高脂肪样本蛋白提取方法
蛋白质的分离提取方法
蛋白质的分离提取方法
蛋白质分离提取是生物分析中一种常见的分析方法。
它能够从各种细胞和蛋白溶液中分离提取出有用的蛋白质，并有效地检测蛋白质的结构和功能。
一般来说，蛋白质分离提取的具体工艺如下：
1.抽提溶解：通常，抽提溶解的工艺是将细胞或蛋白溶液抽提成单独的溶液，再通过更细的滤器或繁复的曲折手段将其中的一些蛋白分离提取出来。
抽提的溶液可以是一种细胞因子或去离子水，也可以是添加有特定蛋白的溶液。
抽提的方法包括溶胀（如乳酸钠溶解）、离心离液（如凝胶离心）、沉淀（如滤渣沉淀）和浓缩（如滤渣浓缩）等。
2.冷冻干燥：冷冻干燥的技术是改变物质的温度以及蒸发蒸馏，以将抽提的蛋白质溶解体转变为晶体状态。
冷冻干燥的具体工艺主要有：先冷冻、改变气压、蒸发水份，再加热恢复溶液容量。
3.结构分离：结构分离是指对抽提的蛋白质进行多种物理和化学方法分离提取，通过改变结构和性质来识别和纯化特定蛋白质。
结构分离的方法包括电泳（例如乳糖电泳）、离心离液（例如凝胶离心）、层析（例如膜滤层析）等。
脂肪组织rna trizol提取
脂肪组织rna trizol提取引言RNA提取是分子生物学研究中的一项重要步骤，它能够帮助我们了解基因表达和调控机制。
Trizol是一种常用的RNA提取试剂，其原理是利用酚和异硫氰酸盐钠（GuSCN）溶解细胞膜并使RNA稳定，随后使用异丙醇沉淀纯化RNA。
本文将详细介绍脂肪组织中RNA的Trizol提取方法。
材料与试剂1. Trizol试剂2. 75% 热力学乙醇3. RNase-free水4. 去离子水5. 1.5 mL离心管6. 冷藏离心机7. 离心管架8. 离心管转子9. 无菌取样器10. 显微镜片11. 显微镜12. 1 mL和200 μL的RNase-free离心管13. PCR仪步骤1. 将脂肪组织样本放入1.5 mL离心管中，加入1 mL Trizol试剂。
2. 使用无菌取样器彻底混合样本和试剂，确保完全溶解组织。
3. 将混合物在室温下静置5分钟，使RNA充分稳定。
4. 加入200 μL氯仿，并充分混合离心管，使混合物乳化。
5. 将离心管置于冰上，静置15分钟，使RNA与DNA和蛋白质分离。
6. 以12000×g的速度离心15分钟，将混合物分为两个相分离的层，上层为无色上清液，其中含有RNA。
7. 使用无菌取样器小心地将上清液转移到新的离心管中。
8. 加入1 mL 75% 热力学乙醇，轻轻倒置离心管混合。
9. 将离心管置于冰上静置10分钟，使RNA沉淀。
10. 以12000×g的速度离心10分钟，使RNA沉淀于离心管底部。
11. 弃去上清液，加入 1 mL 75% 乙醇洗涤RNA沉淀，轻轻倒置离心管混合。
12. 以7500×g的速度离心5分钟，去除乙醇。
13. 使用10 mL去离子水重悬RNA沉淀。
14. 将离心管放入PCR仪中，在60°C下孵育10分钟，使RNA充分溶解。
15. 可以使用紫外可见光或显微镜检测RNA溶液的质量和浓度。
讨论本文介绍了使用Trizol方法提取脂肪组织中的RNA的步骤和原理。
蛋白质的提取
蛋白质的提取一、概述蛋白质是生命体中最为重要的有机物之一，具有多种生物学功能。
因此，对蛋白质的提取和纯化技术的研究一直是生物学、生物工程学和食品科学等领域的热点问题。
蛋白质的提取方法主要包括机械法、化学法和生物法。
其中，生物法是目前最常用的方法之一。
二、生物法1. 细胞破碎法细胞破碎法是将细胞壁破坏，使细胞内部的蛋白质释放出来。
这种方法可以通过高压均质器、超声波或冻融等方式实现。
其中，高压均质器是目前应用最为广泛的设备之一。
2. 溶液分离法溶液分离法是利用化学性质不同而在溶液中分离不同组分的方法。
常见的溶液分离方法包括盐析、凝胶过滤、层析等。
（1）盐析：利用盐对蛋白质溶解度差异进行分离。
（2）凝胶过滤：利用凝胶孔径大小的差异进行分离。
（3）层析：利用不同的吸附剂对蛋白质进行分离。
3. 电泳法电泳法是利用电场对带电物质进行迁移的方法。
常见的电泳方法包括凝胶电泳、等电聚焦和两性离子电泳等。
三、蛋白质提取技术的选择在选择蛋白质提取技术时，需要考虑多个因素，如样品来源、目标蛋白质的性质和纯化要求等。
一般来说，对于大量细胞培养物或组织样品，可以采用高通量机械法或化学法进行破碎和提取；对于少量样品或需要高度纯化的目标蛋白质，可以采用生物法进行纯化。
四、常见问题及解决方法1. 蛋白质浓度过低可能原因：溶液中含有过多杂质；提取条件不足。
解决方法：增加提取时间或改变提取条件；通过溶液分离法去除杂质。
2. 蛋白质失活可能原因：温度过高或过低；pH值过高或过低；存在氧化剂等。
解决方法：调整提取条件，如降低温度、改变pH值；加入抗氧化剂等。
3. 蛋白质污染可能原因：操作不当或设备不洁净。
解决方法：加强操作规范和设备清洁。
五、结论蛋白质的提取技术是生物学、生物工程学和食品科学等领域的研究热点。
生物法是目前最常用的方法之一，包括细胞破碎法、溶液分离法和电泳法等。
在选择蛋白质提取技术时，需要考虑多个因素，如样品来源、目标蛋白质的性质和纯化要求等。
常见蛋白质提取方法
常见蛋白质提取方法大部分蛋白质都可溶于水、稀盐、稀酸或碱溶液，少数与脂类结合的蛋白质则溶于乙醇、丙酮、丁醇等有机溶剂中，因些，可采用不同溶剂提取分离和纯化蛋白质及酶。
（一）水溶液提取法稀盐和缓冲系统的水溶液对蛋白质稳定性好、溶解度大、是提取蛋白质最常用的溶剂，通常用量是原材料体积的1-5倍，提取时需要均匀的搅拌，以利于蛋白质的溶解。
提取的温度要视有效成份性质而定。
一方面，多数蛋白质的溶解度随着温度的升高而增大，因此，温度高利于溶解，缩短提取时间。
但另一方面，温度升高会使蛋白质变性失活，因此，基于这一点考虑提取蛋白质和酶时一般采用低温（5度以下）操作。
为了避免蛋白质提以过程中的降解，可加入蛋白水解酶抑制剂（如二异丙基氟磷酸，碘乙酸等）。
下面着重讨论提取液的pH值和盐浓度的选择。
1、pH值蛋白质，酶是具有等电点的两性电解质，提取液的pH值应选择在偏离等电点两侧的pH 范围内。
用稀酸或稀碱提取时，应防止过酸或过碱而引起蛋白质可解离基团发生变化，从而导致蛋白质构象的不可逆变化，一般来说，碱性蛋白质用偏酸性的提取液提取，而酸性蛋白质用偏碱性的提取液。
2、盐浓度稀浓度可促进蛋白质的溶解，称为盐溶作用。
同时稀盐溶液因盐离子与蛋白质部分结合，具有保护蛋白质不易变性的优点，因此在提取液中加入少量NaCl等中性盐，一般以0.15摩尔。
升浓度为宜。
缓冲液常采用0.02-0.05M磷酸盐和碳酸盐等渗盐溶液。
（二）有机溶剂提取法一些和脂质结合比较牢固或分子中非极性侧链较多的蛋白质和酶，不溶于水、稀盐溶液、稀酸或稀碱中，可用乙醇、丙酮和丁醇等有机溶剂，它们具的一定的亲水性，还有较强的亲脂性、是理想的提脂蛋白的提取液。
但必须在低温下操作。
丁醇提取法对提取一些与脂质结合紧密的蛋白质和酶特别优越，一是因为丁醇亲脂性强，特别是溶解磷脂的能力强；二是丁醇兼具亲水性，在溶解度范围内（度为10%，40度为6.6%）不会引起酶的变性失活。
蛋白提取方法
蛋白提取方法蛋白质是构成生物体的基本结构和功能的重要组成部分，其在生命科学研究中扮演着重要的角色。
因此，蛋白质的提取是研究分子生物学的基础工作之一。
蛋白质的提取包括其从蛋白质源中提取、制备和纯化，以及确定其细胞外及细胞内定位。
蛋白质提取一般先从蛋白质源中提取，其原料可以是细胞、组织、器官和生物体等，有时也可以从化学代谢中分离出蛋白质。
提取蛋白质的方法涉及多种技术，其中包括物理方法、化学方法、酶联方法、电离蒸发方法、气相色谱法等。
物理方法是常用的蛋白质提取方法，其原理是由于物质的分子大小不同，加上施加物理力量，可以对蛋白质进行分离。
常用的物理方法包括离心分离法、离心滤过法、筛分法等。
化学方法是通过化学反应将蛋白质从蛋白质源中提取出来的方法，其原理是利用化学反应物在蛋白质表面形成特定的结合位点，从而将蛋白质从蛋白质源中提取出来。
常用的化学法包括硫酸提取法、碱提取法、萃取提取法等。
酶联技术是蛋白质提取技术中一种重要的方法，其原理是通过酶作用，将蛋白质从蛋白质源中分离出来。
常用的酶有蛋白酶、胰蛋白酶、肝素酶等。
电离蒸发技术是蛋白质纯化技术中常用的一种技术，其原理是将蛋白质溶解在特定介质中，当温度升高到一定程度时，部分水分蒸发而使蛋白质激活，从而形成蛋白质凝胶。
气相色谱技术是蛋白质纯化技术中比较常用的一种技术，其原理是将蛋白质溶液中的蛋白质根据其疏水性和亲水性，在一定流速和温度下进行分离纯化。
细胞外及细胞内定位的确定是蛋白质提取的重要内容。
通常，蛋白质需要不同的氨基酸变化来确定其定位，包括细胞外性质及细胞内性质。
细胞外性质的定位可以通过序列分析、活性检测和特异性抗原结合试验等多种方法来确定。
同时，可以利用实验方法，如聚合酶链反应（PCR）、荧光共振能量转移（FRET）等，来确定蛋白质在细胞内的定位。
总之，蛋白质提取是研究分子生物学的重要基础工作，有多种方法可以用来提取蛋白质，其中包括物理方法、化学方法、酶联方法、电离蒸发方法和气相色谱法等，同时也可以通过实验方法来确定蛋白质的细胞外及细胞内定位。
四蛋白质的提取
离子交换色谱的流动相
▪ 多以水溶液为流动相 ▪ 组分的保留值和分离度主要是通过控制流
动相的pH值和离子强度来调节的 ▪ 增加流动相中盐的浓度，组分的保留值降
低。 ▪ 离子交换色谱中，常用NaNO3来控制流动
相的离子强度。
离子交换色谱的影响因素
▪ 填料孔径的影响。高效离子交换色谱采用 大孔径填料。
缓冲液的pH值
▪ 蛋白质在离子交换色谱中分离的基础是用 pH值来控制蛋白质的电荷。如果流动相的 pH值高于蛋白质的等电点（pI)，它将带有 净的负电荷；若流动相pH值低于蛋白质pI， 则显示净的正电荷。pI高的蛋白质最好在 阳离子交换柱上分离，pI低的蛋白质可选 择阴离子交换柱。
缓冲液的离子强度
Low speed
（二）密度梯度离心
▪ 装载密度梯度介质 ▪ 梯度介质有足够大的溶解度 ▪ 常用介质：蔗糖密度梯度系统 ▪ 制备：梯度混合器，层层铺垫 ▪ 介质的最大密度比沉降样品的最小密度小。 ▪ 适用于大小有别而密度相似的样品。
（三）等密度离心
▪ 常用介质：铯盐 ▪ 制备：铯盐在离心场中沉降形成密度梯度 ▪ 特点：样品和介质同时在各自密度点位置上形成
用于制备和纯化亚细胞成分和大分子，目的是制备样品
分析离心
☺ (analytical centrifugation)
分析和测定制剂中大分子的种类和性质(浮力密度和分子 量等)
SdωR2x/dt
S为沉降系数(秒)； R为沉降颗粒到转头中心的距离
(半径，cm)； ω为角速度，以每秒转动的弧度
沉降系数
SdωR2x/dt单位离心场中颗粒的沉降速度
体积排阻色谱的影响因素
▪ 填料。化学键合的硅胶和亲水树脂凝胶。 ▪ 柱长。分离度与柱长的平方根成正比。60
蛋白质的提取方式
蛋白质的提取方式《蛋白质的提取方式，你知道多少？》蛋白质，这可是个好东西啊，就像咱们身体里的小工匠，忙活着各种事儿呢。
那这么重要的东西，要是能把它提取出来，那得多厉害呀。
今天呀，我就来给大家讲讲蛋白质的提取方式。
你想啊，蛋白质在细胞里就像一个个小居民，住在自己的小房子里。
那要把它们请出来，可不容易呢。
有一种方法叫盐析法。
这就好比啊，给这些小居民们换个环境，加点盐进去。
盐就像一个调皮的小捣蛋鬼，让蛋白质住得不舒服了，它们就开始聚集在一起。
然后呢，我们就可以把它们分离出来啦。
这方法简单又实惠，就像咱们在家里做个小手工一样，没那么复杂。
还有一种是有机溶剂沉淀法。
有机溶剂就像是一群特殊的访客，它们进入到蛋白质的世界里。
这些有机溶剂一来呀，蛋白质就觉得有点晕头转向的，然后就沉淀下来了。
不过呢，这有机溶剂可不能随便用，得小心着点儿，就像对待珍贵的宝贝一样，要是用多了或者用错了，那可就麻烦咯。
凝胶过滤法也很有趣呢。
想象一下，有一个充满小通道的神奇世界，就像一个巨大的迷宫。
蛋白质们就像在迷宫里奔跑的小怪兽。
不同大小的蛋白质在这个迷宫里跑的速度不一样。
大的蛋白质呢，就像大怪兽，跑不进那些小通道，就只能从大路上快快地跑出去了。
小的蛋白质呢，在小通道里弯弯绕绕的，就跑得慢。
这样啊，我们就能把不同大小的蛋白质分开啦。
这是不是很神奇呢？离子交换层析法也是一种办法。
这就像是一场特殊的交换游戏。
蛋白质带着自己的电荷，就像带着自己的小标签。
我们用带有相反电荷的东西去吸引蛋白质。
不同的蛋白质带的电荷不一样，被吸引的程度也不一样。
就像在一群小朋友里，有的小朋友喜欢红色的气球，有的小朋友喜欢蓝色的气球一样。
这样我们就能把不同的蛋白质挑选出来啦。
蛋白质的提取方式是不是超级有趣呀？其实啊，这些方法都有自己的小脾气，我们得根据不同的情况去选择合适的方法。
可不能瞎搞一气哦。
不管怎么说，了解了这些蛋白质的提取方式，就像打开了一扇通往微观世界的小窗户，让我们能更好地认识这个奇妙的生物世界呢。
猪肉蛋白提取
肉中蛋白质提取条件的探究
稀盐和缓冲系统的水溶液对蛋白质稳定性好、溶解度大、是提取蛋白质最常用的溶剂，通常样品与提取液的体积比1：7，提取时需要均匀的搅拌，以利于蛋白质的溶解，提取时间一般为2h。
为了避免蛋白质提取过程中的降解，可加入蛋白水解酶抑制剂（如碘乙酸）。
下面着重讨论提取液的pH值、盐的种类及盐浓度的选择。
l 实验方法
1．1 工艺流程
实验流程如图所示
猪肉→斩拌、匀质→加盐，调pH、离心→取上清液→调节pH、静置→蛋白质1.2实验设计
1、2、1 pH值
蛋白质是具有等电点的两性电解质，提取液的pH值应选择在偏离等电点两侧的pH 范围内。
猪肉的等电点在酸性范围，因此提取液的pH设在中性至碱性范围。
pH值设为5.5 、6.0、6.5、7.0、7.5、8.0。
1、2、2 盐种类
钠盐（NaCl）、氯化钾（KCl）、磷酸盐（KH2PO4、K2HPO4、焦磷酸钠）1、2、3 盐浓度
在提取液中加入NaCl，浓度设为0.5%、1%、1.5%、2%、2.5%、3%
KCl 浓度0.1mol/L、0. 15mol/L、0. 2mol/L、0. 25mol/L、0. 3mol/L、0. 35mol/L。
磷酸盐浓度设为0.02 mol/L 、0.03 mol/L、0.04 mol/L、0.05 mol/L、0.06mol/L。
1．3 分析方法
测定所提取的蛋白质含量使用凯氏氮来表示，凯氏氮的测定方法为GB5009.5—2010 食品中蛋白质的测定。
蛋白质的提取与纯化
蛋白质的提取与纯化一，蛋白质的提取大部分蛋白质都可溶于水、稀盐、稀酸或碱溶液，少数与脂类结合的蛋白质则溶于乙醇、丙酮、丁醇等有机溶剂中，因些，可采用不同溶剂提取分离和纯化蛋白质及酶。
（一）水溶液提取法稀盐和缓冲系统的水溶液对蛋白质稳定性好、溶解度大、是提取蛋白质最常用的溶剂，通常用量是原材料体积的1-5倍，提取时需要均匀的搅拌，以利于蛋白质的溶解。
提取的温度要视有效成份性质而定。
一方面，多数蛋白质的溶解度随着温度的升高而增大，因此，温度高利于溶解，缩短提取时间。
但另一方面，温度升高会使蛋白质变性失活，因此，基于这一点考虑提取蛋白质和酶时一般采用低温（5度以下）操作。
为了避免蛋白质提以过程中的降解，可加入蛋白水解酶抑制剂（如二异丙基氟磷酸，碘乙酸等）。
下面着重讨论提取液的pH值和盐浓度的选择。
1、pH值蛋白质，酶是具有等电点的两性电解质，提取液的pH值应选择在偏离等电点两侧的pH 范围内。
用稀酸或稀碱提取时，应防止过酸或过碱而引起蛋白质可解离基团发生变化，从而导致蛋白质构象的不可逆变化，一般来说，碱性蛋白质用偏酸性的提取液提取，而酸性蛋白质用偏碱性的提取液。
2、盐浓度稀浓度可促进蛋白质的溶，称为盐溶作用。
同时稀盐溶液因盐离子与蛋白质部分结合，具有保护蛋白质不易变性的优点，因此在提取液中加入少量NaCl等中性盐，一般以0.15摩尔。
升浓度为宜。
缓冲液常采用0.02-0.05M磷酸盐和碳酸盐等渗盐溶液。
（二）有机溶剂提取法一些和脂质结合比较牢固或分子中非极性侧链较多的蛋白质和酶，不溶于水、稀盐溶液、稀酸或稀碱中，可用乙醇、丙酮和丁醇等有机溶剂，它们具的一定的亲水性，还有较强的亲脂性、是理想的提脂蛋白的提取液。
但必须在低温下操作。
丁醇提取法对提取一些与脂质结合紧密的蛋白质和酶特别优越，一是因为丁醇亲脂性强，特别是溶解磷脂的能力强；二是丁醇兼具亲水性，在溶解度范围内（度为10%，40度为6.6%）不会引起酶的变性失活。
蛋白质提取方法
蛋白质提取方法---- 列举10 种方法一、植物组织蛋白质提取方法（summer ）1、根据样品重量（1g 样品加入 3.5ml 提取液，可根据材料不同适当加入），准备提取液放在冰上。
2、把样品放在研钵中用液氮研磨，研磨后加入提取液中在冰上静置（3-4 小时）。
3、用离心机离心8000rpm40min4 C或11100rpm20min4 °C4、提取上清夜，样品制备完成。
蛋白质提取液：300ml1、1Mtris-HCl （PH8）45ml2、甘油（Glycerol ）75ml3、聚乙烯吡咯烷酮（Polyvinylpolypyrrordone ）6g 这种方法针对SDS-PAGE ，垂直板电泳！二、植物组织蛋白质提取方法（summer）三氯醋酸—丙酮沉淀法1 、在液氮中研磨叶片2、加入样品体积3倍的提取液在-20C的条件下过夜，然后离心（4C8000rpm以上1小时）弃上清。
3、加入等体积的冰浴丙酮（含0.07%的3■巯基乙醇），摇匀后离心（4C 8000rpm以上1小时），然后真空干燥沉淀，备用。
4、上样前加入裂解液，室温放置30分钟，使蛋白充分溶于裂解液中，然后离心（15C 8000rpm 以上1小时或更长时间以没有沉淀为标准），可临时保存在4C待用。
5、用Brandford法定量蛋白，然后可分装放入-80 C备用。
药品：提取液：含10%TCA 和0.07%的3-巯基乙醇的丙酮裂解液：2.7g尿素0.2gCHAPS溶于3ml灭菌的去离子水中（终体积为5ml）,使用前再加入1M 的DTT65ul/ml 。
这种方法针对双向电泳, 杂质少,离子浓度小的特点！当然单向电泳也同样适用, 只是电泳的条带会减少！三、组织：肠黏膜（newinbio ）目的：WESTERN BLOT 检测凋亡相关蛋白的表达应用TRIPURE 提取蛋白质步骤：含蛋白质上清液中加入异丙醇：（1.5ml 每1mlTRIPURE 用量）倒转混匀,置室温10min 离心：12000 g, 10min, 4 度,弃上清,加入0.3M 盐酸胍/95％乙醇：（2ml 每1mlTRIPURE 用量）振荡,置室温20min离心：7500g, 5 min , 4 度,弃上清重复0.3M 盐酸胍/95％乙醇步 2 次沉淀中加入100％乙醇2ml 充分振荡混匀,置室温20 min 离心：7500g, 5min, 4 度,弃上清吹干沉淀, 1％SDS 溶解沉淀离心：10000g, 10min , 4 度取上清-20 度保存（或可直接用于WESTERN BLOT ）存在的问题：加入1％SDS 后沉淀不溶解,还是很大的一块, 4 度离心后又多了白色沉定, SDS 结晶？测浓度,含量才1mg/ml 左右。
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使用方法：
细胞蛋白提取： 1. 提取液制备：每 500ul 冷的蛋白提取液中加入 2ul 蛋白酶抑制剂混合物混匀后 置冰上备用。 2. 取 5-10×106 个细胞①，在 4℃，1000rpm 条件下离心 5-10 分钟，小心吸取培养 基，尽可能吸干，收集细胞。 3. 用冷 PBS 洗涤细胞两次，每次洗涤后尽可能吸干上清。 4. 每 5×106 个细胞中加入 500ul 冷的蛋白提取液，混匀后，在 4℃条件下振荡 15-20 分钟。 5. 在 4℃，14000rpm 条件下离心 15 分钟。 6. 将含有脂肪的上清吸入蛋白离心管中，套上液体收集管，在 4℃，12000rpm 条 件下离心 5 分钟。 7. 将液体收集管中的液体吸入另一预冷的干净离心管，即可得到蛋白样品。 8. 将蛋白离心管中的脂肪杂质用吸头或合适工具刮出，即可用于处理上步未处理
完的样品或其他待处理样品。 9. 将上述蛋白提取物定量②后分装于-80℃冰箱保存备用或直接用于下游实验③。
组织蛋白提取： 1. 提取液制备：每 500ul 冷的总蛋白提取液中加入 2ul 蛋白酶抑制剂混合物，混 匀后置冰上备用。 2. 取 100mg 组织样本剪碎，加入蛋白提取液，用组织匀浆器匀浆至无明显肉眼 可见固体①。 3. 将组织匀浆吸入一预冷的干净离心管中，在 4℃，10000rpm 条件下离心 5 分钟。 4. 将含有脂肪的上清吸入蛋白离心管中，套上液体收集管，在 4℃，12000rpm 条 件下离心 5 分钟。 5. 将液体收集管中的液体吸入另一预冷的干净离心管，即可得到蛋白样品。 6. 将蛋白离心管中的脂肪杂质用吸头或合适工具刮出，即可用于处理上步未处理 完的样品或其他待处理样品。 7. 将上述蛋白提取物定量后分装于-80℃冰箱保存备用或直接用于下游实验。
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高脂肪蛋白提取试剂盒
产品组成：
产品组成 规格
蛋白提取液 蛋白酶抑制剂混合物
蛋白离心柱 使用说明书
BB-3162-1 50T 25ml 100ul 25 套 1
BB-3162-2 100T 50ml 200ul 50 套 1
储存条件： 蛋白酶抑制剂-20℃保存； 蛋白提取液和离心柱室温保存。
有效期： 一年。