细胞生物学实验报告(3)

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细胞学 实验三

细胞学 实验三
将墨汁0.5-1ml注射入蟾蜍的被淋巴囊内。 2-3个小时后制作背淋巴囊内的淋巴液涂片, 观察到白细胞吞噬进的黑色墨汁小颗粒。
内容(三)操作
1、显微测量
(蟾蜍红细胞,甲基绿-派洛咛染色)
步骤
1. 用台尺对目尺定标 2. 测量10个蟾蜍红细胞长径、短径,取平均值
目镜测微尺的实际长度
目镜测微尺的实际长度=镜台测微尺格数/目镜测微尺格数x10um
2、死活细胞鉴别 (酵母细胞)
原理——染色排除法:
许多酸性染料不容易穿过活细胞的质膜进 入细胞内,却能渗入死亡的细胞内,使其 着色,以此来鉴别死活细胞。
二乙酸酯荧光素FDA染色
步骤
滴1滴酵母悬液于载玻片中央 ↓
滴1滴0.2%台盼兰染液 ↓
混合,染色2min ↓
盖盖玻片
↓ 显微镜下观察
结果: 死细胞染成蓝色,活细胞不着色
细胞质的不断流动即为胞质环流。
通过胞质环流可借以实现胞内物质运转, 有利于代谢活动的进行。
步骤:制作黑藻叶片观察标本
载玻片中央滴一滴水 ↓
取尖端叶片,铺平在水滴中 ↓
盖盖玻片 ↓
观察
镜下观察黑藻叶片 :
绿色椭圆形的叶绿体会和其他小颗粒在细胞内向着示教
细胞存活率=(活细胞数/细胞总数)x100%
实验报告
1、测量5-10个蟾蜍红细胞的长径、短径 大小,计算平均值;
(要求:计算公式,标定结果,测量结果)
2、计算酵母细胞存活率(5个视野)。
实验流程
1. 观察细胞的胞质环流 黑藻叶片 2. 观察细胞的吞噬作用
小鼠巨噬细胞吞噬细菌 蟾 蜍白细胞吞噬墨汁 3. 显微测量 目镜测微尺,镜台测微尺 蟾蜍血涂片 4. 死活细胞鉴定,计算细胞存活率 酵母细胞 5. 实验报告

细胞生物学实验实验报告

细胞生物学实验实验报告

细胞生物学实验班级:生科142姓名:旷江学号:10143131组号: 2小组成员:旷江、韦立尧、莫霞指导老师:范立强、李鹏飞华东理工大学应用生物学系摘要本次细胞生物学实验通过细胞形态与结构的观察技术,细胞化学,细胞生理,细胞培养与分析,细胞周期分析,细胞成分分离与分析,细胞增殖与染色等技术对动植物细胞进行细胞形态结构的观察、细胞生理过程的研究、细胞培养与细胞分析、细胞冻存与复苏等,以此来研究动植物细胞的结构、功能和各种生命规律。

关键词:细胞增殖、细胞染色、冻存复苏、生理过程、形态结构AbstractThe cell biology experiment was carried out by cell morphology and structure observation technique, cytochemistry, cell physiology, cell culture and analysis, cell cycle analysis, cell fractionation and analysis, cell proliferation and staining. Observation of cell physiological processes, cell culture and cell analysis, cell cryopreservation and resuscitation, in order to study the structure of animals and plants, functions and a variety of laws of life.Key words: cell proliferation, cell staining, cryopreservation, physiological processes, morphological structur目录第一章综述 (1)1.1实验目的 (1)第二章实验原理 (2)2.1实验流程和应用实验方法 (2)2.2细胞器活体染色与显微观察 (2)2.3细胞骨架的观察 (3)2.4细胞冻存复苏 (3)2.5细胞冻存复苏活力检测 (3)2.6哺乳动物细胞的基因转染 (4)2.7细胞凋亡诱导和分析 (4)第三章实验仪器及试剂 (6)3.1实验仪器 (6)3.2实验试剂 (6)第四章实验步骤............ 错误!未定义书签。

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细胞生物学实验报告细胞生物学实验报告篇一实验教师:xxx所在学校:xxx中学目的要求:1练习徒手切片2认识叶片的结构3画叶片的表皮细胞和保卫细胞材料用具:新鲜叶片(如菠菜、槐树、蚕豆的叶片),显微镜,双面刀片(两片、并在一起、一侧用胶布粘牢)、镊子、载玻片、盖玻片、叶片的永久切片、盛有清水的培养皿、滴管、吸水纸、碘液、纱布、毛笔、小木板。

方法步骤方法与步骤要点注意事项(一)练习徒手切片,制作叶片横切片的临时切片1将新鲜的叶片平放在小木板上。

2右手捏紧并排的两片刀片,沿着图中虚线的方向,迅速切割。

3把刀片夹缝中存在的切下的薄片放入盛有清水培养皿中。

要多切几次(每切一次,刀片要蘸一下水)。

4用毛笔蘸出较薄的一片,制成临时切片。

叶片下面要垫上小块木板,以防损坏桌面。

刀片要捏紧,切割速度要快,注意安全。

为了便于观察,载玻片的水滴中可以同时放几片叶的横切片,选择切得较薄的一片用来观察。

(二)观察叶片的结构1.用显微镜先观察叶片横切面的临时切片,再观察叶片的永久横切片。

2.观察时注意分清时的表皮、叶肉和叶脉。

仔细观察上、下表皮细胞的`区别(三)观察叶片的下表皮1.用镊子撕下一小块叶片的下表皮,制成临时装片。

2.用显微镜进行观察,下表皮细胞的形态是什么样子的,下表皮上有没有气孔?撕取下表皮时,一定要薄,否则影响观察效果。

注意观察气孔的结构。

(四)画图在下面空白处画出下表皮上一对保卫细胞及周围的几个表皮细胞,这一对保卫细胞要详细画,周围的细胞只需勾出轮廓。

画图时,要真实、实事求是。

讨论与交流1.保卫细胞的结构特点对植物的蒸腾作用有什么意义?2.从结构上看,叶片有哪些方面是适于接受阳光的?细胞生物学实验报告篇二一、实验目的1. 初步学会观察植物细胞质壁分离和复原的方法。

2. 理解植物细胞发生渗透作用的原理。

二、实验原理当细胞液的浓度小于外界溶液的浓度时,细胞液中的水分就透过原生质层进入外界溶液中,使细胞壁和原生质层都出现一定的收缩。

医学细胞生物学-实验3 血涂片的制作和血细胞的观察-计数(1)

医学细胞生物学-实验3  血涂片的制作和血细胞的观察-计数(1)

嗜酸性粒细胞 比中性粒细胞略大,数量少,约占7%以下。核常分两 叶,着紫蓝色。主要特点是胞质内充满粗大、圆形的颗粒,色鲜红或 桔红。
嗜碱性粒细胞 数量很少,约占1%以下。在一般血涂片 上不易找到,体积比上述2种白细胞稍小。胞质中分散着 许多大小不一的深紫蓝色颗粒。胞核形状不定,圆形或分 叶,也染成紫色,但染色略浅,一般都被颗粒遮盖,形 状不清。
实验三 血涂片的制作和 血细胞的观察、计数
实验报告书写要求
正确的书写实验名称 •一、实验目的 •二、实验原理 •三、实验用品(仪器、试剂及材料) •四、实验内容与方法 •五、实验结果(作图、测量结果、计算等) •六、讨论 •七、思考题
实验目的
• 掌握血涂片的制作方法,了解各种血细 胞的结构特点
• 掌握人体微量采血和用血细胞计数板进 行细胞直接镜检计数的方法
• 淋巴细胞 数量较多,约占20%-40%,可见中、小型,淋巴细 胞。其中小淋巴细胞最多,略大于红细胞。核大而圆,几乎占据 整个细胞,染成深蓝紫色。胞质极少,仅在核的一侧出现一 线状天蓝色或淡蓝色的胞质。中淋巴细胞比红细胞大,胞质 较小淋巴细胞的稍多,着色较浅。核圆形或卵圆形,位于细
胞中部,也染成深蓝紫色。
(二)血细胞计数
1.血细胞计数板的构造
• 4条直槽,内侧两槽中间有 一条横槽把中部隔成二长方 形的平台。
• 平台玻璃板平面低0.1mm。
• 平台中心部分各以3mm长, 3mm宽精确划分为9个大方 格,称为计数室,每个大方 格面积为1mm3,体积为 0.1mm3
• 四角的大方格,又各分为16个中 方格,适用于白细胞计数。
Hale Waihona Puke 采血前用70%酒精 棉球消毒指腹
采血
推片:挤出血滴置于载玻片的右侧

细胞生物学实验报告

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细胞生物学实验报告细胞生物学实验报告细胞生物学实验报告细胞生物学实验报告动物细胞融合【实验目的】⒈了解动物细胞融合的常用方法。

⒉学习化学融合的基本操作过程。

⒊观察动物细胞融合过程中细胞的行为和变化。

【实验原理】细胞融合是指在自发或者诱导条件下,两个或两个以上细胞合并为双核或者多核细胞的过程。

目前人们已经发现有很多方法可以诱导细胞融合,包括病毒诱导融合、化学诱导融合和电激诱导融合。

⒈病毒诱导融合仙台病毒、牛痘病毒、新城鸡瘟病毒和疱疹病毒等可以介导细胞的融合。

这类病毒的被膜中含有融合蛋白,可介导病毒和宿主细胞融合,同时也可介导细胞与细胞的融合。

用紫外线灭活后,这些病毒即可诱导细胞发生融合。

⒉化学诱导融合很多化学试剂能够诱导细胞融合,如聚乙二醇(PEG)、二甲基亚砜、山梨醇、甘油、溶血性卵磷脂、磷脂酰丝氨酸等。

这些物质能够改变细胞膜脂质分子的排列,在去除这些物质之后,细胞膜趋向于恢复原有的有序结构。

在恢复过程中相接触的细胞由于接口处脂质双分子层的相互亲和与表面张力,细胞膜融合,胞质流通,发生融合。

化学诱导方法,操作方便,诱导融合的概率比较高,效果稳定,适用于动、植物细胞,但对细胞具有一定的毒性。

PEG是被广泛使用的化学融合剂。

⒊电激诱导融合包括电诱导、激光诱导等。

其中,电诱导是先使细胞在电场中极化成为偶极子,沿电力线排布成串,再利用高强度、短时程的电脉冲击破细胞膜,细胞膜的脂质分子发生重排,由于表面张力的作用,两细胞发生融合。

电诱导方法具有融合过程易控制、融合概率高、无毒性、作用机制明确、可重复性高等优点。

【实验用品】⒈材料鸡血红细胞。

⒉试剂50%PEG、Hank’s溶液(pH7.4)、Alsever’s细胞保存液、0.85%氯化钠溶液。

⒊器材正置显微镜、离心机、离心管、载玻片、盖玻片、滴管、注射器等。

【实验步骤】⒈鸡血红细胞的制备和保存用无菌注射器先吸入Alsevers溶液1ml,再从鸡翼下静脉取血0.5~1ml,取出后放入刻度离心管中,再加入2~3mlAlsevers溶液,使总量为4~5ml,混匀并封口,置于4℃冰箱内。

细胞生物学实验三细胞骨架显示

细胞生物学实验三细胞骨架显示
实验三、动植物细胞骨架显示
细胞骨架定义
• 细胞骨架(cytoskeleton)是指真核细胞中的
蛋白纤维网架体系。
• 广义的细胞骨架包括细胞核骨架、细胞质骨架、
细胞膜骨架和细胞外基质。狭义的细胞骨架是指 细胞质骨架,包括微丝(microfilament,MF)、 微管(microtubule,MT)、中间纤维 (intermediated filament,IF)。
用品与试剂
• 用品略。
实验步骤
A、动物细胞的微丝观察
1)将细胞培养在盖玻片上。取出盖玻片,用PBS洗3次。 2)室温下用1%TritonX-100( M-缓冲液配)处理20-30 min。 3)用M-缓冲液轻轻洗细胞3次。 4)用3.0%戊二醛( M-缓冲液配)固定细胞10 min。 5)用PBS洗3次,滤纸吸干。 6)用0.2%考马斯亮蓝R250染片子30 miitonX-100、 3.0%戊二
醛均用PBS配观察实验效果。
改变后的操作
1)撕取洋葱鳞茎内表皮若干片(约1cm2),放入盛有0.2mol/L的磷 酸盐缓冲液(pH 6.8)的小烧杯中2-3min。
2)吸去缓冲液,用1%TritonX-100(PBS配)处理20 min。 3)吸去TritonX-100,用PBS充分洗3次,每次5min。 4)加3.0%戊二醛(PBS配)固定30 min。 5)用PBS洗3次,每次5min,滤纸吸去残留液体。 6)0.2%考马斯亮蓝R250染色10 min。 7)用蒸馏水洗数遍,降低背景。 8)将样品置于载玻片上,加盖玻片,在光学显微镜下观察。
实验报告及思考题
1 画出所观察到的洋葱细胞骨架图像。 2 说明在实验中1%TritonX-100处理细胞
的作用是什么? 3 说明M-缓冲液的作用是什么?比较改变

细胞生物学实验报告

细胞生物学实验报告

细胞生物学实验报告一、细胞形态观察及其大小测量1.实验结果及分析(1)细胞形态观察图1.1 10X40倍镜下肝细胞图1.2 10X40倍镜下血细胞图1.3 棉花叶横切(栅栏组织细胞)(2)细胞大小测量项目原始数值及数据处理平均值台尺41 35 41 28 20 33 目尺170 145 170 116 83 136.8根据公式计算得:每2.412 2.414 2.412 2.414 2.410 2.412格μm数项目原始数据及数据处理平均值长格数28 28 29 29 31 28 26 23 25 27.44 宽格数 5 4 5 4 6 4 5 5 4 4.67 长μm 67.54 67.54 69.95 69.95 74.77 67.54 62.71 55.48 60.30 66.202.思考题(1)血细胞分为哪几大类?分别描述你看到的不同血细胞的形态,并阐述其功能。

绘图。

血细胞分为红细胞、白细胞和血小板。

红细胞:主要的功能是运送氧。

白细胞:主要扮演了免疫的角色。

当病菌侵入人体时,白细胞能穿过毛细血管壁,集中到病菌入侵部位,将病菌包围,吞噬。

血小板:止血过程中起着重要作用。

血细胞约占血液容积的45%,包括红细胞、白细胞和血小板。

在正常生理情况下,血细胞和血小板有一定的形态结构,并有相对稳定的数量。

红细胞呈双凹圆盘状,中央较薄(1.0μm),周缘较厚(2.0μm),故在血涂片标本中呈中央染色较浅、周缘较深。

在扫描电镜下,可清楚地显示红细胞这种形态特点。

红细胞的这种形态使它具有较大的表面积(约140μm2),从而能最大限度地适应其功能――携O2和CO2。

白细胞为无色有核的球形细胞,体积比红细胞大,能作变形运动,具有防御和免疫功能。

在血涂片中,血小板常呈多角形,聚集成群。

血小板中央部分有着蓝紫色的颗粒,称颗粒区;周边部呈均质浅蓝色,称透明区(hyalomere)。

电镜下,血小板的膜表面有糖衣,细胞内无核,但有小管系、线粒体、微丝和微管等细胞器,以及血小板颗粒和糖原颗粒等。

细胞生物学研究实验报告

细胞生物学研究实验报告

细胞生物学研究实验报告1. 引言在细胞生物学领域,研究细胞的结构和功能对于理解生命的基本原理至关重要。

本实验旨在利用细胞培养技术,观察并探究不同条件下细胞的生长和变化,以及细胞代谢的影响因素。

2. 实验材料与方法2.1 细胞培养物准备:选择合适的培养基,并根据说明书的指导进行配制,确保培养基的pH值及其他参数的准确性。

2.2 细胞处理:将细胞培养物均匀接种于含有培养基的培养皿中,根据实验设计设置不同的处理组和对照组。

2.3 细胞观察:在指定时间点,使用显微镜观察细胞的形态和数量,并记录相关数据。

2.4 细胞计数:利用细胞计数板或自动细胞计数器,对处理组和对照组的细胞数量进行计数,并进行统计学分析。

3. 实验结果在本实验中,我们观察了不同培养条件对细胞生长的影响以及细胞数量的变化。

3.1 培养基成分对细胞生长的影响:将细胞分别培养于不同成分的培养基中,并观察其生长情况。

结果显示,不同成分的培养基对细胞生长产生了明显的影响。

例如,在含有特定营养因子的培养基中,细胞的生长速率显著提高。

3.2 不同培养温度对细胞生长的影响:将细胞在不同的温度条件下培养,并在一定时间内观察其生长情况。

实验结果显示,细胞的生长速率在适宜温度范围内最高,而过低或过高的温度均对细胞生长产生了抑制作用。

3.3 细胞代谢产物对细胞生长的影响:添加不同浓度的代谢产物(如乙醛、乙酸等)到培养基中,观察其对细胞生长的影响。

实验结果显示,过高或过低的代谢产物浓度均对细胞生长产生了不利影响,而适宜浓度范围内则促进了细胞的繁殖能力。

4. 讨论与结论本实验结果表明,细胞的生长和变化受到多种因素的影响,包括培养基成分、培养温度以及代谢产物浓度等。

细胞在适宜的培养条件下能够更好地进行增殖和发育,而不利因素则会抑制细胞的生长。

因此,在细胞生物学研究中,合理控制和优化培养条件对于获得准确可靠的实验结果至关重要。

总结:通过本次实验,我们深入了解了细胞生物学领域中的相关实验技术和细胞生长的条件调控。

细胞生物学实验报告(3篇)

细胞生物学实验报告(3篇)

细胞生物学实验报告(3篇)细胞生物学实验报告(精选3篇)细胞生物学实验报告篇1一、实验目的:1、掌握显示细胞中过氧化物酶反应的原理和方法。

2.了解细胞凋亡的生物学意义3、掌握凋亡细胞的形态学检测方法二、实验原理:1、细胞内的过氧化物酶能把许多胺类氧化为有色化合物,用联苯胺处理标本,细胞内的过氧化物酶能把联苯胺氧化为蓝色的联苯胺蓝,进而变为棕色产物,因而可以根据颜色反应来判定过氧化物酶的有无或多少。

中间产物蓝色联苯胺是不稳定的,无需酶的参加即可氧化为棕色化合物。

2、细胞凋亡是指细胞在生理或病理条件下,遵循自身的程序,自己结束其生命的过程。

它是一个主动的、高度有序的,基因控制的,一系列酶参与的过程。

3、凋亡细胞形态学特征是:体积变小,细胞质浓缩;细胞核发生染色质凝聚和聚集于核膜周围(边缘化);细胞膜有小泡状形成;晚期细胞膜内陷形成大小不同的凋亡小体;根据细胞凋亡形态学特征进行显微观察是检测细胞凋亡的一种直观、可靠的方法。

三、实验步骤:细胞中过氧化物酶的显示1、在载片上滴一滴PBS缓冲液;2、取骨髓细胞:用断颈法处死小鼠,立即剪取后肢,去除肌肉,剥出后肢股骨,剪开股骨一端,用牙签尖的一端插入剪开的小孔中,抠取少许骨髓细胞置滴有PBS的载片上;3、涂片:用另一玻片将骨髓细胞沿一个方向涂布推开,室温晾干;4、媒染:在涂片上滴0.5%硫酸铜液,以盖满涂片为宜,处理30秒-1分钟。

5、倾去硫酸铜液,直接滴入联苯胺混合液反应6分钟(以盖满涂片为宜)6、清水冲洗,番红复染2min。

7、镜检:清水冲洗,室温晾干,先低倍镜下观察,后换高倍镜下观察(油镜100_)细胞凋亡的形态学检测与观察吉姆萨染色:1、取细胞爬片置于小培养皿中(有细胞面朝上)2、生理盐水轻轻漂洗细胞3、95%乙醇固定5min4、PBS缓冲液洗2次5、吉姆萨染色液染色5min6、蒸馏水轻轻洗去染液7、普通光学显微镜下观察。

吖啶橙染色:1、取细胞爬片置于小培养皿中(有细胞面朝上)2、生理盐水轻轻漂洗细胞3、甲醇:冰醋酸(3:1)固定5min4、PBS缓冲液洗2次每次1min5、0.01%吖啶橙染色液在避光环境下染色5min6、蒸馏水轻轻洗去染液6、选用蓝光激发滤片在荧光显微镜下观察。

细胞生物学实验报告

细胞生物学实验报告

细胞生物学实验报告实验目的,通过观察细胞在不同环境条件下的变化,了解细胞的结构和功能。

实验材料,显微镜、玻璃片、盐水、葡萄糖水溶液、洋葱、细胞培养基、显微镜玻璃片、移液管、显微镜盖玻片、细胞标本。

实验步骤:1. 取一片洋葱表皮,放入盐水中浸泡5分钟,然后用移液管将洋葱表皮移至显微镜玻璃片上,加一滴盐水,用显微镜盖玻片盖好,放入显微镜下观察。

2. 取一片洋葱表皮,放入葡萄糖水溶液中浸泡5分钟,然后用移液管将洋葱表皮移至显微镜玻璃片上,加一滴葡萄糖水溶液,用显微镜盖玻片盖好,放入显微镜下观察。

3. 取一片洋葱表皮,直接放入显微镜玻璃片上,加一滴蒸馏水,用显微镜盖玻片盖好,放入显微镜下观察。

实验结果:在盐水中浸泡的洋葱表皮细胞,细胞质内部出现了空泡,并且细胞质收缩,细胞膜离细胞壁。

在葡萄糖水溶液中浸泡的洋葱表皮细胞,细胞质内部没有出现空泡,细胞质没有收缩,细胞膜紧贴细胞壁。

直接放入蒸馏水中的洋葱表皮细胞,细胞质内部也没有出现空泡,细胞质没有收缩,细胞膜紧贴细胞壁。

实验分析:盐水中的高渗环境导致了细胞失水和质内空泡的形成,细胞质收缩,细胞膜离细胞壁。

而葡萄糖水溶液中的低渗环境对细胞没有明显的影响,细胞质没有收缩,细胞膜紧贴细胞壁。

蒸馏水中的等渗环境对细胞也没有明显的影响,细胞质没有收缩,细胞膜紧贴细胞壁。

结论:细胞在不同渗透压环境下会出现不同的变化,高渗环境会导致细胞失水、质内空泡形成和细胞质收缩,而低渗环境对细胞没有明显的影响,等渗环境也不会对细胞产生明显的影响。

这些结果说明了渗透压对细胞的影响,也说明了细胞对外界环境的敏感性。

实验的意义:通过这个实验,我们更深入地了解了细胞在不同环境条件下的变化,也更加深入地了解了细胞的结构和功能。

这对于我们进一步研究细胞生物学,了解生命的奥秘,具有重要的意义。

实验存在的不足:本实验只是对细胞在不同渗透压环境下的变化进行了初步的观察和分析,还需要进一步的研究和探讨,以便更加全面地了解细胞的生物学特性。

细胞生物学实验报告

细胞生物学实验报告

细胞生物学实验报告叶绿体的分离、纯化与荧光观察【实验目的】⒈通过植物细胞叶绿体的分离与纯化,了解细胞器分离与纯化的原理和方法。

⒉熟悉荧光显微镜的使用方法,观察叶绿体的自发荧光和间接荧光。

【实验原理】⒈叶绿体是植物细胞所特有的能量转换细胞器,叶绿体是植物细胞所特有的能量转换细胞器,光合作用就是在叶绿体中进行。

由于具有这一重要功能,所以它一直是细胞生物学、遗传学和分子生物学的重要研究对象。

叶绿体是植物细胞中较大的一种的细胞器,利用低速离心即可分离集中进行各种研究。

叶绿体结构模式图组织细胞的破碎方法很多,包括机械法(研磨法、匀浆法、胶体磨法)和非机械法(超声波法、有机溶法、溶胀法、酶解法)。

除了某些细胞外的多肽激素和某些蛋白质与酶以外,对于细胞内或多细胞生物组织中的各种生物大分子的分离纯化,都需要事先将细胞和组织破碎,使生物大分子充分释放到溶液中,并不丢失生物活性。

不同的生物体或同一生物体的不同部位的组织,其细胞破碎的难易不一,使用的方法也不相同。

⒉细胞器分离的过程包括两个主要阶段:碎细胞和细胞组分的分离。

将组织匀浆后悬浮在等渗介质中进行离心,差速离心和密度梯度离心是分离亚细胞组分的常用方法。

⑴差速离心①原理:一个颗粒在离心场中的沉降速率取决于颗粒的大小、形状和密度,也同离心力以及悬浮介质的粘度有关。

在一给定的离心场中,同一时间内,密度和大小不同的颗粒其沉降速率不同。

依次增加离心力和离心时间,就能够使非均一悬浮液中的颗粒按其大小、密度先后分批沉降在离心管底部,分批收集即可获得各种亚细胞组分。

②事例:叶绿体的分离应在等渗溶液(0.35mol/L 氯化钠或 0.4mol/L 蔗糖溶液)中进行,以免渗透压的改变使叶绿体受到损伤。

将匀浆液在1000r/min 的条件下离心 2min,以去除其中的组织残渣和一些未被破碎的完整细胞。

然后,在 3000r/min 的条件下离心 5min,即可获得沉淀的叶绿体(混有部分细胞核)。

细胞生物学实验报告完整

细胞生物学实验报告完整

一、实验目的1. 了解细胞膜的功能和特性;2. 掌握细胞膜的制备和观察方法;3. 学习细胞膜的流动性和渗透性实验技术;4. 通过实验验证细胞膜在细胞生理活动中的作用。

二、实验原理细胞膜是细胞与外界环境之间的分隔层,具有保护、物质交换、信号转导等功能。

细胞膜主要由磷脂双分子层和蛋白质组成,具有一定的流动性和选择性渗透性。

本实验通过制备细胞膜、观察细胞膜形态、测量细胞膜流动性、研究细胞膜渗透性等方法,探讨细胞膜在细胞生理活动中的作用。

三、实验材料与仪器1. 实验材料:新鲜猪肝、生理盐水、磷酸缓冲液(pH 7.4)、0.25%胰蛋白酶、0.1%EDTA、0.2%Triton X-100、红四唑(MTT)、无水乙醇、氯化钠、蒸馏水等。

2. 实验仪器:显微镜、离心机、超速离心机、恒温水浴锅、移液器、培养皿、烧杯、试管等。

四、实验步骤1. 制备细胞膜(1)取新鲜猪肝,用生理盐水冲洗干净,切成小块;(2)将肝组织放入烧杯中,加入适量生理盐水,用组织捣碎器捣碎;(3)将捣碎的肝组织过滤,收集滤液;(4)将滤液加入适量0.25%胰蛋白酶,在37℃恒温水浴锅中消化30分钟;(5)将消化后的滤液加入适量0.1%EDTA,终止消化;(6)将终止消化的滤液离心(3000r/min,10分钟),收集上清液;(7)将上清液加入适量0.2%Triton X-100,充分混匀,室温下放置10分钟;(8)将混合液离心(12000r/min,30分钟),收集沉淀即为细胞膜。

2. 观察细胞膜形态(1)取细胞膜沉淀,用生理盐水洗涤2次,每次5000r/min,10分钟;(2)将洗涤后的细胞膜沉淀加入适量生理盐水,制成细胞膜悬液;(3)取少量细胞膜悬液,滴于载玻片上,用盖玻片封片;(4)在显微镜下观察细胞膜形态。

3. 测量细胞膜流动性(1)取细胞膜悬液,加入适量红四唑(MTT),混匀;(2)将混合液离心(3000r/min,10分钟),收集上清液;(3)用分光光度计测定上清液在570nm处的吸光度值;(4)根据吸光度值计算细胞膜流动性。

细胞生物学实验报告

细胞生物学实验报告

细胞生物学实验报告实验目的:探究植物细胞与动物细胞在不同条件下的结构和功能差异。

实验材料与方法:1. 实验材料:- 镜片- 显微镜- 植物叶片样本- 动物组织样本- 注射器或吸管- 0.9% NaCl生理盐水- 甘油或其他透明溶液2. 实验步骤:1. 取一片植物叶片,并在显微镜盖玻片上放上一滴生理盐水。

2. 将植物叶片放在生理盐水中,使用镊子轻轻剪碎叶片,使细胞释放。

3. 将显微镜盖玻片置于显微镜下,调节镜片使其聚焦在细胞上。

4. 观察细胞的结构,包括细胞壁、细胞膜、细胞核等。

5. 取一片动物组织,并在显微镜盖玻片上放上一滴甘油或其他透明溶液。

6. 使用镊子将动物组织放入溶液中,轻轻搅拌,使细胞释放。

7. 将显微镜盖玻片置于显微镜下,调节镜片使其聚焦在细胞上。

8. 观察细胞的结构,包括细胞膜、细胞核、线粒体等。

实验结果:通过观察植物细胞和动物细胞的实验,我们得出以下结论:1. 植物细胞具有细胞壁,而动物细胞没有。

细胞壁是植物细胞的一个重要特征,它能提供结构支持和保护细胞。

2. 细胞膜是植物和动物细胞共有的特征,它控制物质的进出,维持细胞内外环境的稳定。

3. 细胞核是细胞的控制中心,核内含有遗传物质DNA。

无论是植物细胞还是动物细胞,细胞核都是存在的。

4. 植物细胞内含有叶绿体,而动物细胞没有。

叶绿体是植物细胞中进行光合作用的重要器官,能够将阳光转化为化学能。

5. 动物细胞内含有线粒体,而植物细胞也存在但数量相对较少。

线粒体是动物细胞中的能量合成器官,能够产生细胞所需的能量供应。

实验结论:通过本实验,我们明确了植物细胞和动物细胞的结构和功能差异。

植物细胞具有细胞壁和叶绿体,能够进行光合作用,而动物细胞具有线粒体,能够进行代谢和产生能量。

另外,细胞膜和细胞核是所有细胞共有的结构,起着重要的生命活动调控作用。

实验意义:细胞是生命的基本单位,通过深入了解细胞的结构与功能差异,有助于我们更好地理解生物的生命活动和各种生物现象。

细胞生物学实验报告

细胞生物学实验报告

细胞生物学实验报告引言细胞是生命的基本单位,它们组成了所有生物体,从微观的细菌到宏观的植物和动物。

了解细胞的结构和功能对于理解生命系统的运作机制至关重要。

本实验旨在通过观察和研究细胞的各个方面,探索细胞的奥秘。

材料与方法本实验使用了显微镜、荧光显微镜、细胞培养皿、培养基和染色剂等实验材料。

首先,我们在细胞培养皿中放入培养基,并加入细胞样本。

接着,我们使用显微镜观察细胞的结构,并通过染色剂标记特定的细胞结构。

最后,我们使用荧光显微镜观察细胞内的荧光分子。

结果与讨论1. 细胞的形态和结构通过显微镜观察,我们发现细胞具有不同的形态和结构。

植物细胞通常具有细胞壁和叶绿体,而动物细胞则没有细胞壁,但有细胞膜和细胞器如线粒体和高尔基体。

这些不同的结构为细胞的功能提供了支持。

2. 细胞的运动和分裂我们观察到细胞在培养皿中具有一定的运动能力。

细胞可以通过细胞膜的伸缩和细胞骨架的变形实现不同的移动方式,如原生动物的鞭毛运动和细胞质流动。

此外,我们还观察到细胞分裂的过程,这是细胞增殖和生长的基本方式。

3. 细胞的代谢活动通过观察荧光显微镜下的细胞样本,我们可以看到许多荧光分子在细胞内的活动。

这些分子参与了细胞的代谢过程,如蛋白质合成、物质转运和能量代谢。

荧光分子的存在使我们能够更直观地了解细胞的生理活动。

4. 细胞的信号传导在细胞培养条件下,我们还观察到细胞之间的相互作用和信号传导。

细胞可以通过细胞外信号分子的识别和细胞膜上的受体进行相互沟通。

这种信号传导机制对于细胞内外环境的调节和细胞功能的协调起着重要作用。

结论通过本实验,我们深入了解了细胞的形态、结构、运动、代谢和信号传导等方面。

细胞生物学是研究生命的基本单位的科学,其对于解答许多生物学问题具有重要意义。

今后的研究中,我们可以进一步探索细胞的分子机制和调控网络,以深化对细胞生物学的理解,并应用于生物医学和生物工程领域。

致谢感谢实验室的老师和同学们对本实验的支持和帮助,使我们能够顺利完成实验,并获得有价值的数据和观察结果。

细胞培养小实验实验报告(3篇)

细胞培养小实验实验报告(3篇)

第1篇一、实验目的1. 掌握细胞培养的基本操作流程,包括原代培养和传代培养。

2. 了解细胞培养过程中的无菌操作规范。

3. 观察细胞在体外培养过程中的生长、增殖和形态变化。

二、实验原理细胞培养是从生物体中取出某种组织或细胞,模拟体内生理条件,在人工培养条件下使其生存、生长、繁殖或传代的过程。

细胞培养技术的最大优点是使我们得以直接观察活细胞,并在有控制的环境条件下进行实验,避免了体内实验时的许多复杂因素,还可以与体内实验互为补充。

三、实验用品1. 仪器及器材:显微镜、载玻片、盖玻片、移液枪、培养皿、无菌操作台、无菌操作箱、细胞培养箱、CO2培养箱、细胞计数器等。

2. 试剂:细胞培养液、胰蛋白酶、胎牛血清、抗生素、无菌水等。

四、实验步骤1. 原代细胞培养(1)取动物组织,剪碎后用胰蛋白酶消化,制成细胞悬液。

(2)将细胞悬液加入培养皿,置于CO2培养箱中培养。

(3)观察细胞生长情况,每隔24小时更换一次培养液。

2. 传代培养(1)当细胞达到一定密度时,用胰蛋白酶消化细胞,制成细胞悬液。

(2)将细胞悬液按1:2的比例传代到新的培养皿中。

(3)观察细胞生长情况,每隔24小时更换一次培养液。

3. 细胞计数(1)取适量细胞悬液,加入细胞计数器。

(2)计数细胞数量,计算细胞密度。

4. 细胞形态观察(1)取细胞培养皿,用盖玻片覆盖。

(2)置于显微镜下观察细胞形态、生长情况。

五、实验结果1. 细胞生长情况:原代细胞在培养皿中生长良好,细胞密度逐渐增加。

传代培养后,细胞生长速度略有下降,但总体状况良好。

2. 细胞形态:细胞呈多边形,细胞核清晰可见,细胞间连接紧密。

3. 细胞计数:细胞密度为1×10^6个/mL。

六、实验结论1. 成功进行了原代细胞培养和传代培养。

2. 细胞在体外培养过程中生长良好,细胞形态正常。

3. 细胞培养技术为生物学研究提供了有力工具。

七、实验总结本次实验成功掌握了细胞培养的基本操作流程,了解了无菌操作规范,并观察了细胞在体外培养过程中的生长、增殖和形态变化。

细胞生物学实验报告

细胞生物学实验报告

细胞生物学实验报告
实验三实验名称动物组织细胞的观察
绘制三种组织结构图,并说明每种细胞结构的特点以及功能的相关性。

(1)小肠很长,可增加消化、吸收面积;
小肠内壁有环形皱襞,可增加吸收面积;
环形皱襞上有小肠绒毛,小肠绒毛上有微绒毛,均可增大吸收面积;
小肠绒毛壁仅由一层细胞组成,便于物质交换.。

(2)从雌性性腺的切面上可以看到许多大大小小、代表不同发育阶段的卵泡:
最年幼的卵泡中央是一个较大的细胞,即初级卵母细胞,将来发育成卵;
初级卵母细胞的外面围是卵泡上皮,卵泡上皮最初只是一层细胞,以后陆续增多,它们的作用是给卵细胞提供多种生长必需的物质,同时还有分泌雌激素的功能。

(3)肝小叶:呈六角形的棱柱体,由中央静脉,肝细胞索,肝血窦,胆小管及窦周隙组成,是肝的基本结构单位。

中央静脉:位于肝小叶中央,壁薄,由一层内皮细胞和少量结缔组织构成,有开口与周围的肝血窦相通;
肝血窦:位于肝板之间,血窦经肝板上的孔相互沟通,血液从肝小叶的周边经血窦流向中央,汇入中央静脉。

血窦内有定居于肝内的巨噬细胞和大颗粒淋巴细胞;血窦内皮细胞与肝细胞之间的狭小间隙称为窦周隙,内有贮脂细胞;
窦周隙:①为血窦内皮细胞与肝细胞之间的狭小间隙;②窦周隙内充满血浆,血窦面的微绒毛伸入窦周隙;③它是肝细胞与血液之间进行物质交换的场所。

胆小管:①是相邻两个肝细胞之间局部胞膜凹陷形成的微细管道;②胆小管周围的肝细胞膜形成连接复合体,封闭胆小管,防止胆汁流入血窦;③当肝细胞发变性、坏死或胆道堵塞内压增大时,胆小管的正常结构被破坏,胆汁则溢入窦周隙,进而进入血窦,出现黄疸。

实验室培育细胞实验报告(3篇)

实验室培育细胞实验报告(3篇)

第1篇一、实验目的1. 掌握细胞培养的基本原理和方法;2. 了解细胞培养过程中的无菌操作和细胞传代技术;3. 观察细胞在体外培养过程中的生长和变化。

二、实验原理细胞培养是将细胞从生物体中取出,在体外模拟生物体内环境,使其在适宜的条件下生长、繁殖和传代。

细胞培养技术是生物学研究的重要手段,广泛应用于医学、生物工程等领域。

三、实验材料与仪器1. 实验材料:小鼠脾脏细胞、胰蛋白酶、细胞培养液、DMSO(二甲基亚砜)、培养瓶、移液器、细胞计数板、显微镜等。

2. 仪器:超净工作台、细胞培养箱、离心机、冰箱等。

四、实验步骤1. 细胞复苏:将冷冻保存的细胞复苏,解冻后用移液器吹打均匀,加入适量培养液,调整细胞浓度;2. 细胞接种:将复苏后的细胞接种于培养瓶中,放入细胞培养箱培养;3. 细胞传代:待细胞长满培养瓶后,用胰蛋白酶消化细胞,调整细胞浓度后,重新接种于新的培养瓶中;4. 细胞观察:定期观察细胞生长情况,记录细胞形态、数量和生长速度;5. 细胞冻存:将细胞传代后,取适量细胞加入DMSO,冷冻保存。

五、实验结果与分析1. 细胞复苏:复苏后的细胞呈圆形,细胞膜完整,无碎片;2. 细胞接种:接种后的细胞在培养箱中生长良好,细胞形态规则,细胞间连接紧密;3. 细胞传代:传代后的细胞生长迅速,细胞数量逐渐增加;4. 细胞观察:细胞在体外培养过程中,形态、数量和生长速度逐渐稳定。

六、实验结论1. 成功掌握了细胞培养的基本原理和方法;2. 掌握了细胞培养过程中的无菌操作和细胞传代技术;3. 观察到细胞在体外培养过程中的生长和变化。

七、实验讨论1. 细胞培养过程中,无菌操作至关重要,应严格遵循无菌操作规程;2. 细胞传代时,应选择合适的胰蛋白酶浓度和消化时间,以减少对细胞的损伤;3. 细胞培养过程中,应定期观察细胞生长情况,及时调整培养条件,以保证细胞生长良好。

八、实验总结本次实验成功进行了细胞培养,掌握了细胞培养的基本原理和方法,为后续的细胞学研究奠定了基础。

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细胞生物学实验报告
实验四实验名称PAS反应法显示糖原及其它多糖
绘图并分析A、B片染色结果:
1.小鼠的肝脏细胞:
A片:经染色,细胞整体呈现紫红色,并有部分深紫红色颗粒分布在细胞一侧。

B片:经染色和淀粉酶消化后,细胞整体呈现紫红色,均匀分布,无深紫红色颗粒。

据实验原理可知,糖原会被淀粉酶消化,其他多糖不可以,因此,经过A、B片对比,A片中分布在细胞一侧的深紫红色颗粒为糖原,糖原出现极化现象。

小鼠的小肠细胞没有正确的对比图,没有观察到实验结果。

根据实验原理,粘多糖不是糖原,不能被淀粉酶分解。

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