临床微生物标本采集规范

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临床微生物样本采集规范

临床微生物样本采集规范

临床微生物样本采集规范临床微生物样本采集规范1. 范围和目的本规范适用于临床微生物样本的采集、处理和管理,旨在保证样本采集的质量和规范性,确保临床微生物诊断结果的准确性和可靠性。

2. 术语和定义(1)微生物:指包括细菌、真菌、病毒、支原体、立克次体、螺旋体等在内的微小生物体。

(2)临床样本:指从患者体内采集的各种生物标本,如血液、口腔、鼻咽部、骨髓、尿液、痰液、脑脊液等。

(3)采集容器:指用于采集临床样本的容器,如血液采集管、尿样瓶、培养皿等。

(4)采集套装:指一次完整的样本采集过程中所需的所有采集工具和材料。

3. 采集前准备(1)确定采集部位、时间和采集方式,注意患者的生命体征和病情变化。

(2)准备好所需的采集套装和采集容器,在样本采集前做好标签,并核对患者信息。

(3)认真阅读所有相关规范和实验室要求,确保样本采集符合要求。

4. 采集操作步骤(1)根据采集部位和样本类型选择合适的采集套装。

(2)采集前应让患者了解采集的目的和过程,并获得其同意。

(3)采集前要检查采集部位,患者的身体状态和生命体征,确保采集过程安全和无痛苦。

(4)采血时应注意采血量、采血速率、采血部位、采血方式等。

(5)尿样采集时应注意尿样的采集量、采集时间、采集方式、保护好样本的完整性和纯度。

(6)痰液采集时应注意痰液的颜色、黏度、量和纯度,选择合适的采集器具和采集方式。

(7)脑脊液采集时应注意采集部位、采集方式、采集量、采血顺序和样本处理标准等。

(8)其他临床样本采集时,应根据具体要求和操作规范,选择合适的采集方法和器具。

5. 样本运输和储存(1)在采集后,立即将样本放入相应的采集容器中,尽快送至实验室进行处理。

(2)若无法立即处理样本,应按要求在采集容器中注明采集时间和采集者信息,并存储在规定温度下,以便后续处理。

(3)运输过程中应遵循规范,确保样本不泄漏、不污染,并尽快送至目的地。

(4)储存过程中应保持样本的纯度和完整性,控制储存温度,在保质期内使用。

临床微生物标本的采集与运送图文

临床微生物标本的采集与运送图文

临床微生物标本的采集与运送在医学临床的诊断过程中,微生物检验是不可缺少的一环。

临床微生物标本的采集与运送是保证准确诊断的关键步骤之一。

本文将介绍临床微生物标本的采集与运送的一些注意事项。

1. 标本类型临床微生物标本通常包括血液、尿液、粪便、血培养瓶、脑脊液、切口分泌物等。

2. 采集方法2.1 血液标本采集血液标本时,一定要做好消毒工作。

选择采血部位后,用酒精或碘酒消毒,再用无菌针头采血,避免受污染。

血液标本采集后可以分成两份,一份用于血常规,另一份用于血培养。

2.2 尿液标本收集尿液标本时,要让患者用清洁肥皂清洁外阴部,再用无菌尿杯收集尿液,避免手部直接触摸尿杯和尿液。

尽量将尿液标本送至检验室的时间控制在2小时之内。

2.3 粪便标本采集粪便标本时,要确定所采集的粪便样本来自于患者的肛门临近处。

最好不要使用纸巾,而是用无菌容器收集粪便。

粪便标本采集窗口为3天。

2.4 血培养瓶标本采集血培养瓶标本时,首先要选择采血部位进行消毒,然后将血培养瓶插入采血针器上,打开外部装置,使血液顺利流入血培养瓶中。

采集集中在早晨时段,每次采集2-3个血培养瓶。

2.5 脑脊液标本采集脑脊液标本需要医生进行,患者应严格卧床休息,医生在患者腰部,采用穿刺的方式进行脑脊液的采集。

2.6 切口分泌物标本采集切口分泌物标本时,需要选择无菌医用棉签,消毒采集部位。

在采集过程中,应尽量避免被采集部位感染污染到。

3. 运送方法临床微生物标本的运送是重要的环节。

标本在采集后应及时送至细菌学检验实验室。

并且在运送过程中需要遵循以下几点:3.1 收集后尽早送检临床微生物标本的采集窗口不长,应尽早将标本送至检验室进行分析。

3.2 标本容器和包装标本容器必须选择无菌容器,容器体积大小要相应合适。

送检前,要核对标本标签与标签上的医学记录是否一致。

标本包装时,应采取干燥、保温、防震、防漏、防碎的原则。

3.3 运输温度不同种类的标本,其运输温度介于4-25摄氏度之间。

培训护士临床微生物标本采集规范

培训护士临床微生物标本采集规范
完善培训内容
根据护士的反馈和实际需要,完善培训内容 ,增加实用性和针对性。
加强实践操作训练
针对操作不规范、不准确的护士,加强实践 操作训练,提高其操作技能。
建立持续跟踪机制
建立持续跟踪机制,定期对护士进行考核和 评估,以确保培训效果的持续性。
THANKS
感谢观看
效果评估
操作规范性
01
评估护士在采集微生物标本时是否符合规范要求,如无菌操作
、正确取样等。
准确性
02
评估护士采集的微生物标本是否准确反映患者情况,如细菌种
类、数量等。
及时性
03
评估护士能否及时采集微生物标本,以确保检测结果的时效性

改进措施
针对问题制定改进计划
根据跟踪和评估结果,针对存在的问题制定 改进计划,以提高培训效果。
培训场地应足够大,能够容纳所 有参加培训的护士,并提供足够
的空间进行模拟操作。
场地布局
场地应合理布局,包括理论教学区 、模拟操作区、休息区等,以满足 不同培训环节的需求。
场地设施
场地应提供必要的设施,如投影仪 、白板、音响等,以支持培训过程 中的讲解和演示。
培训设施配备
模拟器材
提供临床微生物标本采集所需的 模拟器材,如模拟患者、模拟微
03
CATALOGUE
培训效果评估
理论考试
01
02
03
考核内容
微生物标本采集的理论知 识,包括微生物学基础、 标本种类、采集方法、保 存和运输等方面的知识。
评估方式
通过闭卷考试或在线测试 ,检验护士对理论知识的 掌握程度。
反馈与改进
根据考试成绩,对护士在 微生物标本采集理论知识 方面的不足进行针对性辅 导和补充学习。

2024版年度临床微生物标本采集规范总结

2024版年度临床微生物标本采集规范总结

优化采集方法和工具
根据不同类型的标本和采集需求, 选择合适的采集方法和工具,确 保采集到足够的标本量。
规范标本运输和保存
制定详细的标本运输和保存规范, 包括温度、光照等环境条件的控 制,确保标本在运输和保存过程 中保持质量稳定。
2024/2/2
31
未来发展趋势预测
2024/2/2
自动化和智能化技术应用 随着科技的不断发展,自动化和智能化技术将在临床微生 物标本采集中得到更广泛的应用,提高采集效率和准确性。
节。
2024/2/2
关键控制点分析
对标本采集过程中的关键控制点进 行了深入剖析,如无菌操作技术、 标本采集时机、采集量等因素对标 本质量的影响。
成功经验总结
总结了在实际操作过程中取得的成 功经验,如合理选用采集工具、正 确保存和运输标本等。
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存在问题及原因分析
标本污染问题
分析了标本污染的主要原因,包括采集过程中未严格执行无菌操作、 采集容器不洁净等。
2024/2/2
重症患者样本
对于重症患者,其样本也 应优先处理,以便医生及 时了解患者病情。
特殊项目样本
对于某些特殊项目,如细 菌培养、药敏试验等,也 应优先处理,以缩短检验 周期。
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及时反馈问题并改进工作流程
反馈问题
分析原因
在接收和处理过程中发现的问题,应及时反 馈给相关科室和人员。
对反馈的问题进行分析,找出问题产生的原 因。
临床微生物标本采集规范总结
2024/2/2
1
目 录
2024/2/2
• 标本采集重要性 • 标本采集前准备 • 不同类型标本采集方法 • 标本采集过程中质量控制措施 • 实验室接收和处理流程优化建议 • 总结反思与未来展望

微生物标本采集的一般原则

微生物标本采集的一般原则

微生物标本采集的一般原则以微生物标本采集的一般原则为标题,本文将介绍微生物标本采集的基本原则和注意事项,以帮助医务人员正确采集标本,提高微生物检测的准确性和可靠性。

一、采集前准备1.了解患者病史和临床表现,确定采集标本的类型和数量。

2.告知患者采集标本的目的和方法,以及可能的不适和风险。

3.准备好采集工具和消毒液,保证采集过程的无菌和安全。

二、采集标本的基本原则1.选择合适的采集部位和方法,避免污染和误诊。

2.采集前要进行局部消毒,避免细菌和病毒的污染。

3.采集标本时要避免空气污染和手部污染,保证标本的纯度和可靠性。

4.采集后要及时送检,避免标本变质和误诊。

三、常见标本的采集方法和注意事项1.血液标本采集方法:选择合适的采血部位和针头,按照规范的采血程序进行采集。

注意事项:采集前要进行局部消毒,避免细菌和病毒的污染;采集时要避免空气污染和手部污染,保证血液的纯度和可靠性;采集后要及时送检,避免血液变质和误诊。

2.尿液标本采集方法:让患者用清洁的容器收集中段尿液,避免污染和误诊。

注意事项:采集前要告知患者正确的收集方法,避免尿液污染和误诊;采集时要避免手部污染和空气污染,保证尿液的纯度和可靠性;采集后要及时送检,避免尿液变质和误诊。

3.呼吸道标本采集方法:选择合适的采集部位和方法,如咽拭子、鼻拭子、痰液等,按照规范的采集程序进行采集。

注意事项:采集前要告知患者正确的采集方法,避免误诊和污染;采集时要避免手部污染和空气污染,保证标本的纯度和可靠性;采集后要及时送检,避免标本变质和误诊。

4.皮肤和软组织标本采集方法:选择合适的采集部位和方法,如切口分泌物、脓液、组织等,按照规范的采集程序进行采集。

注意事项:采集前要进行局部消毒,避免细菌和病毒的污染;采集时要避免手部污染和空气污染,保证标本的纯度和可靠性;采集后要及时送检,避免标本变质和误诊。

四、采集后的处理和保存1.采集后要及时送检,避免标本变质和误诊。

临床微生物标本采集规范

临床微生物标本采集规范

6.血培养标本的运送
要求:(1)采集后的血培养瓶应在1小时之内 送往实验室。
(2)血培养瓶在接种前和接种后均不得冷藏和 冷冻。
说明:血培养瓶冷藏或冷冻会将一些微生物杀 灭,将装着液体的容器冰冻也会使容器破裂。
7.血培养的培养周期
要求:自动化血培养仪的标准血培养周期为5天。
说明:有研究表明,95%-97%的有临床价值的 细菌会在3-4天内被自动血培养系统检出,目 前仍推荐5天的培养周期。特殊情况可适当延 长培养时间。如临床怀疑布鲁菌感染,可延 长培养至28天等。
我国痰培养现状
❖ 标本送检率低 ❖ 苛养菌检出率极低 ❖ 结果重复性差 ❖ 报告速度慢 ❖ 感染菌与污染菌不易区分 ❖ 药敏结果与治疗反应存在差距
❖ 标本采集方法
咳痰标本
医师或护士直视下采集标本
病人先漱口,去除表面的菌群
教育病人深咳,收集从下呼吸道咳出的痰液
❖ 临床上约半数咳痰标本不合格!
咳痰途经口咽部 不可避免地受到污染
✓ 由于婴幼儿患者厌氧菌所致菌血症比较罕见, 婴幼儿血培养可以仅用需氧瓶,为提高检出 率、区分污染菌,应采用两只需氧瓶为一组 血培养。仍然采用双侧双瓶的采血方式。
✓ 真菌血培养采用需氧血培养瓶采集标本。采 用中和/灭活抗菌药物的血培养瓶可提高真菌 的检出率。自动化血培养系统不能用于双相 真菌的检测。
国内微生物标本的采集目前存在的问题 :
标本送检率低 从全国来看,抗感染治疗 前,送检相关标本可能只占应送标本的一半 左右,与抗菌药物应用率之高形成鲜明的反 差。一些医师在经验性治疗受挫后方送标本, 此时已失去阳性培养的机会。
标本有缺陷 正确收集各种临床标本, 关注特检标本采样与送检的方法和条件,是 完成病原学诊断的先决条件。

临床微生物检验标本采集规范要求★

临床微生物检验标本采集规范要求★

24小时尿
记录尿量,将尿液混匀后取适量用于 检验。
粪便标本采集
自然排便
排便后用干净竹签取粪便 表面部分。
直肠拭子
在特殊情况下,如肠道感 染,可用直肠拭子采集粪 便。
粪便量
一般需采集足够量的粪便 用于检验。
呼吸道标本采集
痰液
患者自行咳出痰液,避免唾液和 鼻咽部分泌物。
支气管肺泡灌洗
在特殊情况下,如重症肺炎,可通 过支气管肺泡灌洗采集呼吸道标本 。
确定采集时间
根据患者的病情和检验目的,选择最 佳的采集时间,如空腹采集、餐后采 集等。
注意采集时间与用药时间的间隔,避 免药物对检验结果的影响。
采集人员防护措施
采集人员应穿戴符合要求的防护服、手套、口罩等,确保自 身安全。
采集过程中应遵循无菌操作原则,避免交叉感染和环境污染 。
02
标本采集方法
足或采集方法不当导致检验结果出现偏差。
03
标准化采集时间
根据疾病类型和病情发展,选择合适的采集时间可以提高检验准确性。
例如,对于急性感染患者,应在发热期采集标本;对于慢性感染患者,
应选择在疾病活动期采集。
保障患者安全
减少交叉感染风险
遵循无菌操作原则可以降低交叉感染的风险,保护患者安全。
避免患者不适
采集过程中,应避免接触非检 验部位,确保标本不受污染。
采集后应及时送检,避免长时 间存放导致污染。
防止标本变质
采集的标本应尽快送检,避免长时间 存放导致变质。
保存过程中应定期检查,确保标本质 量。
对于需要长时间保存的标本,应采取 适当的保存措施,如低温、干燥等。
其他注意事项
采集前应了解患者病情和用药情 况,避免干扰检验结果。

临床微生物标本采集和送检指南

临床微生物标本采集和送检指南

二、临床微生物标本采集和送检的挑战
在临床微生物标本采集和送检过程中,可能会遇到以下挑战和问题: 1、如何正确采集微生物标本
二、临床微生物标本采集和送检的挑战
2、如何妥善保存标本,避免污染和交叉感染 3、如何及时、安全地将标本运送至实验室 4、如何与实验室保持密切,确保检测结果的准确性
三、临床微生物标本采集和送检 的具体方法和步骤
三、标本运送
2、防止污染:在运送过程中,应确保标本不受污染。使用清洁、干燥的容器 存放标本,并封闭容器以防止细菌、病毒等微生物的侵入。
三、标本运送
3、及时送达:标本应在采集后尽快送至实验室进行检测,以确保检测结果的 准确性。如有特殊情况需延迟送检,应告知实验室技术人员并妥善保存标本。
三、标本运送
四、临床微生物标本采集和送检的建议
3、建立有效的沟通渠道,加强与实验室、医生之间的协作和信息共享,及时 调整治疗方案。
四、临床微生物标本采集和送检的建议
4、针对具有传染性的标本,应严格遵守相关规定,确保运输、处理等过程的 安全性。
5、借助信息化手段,如电子病历、远程诊断等,提高临床微生物标本采集和 送检的效率和质量。
4、记录信息:在运送过程中,应记录标本的相关信息,包括采集时间、送检 时间、接收人员等,以便实验室技术人员对标本进行跟踪和管理。
四、常见问题及处理方法
四、常见问题及处理方法
1、采血困难:如遇采血困难,可适当调整采血部位或改变采血方式,如更换 采血针或调整患者体位。如仍无法采血,可咨询医生或实验室技术人员寻求帮助。
四、常见问题及处理方法
4、标识错误:如遇标识错误,应立即纠正并重新标识标本。同时,对可能造 成标识错误的原因进行分析和总结,以避免类似错误再次发生。

临床微生物标本采集与送检规范(试行)

临床微生物标本采集与送检规范(试行)

临床微生物标本采集与送检规范(试行)临床微生物标本采集与送检是临床实验室诊断质量保证中的关键环节,影响着感染样本中致病菌的分离培养的阳性率和医院感染病原体监控。

正确的微生物标本送检和检验方法对于合理选用抗菌药物、降低耐药菌的产生、提高感染的治愈率以及预测和及时发现医院感染的暴发流行等都具有十分重要的意义。

因此,希望临床各科能按照本操作规范采样送检。

在医院感染标本的采集和运送中,应遵循以下原则:1.发现医院感染应及时采集微生物标本作病原学检查,我院总的医院微生物标本送检率应不低于40%。

2.尽量在抗菌药物使用前采集标本。

3.采集标本时应严格执行无菌操作,减少或避免机体正常菌群及其他杂菌污染。

4.采集标本后应立即送至实验室,床旁接种可提高病原菌检出率。

5.以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭子或伤口拭子,应立即送检。

6.盛标本须经灭菌处理,但不得使用消毒剂。

7.送检标本应注明来源和检验目的,使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境,必要时应注明选用何种抗菌药物。

常见的医院感染标本送检方法包括:1.血液与骨髓:通常采血部位为肘静脉,但疑似细菌性心内膜炎时,以肘动脉或股动脉采血为宜。

采血前应严格消毒,每次采血量应控制在一定范围内,采血后应立即送至实验室。

2.尿液:采集中段尿时,女性应先冲洗外阴部及尿道口,男性须翻转包皮冲洗,采集前应用消毒液消毒尿道口。

灭菌纱布擦干后收集标本。

以上是临床微生物标本采集与送检的一些基本规范和方法,希望医务人员能够严格按照操作规范执行,以提高微生物检测的准确性和有效性,为临床诊断和治疗提供更加可靠的依据。

导尿管导尿采样是减少污染的有效方法。

对于留置导尿者,可以用碘酒消毒尿道口处的导尿管壁,用空针细针头斜穿管壁抽吸尿液。

或消毒后解开接口,弃去导尿管前段尿液,留无污染的膀胱内尿液数毫升送检。

不可从集尿袋的下端管口留取标本。

对于尿厌氧菌培养、婴幼儿中段尿采集困难或培养结果与病情不符的情况,可以经耻骨上皮肤穿刺采集无污染的膀胱内尿液。

临床微生物学检验标本的采集

临床微生物学检验标本的采集

快速运输
03
在运输过程中应尽量缩短时间,选择适当的交通工具,保持容
器密封、避光、防震,以确保标本质量不受影响。
05
临床微生物学检验标本采集的常见问
题及解决方案
采集方法不当
总结词
采集方法不正确可能导致微生物污染或样本质量下降,影响检验结果的准确性。
详细描述
采集过程中应遵循无菌操作原则,正确使用采集工具,避免交叉感染。对于不同种类的标本,应采用不同的采集 方法和注意事项。
尿液标本
尿常规检查
检测尿液中的蛋白质、糖、酮体等成分,辅助诊断肾脏疾病和糖尿病等。
尿培养
用于检测尿液中的病原菌,如尿路感染等。
粪便标本
粪便常规检查
检测粪便中的红细胞、白细胞、寄生 虫等,辅助诊断消化道疾病。
粪便培养
用于检测粪便中的病原菌,如细菌性 痢疾等。
呼吸道标本
痰液检查
通过痰液中的细胞和病原菌,辅助诊断呼吸道感染。
THANKS
感谢观看
采集时机不当
总结词
采集时机不合适可能影响微生物的存活和繁殖,进而影响检验结果。
详细描述
应根据检验目的和要求选择合适的采集时机,如空腹采集血液、尿液等。同时,应注意采集过程中的 时间控制,避免长时间暴露在空气中。
采集容器选择不当
总结词
采集容器选择不当可能导致微生物死亡或繁殖受限,影响检验结果。
详细描述
量。
减少外界干扰
在采集过程中应尽量减少外界因 素的干扰,如避免过度挤压、避 免接触非采集部位等,以降低外
界微生物的混入。
采集后的保存和运
及时处理
01
采集后的标本应及时进行处理,避免长时间放置,以免影响微

临床微生物标本规范化采集和送检

临床微生物标本规范化采集和送检

四)标签及申请单
每份标本都应贴上标签并标明必要信息,在检验申请单上填写足够的有关 临床资料。包括病人情况(病区、病人姓名、住院号)、标本情况(标本类 型、检验目的、采集部位、采集方法、采集时间等)和病人用药等信息。
五)标本运输
标本应在室温下15分钟内送到检验科。如果超过2小时送达,冷藏保存。
六)实验室拒收标准
烧伤患者的创面、组织活检、血培养等的细菌学检测结果对临床医生进行烧伤感染的诊断和治 疗十分重要。创面的拭子标本或组织活检标本都可以进行细菌定量培养。出现全身感染症状时,应 同时采集血培养标本。在采集表面拭子或组织活检标本之前,应对创面彻底清洁,且未局部应用抗 菌药物。
一)临床采样指征:
由于烧伤的早期创面无菌,烧伤后12小时勿采集标本。当患者出现发热、创面恶化时, 考虑采样。
二)采样要求 1.病原体培养应在抗菌药物应用前或停药一周后采集标本。 2.生殖器是开放性器官,标本采集过程中应遵循无菌操作以减少杂菌 污染。 3.阴道内有大量正常菌群存在,采取宫颈标本应避免触及阴道壁。 4.沙眼衣原体在宿主细胞内繁殖,采集时尽可能多的取上皮细胞。
尿道分泌物
三)采集方法
(1)男性:取样前至少1小时内不要小便。 用无菌生理盐水清洗尿道口,用灭菌纱布 或棉球擦干,用男性拭子采取从尿道口溢 出的脓性分泌物或将男性拭子插入尿道内 2~4厘米取分泌物,置无菌试管中。如无 脓液溢出,可从阴茎的腹面向龟头方向按 摩,促使分泌物溢出。
应尽量送检无菌部位的标本,尤其是血培养。有菌部位标本应避免“正常菌群导致 标本的污染”。人体很多部位,如下呼吸道(痰液标本)、鼻窦、皮肤伤口等处的正常 菌群极易污染标本。因此,从这些部位采集标本,要尽可能降低这些部位正常菌群或定 植细菌对标本污染的可能性。有菌部位的标本不是最理想的微生物标本。

微生物样本采集的标准化与规范化ppt课件

微生物样本采集的标准化与规范化ppt课件
4)咽用压舌板压舌;用无菌拭子在后咽部、扁桃体 和其它感染部位采集标本;怀疑白喉可用无菌拭
子从患者病变部位假膜及其边缘取材立刻送检。 肉汤拭子≤2小时,室温;拭子:≤1小时,室温, 1次/天。
咽拭子标本采集
3. 尿
外尿道多寄居有正常菌群,故采集尿液时 更应注意无菌操作,常用清洁中段尿作为 送检标本。中段尿用于细菌培养,最好用 晨尿。诊断泌尿系感染的细菌学标准一般 为菌落计数≥105CFU/ml。针对于老年人多 重症及卧床患者排尿困难,可相应采用导 尿管采集标本。采集和容器为无菌尿瓶, 标本量≥1毫升,条件≤2小时,室温,1次/ 天。
3)肛拭子:小心将拭子插入肛门,大约在括约肌之 上2-3厘米;轻轻旋转拭子采集肛门隐窝的标本;
要在拭子上明显看到粪便,才能检测腹泻病原体 。拭子采集,≤2小时,室温,1次/天。除了长期
卧床、无便(如中毒性痢疾)患者及频繁腹泻患
者,不推荐做拭子常规培养。用于检测淋病奈瑟 菌、志贺菌、弯曲菌、B群链球菌的肛携带者以及 不能留取粪便标本的患者。可检测霍乱弧菌。
培养瓶消毒程序:
用75%酒精擦拭血培养瓶橡皮塞(不能用含碘消 毒剂),作用60s。用无菌纱布或无菌棉签清除橡 皮塞表面残余液体.然后注入血液。
血 培 养 标 本 采 集 流 程 需氧和厌氧血培养瓶
采集次数
急性脓毒血症 10分钟内从不同部位抽血2-3次; 急性感染性心内膜炎 从不同部位抽血3次,每次
10. 褥疮
褥疮拭子培养的临床意义不大。应选择供 活检组织或注射器吸出物。以无菌盐水清 洗褥疮表面;如不做活检,用力以拭子抹 取褥疮基底部;将拭子置入肉汤培养基中 。≤2小时,室温,1次/天/来源。
参考文献
汪复 张婴元 吴菊芳等,实用抗感染治疗学 ,北京: 人民卫生出版社,2004,24 ~33.

临床微生物标本采集和运送规范

临床微生物标本采集和运送规范
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脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
❖ 本卷须知 ❖ 迅速送往实验室,1小时内不能培养应将标本冷藏。 ❖ 皮肤消毒对培养结果至关重要。 ❖ 不要仅送检脓液。脓液不能代表伤口特点,应在病灶
活动区域或基底部采集标本。 ❖ 除非有渗出物,枯燥、结痂伤口一般不做培养 ❖ 标记:不要只写“伤口〞标记标本,应有专门的描述
5
二、临床各类标本的采集、 运送及保存标准
6
血培养的采集、运送标准
❖ 采集程序: ❖ 皮肤消毒程序:推荐三步法 〔酒精→碘伏→酒精〕 ❖ 培养瓶消毒程序:75%酒精消毒 ❖ 静脉穿刺和培养瓶接种程序
❖ 采血量:成人8-10ml,儿童1-3ml。 骨髓采集量1-2ml ❖ 采血时间和数量: ❖ 采血时间:在寒战或体温顶峰到来之前0.5-1h,或于寒战
储存 环境
标本来源
4℃冰 箱
痰、尿液、粪便、气管冲洗物、导尿管、静脉导管、脓液和伤口分泌物 细菌或真菌培养;无菌体液(胸腹水、心包液、关节液、鞘膜积液、胆 汁)真菌培养;支原体培养;衣原体检查;血清学检查(包括ASO、RF、 肥达反应)
室温 脑脊液、生殖道、眼、耳、鼻、喉、血培养、血管导管尖、活检组织细
❖ 注意:从静脉取血;不要与血气和血沉标本一起采血; 不推荐血入瓶前换针头;不推荐静脉血直接入瓶;不宜 在静脉导管或静脉留置口采血〔除非疑心导管相关性血 流感染〕。
8
血培养的采血量
❖ 成人采血量5-10ml〔最好8-10ml〕,儿童采血量1-3ml 〔不超过总血量的1%〕。血液和肉汤之比为1:5~1: 10。骨髓采集量1-2ml。
❖ 应注明具体标本来源如眼标本注明是眼睑、结膜 还是角膜,并注明左眼还是右眼。
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脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准

2024版临床微生物标本采集规范

2024版临床微生物标本采集规范

临床微生物标本采集规范•微生物标本采集意义与原则•临床常见微生物标本采集方法•微生物标本采集注意事项与操作规范•微生物标本运输、保存和处理流程目录•临床微生物实验室检测技术应用与进展•总结回顾与拓展思考01微生物标本采集意义与原则准确诊断指导治疗监测病情变化预防和控制感染通过采集微生物标本,可以对病原体进行准确鉴定和分类,为医生提供准确的诊断依据。

通过对微生物标本的连续检测,可以及时了解患者病情的变化情况,为医生调整治疗方案提供依据。

根据微生物标本的检测结果,医生可以选择针对性的治疗药物和方法,提高治疗效果。

通过对微生物标本的检测和分析,可以及时发现和控制感染源,防止感染的扩散和传播。

无菌操作正确选择采集部位采集足量标本及时送检01020304在采集微生物标本时,必须严格遵守无菌操作原则,避免污染标本和引入外源性微生物。

根据不同的病原体和感染类型,选择正确的采集部位,以提高标本的阳性率和准确性。

采集足够量的标本,以保证检测的准确性和可靠性。

采集后的微生物标本应及时送检,避免延误诊断和治疗。

血液标本通过静脉采血或末梢采血获得,用于检测血液中的病原体和抗体等。

尿液标本通过患者自行排尿或导尿获得,用于检测泌尿系统感染等。

粪便标本通过患者自行排便或灌肠获得,用于检测肠道感染和寄生虫病等。

呼吸道标本通过鼻咽拭子、喉拭子、痰液等获得,用于检测呼吸道感染和肺部感染等。

生殖道标本通过阴道分泌物、宫颈分泌物、前列腺液等获得,用于检测生殖道感染和性传播疾病等。

其他标本如脑脊液、穿刺液、组织活检等,用于检测相应部位的感染和病变情况。

微生物标本类型及来源02临床常见微生物标本采集方法血液及骨髓标本采集建议在患者寒战或发热初起时采集,同时在使用抗生素之前采集。

成人一般选择肘静脉,新生儿和婴儿选择颈静脉或股静脉。

成人一般采集8-10ml,儿童采集3-5ml,婴儿采集1-2ml。

严格无菌操作,避免污染,同时防止溶血。

采集时间采集部位采集量注意事项一般建议清晨第一次尿,即晨尿。

临床微生物标本规范化采集和送检

临床微生物标本规范化采集和送检

注意事项
✓ 虽粪便含有多种杂菌,但应尽量采用 无菌容器。
✓ 为提高检出率,要采集新鲜粪便作培 养,且应挑取其脓血、 粘液部分。
四、痰及上呼吸道标本的采集
采集痰标本作细菌培养,或涂 片后经特殊染色以检查细菌、真 菌或抗酸杆菌等,以助诊断;从 咽部及扁桃体采取分泌物作细菌 培养或病毒分离
痰及上呼吸道标本
尿液标本
➢ 采集时间: 一般原则 通常应采集晨起第一次尿 液送检。原则上应选择在抗菌药物应 用之前采集尿液。
尿液标本的采集时间
A. 结核分枝杆菌感染 留取晨尿或24小时 尿的沉渣部分10-15ml作涂片检查,若为 培养,患者应停药1-2天后再采样,以提 高阳性率
B. 沙门菌、钩端螺旋体感染 感染后2周左 右采集
采集方法
➢ 自然排便采集法 自然排便后,挑取其脓血、 粘液部分2-3g,液状粪便取絮状物2-3ml, 盛于灭菌容器内或保存液中送检
➢ 直肠拭子方法 如不易获得粪便时,或排 泄困难的患者及婴儿,可用直肠拭子采取, 即以无菌棉拭子用生理盐水湿润后,插入肛 门内4-5cm(幼儿2-3cm)轻轻转动取出, 插入无菌试管内送检。
标本采集--保留导管
• 经由导管抽取5-10ml血液, 进行血培养;
• 再由静脉端抽血进行另外 一套血培养。
标本采集--决定拔除导管 • 从2个独立的外周静脉部 位,无菌采集2套血培养, 同时无菌操作取出导管并 剪下5cm导管末梢送实验 室培养。
血培养标本采集与送检要求--4
2. 未留置深静脉导管者: (1)怀疑血流感染时,从2个不同的外周静脉穿刺部位无
➢ ④尽可能采集更多的液体,至少1ml
手术切口分泌物标本采集
➢ 1、涂片:常规检查+革兰染色 ➢ 先用无菌生理盐水擦拭切口2遍,再用含生
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2.小儿取痰法 用弯压舌板向后压舌,用棉 拭子深入咽部,小儿经压舌刺激咳嗽时, 可喷出肺部和气管分泌物,粘在棉拭子上 送检。幼儿还可用手指轻叩胸骨柄上方, 以诱发咳痰。 3.支气管镜采集法 –-经支气管镜直接吸引 –-支气管肺泡灌洗 –-防污染样本毛刷
(三)注意事项
1. 痰标本不能及时送检者,可暂存4℃冰箱。室温 下耽搁数小时,定植于口咽部的非致病菌过度生 长而肺炎链球菌、葡萄球菌和流感嗜血杆菌检出 率则明显降低。 2. 在临床上咳痰仍是诊断肺部感染最常用的标本, 但咳痰也最易被口咽部正常菌群污染。痰液标本 的细菌学检验,必须区分是病原菌还是来自上呼
(二)血培养检测消毒程序
1.皮肤消毒程序:严格执行三步法(防止皮肤寄生菌污染) (1)用75%酒精擦拭静脉穿刺部位待30s以上; (2)然后用1%-2%碘酊作用30秒或10%碘伏作用60秒, 从穿刺点向外画圈消毒,至消毒区域直径达3cm以上; (3)最后用75%酒精脱碘,待酒精挥发干燥后采血。 新生儿及对碘过敏的患者,只能用75%酒精消毒60s, 待穿刺部位酒精挥发干燥后穿刺采血。 2.培养瓶消毒程序: (1)用75%酒精消毒血培养瓶橡皮塞,作用60秒。 (2)用无菌纱布或无菌棉签清除橡皮塞表面剩余的酒 精,然后注入血液。

临床上约半数咳痰标本不合格!
咳痰途经口咽部 不可避免地受到污染
唾液中口咽部定植菌的浓度可达108 ~ 109/ml。 研究显示,国内常规痰标本中约半数存在 唾液严重污染现象。


合格标本的判断标准
外观:观察颜色、粘度、有无血丝
或脓。若标本为水状且很明显是唾 液,则应拒收。
为了判定是否来自下呼吸道的痰,

6.血培养标本的运送 要求:(1)采集后的血培养瓶应在1小时之内 送往实验室。 (2)血培养瓶在接种前和接种后均不得冷藏和 冷冻。 说明:血培养瓶冷藏或冷冻会将一些微生物杀 灭,将装着液体的容器冰冻也会使容器破裂。
7.血培养的培养周期 要求:自动化血培养仪的标准血培养周期为5天。 说明:有研究表明,95%-97%的有临床价值的 细菌会在3-4天内被自动血培养系统检出,目 前仍推荐5天的培养周期。特殊情况可适当延 长培养时间。如临床怀疑布鲁菌感染,可延 长培养至28天等。
5.血液标本在需氧瓶和厌氧瓶中的分配 要求:一个需氧瓶和一个厌氧瓶为一套血培养, 作为常规血培养的组合。 说明:采用一对需氧瓶+厌氧瓶组合,比采用 二个需氧瓶的组合可检出能更多的葡萄球菌、 肠杆菌科细菌和厌氧菌。而且,采两瓶可以 保证足够的采血量。当被用来做培养的采血 量少于推荐值时,血必须首先接种需氧瓶, 然后将剩余的血液接种入厌氧瓶。因为多数 菌血症是由需氧和兼性需氧细菌造成的,而 这些细菌从需氧瓶中更好的被分离。
由于婴幼儿患者厌氧菌所致菌血症比较罕见, 婴幼儿血培养可以仅用需氧瓶,为提高检出 率、区分污染菌,应采用两只需氧瓶为一组 血培养。仍然采用双侧双瓶的采血方式。 真菌血培养采用需氧血培养瓶采集标本。采 用中和/灭活抗菌药物的血培养瓶可提高真菌 的检出率。自动化血培养系统不能用于双相 真菌的检测。
4.采血量 要求: 成年患者推荐的采血量为每瓶不少于5ml。 婴幼儿患者推荐的采血量为每瓶不少于2ml。 说明:血标本采集的量是影响检出率的最重要的因素。 成人血培养采血量在2~30ml之间,病原菌检出率与 采血量成正比例增长。每增加1ml的血液,病原菌 的检出率增加3.2%。儿童患者因为血液中病原菌浓 度较高,血培养量无需等同于成人。对血液病患者 或者血容量相对较低的患者建议使用儿童瓶来减少 血液的采集量增加病原菌的检出率。
我们应该追求: “准确的病原学诊断” “针对性病原学治疗” 正确的微生物标本采集和运送, 是准确的病原学诊断的前提!
标本规范化采集的重要性



正确采集、处理与运送细菌培养的标本直接关系到 致病菌培养的正确性与阳性率的高低,是临床细菌 检验成功的关键。 标本质量的好坏直接影响诊断结果的正误,不当的 标本可导致假阴性、假阳性结果的出现,因此标本 采集与处理的规范化是准确、及时地向临床提供重 要的临床感染信息的基础。 好的微生物检验标本可提升实验室工作效率及病患 照顾质量,降低医疗成本。
吸道的正常菌群。经过洗涤处理的痰液或自气管
镜采集及气管穿刺所获标本,结果比较可靠。
3.由于口腔和咽部存在大量的革兰阳性和革兰阴性厌
氧细菌,而且缺乏可靠的方法区分它们究竟是致病
菌还是定植菌,因此不主张对咳痰标本进行厌氧菌 培养。 4. 约有1/4~1/2肺部感染患者可能发生菌血症,应 同时做血培养。
要求: 严格无菌操作,不允许在皮肤消毒后用手按 压静脉,除非带有无菌手套。 不推荐采血和接种血培养瓶更换注射器针头, 采用真空采血装置能降低污染率。 说明:无论采用何种采血方法,血培养可接受 的污染率通常是≤3%。研究表明,经过专门 培训的熟练抽血者采集血培养的污染率为3%, 而未经培训的住院医生和护士污染率则达 11%。因此对临床护士就血培养标本采集进 行专门的、严格的培训是非常必要的。
合格痰液标本
需检查是否为合格的痰标本。白细
胞>25个/低倍镜视野、鳞状上皮细 胞<10个/低倍镜视野为合格标本。 采集合格标本对细菌的诊断极为重 要。
不合格痰液标本
(一)采集指征

凡是发热、咳嗽和咳痰,痰呈脓性、粘稠或血性, 并伴有胸痛、气急,肺部闻及湿罗音,外周白细 胞总数及中性粒细胞比例明显增高,X线检查提 示肺部有炎性浸润或胸腔积液,甚至出现感染性 休克和呼吸衰竭等患者,应采集痰液或下呼吸道 标本。 对可疑烈性呼吸道传染病(如SARS、肺炭疽、肺 鼠疫等)患者采集检验标本时必须注意生物安全 防护。
临床微生物标本 采集规范
世界人口死因 感染性疾病:25%
抗生素时代,感染仍是人 类健康的主要“杀手”
提高感染样本送检率 加强细菌耐药监测
关注细菌性疾病的病原学诊断,已成为
临床工作者、临床微生物与微生态工作者、
药学家和从事感染控制的工作者共同关注的
热门焦点。
成功治疗感染症的因素
‧成功分离病原菌 –标本收集、运送、保存 –标本处理方法 –检验医师专业知识 ‧医师判读病原菌培养结果 ‧选择适当治疗方法


病毒
支原体、衣原体与立克次体 原虫 寄生虫
我国痰培养现状
标本送检率低
苛养菌检出率极低
结果重复性差
报告速度慢
感染菌与污染菌不易区分
药敏结果与治疗反应存在差距

标本采集方法
医师或护士直视下采集标本
咳痰标本
病人先漱口,去除表面的菌群
教育病人深咳,收集从下呼吸道咳出的痰液
(三)血培养标本采集和运送
1.采集时间 要求:对怀疑菌血症、真菌血症的患者,在考虑使用 抗菌药物之前,应立即采集血培养标本。必须同时 或间隔短时间内采集2套(每套包括1只普通血培养 瓶及1只厌氧血培养瓶)以上血培养标本。 说明:实验数据表明细菌入血后约1小时,寒战和发 烧开始出现2小时内,此时为采集血培养标本进行 病原菌培养的最佳时机。在不同的时间点采血只有 在以下情况才有必要:疑似感染性心内膜炎或其他 血管内(如导管相关性感染)感染患者的连续性菌 血症。
如何提高细菌阳性检出率
标本采集时机
标本采集方法
标本的质与量
标本的运送与保存
镜检筛选合格标本
高质量、多种分离培养基
培养环境
微生物样本采样基本原则
1.及时采集微生物标本作病原学检查 2.在抗菌药物使用前采集标本 3.采样时严格执行无菌操作 4.采样后立即送检甚至床旁接种尤其是厌氧培养 5.棉拭子标本宜用运送培养基 6.混有正常菌群污染标本,不可置肉汤培养 7.标本容器须灭菌处理,但不得使用消毒剂 8.送检标本应注明来源和检验目的
“正确的微生物学检验始自正确的 标本采取。临床医师、护师及检 验技师都必须通晓其要领。”
标本采集和运送是细菌培养成 功的最最重要的关键
但由于标本的采集和运送常由护士或医 生或病人自己完成,所以也是最不容易做好 的事情,而且不知道问题所在之处,造成的 后果是: 临床医生最不能接受的问题:阳性率低
三、
尿培养标本采集规范
尿路感染是指尿道内有大量微生物繁殖而引起的尿 路炎症。 根据感染部位分为: 上尿路感染(肾盂肾炎) 下尿路感染(膀胱炎、尿道炎) 男性可出现前列腺炎。
(一)尿培养标本送检指征

1. 有典型的尿路感染症状;



2. 有肉眼脓尿或血尿; 3. 尿常规检查白细胞或亚硝酸盐阳性; 4. 有不明原因的发热,无其他局部症状; 5. 留置导尿管的患者出现发热; 6. 膀胱排空功能受损; 7. 泌尿系统疾病手术前; 8. 有尿路感染症状者,前次培养结果阴性或抗菌治 疗48h后仍持续发热。 9. 抗生素停药后,感染症状再次出现。
体温 细菌量 上升幅度
时间
2.采集部位 要求:从两侧上肢静脉采血,“双瓶双侧”采血 培养。至少做到“双侧双瓶”。必要时从下肢静 脉采血做第三套血培养。 说明:不建议采集 (1)动脉血,因其诊断价值没有比静脉血更大; (2)静脉留置导管,因其常伴有高污染率。如果 必须从留置导管内采血,也应同时从外周静脉采 集另外一个血培养标本,以帮助阳性结果的判读。

(二)采集方法 1. 自然咳痰法 以晨痰为佳。用清水 反复漱口,用力咳出呼吸道深部的 痰,痰液直接吐入无菌容器中,尽 快送检。否则有的细菌(如肺炎链 球菌、流感嗜血杆菌)在外界可能 死亡。不能及时送检的标本,室温 保存≤2h。要求采到肺深部的痰液, 不要唾液。




在抗生素应用前采集痰标本; 标本采集后1~2h内必须立即进行实验室处理; 咳痰标本应用最早且广泛,但也是最受争议的标本 ; 取标本前应摘去牙托,清洁口腔如刷牙和漱口; 深咳,采集标本过程中要有专业的医务人员指导; 对于细菌性肺炎,痰标本送检每天1次,连续2~3 天;不建议24h内多次采集,除非痰液外观性状改 变; 怀疑分枝杆菌感染者,应连续收集3天清晨痰液送 检。
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