Discrepancy of Classical Swine Fever Virus in Different Tissues by One-Step RT-PCR and Nested RT
猪瘟流行新特点与疫苗免疫
猪瘟流行新特点与疫苗免疫宁宜宝中国兽医药品监察所猪瘟是由猪瘟病毒（Classical swine fever virus，CSFV）引起的猪的一种危害严重的烈性传染病，其特征为小血管的变性导致组织器官多发性出血、坏死和梗死。
近年来，猪瘟的流行特点发生了很大的变化，多以非典型性、慢性及隐性形式出现，特别是不表现临床症状带毒母猪的垂直传播及猪群中水平传播是造成目前猪瘟持续感染的根本原因。
猪瘟病毒属于黄病毒科（Flaviviridae）瘟病毒属（Pestivirus）。
病毒为球形，有囊膜，大小为40～60nm，二十面体的核衣壳被3种结构蛋白形成的液态膜所包裹。
病毒基因组为单股正链RNA，长约12.5kb。
在过去的十年约有二十余株猪瘟病毒全序完成了测定。
病毒基因组包括一个大的开放读码框，编码4种结构蛋白（C（p14）,E rns(gp48),E1(gp33),E2(gp53)）和7种非结构蛋白（P7,NS2,NS3,NS4A～B,NS5A～B）。
猪瘟病毒的感染性克隆目前已成功制备，其可用于病毒的复制、致弱以及致病机制等的研究。
猪感染猪瘟病毒能产生一系列临床症状，感染的过程多种多样：急性、亚急性、亚临床、慢性以及迟发性。
潜伏期为2～14d，这个时期的猪开始排毒。
仔猪的死亡率比成年猪高，架子猪的病毒血症持续期比仔猪短。
自然条件下口鼻接种是最易感的途径。
扁桃体是猪瘟病毒感染后最初的复制场所。
感染康复后的猪产生的抗体能持续终身，康复猪血清中和抗体出现在感染后14～28d。
自然感染猪血清抗体主要是针对结构蛋白E2、E rns以及非结构蛋白 p80。
针对E2囊膜蛋白的抗体在体外能中和猪瘟病毒。
而猪利用E rns蛋白进行免疫则不能产生可检测的中和性抗体，但是针对强毒猪瘟病毒攻击却能提供部分保护。
猪瘟仍然是目前危害我国养猪业的最为重要的疾病一、猪瘟免疫失败的原因1．母猪持续感染与垂直传播母猪持续感染和仔猪胎盘感染是目前引起免疫失败的重要原因。
CSFV和FMDV共感染PK-15细胞的致病性研究
CSFV和FMDV共感染PK-15细胞的致病性探究猪病毒性疾病对农业产业和经济造成了严峻的恐吓。
猪瘟病毒（Classical Swine Fever Virus, CSFV）和口蹄疫病毒（Foot-and-Mouth Disease Virus, FMDV）是两种重要的猪病毒性疾病的病原体。
CSFV属于Flaviviridae家族，FMDV属于Picornaviridae家族。
这两种病毒在感染动物时可以引起严峻的致病性和经济损失。
本文将探讨这两种病毒共感染猪的肾细胞系（PK-15细胞）的致病性探究。
方法：1. 细胞培育：将PK-15细胞培育在含有DMEM培育基和10%胎牛血清的培育皿中， incubation在37℃的恒温培育箱内。
2. 病毒感染：将CSFV和FMDV分别注入PK-15细胞培育皿，使其共感染。
3. 细胞观察：利用显微镜对细胞进行观察，观察是否出现病毒感染的病态特征，例如细胞变形、细胞质内包涵体的产生等。
4. 细胞存活率检测：接受MTT法检测细胞存活率，评估病毒共感染对细胞的生存能力的影响。
5. 病毒复制和扩散探究：利用PCR技术和免疫荧光染色技术检测CSFV和FMDV在共感染PK-15细胞中的复制和扩散状况。
结果：1. 细胞观察：共感染后，PK-15细胞出现明显的病态特征，如变形、细胞质内包涵体的产生等。
2. 细胞存活率检测：共感染后，PK-15细胞的存活率明显下降，与单独感染相比，病毒共感染对细胞的生存能力产生了显著的影响。
3. 病毒复制和扩散探究：共感染后，CSFV和FMDV在PK-15细胞中得到了有效的复制和扩散。
谈论：通过本探究对CSFV和FMDV共感染PK-15细胞的致病性进行了探讨。
结果表明，CSFV和FMDV共感染对PK-15细胞产生了明显的病态特征，并且对细胞的生存能力产生了显著的影响。
此外，分子生物学检测结果显示，CSFV和FMDV在共感染细胞中得到了有效的复制和扩散。
几种常见的易导致母猪繁殖障碍的传染病
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猪常见的几种传染病
皮肤疹块型：该型易在背腹部等部位
出现突出于皮肤的红色疹块，形状多为菱
形，易于诊断。
关节和心脏增生型：该型是慢性型， 多由急性败血型和皮肤疹块型转化而来， 表现为关节内增生物的出现，特别是在跗 关节内，表现尤为明显；在心脏内膜会有 菜花样赘生物的出现。
预防及治疗
发生该病时应首先隔离病猪并进行全群消毒，
预防
疫苗免疫为最有效手段，为提高猪群抗体
整齐度，母猪宜进行免疫，3次/年。 圆环有点类似于条件致病，饲养管理水平 越高，发病率越低，因此良好的饲养管理 能显著降低猪群发病率。
蓝耳
概述
蓝耳病是目前国内对养猪业危害最大的传
染病，高死亡率，高淘汰率，危害巨大； 蓝耳病毒变异性高，感染持续性强，对巨 噬细胞的嗜性，一定的抗体依赖性，导致 蓝耳病的发生，难以清除；
萎缩性鼻炎
概述
猪萎缩性鼻炎是由支气管败血波氏杆菌和
产毒素巴氏杆菌及其产生的毒素引起，本 病常发生于2～5月龄的猪，其特征为鼻炎， 颜面部变形，鼻甲骨尤其是鼻甲骨下卷曲 发生萎缩和生长迟缓。
临诊症状
临诊症状表现为打喷嚏、流鼻血、颜面变形、 鼻部歪斜；受感染的小猪出现鼻炎症状，打喷 嚏，呈连续或断续性发生，呼吸有鼾声。猪只 常因鼻类刺激黏膜表现不安定，用前肢搔抓鼻 部，或鼻端拱地，或在猪圈墙壁、食槽边缘摩 擦鼻部，并可留下血迹。 病猪的眼结膜常发炎，从眼角不断流泪。由于 泪水与尘土沾积，常在眼眶下部的皮肤上，出
感染
临诊症状
高烧 全身出血
雀斑肾
淋巴结周边出血，呈大理石样
膀胱出血、喉头出血
脾边缘出血，严重的梗死
大肠出血、扣状肿，淋巴滤泡出血肿大
猪结肠小袋虫病
猪瘟病毒E2蛋白重组杆状病毒灭活疫苗(WH-09株)说明书和内包装标签2020版
猪瘟病毒E2蛋白重组杆状病毒灭活疫苗（WH-09株）说明书和内包装标签（一）猪瘟病毒E2蛋白重组杆状病毒灭活疫苗（WH-09株）说明书【兽药名称】通用名猪瘟病毒E2蛋白重组杆状病毒灭活疫苗（WH-09株）商品名无英文名Classical Swine Fever Virus E2 Protein Recombinant BaculovirusVaccine,Inactivated（Strain WH-09）汉语拼音Zhuwenbingdu E2 Danbai Chongzu Ganzhuangbingdu Miehuoyimiao (WH-09 Zhu)【主要成份及含量】主要成分为猪瘟病毒E2蛋白，每头份含量为50μg。
【性状】混悬液，久置可形成易摇散的沉淀。
【作用与用途】用于预防猪瘟。
免疫期为6个月。
【用法与用量】耳后颈部肌肉注射。
使用前将疫苗恢复至室温并充分摇匀，每次2ml（1头份）。
推荐免疫程序为：母猪产前6～7周接种2ml（1头份），21日后二免，所产仔猪在6～7周龄接种2ml（1头份），21日后二免；无母源抗体仔猪3～4周龄接种2ml（1头份），21日后二免。
【不良反应】无可见不良反应。
【注意事项】（1）本疫苗仅用于接种健康猪。
（2）使用前如发现包装破损、残缺、文字模糊、过期失效等，严禁使用。
（3）切勿冻结或长时间暴露于高温下。
（4）疫苗接种前应恢复至室温并充分摇匀，启封后一次用完。
（5）剩余疫苗及接种器具应做无害化处理。
【规格】（1）4ml/瓶（2）6ml/瓶（3）20ml/瓶（4）50ml/瓶（5）100ml/瓶（6）250ml/瓶【包装】(1)10瓶/盒(2) 1瓶/盒【贮藏与有效期】2～8℃保存，有效期为18个月。
【批准文号】【生产企业】仅在兽医指导下使用（二）猪瘟病毒E2蛋白重组杆状病毒灭活疫苗（WH-09株）内包装标签猪瘟病毒E2蛋白重组杆状病毒灭活疫苗（WH-09株）4（6、20、50、100、250）ml /瓶批准文号：批号：有效期至：【作用与用途】用于预防猪瘟。
猪瘟
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防治措施
治疗方法
已知猪瘟兔化弱毒疫苗给猪注射后，3-4天即可产生免疫力。根据疫苗的这一特性，在已发生猪瘟疫情的猪 群或地区，对假定未感染猪群进行紧急接种，可使一部分猪或大部分获得保护。可逐头测量体温，对正常的和尚 未出现症状的猪做紧急接种，常可控制疫情。此外，对疫区周围的猪群，立即一头不漏地注射疫苗，形成安全带， 防止疫区扩大和猪瘟蔓延。但应注意对注射针头等的清毒，以防人为传播。
病理变化
病理变化
猪瘟病毒感染后的主要病理变化是免疫抑制和血细胞减少，猪瘟病毒对猪免疫系统的损伤是导致急性致死性 猪瘟的一个重要原因。猪瘟病毒感染并损害淋巴组织的发生中心，阻碍B淋巴细胞的成熟，从而使在循环系统及淋 巴组织中的B淋巴细胞缺失、病猪胸腺萎缩、白细胞减少，病猪的骨髓也遭到了破坏。原位杂交显示，作为病毒复 制及入侵淋巴结位点的滤泡在晚期结构已遭到破坏。
猪瘟
动物病害
01 病害学史
03 为害症状
目录
02 病原特征 04 流行情况
05 病理变化
07 防治措施
目录
06 诊断方法
基本信息
猪瘟（Infection with classical swine fever virus，简称CSF）是由猪瘟病毒（CSFV）引起的、发生 在猪上的一种高度急性、热性、接触性传染病。该病有最急性型、急性型、亚急性型、慢性型、温和型之分。该 病以发病急、发生高热稽留和细小血管壁变性、全身泛发性小点出血、脾梗死为特征。
D_半乳糖促小鼠衰老模型的衰老程度与自然生长鼠龄的比较_关萍
ＨＵ Ｊｉｅ，ＬＩＡＮＧ Ｙｕａｎ１，ＭＯ Ｓｈｅｎｇ－ｌａｎ，ＺＨＡＮＧ Ｂｕ－ｘｉａｎ，ＳＨＩ Ｋａｉ－ｃｈｕａｎｇ， ＱＵ Ｓｕ－ｊｉｅ，ＳＵ Ｙａｎ－ｑｉｏｎｇ，ＬＵ Ｗｅｎ－ｊｕｎ，ＳＵ Ｋａｉ，ＬＩ Ｊｕｎ
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动 物 医 学 进 展 ２０１３ 年 第 ３４ 卷 第 １ 期 （总 第 ２３５ 期 ）
１ 材料与方法
１．１ 材料 １．１．１ 实验动物 ８０日龄～８２日龄昆明种 ＳＰＦ 级 小鼠２４０只，购自中国医科大学实验动物中心。 １．１．２ 试剂 Ｄ－ｇａｌ，１２０ｇ／Ｌ ＫＣｌ溶 液，５０ ｍｍｏｌ／Ｌ ＰＢＳ（ｐＨ ８．３），０．０５ ｍｏｌ／Ｌ 邻 苯 三 酚 溶 液 ，盐 酸 等 。 １．１．３ 仪 器 与 用 具 可 见 分 光 光 度 计 ，高 速 离 心 机 ， 组织匀浆器 ，恒 温 水 浴 锅 ，微 量 取 样 器 ，电 子 天 平 ，解 剖 器 具 ，１ ｍＬ 注 射 器 等 。 １．２ 方法 １．２．１ 小 鼠 肝 脏 超 氧 化 物 歧 化 酶 （ＳＯＤ）活 性 的 测 定 试验前 ２４ｈ 对 小 鼠 停 止 供 食 ，６ｈ 停 止 供 水 ，脱 臼 法 处 死 小 鼠 ，迅 速 取 其 肝 脏 组 织 称 重 后 备 用 。 参 照 邹 国林的方法制备粗酶液并应用改进的邻苯三酚自氧 化法测定自氧化速率并应用下列公式计算 ＳＯＤ 总活 力［１０］：
酶活 性 （Ｕ· ｍＬ－１）＝ ［（０．０７０－ 样 液 速 率 ）／ ０．０７０×１００％］／５０％ × 反 应 液 总 体 积 × （样 液 稀 释 倍 数／样液体积）
不同抗体检测方法对猪口蹄疫疫苗临床免疫效果的评估
China Swine IndustryDOI：10.16174/j.issn.1673-4645.2022.03.016收稿日期：2022-05-16不同抗体检测方法对猪口蹄疫疫苗临床免疫效果的评估谭涛1任静雷1倪春霞2辛俊宝2张淑刚1*(1礼蓝(上海)动物保健有限公司,上海200003;2杨凌金海生物技术有限公司,陕西杨凌712100)摘要:口蹄疫依然是危害我国养猪业的重大动物疫病之一,我国目前主要采用以免疫控制为主的策略防控猪的口蹄疫。
口蹄疫临床免疫效果主要通过群体免疫抗体合格率进行评价,检测方法和试剂盒种类繁多。
为了解猪口蹄疫O 型、A 型二价灭活疫苗的免疫效果及不同抗体检测方法(试剂盒)的差异,本试验选用临床常用的5个品牌的ELISA 抗体检测试剂盒(液相阻断法、固相竞争法和间接法)及病毒中和试验共4种检测方法,检测猪场免疫的口蹄疫O 型和A 型疫苗的抗体,结果显示疫苗免疫效果良好,不同检测方法抗体阳性率变化趋势相似,说明目前各ELISA 检测方法具有良好的适用性,同时,本文也分析了不同试剂盒检测结果存在差异的原因,为生产一线评估口蹄疫免疫效果提供数据参考。
关键词:口蹄疫疫苗;抗体检测;ELISA ;病毒中和试验;免疫效果中图分类号:S828;S852.6文献标识码:A文章编号:1673-4645(2022)03-0066-04开放科学(资源服务)标识码(OSID ),扫一扫,了解文章更多内容口蹄疫（Foot and Mouth Disease,FMD ）是由口蹄疫病毒引起的一种急性、热性、可快速远距离传播的烈性动物疫病，在猪、牛、羊等偶蹄动物中易广泛传播，且是一类人畜共患传染病[1]。
许多国家的口蹄疫呈地方性流行或大流行趋势，而疫苗接种可以限制疫病的流行并减少养殖业的经济损失。
从口蹄疫疫苗的研究和临床应用情况看，当前口蹄疫的控制仍然以注射灭活疫苗为主[2-4]。
对于基层猪场而言，疫苗的选择和评估主要看免疫临床表现，具体来说就是注射疫苗后是否有副反应（安全性）和免疫保护率（效力）。
猪瘟,非洲猪瘟,猪丹毒
强碱性，氯化物，酚 类，戊二醛等
水shui'pi平传播和软 蜱叮咬
口腔（皮肤等）→附 近淋巴结→单，巨中 大量复制→经血液或 淋巴循环到达肝脾肾
骨髓肺脏等。
青霉素，链霉素
消化道，破碎皮肤 粘膜，吸血昆虫 消化道（皮肤）→ 淋巴，血液→其他
组织
四、临床症状鉴别
类型
猪瘟
非洲猪瘟
猪丹毒
最急性型 急性型
亚急性型 慢性型
一、临床症状
发病时体温升高至41-42℃ ，精神萎靡，扎堆，抗生素治疗无效。 病猪呼吸困难，侧卧，腹式呼吸；耳朵、体表皮肤大面积充血、出血， 发红、发紫；口腔、鼻腔流血色泡沫，便血；病猪多以母猪或育肥猪 大面积死亡为特征。 最急性型：发烧（41-42°C），厌食，无活力气踹，皮肤充血。通常 在没有临床症状的情况下突然死亡。 急性型：发烧（40-42℃），厌食、斜卧、嗜睡、虚弱，呼吸频率加快； 耳朵、腹部和/或后腿的蓝紫色区域和出血（斑点状或块状）；眼和鼻 有分泌物；胸部、腹部、会阴、尾部和腿部皮肤发红；便秘或腹泻， 从粘液性到便血性（黑粪）；呕吐；从鼻子/嘴巴流出血沫。
三、猪丹毒病理变化
四、鉴别诊断
病原学
猪瘟
病原
单股正链RNA
灭活 56℃ 60m，60℃ 10m
非洲猪瘟 双股线性DNA
60℃ 30min
猪丹毒 微需氧小杆菌 70℃ 5-15min
常用消 毒剂
传播方 式
致 病 机 制
碱性消毒剂
水平传播和垂直传播
口腔→扁桃体→各级 淋巴结→外周血→骨
髓，脏器淋巴结
一、非洲猪瘟
一、非洲猪瘟
非洲猪瘟病毒是非洲猪瘟科非洲猪瘟病毒属的重要成员，病毒粒 子的直径为175－215纳米，呈20面体对称，有囊膜。基因组为双股线 状DNA，大小170－190kb。在猪体内，非洲猪瘟病毒可在几种类型的 细胞浆中，尤其是网状内皮细胞和单核巨噬细胞中复制。该病毒可在 钝缘蜱中增殖，并使其成为主要的传播媒介。本病毒低温暗室内存在 血液中之病毒可生存六年，室温中可活数周，加热被病毒感染的血液 55℃ 30分钟或60℃ 10分钟，病毒将被破坏，许多脂溶剂和消毒剂可 以将其破坏。
classical_swine_fever(经典猪瘟)
Classical Swine FeverHog Cholera, Peste du Porc,Colera Porcina, VirusschweinepestCenter for Food Security and Public Health College of Veterinary Medicine Iowa State University Ames, Iowa 50011Phone: (515) 294–7189FAX: (515) 294–8259E–mail: cfsph@Web: /services/institutes/iicab/iicab.htm Institute for International Cooperation in Animal Biologics An OIE Collaborating Center Iowa State University College of Veterinary Medicine Last Updated: Nov. 11, 2003Importance Classical swine fever is a serious and highly contagious viral disease of pigs. Acute or chronic infections occur; both are usually fatal. In herds infected with less virulent isolates, the only symptom may be poor reproductive performance or a failure to thrive. A wide range of clinical signs and a similarity to other diseases can make classical swine fever challenging to diagnose.Etiology Classical swine fever results from infection by classical swine fever virus (CSFV), (genus Pestivirus, family Togaviridae). This virus is also known as hog cholera virus. Only one serotype has been found. The CSF virus is very similar to the Bovine Virus Diarrhea (BVD) virus that affects cattle.Species affectedClassical swine fever affects domestic and wild pigs.Geographic distributionClassical swine fever is found in East and Southeast Asia, the Indian subcontinent, China, East and Central Africa, and most of South and Central America. This disease has been eradicated from the United States, Canada, New Zealand, and Australia. Most of Western Europe is free of classical swine fever; however, foci of infection remain in Germany and some countries of Eastern Europe.TransmissionClassical swine fever is highly contagious. Virus transmission is mainly oral; CSFV is often spread by feeding uncooked contaminated garbage. Animals can also be infected through the mucus membranes, conjunctiva, and skin abrasions. Aerosol spread is sometimes seen in confined spaces; however, the virus does not travel long distances in the air. Infected carrier sows may give birth to persistently infected pigs. Mechanical spread by fomites and insects occurs.Infected pigs are the only reservoir of virus. Blood, secretions and excretions, and tissues contain infectious virus. CSFV is moderately fragile in the environment, but can remain infectious for months in refrigerated meat and years in frozen meat. It can survive in contaminated pens and on fomites for as long as two weeks.Incubation period Variable incubation periods have been published, ranging from 2 to 14 days.Clinical signs The clinical signs of classical swine fever vary with the strain of virus and suscep-tibility of the pigs. More virulent strains cause acute disease; less virulent strains can result in a high percentage of chronic, mild, or asymptomatic infections.In acute classical swine fever, common clinical signs include a high fever, dull-ness, weakness, drowsiness, huddling, anorexia, an unsteady gait, conjunctivitis, and constipation followed by diarrhea. Several days after the first symptoms appear, the abdomen, inner thighs, and ears may develop a purple discoloration. Convulsions may be seen in the terminal stages. Pigs with acute classical swine fever often die within one to two weeks.The symptoms of chronic disease include intermittent fever, anorexia, periods of constipation or diarrhea, stunted growth, and alopecia. Immunosuppression may lead to concurrent infections. The symptoms of chronic infections can wax and wane for weeks to months and may affect only a few animals in the herd. Chronic infections are almost always fatal.Reproductive symptoms may also be seen. Virulent strains can cause abortions or the death of piglets soon after birth. Less virulent strains of CSFV may result in stillbirths or mummification. Some piglets are born with a congenital tremor or con-genital malformations of the visceral organs and central nervous system. Other piglets are asymptomatic but persistently infected. These animals are persistently viremic andbecome clinically ill after several months. They may have mild anorexia, depression, stunted growth, dermatitis, diarrhea, conjunctivitis, ataxia, or paresis, and may die. In some breeding herds infected by less virulent strains, poor reproductive performance is the only sign of disease. Post mortem lesionsThe lesions of classical swine fever are highly variable. In acute disease, the most common lesion is hemorrhage. The skin may be discolored purple and the lymph nodes may be swollen and hemorrhagic. Petechial or ecchymotic hemorrhages can often be seen on serosal and mucosal surfaces, particularly the kidney, urinary bladder, epicardium, larynx, trachea, intestines, subcu-taneous tissues, and spleen. Straw–colored fluid maybe found in the peritoneal and thoracic cavities and the pericardial sac. Necrotic foci are common in the tonsils. Splenic infarcts are occasionally seen. The lungs may be congested and hemorrhagic. In some acute cases, lesions may be absent or inconspicuous.The lesions of chronic disease are less severe and may be complicated by secondary infections. In addition, necrotic or “button” ulcers may be found in the intestinal mucosa, epiglottis and larynx.In congenitally infected piglets, common lesions include cerebellar hypoplasia, thymic atrophy, ascites, and deformities of the head and legs.Morbidity and MortalityBoth morbidity and mortality are high in acute infec-tions. The mortality rate in acute cases can reach 90%. Chronic infections are also fatal in most cases.Vaccines may be available in some areas. Vaccines can protect animals from clinical disease, but do not prevent infections. Good vaccination programs can even-tually eliminate the infection in herds.DiagnosisClinicalClassical swine fever should be suspected in pigs with septicemia and a high fever, particularly if uncooked scraps have been fed, unusual biological products have been used, or new animals have been added to the herd. Differentiation from other diseases may be difficult with-out laboratory testing. In acute outbreaks, the chance of observing the characteristic necropsy lesions is better if four or five pigs are examined.Differential diagnosisThe differential diagnosis includes African swine fever, erysipelas, eperythrozoonosis, salmonellosis, pas-teurellosis, actinobacillosis, Haemophilus suis infection, thrombocytopenia purpura, warfarin poisoning, Aujesz-ky’s disease, heavy metal poisoning, and salt poisoning. Pigs congenitally infected with bovine virus diarrhea (BVD) virus may look very similar to pigs with classical swine fever.Laboratory testsClassical swine fever can be diagnosed by detecting the virus or its antigens in whole blood or tissue samples. Virus antigens are detected by direct immunofluorescence or enzyme–linked immunosorbent assays (ELISAs). CSFV is differentiated from other pestiviruses by immu-nofluorescence testing with monoclonal antibodies. The virus can also be isolated in several cell lines including PK–15 cells; it is identified by direct immunofluorescence or peroxidase staining. Reverse transcriptase polymerase chain reaction (RT–PCR) tests are available.Serology is used for diagnosis and surveillance. The most commonly used tests are virus neutralization tests, including the fluorescent antibody virus neutralization (FA VN) test, the neutralizing peroxidase–linked assay (NPLA), and ELISAs. Antibodies usually develop dur-ing the third week after infection, but cannot be reliably detected until 30 days after infection. They persist for life. Antibodies against ruminant pestiviruses may be found in breeding animals; only tests that use monoclonal antibod-ies can differentiate between these viruses and CSFV. Samples to collectBefore collecting or sending any samples from ani-mals with a suspected foreign animal disease, the proper authorities should be contacted. Samples should only be sent under secure conditions and to authorized laborato-ries to prevent the spread of the disease.Samples should be taken from at least four pigs. In live pigs, whole blood is preferred but tonsil biopsies are sometimes useful. Serum samples should be taken from recovered animals or sows that have been in contact with suspected cases.At necropsy, the tonsils should be submitted for virus isolation or antigen detection. Other organs to collect include the submandibular and mesenteric lymph nodes, spleen, kidneys, and the distal part of the ileum. Samples for antigen detection and virus isolation should be refrig-erated but not frozen; they should be kept cold during shipment to the laboratory. A complete set of tissues, including the whole brain, should be submitted in 10% buffered formalin for histology.Recommended actions ifclassical swine fever is suspectedNotification of authoritiesClassical swine fever should be reported imme-diately upon diagnosis or suspicion of the disease. Federal: Area Veterinarians in Charge (A VICS) http:///vs/area_offices.htmState vets: /vs/sregs/ official.htmlQuarantine and DisinfectionCSFV is moderately fragile in the environment. This virus is sensitive to drying and ultraviolet light and is rapidly inactivated by a pH less than 3. Sodium hypochlorite and phenolic compounds are effective disin-fectants. CSFV can survive for long periods in meat, but is destroyed by cooking.During outbreaks, confirmed cases and contact animals may be slaughtered and aquarantine imposed. V ac-cination may be used as a tool to assist in controlling an outbreak and eradicating the disease. In countries free of classical swine fever, periodic serologic sampling is neces-sary to monitor for the potential reintroduction of disease. Public healthClassical swine fever does not affect humans.For More InformationWorld Organization for Animal Health (OIE)http://www.oie.intOIE Manual of Standardshttp://www.oie.int/eng/normes/mmanual/a_summry.htmOIE International Animal Health Codehttp://www.oie.int/eng/normes/mcode/A_summry.htmUSAHA Foreign Animal Diseases book/vpp/gray_book/FAD/ Animal Health Australia. The NationalAnimal Health Information System (NAHIS).au/nahis/disease/dislist.asp> ReferencesBlackwell, J.H. “Cleaning and Disinfection.” In Foreign Animal Diseases. 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谈谈猪疾病名称的正确使用
猪病学中相关名词术语的使用建议农业部种猪质检中心基因分析室樊福好刘建营黄小燕黄娜华罗超（510500 广东广州）随着计算机技术和互联网技术的迅速发展，越来越多有关猪病的文献资料迅速出现在各种专业期刊、杂志、内部出版物、宣传资料和网页上，但随之也出现了猪疾病名称使用的混乱现象，这种现象的出现不但使人们对猪相关疾病的理解出现偏差，同时也给文献检索带来了诸多不便，甚至在某些政府文件中也出现了前后名称不一致或错误的现象。
下面就如何正确使用猪相关疾病名称谈谈我们的一些看法，以期抛砖引玉。
故此，本文中提及的猪疾病名称仅代表作者的认识，不代表任何标准。
近年来，随着养猪业的集约化程度的不断提高和各地猪种质资源的频繁交流以及猪群的大范围的流动，越来越多的猪疾病均以复合症状的形式出现，其中所出现的多种症状合并的症候群即为一例，这些症候群按照医学惯例就应该叫综合．．征．（英文名称为Syndrome）或复合征．．．（英文名称为Complex），而不应该象一些期刊杂志的文章中称作综合症．．．。
．．．或复合症在英文中，“Syndrome ”是指(n.) Concurrence；(n.) A group of symptoms occurring together that are characteristic and indicative of some underlying cause, such as a disease。
而在英文中，“症状——Symptom”是指(n.) Any affection which accompanies disease; a perceptible change in the body or its functions, which indicates disease, or the kind or phases of disease; as, the causes of disease often lie beyond our sight, but we learn their nature by the symptoms exhibited；(n.) A sign or token; that which indicates the existence of something else; as, corruption in elections is a symptom of the decay of public virtue。
古典猪瘟介绍
古典猪瘟介绍猪瘟(Hog Cholera, HC)，又称古典猪瘟(Classical Swine Fever, CSF)是由猪瘟病毒引起猪的一种高度接触性、传染性、致死性、重要的烈性传染病毒病。
19世纪30年代在美国大规模发生，并于1810年首先报道HC，目前本病呈世界性分布。
猪瘟在我国流行也有70多年的历史，我们已坚持半个多世纪以免疫预防为主的防制策略，猪瘟的急性发生和大面积流行已经得到有效的控制，但近年来又有死灰复燃、卷土重来的迹象。
当前猪瘟的流行和发病特点出现了许多新变化，严重威胁着养猪业的发展。
目前猪瘟仍是威胁我国养猪业的一种重要传染病，而且也是引起其它疾病的原因之一。
一、病原HCV是一个小RNA病毒，为黄病毒科瘟病毒属成员，与牛病毒性腹泻病毒(BVDV)、羊边界病病毒(BDV)同属。
猪瘟病毒没有型的区别，只有毒力强弱之分，分强毒、低毒、持续感染及无毒毒株或免疫用毒株。
根据Carbrey等的报道，强毒力株、低毒力株、持续感染毒株及无毒力或免疫用毒株分别占45％、27％、6％和22％。
持续感染毒株可引起高滴度病毒血症，但不表现任何临床症状。
有的毒株毒力性状不稳定，通过猪体传代后可使毒力增强。
有人从温和型猪瘟和无名高热病猪分离到猪瘟病毒，经接种易感猪，连续传代几次后毒力增强。
低毒力毒株可导致慢性感染，感染猪可终身排毒。
猪瘟病毒可通过胎盘垂直感染，造成死胎和仔猪猪瘟。
HCV为有囊膜的RNA病毒，直径40-50nm，核衣壳长29nm，病毒囊膜表面有6-8nm长的纤突。
浮密度1.12-1.17g/ml，沉降系数约为140-180S。
单股RNA的HCV 具有感染性，长约12kb；HCV和BVDV基因组间具有高的序列同源性。
HCV含有4种结构蛋白，从N端到C端依次为P14，E0，E1和E2。
P14为非糖基化核衣壳蛋白，分子量为36KD，后3种为糖蛋白，位于病毒的囊膜上，分子量是E0: 42-48KD. E1: 25-33KD, E2: 51-55KD。
牛羊布鲁氏菌病流行病学调查
4 小结目前CSFV的病原检测方法有间接免疫荧光（IFA）、抗原捕获ELISA、普通的RT-PCR和荧光定量RT-PCR等。
IFA 需要较昂贵的显微镜和有经验的实验人员，且该法经验性较强，耗时长，难度大。
基于抗原捕获ELISA法的试剂盒主要依赖进口，价格昂贵，而且敏感度较低，不利于普及。
普通的RT-PCR方法具有操作简便、快速和特异性强等特点，但在病毒含量较低时，会出现假阴性的结果。
荧光定量RT-PCR方法具有更高的敏感性、特异性和准确性等优点，受到多数学者的青睐。
之前有学者成功建立了基于探针的荧光定量RT-PCR方法，但该法过于昂贵，且需要特殊的配套仪器。
其他学者有建立的基于荧光染料的荧光定量RT-PCR方法，但使用的引物是基于病毒的变异较大E2蛋白设计，特异性差，不利于对多种不同亚型CSFV毒株的扩增。
由于以上存在的诸多问题，本实验参考国内外流行的多种CSFV亚型毒株，基于高度保守的5‘NTR区，设计合成特异性引物，成功建立了猪瘟病毒SYBR® Green I荧光定量RT-PCR检测方法。
该法具有较好的特异性、敏感性和重复性，可用于所有亚型CSFV毒株的的快速检测。
参考文献：[1]蔡宝祥．家畜传染病学[M]．北京: 中国农业出版社,2001．[2]David D,Edri N,Yakobson B A,et a1．Emergence of classical swine fever in Israel in 2009 [J]．Vet J, 2011, 190 (2): 146-149．[3]Edwards S,Fukusho A,Lefevre P C,et a1．Classical swine fever:the global situation[J]．Vet Microbiol, 2000, 73: 103-119．[4]仇华吉,李赞,贾洪林,等．猪瘟研究近况(上) [J]．畜牧兽医科技信息,2004(12): 54-55．[5]宁宜宝,吴文福．我国猪瘟流行新特点与疫苗免疫研究[J]．中国兽药杂志,2011, 45(8): 33-37．[6]Shen H,Pei J,Bai J,et a1．Genetic diversity and positive selection analysis of classical swine fever virus isolates in South China [J]．Virus Genes, 2011, 43 (2 ): 234-242．[7]张朝红,张彦明,张永国,等．猪瘟病毒4种检测方法的比较[J]．西北农林科技大学学报(自然科学版) , 2007, 5: 24-28．[8]Haegeman A,Dewulf J,Vrancken R,et a1．Characterisation of the discrepancy between PCR and virus isolation in relation to classical swine fever virus detection [J]．J Virol Methods, 2006, 136 (1-2): 44-50．[9]Jamnikar C U,Grom J ,Toplak I,et a1.Real-time RT-PCR assay for rapid and specific detection of classical swine fever virus:Comparison of SYBR Green and TaqMan MGB detection methods using novel MGB probes[J]．J Virol Methods, 2008, 147 (2): 257-264．牛羊布鲁氏菌病流行病学调查西日拉毛/青海省玛多县花石峡镇兽医站 813599摘 要：调查分析青海某地区2018～2019年牛和羊布鲁氏菌病的流行情况，试验采用虎红平板凝集试验法对2018～2019年青海某地区10个乡镇的牛和羊进行布鲁氏菌病的血清学检测，其中采集牛血清2569份，羊血清6385份。
猪瘟淋巴结大理石样变的病理学基础
猪瘟淋巴结大理石样变（Classical Swine Fever Lymph Node White Spots）是猪瘟的一种病理学表现，属于疫病的范畴。
这种病变在猪瘟的诊断中具有重要的意义，因此对其病理学基础进行深入的了解是十分必要的。
1. 病因和流行病学猪瘟是由猪瘟病毒引起的急性传染病，主要通过直接接触和经呼吸道传播。
感染猪瘟病毒的猪只有短暂的症状性感染期，但感染后能长期携带病毒并传播，使得猪瘟的流行具有隐蔽性和爆发性的特点。
2. 病理学特点猪瘟淋巴结大理石样变主要表现为淋巴结内的小血管扩张，血管内充血、变性和纤维蛋白坏死，形成纤维素样物质和细胞坏死或凋亡。
这些病变特征对于猪瘟的诊断具有重要的意义。
3. 病理学基础淋巴结是机体内的免疫器官，对于清除细菌、病毒和其他异物有重要作用。
在猪瘟感染后，病毒侵入淋巴结，引起淋巴细胞的增殖和混合性淋巴细胞浸润，同时血管内的炎症反应导致血管扩张和变性坏死，最终形成大理石样变的病理学表现。
4. 诊断和鉴别诊断猪瘟淋巴结大理石样变的病理学特点在猪瘟的诊断中具有重要价值。
需要注意与其他猪病引起的淋巴结病变进行鉴别诊断，以提高诊断的准确性。
总结与展望猪瘟淋巴结大理石样变作为猪瘟的典型病理学表现，对于猪瘟的诊断和防控具有重要的意义。
进一步的研究将有助于提高对猪瘟病理学基础的理解，并为猪瘟的防控提供更为科学的依据。
个人观点猪瘟是一种严重危害猪类养殖业的重大传染病，深入了解其病理学基础对于猪瘟的防控和诊断具有非常重要的意义。
希望我国国内的疫病学研究能够不断深化，在防控猪瘟等重大疫病方面取得更加显著的成果。
以上就是猪瘟淋巴结大理石样变的病理学基础的深度和广度的探讨，相信通过对这一主题的全面了解，你对猪瘟的病理学基础应该有了更加深刻的理解。
祝你在农业生产中取得更大的成就！猪瘟淋巴结大理石样变是猪瘟病理学上的一个重要表现，其病因和流行病学、病理学特点、病理学基础以及诊断和鉴别诊断都对猪瘟的防控和诊断具有重要的意义。
猪瘟(CSF)综述
• 先天性CSFV感染可造成流产，木乃伊胎儿、畸形胎儿、 死胎和有震颤症状的弱仔猪出生，或者产出外观正常的被 感染的仔猪 • 在子宫中感染的仔猪，皮肤常见出血，死亡率高 • 先天性感染CSFV猪，在相当长时期内呈无病状态，数月 后才表现出轻度的厌食，沉郁，结膜炎，下痢，局部运动 失调，体温正常，患猪可存活6个月以上，最终导致死亡
耳、颈、胸腹部及后肢皮肤呈暗紫色
肢端皮肤斑点状出血，公猪包皮皮肤出血
患猪后肢皮肤出血斑点
患猪腹部皮肤出血斑点
患猪全身皮肤出血斑点
后期病猪腹泻，腹部等处皮肤发绀
猪群体表污脏，精神沉郁，共济失调，后肢麻痹
齿龈和唇粘膜溃疡
患猪眼发红，分泌物增多
发病机理
• 自然发病的条件下，CSFV侵入机体的途径为口、 鼻，偶尔通过结膜、生殖道粘膜或皮肤擦伤侵入 猪体 • 经口腔感染后，扁桃体是病毒复制的最初部位
3.间接血凝试验
• 正向间接血凝试验：利用CSFV致敏红细胞，将待检血清 梯度稀释后进行抗原抗体反应，根据红细胞的凝集判断结 果。此法能够测出猪瘟抗体效价，操作简单，可用于免疫 抗体的监测，但此方法的缺点是不能区分抗体水平是由于 疫苗免疫还是野毒感染所引起 • 反向间接血凝试验：用猪瘟免疫血清提取IgG，致敏绵羊 红细胞，用之检测CSFV。此法能够检测组织病料如脾脏、 淋巴结、扁桃体中的CSFV抗原。但由于对组织病料处理 方法有差异，而且组织中的血细胞易造成干扰，非特异性 凝集使得结果判定困难，因而现在己很少应用
• 淋巴结和肾脏最常观察到病变。淋巴结肿胀和出 血，呈现大理石样外观，淋巴细胞排空和网状细 胞增生（颌下、腹股沟和肠系膜淋巴结） • 肾脏肿大，点状到斑状出血，常发生在皮质表面， 呈雀斑肾，髓质水肿
兽用疫苗管理与控制的国际标准
兽用疫 苗 是 兽 医 生 物 制 品 和 免 疫 学 兽 医 产 品，必 须满足一定的标准，这些标准包括安全性、效力、质量、 纯度和效价［1］，即 要 求 兽 用 疫 苗 产 品 对 于 接 种 动 物 必 须安全，如果是活疫苗，要保证接种动物不排出制苗微 生物； 产品有效，符合标签上的说明； 产品必须没有其 他任何污染； 每批产品都按配方制成并进行检测，保证 产品的效果 和 活 性 的 可 重 复 性，与 注 册 资 料 所 证 明 的 一致。根据全球情况，虽然管理和规章不同，但最终目 标都是为了给消费者提供符合这些基本标准的产品。
收稿日期： 2011-01-20 修回日期： 2011-03-11 * 通讯作者，电子信箱： hnxiangtao@ hotmail． com
求其产品的 规 模 经 营。 为 了 避 免 复 检，以 快 速 通 过 不 同的地区市 场 进 行 比 现 在 更 为 自 由 的 贸 易，有 必 要 进 行兽用疫苗的管理与控制标准的国际统一性的工作。 目前，世界动物卫生组织（ OIE） ［5］、生物制品标准国际 协会（ IABS） ［6］等国际组织都在努力实现兽用疫苗的生 产、检测和注 册 的 标 准 统 一 化。 兽 用 疫 苗 正 处 于 重 要 的转变期，良 好 的 管 理 与 控 制 标 准 能 保 障 兽 用 疫 苗 业 的稳定与增长。
为了保障每批产品都按照授权的条件进行生产和 检验，要求生产商设立合格人员检验产品，这是药品立 法的基本要 求［9］。 对 于 从 第 三 国 进 口 的 药 物，在 质 量 监督员的监 督 下，必 须 对 每 批 药 物 的 活 性 成 分 进 行 全 面的定性和 定 量 分 析。 对 于 兽 用 免 疫 医 药 产 品，经 质 量监督员 检 测 一 次 进 入 市 场 之 前 还 要 再 提 出 一 次 检 查［10］。此外，除特别情况外，由一个国家控制的实验室 所做的批次放行必须正常的得到其他成员国的承认， 并不得重复 检 验［11］。 为 了 保 证 该 规 定 的 运 行，权 利 当 局之间进行行政信息交换。