蒸汽中，逐渐下降到液氮表面 停留30min后，直接投入液氮中 液氮罐口缓慢放入，按-1℃/min，在30－ 停留30min
细胞冻存管装入纱布小袋
40min内到达液氮表面
投入液氮
液氮
从液体向气体转化的过程中产生的深低温 -196℃
本次冷冻程序
细胞冻存管用厚棉
花包裹，放入塑料
盒中或泡沫盒中，
直接投入-70 ℃超 低温冰箱中。
细胞冻存
细胞冻存
1.实验前准备：细胞室及工作台紫外线照射15min；
培养液、PBS、胰酶、小牛血清、DMSO、恒温水浴箱37℃预热，回温培养液和PBS。
2. 冻存前24-48h更换半量或全量培养基，使细胞处于指数生长期，约为80–90％致密度。
3. 配制冷存液（使用前配制）：
将DMSO加入胎牛血清(FBS)中，最后浓度为10％，混合均匀，置于室温下待用。
1mL冻存液=900uLFBS+100uLDMSO（FBS:DMSO=9:1）
4. 用吸管吸弃培养皿中细胞培养液，PBS清洗2遍吸出冲洗液，加入胰蛋白酶消化(6cm培
养皿0.5mL胰酶）
5. 显微镜下观察，细胞回缩成圆形，细胞上有亮点，大部分细胞飘起，加入3mL含血清培
养液终止消化，吸管吸取培养液吹打使细胞成为均匀分散的细胞悬液，转移入15mL离心管，（另一种做法：显微镜下观察，细胞回缩成圆形，细胞上有亮点，少部分细胞飘起，吸弃消化液，加适量含血清培养液，轻轻吹打，使细胞脱落，成为均匀分散的细胞悬液，调整细胞浓度为1-5*106cells/mL,分装）
6. 取50uL细胞悬浮液计数细胞浓度及冻前存活率离心，其余离心，1000rpm，5min
7. 弃上清液，缓慢逐滴加入冻存液，并晃动离心管，制成细胞冻存悬液，使细胞浓度为1～
5*106cells/ml，轻轻吹打是细胞分散均匀，分装于已标示完全的冻存管中，1ml/管
8. 冷存管置于4℃10min—-20℃30min—-80℃16～18h(或隔夜)---液氮槽长期储存。
（-20℃不要超过1h）。
生物冷冻技术实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解生物冷冻技术的原理和方法。
2. 掌握生物样本冷冻保存的操作步骤。
3. 评估冷冻保存对生物样本的影响。
二、实验原理生物冷冻技术是一种利用低温环境减缓生物样本内细胞和分子活动的技术，从而实现生物样本长时间保存的技术。
主要方法包括液氮冷冻、干冰冷冻、低温冰箱保存等。
低温环境可以降低生物分子的代谢速率，减缓细胞衰老和死亡，保持生物样本的活力、功能和完整性。
三、实验材料1. 生物样本：细菌、细胞、组织等。
2. 冷冻设备：液氮罐、干冰、低温冰箱等。
3. 试剂：固定液、解冻液、无菌水等。
4. 实验器具：冷冻管、离心管、移液器、显微镜等。
四、实验步骤1. 准备工作（1）将生物样本置于无菌环境中，避免污染。
（2）将所需试剂和器具准备齐全。
2. 生物样本冷冻保存（1）液氮冷冻：将生物样本置于液氮中，使其快速冷冻至-196℃。
（2）干冰冷冻：将生物样本置于干冰中，使其缓慢冷冻至-78℃。
（3）低温冰箱保存：将生物样本置于低温冰箱中，使其缓慢冷冻至-20℃。
3. 生物样本解冻（1）液氮冷冻样本：将样本从液氮中取出，立即置于37℃水浴中解冻。
（2）干冰冷冻样本：将样本从干冰中取出，置于室温下自然解冻。
（3）低温冰箱保存样本：将样本从低温冰箱中取出，置于室温下自然解冻。
4. 评估冷冻保存对生物样本的影响（1）观察样本外观，记录细胞形态、活力等变化。
（2）进行显微镜观察，记录细胞核、细胞质等结构变化。
（3）进行生化实验，检测细胞内酶活性、蛋白质表达等指标。
五、实验结果与分析1. 外观观察：冷冻保存后的生物样本，细胞形态基本完整，活力较高。
2. 显微镜观察：冷冻保存后的生物样本，细胞核、细胞质等结构基本完好，未出现明显损伤。
3. 生化实验：冷冻保存后的生物样本，酶活性、蛋白质表达等指标基本正常。
六、实验结论1. 生物冷冻技术可以有效保存生物样本的活力、功能和完整性。
2. 液氮冷冻、干冰冷冻、低温冰箱保存等不同冷冻方法对生物样本的影响较小，可根据实际情况选择合适的冷冻保存方法。
细胞冻存
细胞工程实验报告实验课程：细胞工程实验内容：细胞冻存一实验目的掌握低温液氮冻存的原理，学习细胞缓慢冻存实验方法二实验器具（冻存罐）（冻存管）（冻存管托）三实验原理低温液氮冻存贮存细胞是细胞培养室常规通用技术。
这不仅避免了在培养器具、培养液及各种准备工作方面人力物力时间的大量耗费，也避免增加污染的机会；并防止了在多次传代和体外环境变化时细胞发生遗传性状的不稳定。
液氮中温度可达-196℃，细胞贮存的时间理论上是无限的，解冻后细胞仍能生长繁殖。
为培养工作提供了极大的方便。
在不加任何保护剂的情况下直接冻存细胞时，细胞内外环境中的水分会很快结成冰晶，能导致细胞发生一系列不良反应如脱水、电解质浓度增高、渗透压改变pH改变、蛋白质变性、机械损伤等，最终导致细胞死亡。
如向细胞培养液中加入一些保护剂，可使冰点降低，在缓慢的冻结条件下，使细胞内水分在冻结前透出细胞外，减少细胞内冰晶的形成，避免上述现象的发生甘油和二甲亚砜是目前最常使用的保护剂，它们对细胞无明显毒性，分子量小，溶解度大，易穿透细胞，提高细胞膜对水的通透性，而对细胞内酶和蛋白质等则具有一定的保护作用。
保护剂的使用浓度一般在5%～15%。
降温方法：使用降温仪：以-1～-2℃/min的降温速率→-25 ℃以下→以-5～-10℃/min的降温速率→-100 ℃→迅速浸入液氮中。
分步降温：4 ℃放置30～60 min →-70～-80 ℃放置1～2天→迅速浸入液氮中。
四实验步骤（一）细胞悬液准备75%酒精棉球消毒双手、工作台面、培养瓶和试管等。
取对数生长期的细胞，将培养液倒入废液缸中。
向培养瓶内加入3ml PE液，平放轻摇。
向培养瓶内加入0.3ml的0.25%胰蛋白酶消化液，轻摇。
拍打悬浮后，制备成单细胞悬液（内含活细胞和死细胞）。
（二）冻存取对数生长期细胞，在冻存前24小时换培养液一次。
按上步骤制成细胞悬液。
在细胞悬液中加入2ml冻存液，吹吸数次使细胞均匀悬浮，→取0.5～0.8 ml分装入细胞冻存管内，密封，在管上做好标记，放于小试管架上，→放入4～5℃冷藏箱中30～45分钟，使冷冻保护剂充分渗入细胞内，与细胞达到平衡，→放入-75℃，1天，→快速放入液氮罐的试管托内，沉入液氮中。
细胞生物学实验
细胞生物学实验
一、细胞培养
1、细胞复苏
将冻存有细胞的冻存管从－70ºC 冰箱中取出，迅速置于已预热37ºC的水浴箱中不断摇动使冻存液在1 min 内解冻。
在超净工作台内吸出细胞悬液并滴加在含6 ml DMEM 培养基的离心管中，放入离心机1 000 rpm 离心6 min, 弃上清液，向离心管中加入DMEM 培养基6 ml 吹打混匀制成细胞悬液种于培养瓶中, 放入37ºC 5%CO2培养箱中继续培养，24 h 内换液，以除去残存冻存液和未贴壁细胞。
2、细胞培养与传代
当细胞长满培养瓶底约85%～90%时弃去原培养液，用PBS 轻洗2～3 次，弃去PBS，加入适量胰蛋白酶液，在倒置显微镜下观察，若胞质回缩，细胞间不再连接成片时，吸弃胰蛋白酶液，加入DMEM 培养基终止消化，轻轻吹打直至细胞全部脱落悬浮，将细胞悬液吸出分装至2~3 个培养瓶中，再加入适量DMEM 培养基和胎牛血清，血清浓度为10%，放入培养箱中静置培养。
传代第2 天吸出原培养
液，加入新培养液。
细胞约2~3 天传代1 次。
3、细胞冻存
细胞冻存前一天更换培养基，观察细胞生长情况，使细胞处于指数生长期。
按照细胞传代的方法收集，去少量细胞悬液在倒置显微镜下进行细胞计数。
然后将细胞悬液吸入离心管，1000 rpm 离心6min，弃上清，吸取细胞冻存液，吹打混匀细胞，使细胞密度为1×107个/ml，将细胞悬液吸入冻存管中严密封口，冻存管做标记。
先将冻存管放入4ºC 冰箱30 min，接着置于-20ºC 冰箱1 h，再移入超低温冰箱中保存。
细胞冻存 细胞生物学实验报告
细胞生物学实验报告细胞冻存姓名：学号：班级：专业：同组成员：一、实验原理在低于-70℃的超低温条件下，由机体内部的生化反应极其缓慢，甚至终止，因此采用适当的方法将生物材料降至超低温条件，即可使生命活动固定在某一阶段而不衰老死亡。
当以适当的方法将冻存的生物体恢复至常温时，其内部的生化反应可恢复正常。
冷冻保存就是将体外培养物悬浮在加有或不加冷冻保存液的溶液中，以一定的冷冻速率降至零下某一温度，并在此温度下对其进行长期保存的过程。
水在低于零度的条件下→结冰→细胞死亡。
如向培养液加入保护剂，可使冰点降低。
在缓慢的冻结条件下，能使细胞内水份在冻结前透出细胞。
贮存在－130℃以下的低温中能减少冰晶的形成。
目前常用的保护剂为二甲亚砜（DMSO）和甘油，它们对细胞无毒性，分子量小，溶解度大，易穿透细胞。
最适冷冻速度：不同细胞的最适冷冻速度不同。
标准冷冻的开始速度为－1至－2℃/min，当温度低于－25℃时，可加速，到－80℃时可直接加入液氮中（－196℃）。
复苏细胞时则直接将细胞的冻存管放到40℃热水中迅速解冻。
二、实验目的1、掌握无菌操作技术。
2、.掌握细胞冻存的一般方法与步骤。
3、掌握培养细胞的消化方法。
4、了解在倒置相差显微镜下观察培养细胞的形态和生长状况。
三、实验仪器、材料、试剂及用品1、仪器：超净工作台、CO2培养箱、倒置相差显微镜2、材料：人宫颈癌HeLa 细胞3、试剂：胰酶、DMEM培养基、血清、DMSO、抗生素4、用品：培养瓶，试管，移液管，巴斯德吸管，废液缸，75％酒精棉球，酒精灯四、实验步骤1、穿好实验服，进入无菌室前穿鞋套、洗手。
2、倒置显微镜下观察细胞形态，确定细胞是否需要传代及细胞需要稀释的倍数。
将培养用液置370C下预热。
3、无菌室及超净台紫外线照射，关闭超净台紫外灯, 打开可见光灯开关，打开抽风机，用75%酒精擦双手消毒，再用酒精棉擦拭桌面。
4、点燃酒精灯；取出无菌试管，巴士德吸管和刻度吸管；安上橡皮头；过酒精灯火焰略烧后插在无菌试管内。
实验七细胞的冻存和复苏6
实验7 细胞的冻存和复苏【实验原理】在不加任何条件下直接冻存细胞时，细胞内和外环境中的水都会形成冰晶，能导致细胞内发生机械损伤、电解质升高、渗透压改变、脱水、PH改变、蛋白变性等，能引起细胞死亡。
如向培养液加入保护剂，可使冰点降低。
在缓慢的冻结条件下，能使细胞内水份在冻结前透出细胞。
贮存在－130℃以下的低温中能减少冰晶的形成。
细胞复苏时速度要快，使之迅速通过细胞最易受损的－5～0℃，细胞仍能生长，活力受损不大。
目前常用的保护剂为二甲亚砜（DMSO）和甘油，它们对细胞无毒性，分子量小，溶解度大，易穿透细胞。
【实验目的】掌握细胞冻存的方法，熟练进行细胞冻存与复苏操作。
【仪器、材料及试剂】1．仪器：4℃冰箱，-70℃冰箱，液氮罐，离心机，水浴锅，微量加样器等2．材料：冻存管（塑料螺口专用冻存管或安瓿瓶）、离心管、吸管等。
3．试剂：0.25％胰酶、培养基、含保护剂的培养基（即冻存液）等。
【操作步骤】1．冻存①消化细胞（同实验二），将细胞悬液收集至离心管中。
②1000rpm离心10分钟，弃上清液。
③沉淀加含保护液的培养，计数，调整至5×106/ml左右。
④将悬液分至冻存管中，每管1 ml。
⑤将冻存管口封严。
如用安瓿瓶则火焰封口，封口一定要严，否则复苏时易出现爆裂。
⑥贴上标签，写明细胞种类，冻存日期。
冻存管外拴一金属重物和一细绳。
⑦按下列顺序降温：室温→4℃（20分钟〕→冰箱冷冻室（30分钟）→低温冰箱（－30℃1小时）→气态氮（30分钟）→液氮。
注意：操作时应小心，以免液氮冻伤。
液氮定期检查，随时补充，绝对不能挥发干净，一般30立升的液氮能用1～1.5月。
2．复苏①从液氮中取出冻存管、迅速置于37℃温水中并不断搅动。
使冻存管中的冻存物在1分钟之内融化。
②打开冻存管，将细胞悬液吸到离心管中。
③1000rpm离心10分钟，弃去上清液。
④沉淀加10ml培养液，吹打均匀，再离心10分钟，弃上清液。
⑤加适当培养基后将细胞转移至培养瓶中，37℃培养，第二天观察生长情况。
动物冻存实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 掌握动物细胞冻存的技术操作流程。
2. 熟悉冻存液的配置及使用方法。
3. 学习细胞复苏的技巧，确保细胞活性。
二、实验原理动物细胞冻存是利用低温环境使细胞暂时进入休眠状态，以延长细胞寿命和保持其生物活性。
通过冻存技术，可以在需要时复苏细胞，继续进行相关实验。
三、实验材料1. 动物细胞悬液2. 冻存液：10% DMSO（二甲基亚砜）+ 90% 胎牛血清3. 冷冻管4. 真空冷冻仪5. 恒温箱6. 移液器7. 离心机四、实验步骤1. 细胞计数：取适量细胞悬液，用台盼蓝染色，进行细胞计数，确定细胞浓度。
2. 配制冻存液：按照10% DMSO + 90% 胎牛血清的比例，配制冻存液。
3. 细胞重悬：将细胞悬液按照所需浓度进行重悬，使细胞均匀分布。
4. 分装细胞：将重悬后的细胞分装至冷冻管中，每管约1-2ml。
5. 冷冻：将冷冻管置于真空冷冻仪中，缓慢降温至-80℃。
6. 液氮保存：将冷冻管转移至液氮中，长期保存。
7. 细胞复苏：取出一管冻存细胞，置于37℃水浴中，待细胞解冻。
8. 细胞计数：复苏后的细胞再次进行计数，观察细胞活性。
五、实验结果1. 冻存细胞在复苏后，细胞活性较高，生长状态良好。
2. 冻存细胞在复苏过程中，未出现明显的细胞损伤现象。
3. 冻存细胞在长期保存后，仍保持较好的生物活性。
六、实验讨论1. 冻存液的选择对细胞活性有重要影响。
DMSO作为冷冻保护剂，可以有效降低细胞内水分结冰，减少细胞损伤。
2. 冻存过程中，应缓慢降温，避免细胞内水分迅速结冰，导致细胞损伤。
3. 冻存细胞在复苏后，应尽快进行实验，以充分利用细胞活性。
七、实验结论本次实验成功实现了动物细胞的冻存和复苏，表明冻存技术可以有效延长细胞寿命，保持细胞生物活性。
在动物细胞实验中，冻存技术具有重要的应用价值。
八、注意事项1. 实验操作过程中，应注意无菌操作，避免细胞污染。
2. 冻存液和细胞悬液应现用现配，避免长时间放置。
实验报告-细胞的传代与冻存
实验报告-细胞的传代与冻存细胞⽣物学实验报告实验⼀细胞的传代与冻存1引⾔1.1 实验⽬的1. 掌握⽆菌操作技术。
2. 掌握传代细胞培养和细胞冻存技术。
1.2 实验原理1.细胞传代：体外培养的原代细胞或细胞株要在体外持续地培养就必须传代，以便获得稳定的细胞株或得到⼤量的同种细胞，进⾏下⼀步的实验并维持细胞种的延续。
当细胞⽣长达到⼀定密度后，都需要做传代处理，传代的频率或间隔与培养液的性质、接种细胞的数量和细胞增殖速度有关。
贴壁细胞在培养瓶长成致密单层后，已基本饱和，为使细胞能够继续⽣长，同时也将细胞数量扩⼤，就必须进⾏传代培养。
当细胞汇合⾄80%~90%时即可进⾏分离培养，否则细胞会因增值过度导致营养枯竭和酸中毒，传代要在严格的⽆菌环境下进⾏。
传代培养也是⼀种将细胞种保存下去的⽅法，同时也是利⽤培养细胞进⾏各种实验的必经过程。
培养细胞⼀代⽣长过程可分为：潜伏期，指数增⽣期，停滞期（平台期）和衰退期。
2.细胞冻存：细胞冻存是细胞保藏的主要⽅法之⼀。
利⽤冻存技术将细胞置于-196℃的液氮中长期低温保存，可以使细胞暂时脱离⽣长状态并将细胞特性保存起来，在需要的时候再复苏细胞⽤于实验。
⽽且适时适量的保存细胞可以防⽌因正在培养的细胞被污染或者其他意外的事件⽽使得细胞种丢失，达到细胞保种的⽬的。
2实验仪器、试剂及操作步骤2.1 实验仪器酒精灯、酒精棉球、酒精喷壶、试管架、滴管筒（头）、吸管筒（头）、废液缸、移液器、枪头、显微镜等2.2 实验试剂DMEM培养基（其中⾎清含量10%）、⾎清、胰蛋⽩酶、抗⽣素、DMSO冻存液等2.3 实验步骤1. 实验室和超净⼯作台消毒，紫外照射20Min左右。
2.穿好实验服，进⽆菌室前穿鞋套、洗⼿。
3.关闭紫外灯，开⽇光灯和开风机，超净⼯作台台⾯应整洁，⽤75%酒精擦双⼿消毒，擦拭台⾯。
4.从培养箱取出细胞并在显微镜下观察，先低倍后⾼倍，放⼊超净⼯作台⽤酒精棉球擦瓶⼝。
过酒精灯⽕焰后斜置于酒精灯旁的架⼦上。
细胞的冻存实验报告
一、实验目的1. 了解细胞冻存的基本原理和操作方法。
2. 掌握细胞冻存过程中所需的设备和材料。
3. 掌握细胞冻存过程中的无菌操作技术。
4. 通过实验，提高细胞冻存的成功率。
二、实验原理细胞冻存是利用低温环境，使细胞内水分结冰，减缓细胞代谢活动，从而实现细胞的长期保存。
在冻存过程中，细胞内水分的结冰会导致细胞结构损伤，因此需要添加一定比例的冻存保护剂，以降低细胞损伤程度。
常见的冻存保护剂有二甲基亚砜（DMSO）、甘油等。
冻存过程中，细胞应逐步降温至-80℃，以避免温度突变对细胞造成损伤。
三、实验材料1. 细胞：选取生长良好的细胞，如人胚肾细胞（HEK293）、人肺上皮细胞（A549）等。
2. 冻存液：DMEM培养基+10%FBS+10%DMSO。
3. 设备：超净工作台、冰箱、液氮罐、移液器、冻存管等。
四、实验步骤1. 准备细胞：将细胞培养至对数生长期，收集细胞悬液，调整细胞浓度至1×10^6个/ml。
2. 配制冻存液：将DMEM培养基、FBS和DMSO按比例混合，配制冻存液。
3. 灭菌：使用无菌操作技术，将冻存液进行灭菌处理。
4. 分装细胞：将灭菌后的冻存液分装至冻存管中，每管加入1ml细胞悬液。
5. 冷冻：将冻存管置于超净工作台中，用移液器将细胞悬液均匀分布在冻存管底部。
6. 降温：将冻存管放入冰箱中，逐步降温至-80℃。
7. 液氮保存：将冻存管取出冰箱，迅速放入液氮罐中保存。
8. 解冻：需要复苏细胞时，将冻存管从液氮罐中取出，置于40℃水中迅速解冻。
9. 细胞培养：将解冻后的细胞悬液转移至新的培养瓶中，按照常规方法进行细胞培养。
五、实验结果与分析1. 成功冻存：通过显微镜观察，解冻后的细胞形态与冻存前相似，细胞活力良好。
2. 失败冻存：部分细胞在解冻后出现形态异常、细胞死亡等现象，表明冻存过程中可能存在操作失误或冻存液制备不当等问题。
六、实验结论通过本次实验，我们掌握了细胞冻存的基本原理和操作方法，了解了冻存过程中所需的设备和材料。
细胞冻存实验报告
一、实验目的1. 掌握无菌操作技术。
2. 熟悉细胞冻存的一般方法与步骤。
3. 了解冻存细胞复苏的注意事项。
4. 通过实验，提高细胞培养和冻存操作技能。
二、实验原理细胞冻存是指将细胞在低温下冷冻保存，以延长其存活时间，便于后续实验研究。
在冷冻过程中，细胞内的水分会形成冰晶，导致细胞结构受损。
因此，为了降低冰晶对细胞的损伤，通常在冻存液中添加保护剂，如二甲基亚砜（DMSO）或甘油。
细胞冻存的主要步骤包括：细胞培养、冻存液配置、细胞冻存、细胞复苏等。
三、实验材料1. 细胞：人胚胎肾细胞HEK2932. 培养基：DMEM培养基3. 抗生素：青霉素、链霉素4. 冻存液：DMEM培养基+10%FBS+10%DMSO5. 冻存管：无菌冻存管6. 冷冻箱：-80℃低温冰箱7. 灭菌设备：高压蒸汽灭菌器、酒精灯、紫外灯等四、实验步骤1. 细胞培养：将HEK293细胞接种于培养皿中，置于37℃、5%CO2的培养箱中培养，待细胞长满培养皿后，用吸管吸出培养液，加入含有0.25%胰酶的DMEM培养基，消化细胞。
2. 冻存液配置：按照冻存液配方，将DMEM培养基、FBS和DMSO混合均匀，分装于无菌冻存管中，高压蒸汽灭菌。
3. 细胞冻存：将消化后的细胞悬液转移至无菌冻存管中，加入适量冻存液，封口，标记后置于-80℃低温冰箱中冻存。
4. 细胞复苏：将冻存管从-80℃低温冰箱中取出，放入37℃水浴中解冻，待细胞完全解冻后，加入适量培养液，接种于新的培养皿中，置于培养箱中培养。
五、实验结果1. 冻存细胞复苏后，细胞形态、生长状态与原代细胞相似。
2. 经过冻存和复苏的细胞，仍具有良好的增殖能力。
六、实验讨论1. 冻存过程中，细胞内的水分形成冰晶，可能导致细胞结构受损。
因此，在冻存过程中，添加DMSO等保护剂，可以降低冰晶对细胞的损伤。
2. 冻存细胞复苏后，细胞形态、生长状态与原代细胞相似，说明冻存和复苏过程对细胞的影响较小。
3. 冻存细胞具有较好的增殖能力，表明冻存细胞可以用于后续实验研究。
细胞实验细胞冻存
细胞生物学实验细胞冻存一、实验目的1.理解细胞冻存的原理2.熟悉细胞冻存的方法与过程3.熟悉无菌操作技术二、实验原理细胞冻存是细胞保藏的主要方法之一。
利用冻存技术将细胞置于-196℃的液氮中长期低温保存，可以使细胞暂时脱离生长状态并将其细胞特性保存起来，在需要的时候再复苏细胞用于实验。
而且适时适量的保存细胞可以防止因正在培养的细胞被污染或者其他意外的事件而使得细胞种丢失，达到细胞保种的目的。
此外，还可以利用细胞的冻存形式来购买、寄赠、交换和运送某些细胞。
细胞冻存需在培养基中加入保护剂——终浓度5%～15%的甘油或二甲基亚砜（DMSO），保护剂可以使溶液的冰点降低，减少了由于在缓慢降温冻结的条件下细胞内水分的渗出，减少了冰晶的形成，从而避免了细胞的损伤。
细胞采用“慢冻速融”的方法能较好地保证细胞的存活率。
标准冷冻的速度为-1～-2℃/min，当温度低于-25℃时可加速冷冻，到-80℃时可直接加入液氮中（-196℃）。
复苏细胞时则直接浆细胞冻存管放到37～40℃热水中迅速解冻。
三、实验步骤1．入无菌室之前首先要用肥皂洗手,用新洁尔灭溶液拭擦双手消毒。
2．倒置显微镜下观察细胞形态，确定细胞是否需要传代及细胞需要稀释的倍数。
将培养用液置370C下预热。
3．超净台台面应整洁，用75%酒精擦双手消毒。
4．关闭已照射超净台台面20分钟左右的紫外灯，打开抽风机清洁空气，除去臭氧。
5．点燃酒精灯；取出无菌试管，巴士德吸管和刻度吸管；安上橡皮头；过酒精灯火焰略烧后插在无菌试管内。
6．将培养用液瓶口用75%酒精消毒，过酒精灯火焰后斜置于酒精灯旁的架子上。
7．取待冻存的细胞用胰酶消化，靠近火焰倒掉胰酶。
8．加入大约2ml冻存液（10%DMSO+20%FCS+70%DMEM）——轻轻吹打细胞沉淀制成细胞悬液。
细胞浓度宜大，300万／ml左右。
9．细胞悬液装入冻存管中。
用胶布封裹，做好标记（写上细胞种类，时间及冻存条件等）。
细胞冻存实验报告
细胞冻存实验报告
《细胞冻存实验报告》
细胞冻存是一种重要的生物技术，它可以帮助科学家们保存和保护各种细胞，
以便将来的研究和应用。
在这个实验中，我们将介绍细胞冻存的基本原理和步骤，并分享我们的实验结果和经验。
首先，我们选择了一种常见的细胞类型作为实验对象，然后按照标准的细胞培
养方法进行培养和扩增。
在细胞达到适当的数量后，我们使用一种特殊的冻存
液将细胞冻存起来。
这种冻存液包含了一定比例的甘油或二甲基亚砜等物质，
以保护细胞在冷冻过程中受到的损伤。
接下来，我们将冻存的细胞置于-80°C或液氮中进行长期保存。
在一段时间后，我们重新将这些细胞解冻并进行培养，以观察其生存率和功能状态。
我们发现，通过合适的冻存条件和解冻方法，大部分细胞可以成功地恢复生长和功能。
在实验过程中，我们也遇到了一些挑战和问题。
例如，冻存液的配制和保存条
件需要严格控制，以确保细胞的质量和稳定性。
此外，解冻过程中的温度和时
间控制也对细胞的生存率有重要影响。
通过这次实验，我们深刻认识到了细胞冻存技术的重要性和复杂性。
只有在严
格遵循标准操作流程和条件下，才能够有效地保存和利用细胞资源。
我们相信，在未来的研究和应用中，细胞冻存技术将会发挥越来越重要的作用，为生命科
学和医学研究带来更多的可能性和机遇。
细胞的冻存实验报告
细胞的冻存实验报告细胞的冻存实验报告细胞冻存是一种常见的细胞保存方法，它可以将细胞冷冻在极低温下，以延长其存活时间和保持其遗传信息的完整性。
本实验旨在探究不同冻存条件对细胞存活率和功能的影响，以期为细胞冻存技术的优化提供参考。
实验材料与方法1. 实验材料：- 细胞培养基- 细胞培养物（如细胞系、原代细胞等）- 冻存液（含有保护剂、抗冻剂等）- 液氮罐2. 实验方法：1) 细胞培养与扩增：a. 将细胞培养物接种于含有适宜培养基的培养皿中，放入细胞培养箱中培养。
b. 定期观察细胞的生长情况，当细胞达到一定密度时，进行细胞扩增。
2) 细胞冻存：a. 将培养皿中的细胞用无菌PBS洗涤，去除培养基中的残留物。
b. 加入适量的冻存液，用移液枪轻轻混合。
c. 将细胞冻存液转移至冻存管中，注意留有适当的空间以防止管子爆裂。
d. 将冻存管标记清楚，放入液氮罐中。
3) 细胞复苏：a. 从液氮罐中取出冻存管，迅速将其放入37℃预热的水浴中。
b. 当细胞冻存液开始融化时，用移液枪将其转移到含有适宜培养基的培养皿中。
c. 将培养皿放入细胞培养箱中，进行细胞复苏。
实验结果与讨论本实验选取了不同的冻存条件，包括冻存液的配方、冻存管的类型以及冻存温度等，对细胞的存活率和功能进行了评估。
1. 冻存液的配方：实验中尝试了不同配方的冻存液，包括含有不同保护剂和抗冻剂的组合。
结果显示，添加适量的保护剂和抗冻剂可以提高细胞的冻存效果。
其中，甘油和DMSO是常用的抗冻剂，它们可以降低细胞冻结时的渗透压，减少细胞内外的溶质浓度差异，从而避免细胞因渗透压失衡而受损。
2. 冻存管的类型：实验中使用了不同类型的冻存管，包括塑料管和玻璃管。
结果显示，塑料管相对于玻璃管更适合细胞冻存。
塑料管具有更好的耐冻性和耐冲击性，可以更好地保护细胞免受冻存过程中可能产生的机械损伤。
3. 冻存温度：实验中尝试了不同的冻存温度，包括-20℃、-80℃和液氮温度。
结果显示，液氮温度是最适合细胞冻存的温度。
细胞冻存实验报告
细胞冻存实验报告细胞冻存实验报告细胞冻存是一种常用的细胞保存方法，通过将细胞在极低温下冷冻保存，可以延长细胞的存活时间，并保持其功能和遗传特性。
本次实验旨在探究细胞冻存对细胞存活率和功能的影响，以及优化冻存条件，提高细胞冻存的效果。
实验材料与方法：1. 材料：细胞培养物、细胞冻存液、细胞培养基、离心管、离心机、液氮罐等。
2. 方法：a. 细胞培养和扩增：将细胞培养物接种在含有适宜培养基的培养皿中，放置于恒温培养箱中，培养至细胞密度达到一定程度。
b. 细胞冻存液制备：按照细胞冻存液的配方将冻存液溶解并过滤消毒。
c. 细胞冻存：将培养好的细胞用细胞冻存液冻存管分装，放置于-80℃冷冻柜中冷冻预冷。
d. 液氮冷冻：将预冷的细胞冻存管迅速转移到液氮罐中，进行液氮冷冻保存。
实验结果：1. 细胞存活率：经过冻存后，我们从液氮罐中取出一部分细胞冻存管，解冻后计算细胞存活率。
结果显示，存活率为80%左右，说明细胞冻存对细胞的存活率有一定的影响。
2. 细胞功能：为了探究细胞冻存对细胞功能的影响，我们进行了细胞增殖实验和细胞分化实验。
结果显示，冻存细胞的增殖速度和分化能力明显降低，与未冻存的细胞相比存在差异。
讨论与分析：1. 细胞冻存液浓度：我们尝试了不同浓度的细胞冻存液进行冻存实验，发现较高浓度的细胞冻存液可以提高细胞存活率，但也会对细胞功能产生一定的负面影响。
因此，在选择细胞冻存液浓度时需要综合考虑细胞存活率和功能的平衡。
2. 冻存速度：冻存速度对细胞冻存效果也有一定的影响。
过快的冻存速度可能导致细胞内部结构和代谢过程的破坏，降低存活率；而过慢的冻存速度则容易导致细胞内冰晶形成，引起细胞损伤。
因此，选择适宜的冻存速度对细胞冻存的成功与否至关重要。
3. 解冻条件：解冻过程也是影响细胞存活率和功能的重要因素。
过快或过慢的解冻速度都可能导致细胞损伤，因此需要选择适宜的解冻速度和条件，以保证细胞的完整性和功能。
结论：细胞冻存是一种常用的细胞保存方法，可以延长细胞的存活时间，并保持其功能和遗传特性。
实验六 细胞冻存实验
实验七细胞冻存实验一、实验目的1、掌握低温液氮冻存的原理；2、学习细胞缓慢冻存的实验方法。
二、实验原理当前低温液氮冻存贮存细胞已是细胞培养室常规通用技术。
这不仅避免了在培养器具、培养液及各种准备工作方面人力物力时间的大量消耗，也避免增加污染的机会；而且防止了在多次传代和体外环境变化时细胞发生遗传性状的不稳定。
液氮中温度可达－196℃，细胞贮存的时间理论上是无限的，解冻后细胞仍能生长繁殖。
为培养工作提供了极大的方便。
在不加任何保护剂的情况下直接冻存细胞时，细胞内外环境中的水分会很快结成冰晶，能导致细胞发生一系列不良反应如脱水、电解质浓度增高、渗透压改变、pH改变、蛋白质变性、机械损伤等，最终导致细胞死亡。
如向细胞培养液中加入一些保护剂，可使冰点降低，在缓慢冻结的条件下，使细胞内水分在冻结前透出细胞，减少细胞内冰晶形成，避免上述现象的发生。
甘油和二甲亚砜是目前最常使用的保护剂，它们对细胞无明显毒性，分子量小，溶解度大，易穿透细胞，提高细胞对水的通透性，而对细胞内酶和蛋白质等则具有一定的保护作用。
保护剂的使用浓度一般在5%～15%。
三、实验仪器、试剂、材料1、仪器：超净工作台、吸管、细胞冻存管、液氮罐、冰箱；2、试剂：冻存液Ⅱ（MEM：小牛血清：二甲亚砜=4：5：1）、0.25%胰蛋白酶液、MEM培养液、PE液；3、材料：对数生长期细胞（一瓶）。
四、实验步骤1、取对数生长期细胞，在冻存前24小时换培养液一次；2、制备细胞悬液：（1）用75%酒精棉球消毒超净工作台台面，然后用75%酒精棉球消毒双手及暴露部位；（2）用75%酒精棉球消毒各培养用液的瓶盖以及培养瓶瓶盖部位，并在酒精灯外焰上方一过，拧开瓶盖，将瓶口再在酒精灯外焰上方一过后，拧上瓶盖，但不要拧紧，以便下步操作；（3）轻轻将细胞培养瓶内旧培养液倒入烧杯中，注意不要让瓶口碰到烧杯，不要让液体溅出；（4）吸取PE液3ml加入瓶内，加入时注意从侧面加入而不能直接冲细胞贴壁处，避免造成细胞脱壁，然后盖上盖子，平放轻摇40下，轻轻倒出，要求倒干净；（5）加入0.3ml的0.25%胰蛋白酶液，加入时直冲细胞贴壁处，平放轻摇，使酶液漫过整个瓶底部，一分钟之内将培养瓶放在倒置显微镜台上进行观察，可发现细胞质渐渐回缩，细胞间隙增大，细胞慢慢变圆，用手掌拍打瓶底和瓶侧，使细胞从瓶壁上脱落下来并分散，呈悬浮状；（6）立即加入5mlMEM+10%小牛血清，用吸管向瓶壁轻轻吹吸几次，从培养瓶底部一边开始到另一边结束，以确保所有底部都被吹到，使细胞全部从瓶壁脱落并形成均匀的细胞悬液；7、在细胞悬液中加入1ml冻存液Ⅱ，吹吸数次使细胞均匀悬浮，取1ml分装到细胞冻存管中，密封，在管上做好标记，用布袋包装，放入4～5℃冷藏冰箱中30～45分钟，使冷冻保护剂充分渗入细胞内，与细胞达到平衡，放入-75℃一天，快速放入液氮罐的试管托内，沉入液氮中。
传代冻存实验报告
一、实验目的1. 掌握细胞传代和冻存的基本操作步骤；2. 熟悉细胞传代和冻存过程中的注意事项；3. 提高细胞培养的纯度和稳定性。
二、实验原理细胞传代是指将原代培养的细胞用胰酶或胶原蛋白酶处理，使其从培养容器上分离下来，再重新接种到新的培养容器中继续培养。
冻存是指将细胞在超低温条件下（通常为-196℃）保存，以延长细胞的生命周期。
三、实验材料1. 原代细胞；2. 胰酶/胶原蛋白酶；3. 培养基；4. CO2培养箱；5. 离心机；6. 液氮罐；7. 灭菌器材。
四、实验步骤1. 原代细胞传代（1）将原代细胞用胰酶/胶原蛋白酶处理，使其从培养容器上分离下来；（2）用无菌PBS洗涤细胞，去除残留的胰酶/胶原蛋白酶；（3）将细胞重悬于培养基中，调整细胞浓度为1×10^6个/mL；（4）将细胞接种到新的培养容器中，置于CO2培养箱中培养。
2. 细胞冻存（1）将细胞用胰酶/胶原蛋白酶处理，使其从培养容器上分离下来；（2）用无菌PBS洗涤细胞，去除残留的胰酶/胶原蛋白酶；（3）将细胞重悬于冻存液中，调整细胞浓度为1×10^6个/mL；（4）将细胞悬液分装到无菌冻存管中，每管1mL；（5）将冻存管放入液氮罐中，进行超低温保存。
3. 细胞复苏（1）从液氮罐中取出冻存管，置于37℃水浴锅中解冻；（2）将解冻后的细胞悬液转移至离心管中，离心5min，800rpm；（3）弃去上清液，加入适量培养基，重悬细胞；（4）将细胞接种到新的培养容器中，置于CO2培养箱中培养。
五、实验结果1. 传代细胞生长良好，形态正常；2. 冻存细胞复苏后，生长良好，形态正常；3. 传代冻存过程中，细胞纯度和稳定性得到保证。
六、实验讨论1. 在细胞传代过程中，应尽量减少细胞损伤，避免过度传代；2. 冻存过程中，应选择合适的冻存液，保证细胞活性；3. 细胞复苏后，应尽快接种到新的培养容器中，避免细胞损伤。
七、实验结论本实验成功完成了细胞传代和冻存，为后续实验提供了高质量、稳定的细胞材料。
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细胞生物学实验报告
细胞冻存
姓名:
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班级:
专业: 同组成员:
一、实验原理
在低于-70 C的超低温条件下，由机体内部的生化反应极其缓慢，甚至终止，因此采用适当的方法将生物材料降至超低温条件，即可使生命活动固定在某一阶段而不衰老死亡。
当以适当的方法将冻存的生物体恢复至常温时，其内部的生化反应可恢复正常。
冷冻保存就是将体外培养物悬浮在加有或不加冷冻保存液的溶液中，以一定的冷冻速率
降至零下某一温度，并在此温度下对其进行长期保存的过程。
水在低于零度的条件下结
冰细胞死亡。
如向培养液加入保护剂，可使冰点降低。
在缓慢的冻结条件下，能使细胞内
水份在冻结前透出细胞。
贮存在一130 C以下的低温中能减少冰晶的形成。
目前常用的保护剂为二甲亚砚（DMSO）和甘油，它们对细胞无毒性，分子量小，溶解度大，易穿透细胞。
最适冷冻速度：不同细胞的最适冷冻速度不同。
标准冷冻的开始速度为—1至—2C
/min,当温度低于—25C时，可加速，到—80 C时可直接加入液氮中（—196 C）。
复苏细胞时则直接将细胞的冻存管放到40 C热水中迅速解冻。
二、实验目的
1、掌握无菌操作技术。
2、.掌握细胞冻存的一般方法与步骤。
3、掌握培养细胞的消化方法。
4、了解在倒置相差显微镜下观察培养细胞的形态和生长状况。
三、实验仪器、材料、试剂及用品
1、仪器：超净工作台、CO2培养箱、倒置相差显微镜
2、材料：人宫颈癌HeLa细胞
3、试剂：胰酶、DMEM 培养基、血清、DMSO、抗生素
4、用品：培养瓶，试管，移液管，巴斯德吸管，废液缸，75%酒精棉球，酒精灯
四、实验步骤
1、穿好实验服，进入无菌室前穿鞋套、洗手。
2、倒置显微镜下观察细胞形态，确定细胞是否需要传代及细胞需要稀释的倍数。
将培养用液置
370C下预热。
3、无菌室及超净台紫外线照射，关闭超净台紫外灯，打开可见光灯开关，打开抽风机，用75%酒精擦双手消毒，再用酒精棉擦拭桌面。
4、点燃酒精灯；取出无菌试管，巴士德吸管和刻度吸管；安上橡皮头；过酒精灯火焰略烧后插在无菌试管内。
5、配置5ml 冻存液(DMEM 70% , FCS 20%, DMSO10% ),即DMEM 3.85ml , FCS 0.65ml, DMSO0.5ml。
6、取待冻存的细胞用胰酶消化，靠近火焰倒胰酶，显微镜下观察细胞的消化状态，待细胞大部分收缩、突起、一半变圆，细胞边界清晰时，即可立起或翻转培养瓶停止消化。
7、加两滴管2mL冻存液，即全面吹打细胞瓶壁，吹打均匀，细胞浓度宜大，3X106个/mL 左右O
8、细胞悬液装入冻存管中。
用胶布封裹，做好标记(写上细胞种类，时间及冻存条件等)。
冻存管在40C下存放30分钟，转放-20 C 1.5〜2小时，再转入-700C, 4〜12小时后即可转移到液氮内，注意进行登记。
五、实验结果
实验结果见下节课细胞复苏后可观察到。