抗人干扰素α2b单克隆抗体制备及初步鉴定

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抗重组人干扰素—α2b单克隆抗体的制备与应用

抗重组人干扰素—α2b单克隆抗体的制备与应用

才近 饱和。 免疫印迹星示与 r u H ⅢN— b 强反应 . a 有 2
而在 r l N—l Hu F a 条带位置没有显色 。
22 单扰亲和层析柱 的应 用 .
r uF -2 粗品经 H IN ab
单抗亲和层析柱纯化后 的样品 ,S SP E电泳银 D - AG 染一条带 , 比活为 2 O 0r  ̄g S Mc b层析 . X1 u/ _。 Dg A 柱 的最大吸 附容量为 1 6mg ml 。 .6 / 肢 人 a型干扰素 因分子量小免疫原性弱 而给 其单 抗制备带来难度 。我们 曾研制 出两株多用途的 a型 干扰素单抗 ,用其制备的亲和层析柱纯化 r IN- HuF
抗 rG C F单克隆抗体的制备和初步鉴定 h —S
王清 明
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风 荣 ( 军事 医学 科学 院放 射 医学研 究所
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北京
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粒细 胞集落刺激 因子 ( — S ) 一种造血调 控 GC F 是
2 2 单 抗的特异性鉴定
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《 上海免疫学杂志 }9 8 1 9 年第 1 卷第 1 8 期
51 ·
抗重组人干扰素一2 ab单克隆抗体的制备与应用
宋礼 华 杨玲 。杜 贤 宇 王荣 海 傅 永标
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常规方法 制备单抗 。
13 单抗识 别抗原 表位鉴 定试 验 用 1 / l . 5 m的
抗原包被检 I (0 l孔 ) 对杂交瘤 细胞 的培养 上 扳 5 f/ , 清及其系列倍 比稀 释液进 行间接 E IA检 测 , 出 LS 找

抗人APPβ水解位点单克隆抗体的制备及其初步鉴定

抗人APPβ水解位点单克隆抗体的制备及其初步鉴定

载体 p G PN E F — 1为本 室保存 。限制性 内切酶 Hn m和 Sl 为 id a I 宝生 物工程 公 司产品 。G Pm b购 自碧 云 天生物 技术研 究 F A
聚集 和沉 积 , 导致 可溶性 A1寡 聚体 片段 和 A 是 3 D老 所。增强型 H PD B底物 显色试 剂盒为北 京天 根生化科 技 R —A 年斑 形成 以及 神 经 元毒 性 的主 要诱 因 … ,阻 断 或 清
We e lt s r bo 等方法对其特异性进行检测 。结果 :获得 2株稳 tn
点封 闭功能和构建小 分子抗体奠定基础 。
[ 关键词 ] A P p位点 ; P; 杂交瘤 ; 单克隆抗体; 阿尔茨海默病 [ 中图分类号 ] Q 1 . 8 32 [ 文献标识码 ] B
1 材 料和 方法
靠 近 A1的 N端 ,即靠 近 A P的 B切 割位 点 , 可 3 P 则 干扰 A p的产 生 。进 一 步研究 表 明识 别横 跨 A P PI 3 位点序 列 的抗 体 具 有 同样 的干 扰 作 用 j ,虽 然没 有
克隆抗体 ( b 。方法 :以 A P 水解 位点短序列 多抗 原肽 mA ) P[ 3
慢性 进行性神 经元 变性疾 病 ,多发 于老年人 ,是老 年 6周龄 的 B L / 鼠购 自湖北省实验动物 中心 , A B c小 骨髓瘤细胞
p/ HOK1 性痴呆 的主要 类型之 一 。A D在世 界范 围 内的汉大学 中国典型
免疫 B L / 小 鼠, 脾细胞 和骨髓瘤 细胞 S2 0进行 常规 ABe 取 p/
融合 , 通过 间接 E IA和有限稀释法 进行筛 选和亚 克隆 ,获 LS
得能分泌针对 AP B水 解位 点 m b的 杂交 瘤 , 用 E IA、 P A 采 LS

人干扰素a2b生产工艺

人干扰素a2b生产工艺
3 0.5 ×10
测定方法
菌体浓度测定采用浊度法 测定波长600 nm处的光密度(OD600), 根据标准曲线计算菌体干重。 葡萄糖测定采用葡萄糖测定试剂盒测定 乙酸测定采用气相色谱法
hIFNa2b的电泳测定采用三(羟甲 基)甲基甘氨酸(φ=0.15)-SDS-聚丙 烯酰胺三层胶系统分离目的蛋白 , 凝胶用考马斯亮蓝染色,用图像分
析系统定量 。
取发酵液于12 000 r/min,4°C下离 心10 min,得到的菌体用Tris-HCl缓 冲液(50 mmol/L, pH 7.0,4°C)洗涤, 然后溶于上样缓冲液中[12mmol/L、 pH 6.8 Tris-HCl,甘油 (φ=0.05),SDS(7.5 g/L),巯基乙醇 (φ=0.02),溴酚兰(0.5 g/L]。
结果与讨论
分批发酵
在5 L罐中分批培养
葡萄糖流加对于hIFNa2b 生产水平的影响
诱导前添加有机氮源对hIFNa2b生产水平 的影响
Interferona2b,hIFNa2b)
hIFNa2b是由165个氨基酸组成的多 肽,具有抗病毒、抗肿瘤、免疫调节、 修复DNA结构损伤等作用。
hIFNa2b在临床上广泛应用,对肝炎、
呼吸道病毒感染、疱疹病毒感染等 均具有治疗作用。
培养基: 种子培养基为LB培养基 蛋白胨10 g/L 酵母抽提物5 g/L NaCl 10 g/L 灭菌后加入100 mg/L氨苄青霉素钠 分批发酵培养基为含葡萄糖 5 g/L的LB 培养基
发酵罐培养
将二级种子以6%的接种量接入5 L 发酵罐(RIBE-5型)中。培养液装量 为2.5 L,生长阶段控制温度30°C, 表达阶段控制温度42°C,发酵过 程中控制pH为7.0,通气量4 L/min, 初始搅拌转速为400 r/min,发酵过 程中转速逐渐提高以维持溶氧大于 20%。

抗人β2微球蛋白单克隆抗体的制备及鉴定

抗人β2微球蛋白单克隆抗体的制备及鉴定
[ src] jcieT rp r a dietymo oln l niois( A ) gis p一 colb l . to s B l/ Abta t Ob et :opeae n ni n co a a t de Mc b a a t 2mirgo ui Meh d : abc v d f b n n
P o u t n a d ie t c t n f mo o ln l a t o is a an t j 一 - r d ci n d ni ai o n co a ni de g is I mi o i f o b l 2
c o lb i r g o uln
D u- n L K —hn, I NXa- e, U N M n, E We- u UH i e, I eseg LA i w n Y A f o i Y n ha g ( dcl it h ooyC ne, a s dc eerhIs tt, a z o 7 0 5 , hn ) Me i o c n lg e trG nuMe ia R sac tue L nh u 3 0 0 C ia aB e l ni
ma ee o t n d ta rd c d t emA p c i t e B 一 co lb l i o td t tbe co s r a t i i t e 8 r ba e h t o u e b s e i c o t 2 mirgo ui w t u ee a l r s— e c vt w t oh r w i p h f h n h c i y h
mco ou n a r r e s gni c ez el kdim ns bn asyE IA. e l: e ri bi — i g b l s e o dui dr t ny -i e uoo et s (LS )R s t T n t n oh r o r l iw p fm ni e m n m r a us 8a sf y d

重组人干扰素α2b的制备方法[发明专利]

重组人干扰素α2b的制备方法[发明专利]

(19)中华人民共和国国家知识产权局(12)发明专利申请(10)申请公布号 (43)申请公布日 (21)申请号 201710713543.1(22)申请日 2017.08.18(71)申请人 安徽安科生物工程(集团)股份有限公司地址 230088 安徽省合肥市高新区海关路9号(72)发明人 李道远 邹文艺 赵伟 李成彬 黄伟 朱武进 宋礼华 饶海军 华晓君 (74)专利代理机构 合肥诚兴知识产权代理有限公司 34109代理人 汤茂盛(51)Int.Cl.C12N 15/21(2006.01)C12N 15/70(2006.01)C07K 14/56(2006.01) (54)发明名称重组人干扰素α2b的制备方法(57)摘要本发明涉及干扰素技术领域,具体涉及一种重组人干扰素α2b的制备方法;包括如下步骤:(1)构建重组人干扰素α2b基因的表达载体,转化入感受态细胞;(2)构建大肠杆菌二硫键异构酶C基因的重组质粒;(3)将重组质粒转化入感受态细胞,获得双质粒重组表达菌株;(4)对双质粒重组表达菌株进行诱导表达、复性和纯化,获得重组人干扰素α2b;本发明提供的重组人干扰素α2b的制备方法,能促进二硫键cys1-cys98正确配对,从而减少重组人干扰素α2b的慢带组分,进而提高人干扰素α2b的稳定性和抗病毒活性。

权利要求书2页 说明书6页序列表1页 附图2页CN 107384934 A 2017.11.24C N 107384934A1.一种重组人干扰素α2b的制备方法,其特征在于,包括如下步骤:(1)构建重组人干扰素α2b基因的表达载体,转化入感受态细胞;(2)构建大肠杆菌二硫键异构酶C基因的重组质粒;(3)将重组质粒转化入感受态细胞,获得双质粒重组表达菌株;(4)对双质粒重组表达菌株进行诱导表达、复性和纯化,获得重组人干扰素α2b。

2.根据权利要求1所述的重组人干扰素α2b的制备方法,其特征在于,所述步骤(1)的具体步骤如下:(1.1)以人干扰素α2b基因为模板,在序列分别为SEQ ID NO.1和SEQ ID NO.2的上、下游引物P1和P2的作用下,经PCR扩增获得人干扰素α2b基因片段;(1.2)将上述获得的人干扰素α2b基因片段用限制性内切酶双酶切,插入到原核表达载体相应的酶切位点,所述限制性内切酶为Nde Ⅰ和BamH Ⅰ,原核表达载体为pJW-2,其上含有P R P L串联启动子;(1.3)用CaCL2法将含有重组人干扰素α2b基因的表达载体转化入感受态细胞,所述感受态细胞为E.coli BL21(DE3)。

重组人干扰素α2b凝胶的制备及安全性评价

重组人干扰素α2b凝胶的制备及安全性评价
pearanceꎬdelicate in touchꎻThe microstructure of the gel was three ̄dimensional network The biological activity of in ̄
terferon was stable and the main quality indexes such as appearance and pH were stable within 18 months No skin
海峡药学 2020 年 第 32 卷 第 3 期
药剂
重组人干扰素 α2b 凝胶的制备及安全性评价
倪晓燕1 ꎬ周乐春1 ꎬ 储 成 风1 ꎬ 王 荣 海1ꎬ2 ꎬ 宋 礼 华1ꎬ2 (1 安 徽 安 科 生 物 工 程 ( 集 团) 股 份 有 限 公 司ꎬ 安 徽 合 肥
230088ꎻ2 安徽省生物研究所ꎬ安徽合肥 230088)
were performed using guinea pigsꎬskin irritation and local irritation studies were performed using New Zealand rab ̄
bits RESULTS The prepared recombinant human interferon α2b gel was smooth and transparent in outward ap ̄
扰素生物学活性稳定ꎬ外观及 pH 等主要质量指标在 18 个月内稳定ꎻ重组人干扰素 α2b 凝胶给予豚鼠皮肤涂抹ꎬ未见皮肤过敏反应发生ꎻ新西兰
兔破损皮肤重复涂抹给予重组人干扰素 α2b 凝胶后ꎬ未见与供试品相关的皮肤刺激性反应ꎻ新西兰兔完整皮肤和阴道重复给予重组人干扰素

α-2b干扰素单克隆抗体制备、鉴定及检测方法的研究

α-2b干扰素单克隆抗体制备、鉴定及检测方法的研究

结果3·结果3.1抗原鉴定结果3.1.1SDS—PAGE测总蛋白成分结果抗原IFN-a2b.HSA和IFN.a2b经SDS.PAGE电泳分析,纯度可达到98%以上,相对分子量分别为84kDa和17kDa,结果见图3-1。

图3-1蛋白电泳结果Fig3-1ElectrophoresisofIFN-a2b-HSAand1FN—a2b3.1.2BCA法测蛋白浓度结果使用BCA试剂盒测蛋白浓度,用MicrosoftExcel软件处理结果:用各点的浓度对设定波长处的吸光度做曲线,如图3.2,由直线方程计算出所测定样品的蛋白浓度。

IFN.a2b.HSA的1/2浓度处吸光值为1.647,lFN-a2b原始浓度处吸光值为0.844,由直线方程计算出IFNoa2b.HSA浓度为2.4mg/ml,IFN-a2b浓度为0.45mg/ml。

O1.5225图3-2BCA法测蛋白浓度曲线Fig3-2CurveofproteinconcentrationsbyBCAkits绷薹詈蜥姗舌|o强占魁柽菇臻结果染色体数为100左右。

由于脾脏细胞的染色体数为40,小鼠骨髓瘤细胞Sp2/O为62.68,所以两者融合前与融合后杂交瘤的染色体数正好相符,从而说明了融合是成功的。

3.5.2单抗效价的测定图3-7杂交瘤细胞染色体照片Fi93-7Photoofchromatinofhybridcell经细胞融合,采用间接ELISA方法筛选出阳性克隆并进行克隆化培养。

最后得到IFN.a2b阳性克隆,融合效价大于1:32000,单抗细胞株细胞培养上清效价大于1:128000,腹水效价大于1:256000。

继续培养单抗细胞,并且将部分细胞冻存以后待用。

表3-4IFN.a2b杂交瘤细胞株与单抗效价Tab3-4"literofIFN··a2bhybtidomafusionandIFN—a2bMcAbsIB44H81lE212F39877E813G416Fll3.5.3亚型分析采用鼠单抗定型Immunotyp一试剂盒,得到IFN.a2b单抗的亚型如表3-5。

重组人干扰素α2b的制备研究

重组人干扰素α2b的制备研究

生物技术进展2016年㊀第6卷㊀第3期㊀212~218CurrentBiotechnology㊀ISSN2095 ̄2341研究论文Articles㊀收稿日期:2016 ̄01 ̄24ꎻ接受日期:2016 ̄03 ̄15㊀作者简介:梁果义ꎬ副研究员ꎬ主要从事生物制品的研发ꎮTel:010 ̄68727127ꎮE ̄mail:liangguoyi@slpharm.com.cn重组人干扰素α2b的制备研究梁果义ꎬ㊀刘晓航北京双鹭药业股份有限公司ꎬ北京100043摘㊀要:为了获得高活性高纯度的rhIFNα2bꎬ对重组人干扰素α2b进行克隆㊁表达ꎬ并深入研究了其纯化工艺ꎮ采用重叠延伸PCR法合成了编码IFNα2b的基因ꎬ用DNA重组技术构建了原核表达载体pBV220 ̄IFNα2bꎬ获得了稳定的工程菌种ꎮ发酵产物通过破菌㊁洗涤获得包涵体ꎬ再经过变性㊁复性㊁离子交换层析和凝胶过滤层析的纯化ꎬ得到rhIFNα2b纯品ꎬ其比活可达1ˑ108IU/mgꎮ实验结果为进一步开展临床前研究和长效制剂奠定了基础ꎮ关键词:干扰素α2bꎻ制备ꎻ表达ꎻ纯品DOI:10.3969/j.issn.2095 ̄2341.2016.03.11StudyonthePreparationofRecombinantHumanInterferonα2bLIANGGuo ̄yiꎬLIUXiao ̄hangCompanyProfileofBeijingSLPharmꎬBeijing100043ꎬChinaAbstract:Recombinanthumaninterferonα2bwaspreparedbycloningꎬexpressionꎬpurificationforobtainingrhIFNα2bwithhighactivityandpurity.OverlapextensionPCRwasperformedtoobtainthegeneencodingforIFNα2b.AprokaryoticvectorexpressingrhIFNα2bwasconstructedsuccessfully.TheexpressionvectorpBV220 ̄IFNα2bwastransformedintoE.colistrainDH5α.Afterfermentationꎬthebacteriacellswascollectedandlysed.FinallyꎬtherhIFNα2bwaspurifiedbydenaturationꎬrenaturationꎬionexchangechromatographyandgelfiltrationchromatographyꎬanditsspecificactivityreached1ˑ108IU/mg.Theresultswasexpectedtolaythefoundationforpreclinicalresearchandlong ̄actingpreparation.Keywords:interferonα2bꎻpreparationꎻexpressingꎻpurify㊀㊀干扰素是一类重要的细胞因子ꎬ具有普遍的生物学功能ꎬ可以抵抗病毒感染ꎬ影响细胞生长㊁分化和调节生物机体免疫的功能ꎮ它在疾病的临床治疗上使用数年ꎬ在治疗病毒性感染㊁癌症和多发性免疫疾病等方面都有广泛的应用ꎮ目前世界上包括中国在内的50多个国家已批准干扰素上市ꎬ治疗约30多种疾病ꎬ如慢性乙型肝炎(CHB)㊁SARS病毒㊁毛细胞白血病㊁尖锐湿疣㊁艾滋病患者的卡波济肉瘤㊁慢性肉芽肿瘤㊁病毒性红眼病㊁病毒性角膜炎㊁唇和生殖器疱疹㊁水痘㊁慢性宫颈炎和巨细胞病毒病[1~4]等ꎮ目前所报道过的干扰素按照细胞结构和来源可分为α㊁β㊁γ干扰素3个型别ꎬα干扰素又称人白细胞干扰素ꎬ它是由B淋巴细胞和单核细胞产生的ꎮα干扰素亚型至少有23种ꎬ成簇分布于人第9号染色体的p22区ꎬ总长度1~2kbꎬ没有内含子ꎮ干扰素α2b是由165个氨基酸残基组成的单链多肽[3]ꎬ理论值分子量为19237Daꎬ含4个Cys残基ꎬ形成2个分子内二硫键(Cys1和Cys98㊁Cys29和Cys138)ꎬ其中Cys29和Cys138之间的二硫键对IFNα2b形成特定的立体结构和表现生物活性非常重要[5ꎬ6]ꎮIFNα2b等电点在pH5~6之间ꎬ在pH2.5的溶液中稳定ꎬ在0.1%SDS溶液中稳定ꎬ对热亦稳定ꎬ对各种蛋白酶敏感ꎮ天然α干扰素无糖基化位点ꎮ目前已有40kDaPEG修饰的IFN ̄α2a(Pegasys )和12kDaPEG修饰的IFN ̄α2b. All Rights Reserved.(PegIntron Shering ̄Plough)应用于临床ꎬ这两类产品都能够延长IFN ̄α在体内的半衰期ꎮ然而ꎬPEG修饰的IFN ̄α在体外的抗病毒活性较之未经修饰的IFN ̄α都有所降低[7]ꎮ修饰过的干扰素延长半衰期ꎬ改进药物治疗的有效性和耐受性ꎮ干扰素的制备是干扰素药物研发的一个难点ꎮ虽然包涵体复性过程繁琐㊁收率低ꎬ但是表达量高㊁成本低㊁生产周期短ꎬ干扰素通常以大肠杆菌包涵体的形式表达ꎮ本研究通过基因工程方法拼接成功构建了原核表达载体pBV220 ̄IFNα2bꎬ获得了工程菌种ꎬ改进了纯化方法ꎬ加入凝胶过滤层析ꎬ制备高纯度的样品ꎬ提高了生物活性ꎬ以期为进一步开展药学研究和长效制备提供依据ꎮ1㊀材料与方法1.1㊀实验材料DH5α感受态细胞为全式金生物技术有限公司产品ꎬ质粒pBV220为本实验室保存ꎬDNA片段由北京三博远志生物技术有限责任公司合成ꎻ核酸纯化试剂盒㊁质粒提取试剂盒为Omega公司产品ꎻ低分子量核酸标记物TaKaRaDL2000㊁dNTP㊁各种限制性内切酶㊁T4DNA连接酶为TaKaRa公司产品ꎻpfuDNA聚合酶为TianGen公司产品ꎻ氨苄青霉素为石药集团产品ꎻTris为Pro ̄mega公司产品ꎻSDS㊁丙烯酰胺㊁甲叉双丙烯酰胺为Sigma公司产品ꎻTryptone㊁Yeastextraction为OXIOD公司产品ꎻ结晶紫为北京旭东化工厂产品ꎻRPMI1640为GBICO公司产品ꎻ其余为国产分析纯试剂ꎮQSepharoseFastFlow㊁SephacrylS ̄100均为GE公司产品ꎬ其他溶液配方见表1ꎮ1.2㊀实验方法1.2.1㊀IFNα2bDNA片段的合成㊀DNA片段的设计参考魏开坤等[8]重组人干扰素α2b的基因序列ꎬ根据实验设计把α2b全基因分成16个片段ꎬ即A1~A16个序列(表2)ꎬ接着以顺序拼接成整条寡核苷酸ꎬ相临的片段之间均包含一部分重叠序列ꎬ并在N末端和C末端相应导入限制性内切酶EcoRⅠ㊁SalⅠ的酶切位点ꎮ表1㊀本研究所用到的溶液配方Table1㊀Solutionformulausedinthisstudy.溶液名称配方LB培养基胰蛋白胨10g/Lꎬ酵母提取物5g/LꎬNaCl10g/LꎬpH7.5裂解缓冲液20mmol/LTris ̄HClꎬ4mmol/LEDTAꎬpH8.0包涵体洗涤液A20mmol/LTris ̄HClꎬ1mol/L尿素ꎬ1%TritonX ̄100ꎬ0.15mol/LNaClꎬ2mmol/LEDTAꎬpH8.0包涵体洗涤液B20mmol/LTris ̄HClꎬ2mol/L尿素ꎬ1%TritonX ̄100ꎬ0.15mol/LNaClꎬ2mmol/LEDTAꎬpH8.0变性缓冲液100mmol/LTris ̄HClꎬ6mol/L盐酸胍ꎬ0.15%β ̄巯基乙醇复性缓冲液20mmol/LTris ̄HClꎬ0.5mol/L甘氨酸ꎬ0.15%PEG ̄6000ꎬ4mmol/LEDTAꎬpH8.0平衡缓冲液A10mmol/LTris ̄HClꎬpH8.0洗脱缓冲液A10mmol/LTris ̄HClꎬ0.2mol/LNaClꎬpH8.0平衡缓冲液B20mmol/LPBꎬ0.15mol/LNaClꎬpH7.0㊀㊀利用重叠延伸PCR法进行rhIFNα2b全基因合成ꎮ延伸PCR法扩增IFNα2b流程:①将片段A1~A4㊁A5~A8㊁A9~A12㊁A13~A16四四混合ꎬ配制PCR反应混合物进行PCR延伸ꎮ将A1~A4㊁A5~A8㊁A9~A12㊁A13~A16各组PCR产物标记为B1㊁B2㊁B3㊁B4ꎮ②将B1㊁B2作为核心模板ꎬA1㊁A8作为两头的引物ꎻ将B3㊁B4作为核心模板ꎬA9㊁A16作为两头的引物ꎻ配制PCR反应混合物ꎬ进行PCR延伸ꎮ将B1㊁B2㊁A1㊁A8组和B3㊁B4㊁A9㊁A16组PCR产物标记为C1㊁C2ꎮ将C1㊁C2作为核心模板ꎬA1㊁A16作为两头的引物ꎬ配制PCR反应混合物ꎬ进行PCR循环ꎮ1%琼脂糖凝胶电泳检测PCR最终扩增产物[9]ꎮ1.2.2㊀表达质粒pBV220 ̄IFNα2b的构建㊀通过312梁果义ꎬ等:重组人干扰素α2b的制备研究. All Rights Reserved.表2㊀α2b基因片段序列Table2㊀Sequenceofα2bgenefragment.序列名称序列(5ᶄң3ᶄ)A15ᶄ ̄GAGGAATTCATGTGTGACCTGCCGCAGACCCACTC ̄3ᶄA25ᶄ ̄GAGCCAGCAGCATCAGGGTACGACGAGAACCCAGAGAGTGGGTCTGCGGCAG ̄3ᶄA35ᶄ ̄CCTGATGCTGCTGGCTCAGATGCGTCGTATCTCTCTGTTCTCTTGCCTGAAAG ̄3ᶄA45ᶄ ̄CTCTTCCTGCGGGAAACCGAAGTCGTGACGGTCTTTCAGGCAAGAGAACAG ̄3ᶄA55ᶄ ̄GGTTTCCCGCAGGAAGAGTTCGGTAACCAGTTCCAGAAAGCTGAAACCATCC ̄3ᶄA65ᶄ ̄GAAGATCTGCTGGATCATTTCGTGCAGAACCGGGATGGTTTCAGCTTTCTG ̄3ᶄA75ᶄ ̄AAATGATCCAGCAGATCTTCAACCTGTTCTCTACCAAAGACTCTTCTGCTGC ̄3 A85ᶄ ̄GGTGTAGAATTTGTCCAGCAGGGTTTCGTCCCAAGCAGCAGAAGAGTCTTTGG ̄3ᶄA95ᶄ ̄GCTGGACAAATTCTACACCGAACTGTACCAGCAGTTGAACGACCTGGAAGC ̄3ᶄA105ᶄ ̄GGTTTCGGTAACACCAACACCCTGGATAACGCAAGCTTCCAGGTCGTTCAAC ̄3ᶄA115ᶄ ̄TGTTGGTGTTACCGAAACCCCGCTGATGAAAGAAGACTCTATCCTGGCTGTTC ̄3ᶄA125ᶄ ̄CAGGTACAGGGTGATACGCTGGAAGTATTTACGAACAGCCAGGATAGAGTC ̄3ᶄA135ᶄ ̄CGTATCACCCTGTACCTGAAAGAAAAGAAATACTCTCCGTGCGCTTGGGAAG ̄3ᶄA145ᶄ ̄GAGAGAAAGAACGCATGATTTCAGCACGAACAACTTCCCAAGCGCACGGAG ̄3ᶄA155ᶄ ̄AATCATGCGTTCTTTCTCTCTGTCTACCAACCTGCAGGAATCTCTGCGTTC ̄3ᶄA165ᶄ ̄GACGTCGACTCATTCTTTAGAACGCAGAGATTCCTGC ̄3ᶄ琼脂糖凝胶电泳回收目的基因IFNα2b的PCR产物ꎬ与表达载体pBV220进行EcoRⅠ与SalⅠ双酶切ꎬ于37ħ酶切3hꎬ回收备用ꎮ目的片段经过内切酶EcoRⅠ与SalⅠ消化ꎬ将消化后的目的片段IFNα2b和同样酶切后载体pBV220的连接体系混合ꎬ产物于4ħ孵育过夜ꎮ取部分连接体系热转化大肠杆菌DH5α感受态细胞ꎮ32ħ孵育0.5hꎬ涂布于含相应抗性的LB平板ꎬ平板置于超净台晾干ꎮ32ħ培养箱过夜培养ꎮ挑取克隆ꎬ经过质粒小量制备后ꎬ进行EcoRⅠ与SalⅠ双酶切ꎬ于37ħ酶切3hꎬ1%琼脂糖凝胶电泳检测酶切反应产物ꎮ阳性菌落菌种保藏后测序ꎮ1.2.3㊀重组pBV220 ̄rhIFNα2b的表达验证㊀将阳性菌落按照1%比例接种到含50μg/mL氨苄青霉素的新鲜LB培养基中ꎬ于32ħꎬ200r/min培养3hꎬ升温至42ħꎬ继续培养4hꎮ于6000r/min离心5minꎬ收获菌体沉淀ꎬ向沉淀中加入100μL水重悬ꎬ取10μL加入10μL2ˑLoadingBuffer沸水浴5minꎬ取10μL上样ꎮ把上述方法诱导表达后获得的菌体沉淀重悬ꎬ超声破碎ꎬ12000r/min离心20minꎬ分别取上清㊁沉淀ꎬ15%SDS ̄PAGE电泳ꎬ观察目的蛋白在上清和沉淀中的表达情况ꎮ1.2.4㊀基因工程菌pBV220 ̄IFNα2b/DH5α的发酵培养㊀一级种子培养:将150mL甘油保存菌接种于装有100mLLB液体培养基(Ampicillin100μg/mL)的250mL三角瓶中ꎬ于32ħꎬ200r/min培养约10hꎮ二级种子培养:以120μL/200mL的接种量接种一级种子培养液于10个装有200mLLB液体培养基(含氨苄青霉素100μg/mL)的500mL三角瓶中ꎬ于32ħ㊁200r/min培养约12hꎮ发酵:发酵罐工作容积:20Lꎻ种子液接种量:10%ꎬ共2Lꎮ按10%接种量将二级种子培养液接种到30L发酵罐中进行培养ꎬ发酵体积为20LꎬpH控制在7.00ʃ0.05ꎬ通过发酵控制系统自动补加5mol/LNaOH调节pHꎮ温度控制在32ħꎬ溶氧控制在30%以上ꎬ培养过程中可通过提高通气量和搅拌速度来提高溶氧量ꎮ发酵过程中定时取样检测细菌密度和培养基中的葡萄糖含量ꎮ培养菌株至OD600约为3.5时ꎬ培养基中的葡萄糖几乎消耗完毕ꎬ以2mL/min的流速滴加补料412生物技术进展CurrentBiotechnology. All Rights Reserved.液ꎬ培养至OD600约为4时ꎬ迅速升温至42ħꎬ热诱导表达3hꎬ离心收集湿菌体ꎮ1.2.5㊀重组蛋白rhIFNα2b的分离纯化[10]㊀表达后菌液的处理:按200g发酵湿菌体加4L起始缓冲液ꎬ均匀悬浮细菌后ꎬ进行超声破碎ꎬ1L/次ꎬ1200Wꎬ超声1sꎬ间隙1sꎬ40minꎮ8000r/min离心20minꎬ收集包涵体沉淀ꎮ将包涵体沉淀分别用包涵体洗涤液A㊁包涵体洗涤液B㊁起始缓冲液洗涤一次ꎬ8000r/min离心20minꎬ收集包涵体ꎮ将包涵体沉淀用包涵体缓冲液溶解(10mL/g包涵体沉淀)ꎬ4ħ搅拌过夜ꎬ8000r/min离心20minꎬ收集上清液ꎬ即为包涵体变性液ꎮ包涵体蛋白的复性:在缓慢磁力搅拌下ꎬ将包涵体变性液以1ʒ100(V/V)加入到复性缓冲液中ꎬ完全加入后静置4hꎮ复性蛋白的透析:将复性蛋白装入处理好的透析袋(截留分子量为14kDa)ꎬ完全浸入20倍样品体积的10mmol/LTris ̄HClꎬpH8.0透析液中透析24hꎮ其间可更换3次透析液ꎮ透析完成后收集蛋白溶液ꎬ8000r/min离心20minꎬ收集上清液备用ꎮQSepharoseFastFlow离子交换层析:用平衡缓冲液A对层析柱进行平衡ꎬ使得流出液的电导㊁pH和平衡缓冲液A一样ꎬ将透析离心后所获得的目的样品上样ꎮ用平衡缓冲液A淋洗ꎬ去除非特异性吸附的蛋白ꎮ用洗脱缓冲液A进行洗脱ꎬ流速为0.5mL/minꎮ用15%SDS ̄PAGE电泳对收集的样品进行检测ꎮ把收集的样品用超滤的方法进行浓缩处理ꎬ准备下一步纯化ꎬ选择截留分子量为5000kDa的膜包ꎮSephacrylS ̄100凝胶过滤层析:用平衡缓冲液B对层析柱进行平衡ꎬ使得流出液的电导㊁pH和平衡缓冲液B一样ꎬ将超滤浓缩后所获得的目的样品上样ꎮ用平衡缓冲液B进行洗脱ꎬ流速为1mL/minꎬ分段收集ꎮ用15%SDS ̄PAGE电泳对收集的样品进行检测ꎮ1.2.6㊀蛋白含量测定㊀蛋白质含量测定使用Lowry法(即Folin ̄酚法)[11]ꎮ精密称取牛血清白蛋白ꎬ用水溶解成不同的浓度作为标准蛋白质溶液ꎬ取一定量的样品适当稀释ꎬ测得样品吸光度ꎮ以标准品蛋白质浓度为横坐标ꎬ吸光度为纵坐标绘制标准曲线ꎬ将样品对应的吸光度代入直线回归方程ꎬ计算样品的蛋白质含量ꎮ1.2.7㊀体外生物活性测定㊀采用细胞病变抑制法测定干扰素的体外生物学活性[12]ꎮ2㊀结果与分析2.1㊀重叠延伸PCR法合成IFNα2bcDNA经过三步重叠PCRꎬ最终检测结果见图1ꎬ可见PCR产物在500bp左右出现了谱带ꎮ条带清晰ꎬ大小与设计相同ꎬ可用于后续构建实验ꎮ图1㊀干扰素α2b的PCR扩增Fig.1㊀PCRamplificationsofIFNα2b.M:DL2000Markerꎻ1:重叠PCR扩增的IFNα2b2.2㊀提取质粒后进行双酶切对阳性重组子的验证挑取转化后平板中的克隆子ꎬ培养后利用质粒提取试剂盒提取质粒ꎬ用EcoRⅠ和SalⅠ酶切ꎬ在500bp左右的位置ꎬ泳道2出现了谱带(图2)ꎬ证明质粒中插入基因与目的基因大小相同ꎬ说明质粒构建成功ꎮ2.3㊀对阳性克隆重组子的诱导表达验证对阳性菌落进行测序ꎬ测序结果与设计相同ꎮ进行诱导表达验证ꎬ并进行15%SDS ̄PAGE检测ꎬ结果见图3ꎮ与诱导前相比ꎬ诱导后蛋白表达明显ꎬ且与α2b标准品大小相同ꎬ证明菌种可表达α2b蛋白ꎮ分别取菌体沉淀超声破碎后的上清和沉淀进行15%SDS ̄PAGE检测ꎬ结果证实其为包涵体表达ꎮ2.4㊀基因工程菌pBV220 ̄IFNα2b/DH5α的发酵培养3批发酵的湿菌体进行15%SDS ̄PAGE分析ꎬ电泳图谱见图4ꎮ可见蛋白表达明显ꎬ该菌种512梁果义ꎬ等:重组人干扰素α2b的制备研究. All Rights Reserved.图2㊀pBV220 ̄IFNα2b酶消化Fig.2㊀EnzymedigestionofpBV220 ̄IFNα2b.M:DL100PlusDNAMarkerꎻ1:EcoRⅠ和SalⅠ酶切pBV220ꎻ2:EcoRⅠ和SalⅠ酶切pBV220 ̄IFNα2b图3㊀pBV220 ̄rhIFNα2b诱导表达Fig.3㊀InducedexpressionofpBV220 ̄rhIFNα2b.1:未经诱导的pBV220 ̄IFNα2bꎻ2:热诱导的pBV220 ̄IFNα2bꎻ3:标准蛋白rhIFNα2b图4㊀rhIFNα2b表达的电泳检测Fig.4㊀DetectionofrhIFNα2bexpressionby15%SDS ̄PAGE.M:Markerꎻ1~3:3批发酵菌体的总蛋白可用于发酵制备α2b蛋白ꎮ电泳检测3批样品中ꎬ在分子量20kDa左右的位置都有明显的一条蛋白条带ꎬ同目的蛋白的分子量一致ꎬ此发酵工艺稳定ꎬ能够获得目的蛋白ꎮ2.5㊀重组蛋白rhIFNα2b的分离纯化2.5.1㊀表达后菌液处理的电泳分析结果㊀按实验1.2.5方法ꎬ菌种经发酵培养ꎬ菌体破碎ꎬ包涵体洗涤ꎬ各阶段进行15%SDS ̄PAGE分析ꎬ电泳图谱见图5ꎮrhIFNα2b的分子量为19.2kDaꎬ在对照品22kDa和14kDa之间有一条明显的蛋白条带ꎬ即为rhIFNα2b的表达产物ꎮ目的蛋白存在于离心沉淀中ꎬ破菌上清中没有ꎬ说明目的蛋白以包涵体形式表达ꎮ图5㊀rhIFNα2b包涵体的电泳检测Fig.5㊀DetectionofrhIFNα2binclusionbody.M:低分子量蛋白Markerꎻ1:重组大肠杆菌的总蛋白ꎻ2:重组大肠杆菌的可溶性蛋白ꎻ3~5:经包涵体洗涤液A~C冲洗后的重组大肠杆菌非可溶性蛋白2.5.2㊀QSepharoseFastFlow离子交换层析及电泳分析结果㊀将QSepharoseFF离子交换层析洗脱收集的样品做15%SDS ̄PAGE检测ꎬ观察每一步层析的洗脱情况及其纯度ꎬ电泳结果见图6ꎮ图6㊀rhIFNα2b离子交换层析的电泳检测Fig.6㊀DetectionofrhIFNα2bonIEC.M:低分子量蛋白Markerꎻ1:QSepharoseFastFlow峰值蛋白2.5.3㊀SephacrylS ̄100凝胶过滤层析及电泳分析结果㊀按照SephacrylS ̄100凝胶过滤层析的蛋白出峰情况分段收集的样品进行15%SDS ̄PAGE检测ꎬ观察各个样品中蛋白条带的分布情况及其纯度ꎬ电泳图谱见图7ꎮ分析QSepharoseFF洗脱液的电泳检测结果ꎬ除了目的蛋白条带还有2~3条杂蛋白ꎬ而且分子量大于目的蛋白ꎬ可以尝试凝胶过滤层析的方法进一步分离ꎮ凝胶过滤层析分段612生物技术进展CurrentBiotechnology. All Rights Reserved.收集10瓶ꎬ第7~10瓶没有杂蛋白ꎬ可以合并保存ꎮ2.5.4㊀蛋白质收率㊀蛋白质粗提过程中ꎬ每取200g湿菌体ꎬ获包涵体50gꎬ包涵体变性液500mLꎬ可分批复性ꎮ每200g湿菌体可获rhIFNα2b纯品218mgꎮ蛋白质复性后各步蛋白含量㊁活性等情况见表3(3批复性结果)ꎮ对比3批的实验结果ꎬ生物活性都达到了1ˑ108IU/mgꎬ目的蛋白活性稳定ꎬ回收率可达4.0%以上ꎬ此工艺可行ꎬ能够用于放大生产工艺的开发ꎮ图7㊀rhIFNα2b凝胶层析的电泳检测Fig.7㊀DetectionofrhIFNα2bonGFCby15%SDS ̄PAGE.1~10:分段收集的蛋白片段表3㊀rhIFNα2b纯化结果Table3㊀TheresultsofpurificationforrhIFNα2b.Lot方法总体积(mL)蛋白质含量(mg/mL)蛋白质(mg)活性(ˑ1010IU)比活(ˑ107IU/mg)蛋白产量(%)活性产量(%)纯化(X ̄fold)123复性47000.1758231.982.450000.1708502.132.545000.1958782.022.3123离子交换层析1900.8721661.338.020.267.23.32000.8161631.328.119.262.03.22400.8081941.517.822.174.83.4123凝胶过滤层析1020.32132.70.36114.018.24.61100.31935.10.35104.116.44.01040.35336.70.37104.218.34.33㊀讨论采用了重叠延伸PCR法成功合成了rhIFNα2b基因ꎬ构建了表达质粒pBV220 ̄rhIFNα2bꎬ表达产物rhIFNα2b在大肠杆菌DH5α中以包涵体的形式存在ꎬ蛋白表达量可占全菌蛋白的23%~32%ꎮ发酵产物通过破菌㊁包涵体抽提㊁变性㊁复性㊁阴离子交换层析QSepharoseFF以及凝胶过滤层析SephacrylS ̄100的纯化方法ꎬ得到纯品rhIFNα2bꎬ比活达到1ˑ108IU/mgꎬ每200g湿菌体可获rhIFNα2b纯品218mgꎮ本实验在进行PCR时ꎬ将相邻片段两两互补延伸以后ꎬ再与相邻片段互补延伸ꎬ最后是两个大片段拼出全长基因ꎬ虽然步骤较多ꎬ但PCR效果较好ꎬ显示出良好的应用前景ꎮ包涵体是指通过基因工程技术ꎬ大肠杆菌表达的重组蛋白在细胞内凝集ꎬ形成没有活性的固体颗粒ꎮ本实验包涵体洗涤中ꎬ采用低浓度的尿素能溶解部分杂蛋白ꎬTritonX ̄100能溶解脂质和脂膜蛋白ꎮ有文献报道ꎬ在复性过程中ꎬ会出现大量的二聚体ꎬ可能是一级结构错配造成的ꎬ一般采用离子交换和疏水层析的方法纯化[13]ꎮ本实验重新优化了菌种ꎬ采用两步色谱法分离纯化rhIFNα2bꎬ凝胶过滤层析替代疏水层析ꎬ生物活性大大提高ꎮ本研究合成了编码IFNα2b的基因ꎬ构建了表达载体pBV220 ̄IFNα2bꎬ并在大肠杆菌DH5α内得到表达ꎮ同时建立了rhIFNα2b大肠杆菌表达后的分离纯化工艺ꎮ发酵产物通过破菌㊁经过裂解㊁洗涤液去除杂质获得高纯度的包涵体ꎬ变㊁复性㊁QSepharoseFF离子交换层析和凝胶过滤层析SephacrylS ̄100进行纯化ꎬ得到rhIFNα2b纯品ꎬ其比活可达1ˑ108IU/mgꎮ参㊀考㊀文㊀献[1]㊀侯云德.干扰素及其临床应用[M].江苏:江苏科学技术出版社ꎬ1981ꎬ3.712梁果义ꎬ等:重组人干扰素α2b的制备研究. All Rights Reserved.[2]㊀吴梧桐ꎬ丁锡申ꎬ刘晶晶.基因工程药物-基础与临床[M].北京:人民卫生出版社ꎬ1996.[3]㊀吴玉厚ꎬ吴冰洁ꎬ周国利ꎬ等.干扰素研究进展[J].生物学教学ꎬ2007ꎬ32(7):2-4.[4]㊀侯相山ꎬ王洪水.干扰素研究进展[J].安徽农业科学ꎬ2007ꎬ35(6):1700-1702.[5]㊀何成ꎬ朱运松.干扰素的分子生物学研究进展[J].国外医学-微生物学手册ꎬ1994ꎬ17(4):145-147ꎬ155. [6]㊀LeighJWꎬPaulPTꎬMarkRWꎬetal..Zincmediateddimerofhumaninterferonα2brevealedbyX ̄raycrystallographyRa ̄maswamy[J].Structureꎬ1996ꎬ4(12):1153-1163. [7]㊀BrunoRꎬSacchiPꎬCimaSꎬetal..Comparisonofpeginterferonpharmacokineticandpharmacodynamicprofiles[J].J.Viral.Hepat.ꎬ2012ꎬ19(1):33-36.[8]㊀魏开坤ꎬ马学军ꎬ张丽兰ꎬ等.人α2b型干扰素的基因合成㊁表达质粒构建及产物的制法[P].中国ꎬ99125966.1ꎬ2001.[9]㊀萨姆布鲁克Jꎬ拉塞尔DWꎬ著ꎬ黄培堂ꎬ译.分子克隆实验指南(第三版)[M].北京:科学出版社ꎬ2002ꎬ391-396. [10]㊀汪家政ꎬ范明.蛋白质技术手册[M].北京:科学出版社ꎬ2000ꎬ111-112.[11]㊀国家药典委员会.中华人民共和国药典2010版(附录34) [M].北京:中国医药科技出版社ꎬ2010.[12]㊀国家药典委员会.中华人民共和国药典2010版(附录71-72)[M].北京:中国医药科技出版社ꎬ2010.[13]㊀韩霭辰ꎬ王劲峰.疏水相互作用层析分离重组人干扰素a2b[J].微生物学免疫学进展ꎬ2012ꎬ40(6):8-12.812生物技术进展CurrentBiotechnology. All Rights Reserved.。

抗人干扰素α2b单克隆抗体制备及初步鉴定

抗人干扰素α2b单克隆抗体制备及初步鉴定

抗人干扰素α2b单克隆抗体制备及初步鉴定【摘要】本研究以重组人干扰素α2b蛋白免疫巴比西小鼠,采用淋巴细胞杂交瘤技术,获得3株可稳定分泌抗人干扰素α2b单克隆抗体的杂交瘤细胞株,分别命名为1E8、1E10和4E4。

ELISA鉴定结果表明,3株单抗的亚型均为IgG1,腹水效价都在10-6以上。

免疫印迹鉴定结果证实,3株单抗均可与原核表达的人干扰素α2b发生特异性反应。

结果表明,本研究成功获得3株针对人干扰素α2b 的特异性杂交瘤细胞株。

【关键词】重组人干扰素α2b;单抗干扰素分为Ⅰ型IFN和Ⅱ型IFN[1]。

干扰素α2b属于Ⅰ型干扰素[2],它具有广谱抗病毒、抗肿瘤、抑制细胞增殖以及提高免疫功能等作用。

干扰素与细胞表面受体结合,诱导细胞产生多种抗病毒蛋白,抑制病毒在细胞内繁殖,提高免疫功能包括增强巨噬细胞的吞噬功能,增强淋巴细胞对靶细胞的细胞毒性和天然杀伤性细胞的功能[3]。

本研究采用重组人干扰素α2b为免疫蛋白,制备抗人干扰素α2b 单抗并对其生物学特性进行鉴定,为深入研究人干扰素α2b检测试剂盒提供物质材料。

1 材料重组人干扰素α2b:哈药生物提供;胎牛血清,1640培养基,HT,HAT,聚乙二醇:Sigma公司;鼠源单抗亚类试剂盒:SouthernBiotech;其余生化试剂均为分析纯。

2 方法2.1 动物免疫按照萨姆布鲁克J等[4]报道的方法,将重组人干扰素α2b作为免疫蛋白。

以1μg/μL的浓度,对6只7周龄巴比西小鼠进行免疫,每只接种100μL,间隔2周免疫一次,共3次,细胞融合于最后一次免疫后7天进行。

2.2 ELISA方法的建立以重组人干扰素α2b蛋白为抗原包被ELISA板,用碳酸盐缓冲液稀释抗原,方阵法确定蛋白最佳包被浓度和阴阳性血清的最佳稀释倍数,经HRP标记的山羊抗鼠IgG作用,邻苯二胺底物显色,判定结果。

判定标准为阳性血清孔的OD492值接近1.0,阴性血清OD492值<0.2,P/N≥2.1。

重组人干扰素α-2b脂质体的制备及其家兔体内药动学研究

重组人干扰素α-2b脂质体的制备及其家兔体内药动学研究

重组人干扰素α-2b脂质体的制备及其家兔体内药动学研究杨杰【摘要】目的以溶液剂为参比,考察家兔肌肉注射重组人干扰素α-2b脂质体的药动学变化,为研究重组人干扰素α-2b脂质体的长效制剂提供参考.方法以逆向蒸发法制备重组人干扰素α-2b脂质体,以家兔为模型动物,分别单剂量一次注射重组人干扰素α-2b脂质体和参比溶液剂,不同时间采集血液,分离血浆,经处理后,应用双抗体夹心酶联免疫吸附法(ELISA)测定重组人干扰素α-2b的血浆药物浓度.结果家兔分别肌肉注射同剂量的重组人干扰素α-2b脂质体及溶液剂,与溶液剂相比,重组人干扰素α-2b脂质体延缓了药物的吸收,达峰时间延长,体内平均滞留时间(MRT)分别为4.86h和6.00h,脂质体组体内滞留时间较溶液剂组延长,脂质组AUC为溶液剂组的1.4倍,体内生物利用度显著提高.结论脂质体作为重组人干扰素α-2b的载体,能够显著延长重组人干扰素α-2b家兔体内平均滞留时间,提高生物利用度,具有潜在应用的价值.【期刊名称】《实用药物与临床》【年(卷),期】2018(021)005【总页数】3页(P561-563)【关键词】重组人干扰素α-2b;脂质体;药动学;双抗体夹心酶联免疫吸附法【作者】杨杰【作者单位】海南通用康力制药有限公司,海南海口570331【正文语种】中文0 引言干扰素(Interferon,IFN)是人体细胞分泌的一种活性蛋白质,具有广谱的抗病毒、抗肿瘤和免疫调节作用,是人体预防系统的重要组成部分[1-2] 。

根据其分子结构和抗原性的差异分为α、β、γ、ω 4种类型。

α型干扰素根据结构的不同再分为α-1b、α-2a、α-2b,其中α-2b型干扰素是我国临床上使用较多的一种。

目前,干扰素由于其抗病毒作用强,抗病毒谱广,在我国临床上已广泛应用于治疗各种病毒感染所致的疾病,其中以治疗病毒性肝炎的临床应用最多、用量最大。

在我国,各型病毒性肝炎均存在,尤其以乙型肝炎感染率最高、危害最大。

重组人γ—干扰素单克隆抗体的制备及初步应用

重组人γ—干扰素单克隆抗体的制备及初步应用

重组人γ—干扰素单克隆抗体的制备及初步应用
刘亚革;蒲菲菲
【期刊名称】《单克隆抗体通讯》
【年(卷),期】1995(011)001
【摘要】应用常规方法制备了4株能稳定分泌抗人重组γ-干扰素单克隆抗体(McAb)的小鼠杂交瘤细胞系3D3、3D12、3F9和3B8。

经免疫琼脂双扩散法鉴定,其分泌的McAb的亚类分别为:IgG2b、IgG3、IgG1和IgG1。

相对亲和常数前两株McAb为6.25±10^-11、后两株McAb为6.25×10^-13。

间接ELISA法则培养上清的效价为2×10^2 ̄1.28×10^5。

由小鼠腹水提取的4株
【总页数】4页(P35-38)
【作者】刘亚革;蒲菲菲
【作者单位】不详;不详
【正文语种】中文
【中图分类】R392-33
【相关文献】
1.抗人干扰素α2b单克隆抗体制备及初步鉴定 [J], 王锐;王延涛;安晓丽;刘恒;张秀芹
2.重组人内抑素单克隆抗体的制备及初步鉴定 [J], 魏文杰;陈飞虎;沈际佳;廖法学;朱绍春
3.重组人ALR单克隆抗体的制备、鉴定和初步应用 [J], 王彦芳;焦艳晴;董爱华;耿
娅;贾茜
4.抗重组人白细胞介素-12单克隆抗体的制备及初步应用 [J], 李俐;马颖哲;张家颖;张桂荣
5.重组人14-3-3zeta亚型单克隆抗体的制备、鉴定及初步应用 [J], 钟政荣;沈继龙;汪学龙;胡元生;沈继录;王家传;李小月
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重组人干扰素α2b的制备研究

重组人干扰素α2b的制备研究

重组人干扰素α2b的制备研究
梁果义;刘晓航
【期刊名称】《生物技术进展》
【年(卷),期】2016(006)003
【摘要】为了获得高活性高纯度的rhIFN α2b,对重组人干扰素α2b进行克隆、表达,并深入研究了其纯化工艺.采用重叠延伸PCR法合成了编码IFN α2b的基因,用DNA重组技术构建了原核表达载体pBV220-IFN α2b,获得了稳定的工程菌种.发酵产物通过破菌、洗涤获得包涵体,再经过变性、复性、离子交换层析和凝胶过滤层析的纯化,得到rhIFN α2b纯品,其比活可达1×108 IU/mg.实验结果为进一步开展临床前研究和长效制剂奠定了基础.
【总页数】7页(P212-218)
【作者】梁果义;刘晓航
【作者单位】北京双鹭药业股份有限公司,北京100043;北京双鹭药业股份有限公司,北京100043
【正文语种】中文
【相关文献】
1.重组人干扰素α-2b脂质体的制备及其家兔体内药动学研究 [J], 杨杰
2.重组人干扰素α-2b卡波姆凝胶剂的制备及质量控制 [J], 李娟;赵瑞玲;谢菌;樊民广;苏朝辉;丁红
3.重组人干扰素α2b阴道泡腾片制备工艺的研究 [J], 许晓;关晶华;陈新玲;张春丽;林艳红
4.重组人干扰素α2b凝胶的制备及安全性评价 [J], 倪晓燕; 周乐春; 储成风; 王荣海; 宋礼华
5.重组人干扰素α-2b溶液型鼻腔给药制剂稳定性初探研究 [J], 胡乐非;董明明;林霞
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实验四 基因工程制备重组细胞因子-人干扰素的制备与鉴定

实验四 基因工程制备重组细胞因子-人干扰素的制备与鉴定

至PH的范围在5.7-6.7之间。
离心:将混合液全部倒入离心管制,置于低温高速离
心机中,5000rpm、10min离心,弃上清。
将离心管用保鲜膜封住上口,扎三个洞,置于冷冻干
燥机中冷冻干燥过夜。
第三次实验:活性鉴定,用ELISA法 鉴定
2. 实验步骤: (1) 将ELISA试剂盒拿出来,于室温下平衡30min; (2) 建立标准曲线,设标准孔8孔,每孔中各加入样品稀释液100μl,第一
孔加标准品100μl,混匀后用加样器吸出100μl,移至第二孔...如此反复作
对倍稀释至第六孔,最后,从第六孔中吸出100μl弃去,第七孔为空白对照, 第八孔为零孔;
(3) 加样:分别设空白孔,待测样品孔,除空白孔以外,余孔加待测样品
100μl,注意不要有气泡,轻轻混匀,酶标板加上盖,37℃反应30min后弃 去孔内样品;
实验九 重组细胞因子的制备与鉴 定
-干扰素a-2b的制备与鉴定
第一次试验:转化和涂平板
1.感受态细胞制备:
2.转化和涂平板: 转化时连接产物加入感受态中后要冰浴 所以要提前将加热器温度设置到指定温度,再 冰浴2min,之后需要置于37℃温床中振荡培 养60h,之后离心再加IPTG,涂平板,正面向 上培养需要30min,再倒置培养过夜。
(4) 洗涤:加满稀释后的洗涤液,轻轻混匀,60S后倒去, 在滤纸上印干,重复5次; (5) 加酶:空白对照孔不加酶,其余孔加入酶标记物50μl,
放入37℃温箱中反应30min后,弃去溶液;
(6) 洗涤:按照上次的洗涤方式洗涤5次;每孔加入底物液 A、B各50μl,置37 ℃避光反应15分钟,注意加底物液B 时要避光; (7) 终止:每孔加入终止液50μl,终止反应,此时溶液颜色 由绿色转化为黄色;测OD值:在波长为450nm处测OD值。

干扰素的制备及检定

干扰素的制备及检定

干扰素的制备及检定干扰素的制备及检定(一) 原理干抗素是干扰素诱生剂作用于有关生物细胞所产生的一类高活性、多功能蛋白质。

它从细胞产生和释放出来以后,又作用于相应的其它同种细胞,使其获得抗病毒及抗肿瘤等多方面的免疫力。

所谓干扰素诱生剂,是指能诱导有关生物细胞产生干扰素的一类物质。

能诱导有关生物细胞产生α和β干扰素者称甲类干扰素诱生剂,如各种动物病毒、细胞内寄生的微生物等;可诱导T细胞产生γ干扰素的称为乙类干扰素诱生剂,如脂多糖、链球菌毒素、肠毒素A等。

在实际工作中,制备干扰素多采用两种方法。

一是用干扰素诱生剂诱导某些生物细胞产生干扰素,经提取纯化并检定合格后即可使用。

该法所用的细胞多为外周血白细胞。

二是采用基因工程法进行生产,即将干扰素基因导入大肠杆菌内,通过培养大肠杆菌来生产干扰素。

目前,大规模生产干扰素主要采用基因工程法。

下面仅以用干扰素诱生剂制备人白细胞干扰素为例介绍干扰素的制备方法。

(二) 材料和方法1 材料细胞培养设备(如培养瓶、多孔培养板、温箱、显微镜、旋转培养器等)、水浴箱等。

2 方法(1) 制备诱生剂:采用NDVF系弱毒株,以鸡胚尿囊液形式保存于-20℃,其血凝滴度稳定在1∶640~1∶1 280之间。

大量繁殖时,用05%水解乳蛋白稀释100~1 000倍,接种于9日龄鸡胚尿囊腔,置37℃培养72h后,收获尿囊液,效价测定应大于1∶640,无菌检查应合格。

(2) 制备诱生细胞:无菌采取人外周血(多用人脐带血,或血库贮藏血),置于含肝素(抗凝血)的无菌瓶内,于4℃保存不超过24h,诱生细胞(白细胞)不单独提取,以全血代替。

(3) 制备粗制干扰素:①加诱生剂,按1ml抗凝全血加0.2ml诱生剂(即NDVF系尿囊液,其血凝滴度不低于1∶640);②加温吸附,将加有诱生剂的抗凝全血置37℃水浴中1h,每隔15min晃动一次,使NDVF吸附于白细胞上。

然后以1000r/min离心20min,弃上清,留沉淀物;③加营养液孵育诱生,按抗凝全血的1~2倍量加Eagle营养液于上述沉淀物中,混匀,置35~36℃温箱内旋转培养18~20h;④离心及酸处理,将上述培养物以2000r/min离心30min,取上清,以6mol/L 盐酸将其pH值调至20,置4℃冰箱5天灭活NDV;⑤中性化,经5天酸化后,再用6mol/L氢氧化钠将pH值调至72~74,即为粗制干扰素。

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3 பைடு நூலகம்果
图 2 细胞株稳 定性分析 ( 下转 第 1 9 ) 2页
2 1 年 7月中 第 3 第 2 期 01 卷 0
J y ul 2 1 01 Vb _ l 3 No 2 .0
中国中医药咨讯
J u l f i ar a i o a C n, Ai n f r ai n o ma O n ldt n l h e e Ch r r i i s Me c e n o m t i I o ・1 9 ・ 2
】 2 3
1 材料
重组人干扰素 02 :哈药生物提供 ; 牛血 清 ,1 0 【b 胎 6 培养 4 基 , T H T 聚 乙二醇 : i a H , A, s 公司 ;鼠源单抗亚类试剂盒 : 舯 Su e Bo c ;其余生化试剂均 为分析纯 。 ot m ie h th
潜 阳安神汤 治疗不寐 5 例 疗效观察 6
丰志辉
( 吉林省 九台市 营城 区社 区卫生服务中心,吉林

九台 。1 0 0 3 5 0)
【 摘 要 】 目的:观 察潜阳安神 汤治疗不寐的疗效 。方法 :将 5 例不寐 患者 用潜 阳安神汤治疗 。结果 :治愈 3 例 ,好转 2 6 0 1 例 ,末愈 5 ,总有效率 9%。结论 :潜 阳安神 汤治疗不寐具有明显疗效 ,值得 临床推 广。 例 1

率 9 %,未发现 明显 药物不 良反应 。 1
4 典型病 例
王某 , 4 岁 , 男 8 患失眠十余年 , 每晚均服安眠药 , 2 近 个 月病 情加重 ,彻夜不 能入睡 ,伴烦躁易 怒、头痛 、头晕、心悸 不宁、大便秘结 , 经用 中西安神镇静药 皆未收效 , 期面色不 察 荣 ,精 神委靡 , 自述苦于不能入睡 ,至夜则 烦躁难忍 ,舌 红少 津 ,苔薄黄 ,脉 弦细 , 此属肝 。 肾阴虚 ,肝阳亢旺之证 , 养阴 宜 柔肝 ,潜 阳安神 ,用潜 阳安神汤加龙 胆草 1 ,生军 5g 0g ,初服 1 ,能入 睡 3小时左右 ,头痛 ,头晕 ,大便秘结改善 ,上方 O剂
【 关键词 】 潜阳安神汤;不寐
不寐 亦称失眠或 “ 不得眠… ‘ 卧” 目不 瞑 “ 不得 、“ ,是指经 常不 能获得正 常睡 眠为特征 的一 种病 症 ,随着人们生 活节奏的 加快 ,工作压力加大 。本病 的发 生率呈逐渐上升 的趋 势 ,对患 者造 成极 大 的身心痛苦 。笔者近几年 来采用潜 阳安神汤 加减 , 治疗 不寐 5 ,取得满意疗效 ,现报告如下 : 6例
参考文献
【 国家 中医药管理局 ,中医病症诊断疗效标准 , 1 l 】 南京 :南京大学 出生
以重组人干扰素 02 白为抗原包被 E IA板 , 【b蛋 LS 用碳 酸盐 缓 冲液稀释抗原 ,方 阵法 确定蛋 白最佳包被浓度 和阴 阳性血清 的最佳稀 释倍数 , H P 经 R 标记的 山羊抗 鼠 I g 用, G作 邻苯二胺 底 物显色 ,判定 结果 。判定标 准为 阳性血 清孔的 0 4值 接近 D: 9 1 ,阴性血清 O 值 < ., / ≥2 。 . 0 D 0 PN . 2 1 23 细胞融合及筛选 _ 抗血 清效价检测于第3 次免疫后7 天进行 。取脾 细胞 与S 20 p / 小 鼠骨髓瘤细胞 , 常规方法进行融合 ,H 1 选融 合细胞 , 按 A筛 采用 有限稀释法对阳性克隆进行筛选 ,达到10 0 %阳性者扩大培 养, 建株保存 。 24 单抗亚类鉴定 . 按 SuhmBo c公 司亚类试剂盒说 明书用 E IA o te ieh t LS 方法进行 检测 。 25 腹水制备 . 采用体 内诱 生腹 水 法 ,按常 规方法 制备 腹水 。用 建立 的 E I  ̄ I 测定单抗腹水效价 , /≥2 的抗体最大稀释 LS A J 方法 以PN . I 0 度作 为效 价终值 。 2 抗 体识别特异性鉴定 . 6 用 三株杂交瘤细胞腹水纯 化后 蛋 白做免疫 印迹 ,结果 证实 本试 验所获得 的单抗 均能 与重 组人干扰素 2 反应 ,说明筛选 b 得 到的单抗可 以特异性识别人 干扰素 O2 ,进一 步证 实了所获 tb 得单抗 的特异性。 27 杂交瘤细胞稳定性分析 . 对 已获得的 3株杂交瘤细胞进行 3 O次传 代 , 以免疫 鼠血 清为 阳性 对照 ,以空 白鼠血清为阴性对照 ,收集 细胞 培养上清 液并 测其 效价。
中国中医药咨讯
・6 2・
J u n lofChn a i o a i s e ii no main o r a i a Trdt n l Chnee M d cne I fr t i o
2 1年 7 01 月中
J l uy 2 1 01
第 3 第 2期 卷 O
图1 免疫 印迹分析 1 :3 :2 :人干扰素 仪 b 2 的纯化蛋 白 37细胞 分泌抗体稳定性分析结果 . 由图 2 知 , 可 杂交瘤细胞株经 3 次传代 , 0 能持 续并稳定分 泌抗体 。

02 0 ~ — —~
l 6 1 51 12 73 3 9 21 82 42 0次
2 方法
21 动 物 免 疫 .
按照萨姆布鲁克J 报道 的方法 ,将重组人 干扰 素 0 b 等 【 作 2 为免疫蛋 白。以 1 s 的浓度 ,对6 周 龄 巴比西 小鼠进行 / L 只7 免疫 ,每只接种 10 L 0 ,间隔2 免疫一次 ,共3 ,细胞融合 周 次
于最后一次免疫后7 天进行 。 22 E IA 法 的建 立 . LS 方
变。
3 疗效标准 ,根据 《 . 1 中医病症诊断疗效标准 》 ’ “ 治愈 :睡眠正常 ,伴 随症状 消失 。好转 :睡眠时间延长 , 伴随症状 改善。末愈 ,失眠症状 无改善 。 3 治疗结果 . 2 本组 5 6例不寐患者 ,经过 2个疗程治疗后 ,治愈 3 O例 , 占 5. 36 %,好 转 2 例 ,占 3 . 1 75 %,末愈 5例 ,占 8 %,总有效 . 9
V 13 b . No. 0 2
抗人干扰素 Q b 单克 隆抗体 制备及初步鉴 定 2
王 锐 王延涛 安晓丽 刘 恒 张秀 芹
( 哈药集团技 术中心 ,黑龙江 哈尔滨 。1 0 2 5 0 5)
【 摘 要 】 本研究 以重组人 干扰 素 仅 b 白 疫 巴比西 小鼠 ,采 用淋 巴细胞 杂交瘤技 术 ,获得3 可稳 定分泌抗人干扰素 d 2蛋 免 株 2单克 隆抗体的杂 交瘤 细胞株 , 别命 名为18 E 0 E 。 LS 鉴 定结果表 明 , 株单抗的亚型均为I l b 分 E 、1 1和44 E I A 3 ,腹水效价都在1. 0以 上 。免疫印迹鉴定结果证 实, 株单抗均可与原核表达 的人干扰素 2发生特异性反应 。结果表 明 , 3 b 本研 究成功获得3 株针对人干扰 素 仅2 的特异性 杂交瘤 细胞株 。 b 【 关键词 】 重组人 干扰 素 o b 【 ;单抗 2
减生军 ,又服 l 5剂 ,睡眠恢复 6 7小 时 ,诸症消失而愈 。 —
5 讨 论
不寐是肮脏机能紊乱 ,气血亏 虚,阴阳失调 导致不能 获得 正常睡眠的一种病症 ,不寐 的原 因很 多 ,但 总是 与心脾肝 肾及 阴血 不足有关 ,尤 以肝心 肾三脏关 系密 切 ,笔者在 临床上 观察 到不寐以阴虚 阳亢型居多 , 针对这一病 机 , 以平肝潜 阳 , 故 养 心安神 而立法 , 证施治 , 辩 灵活变通 , 阳安神汤 中的石决明 , 潜 生龙骨 ,生牡蛎养肝 阴,潜 阳安神 为君 药 ;白芍补益 真阴 ,滋 水涵木 ,凉血生血为 臣药 ,杏仁敛神养 心 ,远志交通 心肾以安 神 ,合欢 花解郁安神 ,夜交藤滋益肝 肾 , 合阴阳为佐药 ; 交 天 麻 ,钩藤 平肝息风 ,香附为 阴中快气药 ,引血至气分增强诸药 活力 ,兼 能理气解郁 。黄芩清热泻火 ,使肝经之热 ,不致偏亢 , 共为使 药 ,诸药合用 ,共达平肝潜 阳 ,养心安神之功。药切病 机, 故收效颇 著。
1 临床 资料
11 一般 资料 . 5 6例不寐患者均 系 20 0 5年至今 的门诊病人 ,经西 药治疗 后 ,疗效欠佳并且失 眠时间达 3个月 以上 ,每 晚睡 眠时间少于 4小时 ,其 中男 性 2 1 ,女性 3 4 例 2例 ,年 龄最小 2 8岁 ,最大 6 9 岁 ,平均 年龄 4 岁 , 1 病程 最长 1 年 ,最短 1 ,临床表现为 0 年 人睡 困难 , 时寐时醒者 4 例 , 7 彻夜不寐者 9 , 中医病症 诊 例 按 断标准分 为 :肝郁 化火 型 8例 ,痰热 内扰 型 4例 ,阴虑 阳亢型 3 6例 ,心脾两虚型 5例 ,心 虚胆 怯型 3例 。 1 诊断标准 :参见 《 . 2 中长病症诊断疗效标准 》” 诊: 确 1. . 1轻者不寐 困难或睡而易醒 , 2 醒后不寐 连续 3 以上 , 者 周 重 彻夜难眠 。 1 . 常伴有头痛头晕心悸健忘 , .2 2 神疲 乏力 , 心神不宁 , 多梦等 。 1 - 病症常有饮食不节 ,情志失常 ,劳倦 ,思虑过度 ,病 后 . 3本 2 体虚等病史 。 1. .4经各 系统实验室检查 , 2 未发现有妨碍 睡眠的其他器 质性 病
干扰素分为 I IN和 Ⅱ型 IN 。 型 F F 干扰素 2 b属于 I 型干 扰素 它具有广谱 抗病毒 、 , 抗肿瘤 、 抑制细胞增殖 以及提高免 疫功能等作用 。干扰 素与细胞表面受体结合 ,诱导细胞产生多 种抗病毒蛋 白 , 抑制 病毒在细胞 内繁殖 ,提高免疫功能包括增 强巨噬细胞 的吞 噬功 能 ,增强淋 巴细胞对靶 细胞 的细胞毒性和 天然杀伤性细胞 的功 能 。本 研究采用重组人干扰素 2 b为免 疫蛋 白 ,制备抗 人干扰 素 d b 单抗并 对其生物 学特性进 行鉴 2 定 ,为深入研究人干扰素 2 检测试剂盒提供物 质材 料。 b 31 间接E IA . LS 方法结果 将重组人 干扰素 O2 原液 , tb 分别 以 8tm , t/l2 g l /l4 s ,]/ t g  ̄m . m t 和 lg l I/ 的浓度包被 E I 板 ,阳性 和阴性 血清稀释倍数为 .m L LS A 110 : 0 : 0 ,结果显示 ,抗原浓度在 4 / i : 、1 0 、1 0 0 0 5 1 gm ,血清稀 释倍数 为 110 /0 0时 ,PN≥21 / .。 32 杂交瘤细胞的融合率 . 本试验 经过 3 次细胞 融合 ,细胞的融合率达到 了 8. %, 75 6 阳性孔率为 03 . %。 33 细胞 株的建立 - 细胞融合后 ,判定 为阳性 的杂交瘤细胞经 3次 克隆筛选 , 获得 3 株能够稳定分 泌抗人 干扰素 2 单抗细胞株 , 别命 名 b 分 为 1 8 E1 4 4 E 、1 0和 E 。 34 单抗 亚类 鉴定 . 经单克 隆抗体亚类鉴定试 剂盒 检测 , 所获 3 株杂交瘤细胞 , 均 为 IG 型 ,且都是 K轻链抗体 。 g1 35 单抗腹水效价测定 . 经鉴定表 明 3 株单抗 1 8 E 0 4 4 E 、1 l 和 E 腹水 的间接 E SA L I 效价都在 1 。 36 单抗 特异性鉴定 ( 1 . 图 ) 经 S SP G D — A E电泳后 ,将转移至硝酸纤维素膜 的蛋 白进 行 单抗孵育 。 果显示 3株单抗均能特异性的识别人干扰素 d2 。 结 b
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