多聚赖氨酸处理
多聚赖氨酸的配置、保存、使用
![多聚赖氨酸的配置、保存、使用](https://img.taocdn.com/s3/m/b1bd3776770bf78a64295423.png)
先配制成10mg/ml的浓缩液,使用前按照1:80稀释,制成工作液,浓度25ug/ml,可用于包被培养皿。
十六、各位老师,有几个关于多聚赖氨酸包被培养板的问题请教
1、pll到底溶于硼酸缓冲液还是溶于三蒸水或双蒸水
2、使用前是用灭菌的去离子水稀释吗,可不可以用双蒸水或别的
答:
多聚赖氨酸溶于硼酸缓冲液或者无菌培养用水;
十八、我的问题是多聚赖氨酸可以在培养瓶中放多长时间,太长了会有影响吗?
答:
我曾用过多聚赖氨酸包被培养瓶,但浓度是
0.1mg/ml,我都是放一夜,第二天吸掉晾干就用,当然要紫外消一下.我觉得时间长点没什么大碍。
我们这里的老师说,多聚赖氨酸不能用紫外线照射。
1.用赖氨酸包被培养板和培养瓶时,应该选用多聚左旋赖氨酸(分子量为15-30万);
八、使用说明
操作步骤(可直接在玻片上涂布)
1.灭菌的ddH2O 1:10稀释该多聚赖氨酸溶液。
2.用之前将稀释的多聚赖氨酸溶液放在室内,使其温度到室温18-26℃
3.将玻片浸在稀释的多聚赖氨酸溶液5分钟。注意增加时间不会提高包被效果。
4.在60℃烘箱1小时干燥,或室温18-26℃过夜干燥待用。
九、注意事项
我们用的多聚赖氨酸浓度为100ug/ml,一般包被3-4小时即可用.我们包被完后一般放在培养箱里,临用时拿出来洗三次,吹干即可.如果不急着用,放在培养箱里较长时间也没关系,把瓶盖拧紧即可,我最长放了2星期也没有问题。
左旋和右旋的多聚赖氨酸都可以用于包被细胞培养器具,主要看你的细胞贴壁能力如何,左旋的更利于细胞贴壁.我们一般使用
多聚赖氨酸的工作浓度各家文献报道相差很大,从
0.25 mg/ml到
0.01mg/ml都有,因为多聚赖氨酸对细胞有毒性,所以在保证贴附的前提下,浓度越低越好,还省钱。我现在用的是
gibco多聚-d-赖氨酸 用法
![gibco多聚-d-赖氨酸 用法](https://img.taocdn.com/s3/m/695920fb4128915f804d2b160b4e767f5acf80cc.png)
gibco多聚-d-赖氨酸用法
Gibco多聚D赖氨酸是一种生物化学试剂,用于生命科学研究中的细胞培养和实验。
具体用法如下:1. 培养基中的添加物:可以将Gibco多聚D赖氨酸添加到细胞培养基中,作为细胞的营养物来源之一。
通常的用量是每升培养基添加10-50 mg的多聚D赖氨酸。
2. 包被培养皿表面:可以在培养皿表面预先涂覆Gibco多聚D赖氨酸,从而提供细胞附着的基质。
在培养皿中加入适量的多聚D赖氨酸水溶液,让其在表面均匀涂敷,并在室温下干燥。
3. 组织工程和支架材料:Gibco多聚D赖氨酸也可以用于组织工程和支架材料的制备。
可以将多聚D赖氨酸加入到生物降解材料中,用于细胞生长和组织修复。
需要注意的是,具体的用法可能因研究目的、细胞类型和实验条件而有所不同。
在使用Gibco 多聚D赖氨酸前,最好参考相关的文献或咨询厂家提供的技术手册,以获取更详细的用法指导。
多聚赖氨酸细胞爬片处理原理
![多聚赖氨酸细胞爬片处理原理](https://img.taocdn.com/s3/m/724fb186cf2f0066f5335a8102d276a2002960fa.png)
多聚赖氨酸细胞爬片处理原理
嘿,朋友们!今天咱来聊聊多聚赖氨酸细胞爬片处理原理。
这玩意儿啊,就像是给细胞准备了一个特别舒服的小窝。
你想啊,细胞就像一个个小精灵,它们也得有个安稳的地方待着不是?多聚赖氨酸就像是给它们铺上了一层温暖柔软的地毯。
细胞们在这上面能稳稳当当地待着,舒舒服服地生长、活动。
多聚赖氨酸为啥能有这效果呢?其实就是它有一种魔力,能和细胞相互吸引。
就好比你和好朋友,彼此之间有那种特别的吸引力,让你们喜欢待在一起。
细胞一碰到多聚赖氨酸,哎呀,就像找到了好朋友一样,紧紧地贴上去了。
这可太重要啦!要是没有多聚赖氨酸这层“魔法地毯”,细胞可能就到处乱跑,不好好待着,那我们还怎么观察研究它们呀?那我们的实验不就乱套啦?
而且啊,多聚赖氨酸的处理也有讲究呢!得恰到好处,不能太多也不能太少。
这就跟做菜放盐似的,放多了太咸,放少了没味道。
要掌握好那个度,才能让细胞在上面待得开心,我们也能得到满意的结果。
你说这多聚赖氨酸是不是很神奇?它就像一个幕后英雄,默默地为细胞提供着支持,让我们的科学研究能够顺利进行。
想想看,如果没有它,我们得费多大的劲才能让细胞乖乖听话呀!
所以啊,大家可别小看了这多聚赖氨酸细胞爬片处理。
它虽然看起来不起眼,但是作用可大着呢!它就像是打开细胞世界大门的一把钥匙,让我们能更好地了解细胞的奥秘。
怎么样,朋友们,现在是不是对多聚赖氨酸细胞爬片处理原理有了更清楚的认识啦?下次再看到相关的实验,你就知道这背后的小秘密啦!这就是科学的魅力呀,小小的一个处理,却蕴含着大大的学问呢!
原创不易,请尊重原创,谢谢!。
多聚赖氨酸处理载玻片流程
![多聚赖氨酸处理载玻片流程](https://img.taocdn.com/s3/m/5297d205e418964bcf84b9d528ea81c758f52eec.png)
多聚赖氨酸处理载玻片流程
多聚赖氨酸(Poly-L-lysine,PLL)是一种常用的载玻片(Coverglass)表面修饰物,用于细胞培养和免疫组织化学等实验。
以下是一种常见的PLL处理载玻片的流程:
1. 准备载玻片:选择干净、无尘的载玻片,并用无水酒精或酒精灯烘烤消毒。
确保载玻片表面干燥且无油污。
2. 涂覆PLL:将PLL溶液加到载玻片表面。
可以选择将PLL溶液滴在载玻片中央,然后用微量移液器慢慢将溶液扩散到整个载玻片表面,或者使用旋涂法将PLL溶液均匀地涂覆在载玻片上。
3. 等待吸附:将涂覆好PLL的载玻片放置在无尘的环境中,让PLL溶液在载玻片表面吸附,并形成均匀的PLL层。
通常需要等待约20-30分钟,具体时间根据PLL浓度和温度而定。
4. 洗涤载玻片:将载玻片用去离子水或PBS缓冲溶液轻轻地洗涤数次,以去除未吸附的PLL和其他杂质。
避免用力刷洗或产生气泡,以防PLL层的破坏。
5. 干燥载玻片:用空气或干净的氮气吹干洗涤后的载玻片,确保载玻片表面完全干燥。
可以将载玻片放置在干燥箱中或在无尘环境中自然晾干。
6. 使用载玻片:处理好的PLL载玻片即可用于细胞培养、免疫组织化学等实验。
将培养物或样品滴在PLL处理的载玻片上,使其黏附并进行后续实验操作。
具体的操作流程可能因实验目的、PLL浓度和实验要求等而有所不同。
在进行实验前,建议参考相关文献或实验方法以获取更详细和专业的操作指导。
细胞爬片中玻片的处理
![细胞爬片中玻片的处理](https://img.taocdn.com/s3/m/9840c63a10661ed9ad51f37e.png)
细胞爬片中玻片的处理:
方法一:先用无水乙醇脱脂,再用多聚赖氨酸处理,然后高压灭菌,然后就可以放入培养板中。
方法二:玻片和一般玻璃器皿的洗涤一样,也就是也要浸洗液,然后冲洗,蒸馏水冲洗后干燥,然后高压灭菌,这样处理过的玻片也没有问题,这个方法比较简单。
方法三:新玻片先用自来水冲洗,然后放到烤箱中烤干,再泡酸24小时,然后用自来水冲洗干净,要一片一片洗多冲几遍,直到无酸残留为止,最后用双蒸水荡三遍即可拿去高压备用。
多聚赖氨酸 树枝型大分子
![多聚赖氨酸 树枝型大分子](https://img.taocdn.com/s3/m/6aa0a58fab00b52acfc789eb172ded630b1c98e6.png)
多聚赖氨酸树枝型大分子
多聚赖氨酸是一种生物材料,也被称为聚赖氨酸树枝型大分子。
它是一种天然高分子聚合物,由赖氨酸单体组成。
赖氨酸是一种氨
基酸,是人体内的一种重要成分,对细胞的生长和修复起着重要作用。
因此,多聚赖氨酸树枝型大分子具有良好的生物相容性和生物
降解性,被广泛应用于生物医学领域。
从材料角度来看,多聚赖氨酸树枝型大分子具有分子量大、分
子结构独特、分子内带正电荷等特点。
这些特点使得多聚赖氨酸树
枝型大分子在药物传递、组织工程、生物材料等领域具有潜在的应
用前景。
例如,多聚赖氨酸树枝型大分子可以被设计用作药物载体,通过改变其分子结构和表面功能团,可以实现药物的控制释放和靶
向输送,提高药物的疗效并减少副作用。
从生物医学角度来看,多聚赖氨酸树枝型大分子在组织工程和
再生医学中具有重要意义。
由于其生物相容性和生物降解性,多聚
赖氨酸树枝型大分子可以被用来制备支架材料,用于修复组织缺损
和促进组织再生。
此外,多聚赖氨酸树枝型大分子还可以被用来制
备生物胶束、纳米颗粒等材料,用于药物输送和组织工程。
总的来说,多聚赖氨酸树枝型大分子是一种具有广泛应用前景的生物材料,其独特的分子结构和生物性能使其在药物传递、组织工程和生物材料等领域具有重要的应用价值。
随着生物医学领域的不断发展和进步,相信多聚赖氨酸树枝型大分子将会发挥越来越重要的作用,为人类健康事业做出更大的贡献。
多聚赖氨酸处理玻片
![多聚赖氨酸处理玻片](https://img.taocdn.com/s3/m/005dae70366baf1ffc4ffe4733687e21af45ff8b.png)
多聚赖氨酸处理玻片1. 引言1.1 概述概述多聚赖氨酸是一种生物相容性强且多功能的天然生物聚合物,具有广泛的应用前景。
在生物材料领域,多聚赖氨酸因其良好的生物相容性和可调控性受到了广泛的研究和应用。
除此之外,多聚赖氨酸还可以作为一种优秀的载体用于药物传递、基因转染和组织工程等领域。
然而,尽管多聚赖氨酸在生物医学领域中具有巨大的潜力,但其在玻片处理中的应用却相对较少被研究。
在病理学和细胞学等领域,制备高质量的玻片是重要的实验步骤之一。
目前常用的方法是通过利用多聚赖氨酸修饰玻片表面,提高玻片的附着力、细胞黏附和显微观察效果。
本文将重点介绍多聚赖氨酸处理玻片的方法和步骤。
首先将详细介绍多聚赖氨酸的特性,包括其生物相容性、成膜性、附着性以及与细胞相互作用的特点。
接着,将介绍利用多聚赖氨酸处理玻片的具体方法和步骤,包括材料准备、玻片表面修饰和处理等方面的内容。
通过本文的研究,相信可以有效地应用多聚赖氨酸处理玻片,并提高玻片的性能和实验结果的准确性。
此外,探索多聚赖氨酸在玻片处理中的应用还能够为其他领域的研究提供新的思路和方法。
因此,本文的研究对于推动多聚赖氨酸的应用和促进细胞学、病理学等领域的研究具有重要的意义和价值。
1.2 文章结构本文总共分为三个部分,即引言、正文和结论。
下面将对每个部分的内容做详细的介绍。
1. 引言部分在引言部分,首先会进行概述,介绍多聚赖氨酸处理玻片的背景和研究意义。
多聚赖氨酸作为一种天然产物,具有许多特殊的化学和物理性质,因此在生物医学领域有着广泛的应用前景。
然后,会详细说明本文的研究结构和目的,以引出后续的研究内容。
2. 正文部分正文部分主要包括两个小节,分别是多聚赖氨酸的特性和多聚赖氨酸处理玻片的方法和步骤。
- 2.1 多聚赖氨酸的特性在这一小节中,将详细介绍多聚赖氨酸的化学结构、物理性质以及其在生物医学领域的应用。
多聚赖氨酸具有丰富的氨基、羧基和假胺基团,以及良好的溶解性和可调节的电荷性质,这些特性使其成为理想的生物材料用于玻片表面的处理。
细胞免疫荧光步骤
![细胞免疫荧光步骤](https://img.taocdn.com/s3/m/a7782a84050876323012121c.png)
方法一:1.首先需要把细胞养在玻璃片上(悬浮细胞需要用多聚赖氨酸包被过的玻璃片)2.然后在4%PFA里面室温下固定30分钟,PBS洗两次,% TX-100室温下作用1-2分钟使细胞膜通透。
3.接下来进行荧光标记,需要在一个大的容器(面积大,扁平状的,比如大的培养皿)里面,放一张用水打湿的滤纸,以保持湿度。
4.剪一片合适大小的parafilm,在上面滴上稀释在1%BSA/TBS中的一抗(稀释倍数依具体抗体而定),每个玻璃片30ul足够,把玻璃片盖在上面(细胞面朝下),室温下孵育30分钟,然后在PBS里洗三次。
5.接下来二抗孵育步骤同上。
6.最后,在载玻片加上mounting medium(大约每个玻璃片加10ul),把玻璃片放上去(细胞面朝下),37度30分钟,然后就可以在荧光显微镜下观察了。
7.抗体很重要,不能有非特异性结合。
你可以先做WB检测一下你的抗体,看看有没有杂带。
8.双标的话,可以把两个一抗一起加或者分别标记两次(可以都试一下看看那种方法合适)。
如果一个抗体需要二抗,一个是直接荧光标记的,可以把荧光标记的那个和另外一个的二抗一起加。
方法二:1.选取一抗时要来源于两种不同的动物,我用的是来源于rabbit和rat的抗体,二抗则是不同荧光信号标记的,我用的是donkey anti-rabbit-FITC(绿)和donkey anti-rat-Tex-Red(红)。
2.我的做法是两种一抗同时孵育,然后两种二抗同时孵育。
抗体浓度、孵育时间要仔细摸索,我感觉一抗4度孵育过夜比较好,背景比较清晰。
3.我的阳性对照用的是阳性组织切片,阴性对照则分别是家兔和大鼠的IgG,荧光标记物对照是PBS+荧光标记物。
4.封闭血清与二抗来源动物一致,我用的是10%的正常donkey血清。
5.其余步骤同一般免疫荧光单标操作。
方法三:1.片子的制作:可以做细胞爬片,细胞甩片,还有直接在24well/12well/96well中直接染色2.细胞爬片的制作:直接购买公司的已经处理过的细胞爬片,要是自己制作的话,就用无菌的盖玻片用多聚赖氨酸处理后让细胞自己爬片3.细胞甩片:需要甩片机将细胞悬液均匀甩到玻片上。
细胞免疫荧光步骤
![细胞免疫荧光步骤](https://img.taocdn.com/s3/m/7e2f40db2dc58bd63186bceb19e8b8f67c1cef34.png)
方法一:1.首先需要把细胞养在玻璃片上悬浮细胞需要用多聚赖氨酸包被过的玻璃片2.然后在4%PFA里面室温下固定30分钟;PBS洗两次;0.1% TX-100室温下作用1-2分钟使细胞膜通透..3.接下来进行荧光标记;需要在一个大的容器面积大;扁平状的;比如大的培养皿里面;放一张用水打湿的滤纸;以保持湿度..4.剪一片合适大小的parafilm;在上面滴上稀释在1%BSA/TBS中的一抗稀释倍数依具体抗体而定;每个玻璃片30ul足够;把玻璃片盖在上面细胞面朝下;室温下孵育30分钟;然后在PBS里洗三次..5.接下来二抗孵育步骤同上..6.最后;在载玻片加上mounting medium大约每个玻璃片加10ul;把玻璃片放上去细胞面朝下;37度30分钟;然后就可以在荧光显微镜下观察了..7.抗体很重要;不能有非特异性结合..你可以先做WB检测一下你的抗体;看看有没有杂带..8.双标的话;可以把两个一抗一起加或者分别标记两次可以都试一下看看那种方法合适..如果一个抗体需要二抗;一个是直接荧光标记的;可以把荧光标记的那个和另外一个的二抗一起加..方法二:1.选取一抗时要来源于两种不同的动物;我用的是来源于rabbit和rat的抗体;二抗则是不同荧光信号标记的;我用的是donkey anti-rabbit-FITC绿和donkey anti-rat-Tex-Red红..2.我的做法是两种一抗同时孵育;然后两种二抗同时孵育..抗体浓度、孵育时间要仔细摸索;我感觉一抗4度孵育过夜比较好;背景比较清晰..3.我的阳性对照用的是阳性组织切片;阴性对照则分别是家兔和大鼠的IgG;荧光标记物对照是PBS+荧光标记物..4.封闭血清与二抗来源动物一致;我用的是10%的正常donkey血清..5.其余步骤同一般免疫荧光单标操作..方法三:1.片子的制作:可以做细胞爬片;细胞甩片;还有直接在24well/12well/96well中直接染色2.细胞爬片的制作:直接购买公司的已经处理过的细胞爬片;要是自己制作的话;就用无菌的盖玻片用多聚赖氨酸处理后让细胞自己爬片3.细胞甩片:需要甩片机将细胞悬液均匀甩到玻片上..4.其实小的well的话;可以直接拿来染色;没问题的..5.固定:用PBS洗去培养液;用固定液如甲醇和丙酮;4%多聚甲醛;酒精......固定细胞..6.内源性过氧化物酶处理;3%过氧化氢处理细胞选作;二抗连HRP得必做;其他的如做免疫荧光染色不用做..7.通透胞浆蛋白和细胞核蛋白需要做;细胞膜蛋白不需要做;一般选用Triton-X100来做细胞通透;浓度和时间需要摸索;一般是0.1-5%;处理时间为1-30分钟;级个别需要到1-2小时..8.封闭:洗去通透液;用二抗同源的血清约10%的浓度in PBS中封闭半小时;也可以选用5-10%脱脂奶粉..封闭结束后千万不要洗;直接上一抗..9.一抗:具体你想做什么样的蛋白;咨询抗体公司如santacruze;Abcam;sigma......选取具体的抗体;但是一抗的稀释浓度也是要摸索;抗体稀释液可以购买抗体公司现成的;对于新手还是挺好的..时间一般是4度过夜或者37度1小时..一抗最好还是选用外国抗体公司的抗体..10.洗去一抗..11.上二抗;二抗一般抗体公司会给你推荐的;你在其中选上一个就行了;自己选国产的也行;就是选在哪个动物体内做的一抗;二抗就选抗那个动物的就行了..二抗的浓度也是需要摸索的;抗体稀释液和一抗相同就行了..二抗的时间一般是37度半小时..12.底物显色选作;二抗连得是酶的必做;按试剂盒的说明书添加就行了;显色时间可能需要摸索;以免显色过度引起假阳性;二抗连得是荧光报告的不用做13.洗去二抗;染核14.DAPI或者Hoechst染核15.洗去染核液;加PBS;上镜观察..方法四:(1)细胞准备..对单层生长细胞;在传代培养时;将细胞接种到预先放置有处理过的盖玻片的培养皿中;待细胞接近长成单层后取出盖玻片;PBS洗两次;对悬浮生长细胞;取对数生长细胞;用PBS离心洗涤1000rpm;5min2次;用细胞离心甩片机制备细胞片或直接制备细胞涂片..(2)固定..根据需要选择适当的固定剂固定细胞..固定完毕后的细胞可置于含叠氮纳的PBS中4℃保存3个月..PBS洗涤3×5 min..(3)通透..使用交联剂如多聚甲醛固定后的细胞;一般需要在加入抗体孵育前;对细胞进行通透处理;以保证抗体能够到达抗原部位..选择通透剂应充分考虑抗原蛋白的性质..通透的时间一般在5-15min..通透后用PBS 洗涤3×5 min..(4)封闭..使用封闭液对细胞进行封闭;时间一般为30min..(5)一抗结合..室温孵育1h或者4℃过夜..PBST漂洗3次;每次冲洗5min..(6)二抗结合..间接免疫荧光需要使用二抗..室温避光孵育1h..PBST漂洗3次;每次冲洗5min后;再用蒸馏水漂洗一次..(7)封片及检测..滴加封片剂一滴;封片;荧光显微镜检查..方法五:1.漂洗血清蛋白PH7.2-7.4;37度 PBS 2小时.2.-20度甲醇固定20分钟后;自然、干燥 10分钟3.PBS洗净:3min34.1%Triton:25min-30min.配成50ultriton+5mlpBS5.PBS洗净:25min6.羊血清封闭:37度;20分钟7.一抗;4度过夜;一般要大于18小时或者37度1-2小时8.4度 PBS洗净;3min5次9.二抗37度小于一小时10.37度PBS洗净;33min11.凉干封片封闭液PH8.5细胞免疫荧光步骤:1.细胞爬片;首先是玻片的处理;普通的盖玻片用砂轮划成自己要的大小的小方块;先用洗衣粉洗干净;用水冲静烤干;然后泡酸过夜;捞酸后流水洗净;烤干;置于器皿中高压灭菌;然后再烤箱中大约8小时烤干备用..爬片可以在培养皿六孔板或24孔板中都可;我选择在培养皿中爬..一为节约经费培养皿可以重复利用二来觉得培养皿口大;操作比较方便..培养皿消毒同上;消毒时记得消两把镊子具体操作是:用胰酶消化好细胞;充分吹打;使之成单细胞悬液注意:这一点很重要;关系到将来爬出来片子的质量取出消毒的培养皿;可以先加少量培养基以使玻片与培养皿紧密接触;将玻片小心放入摆放其中;然后将单细胞悬液一滴一滴的滴到玻片上..最后盖上培养皿置于37度5%CO2的暖箱中培养;根据细胞生长状况;24小时或更长时间适时取出爬片..爬片置于37度PBS中洗三次;每次3到5秒钟;然后在4%多聚甲醛中固定15分钟;然后再用37度去离子水将甲醛冲干净;注意手法轻柔;要不然掉片很厉害..同时操作过程中注意玻片的正反面;要不然真的是前功尽弃..将做好的爬片置于滤纸上晾干;然后用中性树胶粘在载玻片上..注意一定要等中性树胶彻底干了之后才能做后续实验;要不然玻片会掉下来的;就又是前功尽弃了做好的细胞爬片可以放在-20保存备用;具体能保存多长时间不太清楚;当然尽量早用..2.4%多聚甲醛固定10min固定细胞器用预冷的70%甲醇+30%丙酮;3.PBS漂洗5min;4.0.5% Triton 穿孔15min丙酮固定法不用透化处理;5.PBS漂洗2次;每次5min;6.1%BSA封闭30min;7.加入1%BSA稀释的一抗;于37℃杂交2h;8.PBS漂洗2次;每次5min;9.加入1%BSA稀释的二抗;于37℃杂交1h;10.PBS漂洗2次;每次5min;11.5ug/ml DAPI染色2min;12.抗淬灭封片剂封片..抗淬灭封片剂:2.5% DABCO w/v50mM TrispH8.090%甘油细胞免疫荧光细胞爬片4%多聚甲醛固定10min固定细胞器用预冷的70%甲醇+30%丙酮PBS漂洗5min0.5% Triton 穿孔15min丙酮固定法不用透化处理PBS漂洗2次;每次5min1%BSA封闭30min加入1%BSA稀释的一抗;于37℃杂交2hPBS漂洗2次;每次5min加入1%BSA稀释的二抗;于37℃杂交1hPBS漂洗2次;每次5min5ug/ml DAPI染色2min抗淬灭封片剂封片2.5% DABCO w/v抗淬灭封片剂 50mM TrispH8.090%甘油0.25g DABCO9ml甘油0.5ml 1M TrisPh8.0 70℃溶解;-20℃保存0.5ml ddHO2。
聚赖氨酸使用注意事项
![聚赖氨酸使用注意事项](https://img.taocdn.com/s3/m/3a7fff7155270722192ef7e4.png)
聚赖氨酸是目前天然防腐剂中具有优良防腐性能的微生物类食品防腐剂。
即由25~30赖氨酸残基聚合而成,因具有强烈的抑菌能力,所以,现被主要用于食品的保鲜,那在使用时应该注意哪些事项呢,下边一起来看看吧。
1.每100mL已稀释的多聚赖氨酸溶液要包被的玻片40-90张,超过90张片子将影响其黏合力。
2.用之前的玻片必须保持清洁。
必要时用含1% HCl的70%乙醇溶液来清洗。
3.不要在用过的稀释液中加新的溶液。
4.释过的多聚赖氨酸溶液要放在2-8℃,至少在3个月内是稳定的。
5.用过的稀释液要过滤,若出现浑浊或长菌要丢弃。
综上就是在使用聚赖氨酸时需注意的事项介绍,希望对大家有所帮助,同时,如有不清楚的可咨询深圳安泰食品添加剂有限公司,该公司是一家专业生产销售集一体的添加剂公司,不仅产品质优价廉,性价比高,且拥有完善的售后服务,因此,现深受客户的好评。
包被细胞培养板的相关问题
![包被细胞培养板的相关问题](https://img.taocdn.com/s3/m/c9e5fa3e5727a5e9856a61ae.png)
培养板的包被及相关问题:为了适应不同的实验需要,可对培养板用不同的物质进行包被后使用,这其中有促进细胞黏附的,也有用于一些特殊检测需要的。
不同的实验目的可能具体的方案亦不同,根据需要灵活掌握。
(一)多聚赖氨酸包被:问:我要培养原代神经细胞培养,要用多聚赖氨酸铺细胞培养板,请问赖氨酸液怎么配,怎样铺扳子答:配制0.01%的多聚赖氨酸: 首先买来sigma 公司的多聚赖氨酸,如是25mg,就需要250ml三蒸水,用移液管将少量三蒸水加到多聚赖氨酸的小塑料瓶中,然后将溶解的多聚赖氨酸加到200ml左右三蒸水中,(已置烧杯中)。
最后加三蒸水达250ml,过滤除菌分装与小瓶中即可。
保存于-20度,近期用的话可放于4度冰箱内保存。
注意每一小瓶的量不要太满,若20ml的瓶子,只装15ml可,若太满,放于-2度有可能会将瓶子弄碎,因冻后体积增加。
(我就有这个教训) 另外烧杯,小瓶、移液管都要灭菌处理的,泡酸高压什么的。
我们用的是一种用注射器过滤的过滤器,一次性的。
一个能最多有效过滤200ml。
铺板的操作:首先要在消毒实验室,包括超净台,紫外消度20-30分钟。
消毒后30分钟进入实验室。
事先准备100ml三蒸水,经高压灭菌处理。
具体细节就不多说了。
首先打开板子,用消毒好的试管将0.01%的多聚赖氨酸加入每一孔中,大概每孔3-4滴吧。
将板子盖好放到培养箱中(37度 5%CO2)30分钟。
取出板子,用吸管将多聚赖氨酸吸出。
换吸管,加入三蒸水,冲洗三次,即将每孔内加入三蒸水,没过底,多点也行。
再将水吸出来。
反复三次。
注意换吸管,要无菌操作的。
最后将铺好的板子放于培养箱待用。
如果你做免疫组化,需要放小的玻片到孔内,就在加多聚赖氨酸之前用无菌的镊子将无菌的玻片夹到孔内即可。
问:PLL的分子量有3-5万,7-15万,15-30万几种,应怎样选择??谢谢:)答:我们养神经细胞,用的是分子量3万到7万的pll 。
以PBS配成1mg/ml的母液,-20度保存。
细胞免疫荧光步骤(仅供参照)
![细胞免疫荧光步骤(仅供参照)](https://img.taocdn.com/s3/m/528788135b8102d276a20029bd64783e08127d50.png)
细胞免疫荧光步骤(仅供参照)方法一:1.首先需要把细胞养在玻璃片上(悬浮细胞需要用多聚赖氨酸包被过的玻璃片)2.然后在4%PFA里面室温下固定30分钟,PBS洗两次,0.1% TX-100室温下作用1-2分钟使细胞膜通透。
3.接下来进行荧光标记,需要在一个大的容器(面积大,扁平状的,比如大的培养皿)里面,放一张用水打湿的滤纸,以保持湿度。
4.剪一片合适大小的parafilm,在上面滴上稀释在1%BSA/TBS 中的一抗(稀释倍数依具体抗体而定),每个玻璃片30ul足够,把玻璃片盖在上面(细胞面朝下),室温下孵育30分钟,然后在PBS里洗三次。
5.接下来二抗孵育步骤同上。
6.最后,在载玻片加上mounting medium(大约每个玻璃片加10ul),把玻璃片放上去(细胞面朝下),37度30分钟,然后就可以在荧光显微镜下观察了。
7.抗体很重要,不能有非特异性结合。
你可以先做WB检测一下你的抗体,看看有没有杂带。
8.双标的话,可以把两个一抗一起加或者分别标记两次(可以都试一下看看那种方法合适)。
如果一个抗体需要二抗,一个是直接荧光标记的,可以把荧光标记的那个和另外一个的二抗一起加。
方法二:1.选取一抗时要来源于两种不同的动物,我用的是来源于rabbit 和rat的抗体,二抗则是不同荧光信号标记的,我用的是donkey anti-rabbit-FITC(绿)和donkey anti-rat-Tex-Red(红)。
2.我的做法是两种一抗同时孵育,然后两种二抗同时孵育。
抗体浓度、孵育时间要仔细摸索,我感觉一抗4度孵育过夜比较好,背景比较清晰。
3.我的阳性对照用的是阳性组织切片,阴性对照则分别是家兔和大鼠的IgG,荧光标记物对照是PBS+荧光标记物。
4.封闭血清与二抗来源动物一致,我用的是10%的正常donkey 血清。
5.其余步骤同一般免疫荧光单标操作。
方法三:1.片子的制作:可以做细胞爬片,细胞甩片,还有直接在24well/12well/96well中直接染色2.细胞爬片的制作:直接购买公司的已经处理过的细胞爬片,要是自己制作的话,就用无菌的盖玻片用多聚赖氨酸处理后让细胞自己爬片3.细胞甩片:需要甩片机将细胞悬液均匀甩到玻片上。
多聚赖氨酸的配置
![多聚赖氨酸的配置](https://img.taocdn.com/s3/m/fbd1b7c581eb6294dd88d0d233d4b14e85243e8b.png)
多聚赖氨酸的配置、保存、使用一、常用的多聚赖氨酸包被可以用三蒸水,或者PBS,浓度一般为用0.1 mg/ml进行包被。
二、其他常用包被方法比较(以各种免疫分析为例):49456826.snap三、我配成1mg/ml的储存液,用Mini-Q(超纯水)配制,放在-20℃储存,使用时稀释10倍(也用超纯水),即终浓度100ug/ml,过滤后使用。
工作液过滤使用,如一次用不完,放在4℃储存。
多聚赖氨酸在水溶液中易分解,所以一次不要配太多工作液。
四、我现在要配多聚赖氨酸,书上写的用PBS配,但没写PH,浓度,向各位请教。
答:PH应该在7.0~7.4,PBS:取氯化钠7.650 g,无水磷酸氢二钠0.724 g,磷酸二氢钾0.210g 溶于蒸馏水1000 mL 中,以1N 氢氧化钠溶液调pH值为7.0~7.4,经121℃灭菌15 分钟五、我准备用多聚赖氨酸涂片培养细胞,不知道多聚赖氨酸涂过的玻片如何灭菌?能否干烤灭菌?答:Sigma的产品说明书上写的很明白的。
另外,有本书上是这么写的,供参考:Poly-lysine-coated tissue cultur e surfac esTo coat covers lips: Prepar e a stocksoluti on by dissol ving25 mg/ml polyly sinein 4.73 ml wa ter(both poly-L-lysine and poly-D-lysine are used to coat tissue cultur e surfac es; checkspecif ic pr otoc ol for choice of isomer) and filter steril ize throug h a 0.22-μm filter. Storein 100-μl aliquo ts at 20°C. When readyto use, dilute one aliquo t in 40 ml waterto prepar e 13 μg/ml workin g soluti on. Steril ize covers lipsby autocl aving priorto coatin g. Dip covers lipsin the workin g soluti on, then i ncuba te 15 min to severa l hoursin a humidi fied37°C, 5% CO2 incuba tor. Allowsurfac e to dry.To coat cultur e dishes or 8-well chambe r slides: Prepar e a stocksoluti on by dissol ving100 m g poly-lysine in 100 ml water(both poly-L-lysine and poly-D-lysine are used to coat tissue cultur e surfac es; checkspecif ic protoc ol for choice of isomer) and filter steril ize throug h a 0.22-μm filter. Storein 5-ml aliquo ts at ?20°C. When readyto use, dilute 1 part stocksoluti on with 9 partswaterto prepar e 100 μg/ml workin g soluti on. Fill tissue cultur e dishes or slidewellswith the workin g so luti on and incuba te 1 hr in a humidi fied37°C, 5% CO2 incuba tor, then remove soluti on by vacuum aspira tionand allowsurfac e to dry.Storecoated tissue cultur e ware up to 3 months at 4°C. Use dilute d soluti ons only once, but unused dilute d aliquo ts can be stored up to 3 months at 4°C.你可以配置好PLL后单独将其过滤除菌,分装,待用。
多聚赖氨酸包被步骤
![多聚赖氨酸包被步骤](https://img.taocdn.com/s3/m/a3e4c37abf1e650e52ea551810a6f524cdbfcb70.png)
多聚赖氨酸包被步骤1. 简介多聚赖氨酸(Polylysine)是一种天然的多肽,由赖氨酸(lysine)分子通过肽键连接而成。
多聚赖氨酸具有多种应用领域,包括食品、药物、生物材料等。
其中,多聚赖氨酸包被技术是一种常用的表面修饰方法,可以用于改善物质的稳定性、生物相容性和药效。
本文将详细介绍多聚赖氨酸包被的步骤和相关注意事项,以帮助读者了解和应用这一技术。
2. 多聚赖氨酸包被步骤多聚赖氨酸包被的步骤主要包括表面准备、多聚赖氨酸包被、包被后处理等。
2.1 表面准备在进行多聚赖氨酸包被之前,需要对待包被的表面进行准备。
这一步骤的目的是去除表面的杂质,提高包被效果。
表面准备的具体步骤如下:1.清洗:将待包被的表面用适当的溶剂进行清洗,去除表面的污垢和有机物。
2.洗涤:用去离子水或其他合适的溶液进行洗涤,去除残留的溶剂和杂质。
3.干燥:将表面用氮气或其他干燥剂进行干燥,确保表面干燥无水。
2.2 多聚赖氨酸包被多聚赖氨酸包被是将多聚赖氨酸分子吸附在待包被的表面上的过程。
这一步骤可以通过物理吸附或化学反应来实现。
多聚赖氨酸包被的具体步骤如下:1.制备多聚赖氨酸溶液:将多聚赖氨酸粉末加入适量的溶剂中,搅拌溶解至均匀。
2.包被过程:将制备好的多聚赖氨酸溶液滴在待包被的表面上,使其均匀分布。
可以通过旋涂、喷涂、浸渍等方法进行包被。
3.干燥:将包被后的样品在适当的温度下进行干燥,使多聚赖氨酸分子固定在表面上。
2.3 包被后处理多聚赖氨酸包被后处理的目的是进一步改善包被层的性能和稳定性。
包被后处理的具体步骤如下:1.清洗:将包被后的样品用适当的溶剂进行清洗,去除未固定的多聚赖氨酸分子。
2.交联:通过化学交联剂或热处理等方法,增强包被层的稳定性和耐久性。
3.表面修饰:可以通过化学反应或物理吸附等方法,在包被层上引入其他功能分子,实现特定的性能调控。
3. 注意事项在进行多聚赖氨酸包被时,需要注意以下事项:1.多聚赖氨酸的浓度和包被时间会影响包被层的厚度和质量,需要根据具体应用需求进行优化。
多聚赖氨酸(Poly-L-Lysine)的配制、保存、使用总结
![多聚赖氨酸(Poly-L-Lysine)的配制、保存、使用总结](https://img.taocdn.com/s3/m/eefa7c6f7e21af45b307a8c1.png)
因为自己做PC12细胞培养,想在接种前将培育皿用多聚赖氨酸包被,到园子里搜索了下,关于多聚赖氨酸的帖子不少,看了一些帖子,将大部分收集在此。
个人觉得关于多聚赖氨酸的配置、保存、使用各方面问题,这些帖子里面都解释了。
注:我只是摘了一个帖子里某段或某句话。
一般一段话来自某一位战友。
一、常用的多聚赖氨酸包被可以用三蒸水,或者PBS,浓度一般为用0.1 mg/ml进行包被。
二、其他常用包被方法比较(以各种免疫分析为例):49456826.snap三、我配成1mg/ml的储存液,用Mini-Q(超纯水)配制,放在-20℃储存,使用时稀释10倍(也用超纯水),即终浓度100ug/ ml,过滤后使用。
工作液过滤使用,如一次用不完,放在4℃储存。
多聚赖氨酸在水溶液中易分解,所以一次不要配太多工作液。
四、我现在要配多聚赖氨酸,书上写的用PBS配,但没写PH,浓度,向各位请教。
答:PH应该在7.0~7.4,PBS:取氯化钠7.650 g,无水磷酸氢二钠0.724 g,磷酸二氢钾0.210g 溶于蒸馏水1000 mL 中,以1N 氢氧化钠溶液调pH 值为7.0~7.4,经121℃灭菌15 分钟五、我准备用多聚赖氨酸涂片培养细胞,不知道多聚赖氨酸涂过的玻片如何灭菌?能否干烤灭菌?答:Sigma的产品说明书上写的很明白的。
另外,有本书上是这么写的,供参考:Poly-lysine-coated tissue culture surfacesTo coat coverslips: Prepare a stock solution by dissolving 25 mg/ml polylysine in 4.73 ml water (both poly-L-lysine an d poly-D-lysine are used to coat tissue culture surfaces; check specific protocol for choice of isomer) and filter sterilize throu gh a 0.22-μm filter. Store in 100-μl aliquots at ?20°C. When ready to use, dilute one aliquot in 40 ml water to prepare 13 μg/ml working solution. Sterilize coverslips by autoclaving prior to coating. Dip coverslips in the working solution, then incubate 15 min to several hours in a humidified 37°C, 5% CO2 incubator. Allow surface to dry.To coat culture dishes or 8-well chamber slides: Prepare a stock solution by dissolving 100 mg poly-lysine in 100 ml water (both poly-L-lysine and poly-D-lysine are used to coat tissue culture surfaces; check specific protocol for choice of isom er) and filter sterilize through a 0.22-μm filter. Store in 5-ml aliquots at ?20°C. When ready to use, dilute 1 part stock solutio n with 9 parts water to prepare 100 μg/ml workin g solution. Fill tissue culture dishes or slide wells with the working solution and incubate 1 hr in a humidified 37°C, 5% CO2 incubator, then remove solution by vacuum aspiration and allow surface to dry.Store coated tissue culture ware up to 3 months at 4°C. Use diluted solutions only once, but unused diluted aliquots can be stored up to 3 months at 4°C.你可以配置好PLL后单独将其过滤除菌,分装,待用。
多聚赖氨酸处理粘附载玻片
![多聚赖氨酸处理粘附载玻片](https://img.taocdn.com/s3/m/56e510860408763231126edb6f1aff00bed570cb.png)
多聚赖氨酸处理粘附载玻片1.引言1.1 概述概述:多聚赖氨酸是一种具有多种特殊性质的生物大分子,其在生物医学领域的应用潜力备受研究者关注。
本文主要研究了多聚赖氨酸在处理粘附载玻片中的应用。
粘附载玻片作为一种常用的实验工具,在细胞培养、药物筛选等领域发挥着重要作用。
然而,粘附载玻片的表面往往具有一定的亲水性,导致细胞的黏附和生长效果不佳。
因此,需要寻找一种能够改善粘附载玻片表面性质的方法。
多聚赖氨酸因其独特的化学结构和生物活性而备受研究者青睐。
相比于传统的表面修饰方法,多聚赖氨酸具有较强的亲水性和生物相容性,可以与细胞黏附分子快速结合,从而提高细胞的附着和生长效果。
多聚赖氨酸还具有良好的附着能力和稳定性,能够在粘附载玻片表面形成均匀的薄膜,有效增加载玻片的表面粗糙度,提高细胞黏附的效果。
本文旨在探索多聚赖氨酸在处理粘附载玻片中的应用前景。
通过实验和分析,我们将评估多聚赖氨酸对粘附载玻片表面性质的改善效果,并探讨其在细胞培养、药物筛选等领域中的潜在应用价值。
同时,我们也将分析多聚赖氨酸处理的优势和局限性,并提出进一步的研究方向和改进建议。
综上所述,本文的目标是通过多聚赖氨酸处理来改善粘附载玻片表面性质,并探索其在细胞培养等领域的应用潜力。
本文将从多聚赖氨酸的特性和粘附载玻片存在的问题出发,系统介绍相关研究和实验,以期为研究者提供有益的参考和启示。
文章结构部分的内容可以包括以下几个方面:1.2 文章结构本文主要包括引言、正文和结论三个部分。
引言部分首先对本研究的背景和研究目的进行概述,引出对多聚赖氨酸处理粘附载玻片的需求和重要性。
接着介绍本文的整体结构和各个章节的主要内容,以便读者对全文有一个清晰的概念。
正文部分将围绕多聚赖氨酸的特性和粘附载玻片的问题展开讨论。
首先,介绍多聚赖氨酸的特性,包括其化学结构、物理性质和生物活性等方面。
然后,探讨粘附载玻片存在的问题,如粘附不牢固、易脱落和重复使用等方面的挑战。
多聚赖氨酸载玻片 水接触角-概述说明以及解释
![多聚赖氨酸载玻片 水接触角-概述说明以及解释](https://img.taocdn.com/s3/m/6db8890b326c1eb91a37f111f18583d048640f45.png)
多聚赖氨酸载玻片水接触角-概述说明以及解释1.引言1.1 概述:多聚赖氨酸(polylysine)是一种重要的生物大分子,具有多种生物功能和应用价值。
其在生物医学领域有广泛的应用,如药物传递、组织工程、生物传感等方面。
本文将探讨利用多聚赖氨酸对玻片表面进行改性,从而调控水接触角的变化。
水接触角是表征表面亲水性或疏水性的重要物理性质,对于表面润湿性和液体与固体相互作用有着重要的影响。
本文首先介绍了多聚赖氨酸的基本性质和应用领域,然后讨论了玻片表面改性方法及其在调控水接触角中的作用。
最后,详细解释了水接触角测量原理及其在实验中的应用。
通过本文的研究,我们可以更好地理解多聚赖氨酸载玻片在调控水接触角中的潜在应用及其未来发展前景。
1.2 文章结构:本文主要分为引言、正文和结论三部分。
- 引言部分将介绍本研究的背景和意义,包括多聚赖氨酸和玻片在表面改性领域的重要性,以及水接触角测量的原理和应用。
- 正文部分将详细介绍多聚赖氨酸的特性及其在表面改性上的应用,玻片表面改性的方法以及水接触角测量的原理和实验方法。
- 结论部分将对实验结果进行分析,并展望多聚赖氨酸载玻片在水接触角测量领域的应用前景,最后对全文进行总结。
目的部分内容:本文旨在研究利用多聚赖氨酸在玻片表面的改性方法,以提高玻片的水接触角,从而改善其在液体中的性能。
通过实验结果的分析和应用前景的展望,为将来在材料科学领域中的相关研究提供一定的借鉴和参考,推动水接触角研究的进一步发展和应用。
"3.3 结论总结": {}}}}请编写文章1.3 目的部分的内容2.正文2.1 多聚赖氨酸介绍多聚赖氨酸是一种生物可降解高分子聚合物,由天然氨基酸赖氨酸组成。
赖氨酸具有显著的阳离子特性,使得多聚赖氨酸在生物医学领域具有广泛的应用前景。
其具有良好的生物相容性和生物可降解性,可以在体内被酶降解为无害的代谢产物,不会对人体造成任何负面影响。
多聚赖氨酸作为表面改性剂可以在材料表面形成一层亲水性薄膜,从而提高其表面亲水性。
多聚赖氨酸处理细胞爬片步骤
![多聚赖氨酸处理细胞爬片步骤](https://img.taocdn.com/s3/m/139670743069a45177232f60ddccda38366be179.png)
多聚赖氨酸处理细胞爬片步骤嘿,朋友们!今天咱就来讲讲多聚赖氨酸处理细胞爬片的那些事儿。
你知道吗,这就好比给细胞准备一个舒服的小窝。
首先呢,得把细
胞爬片洗得干干净净的,就像给小窝打扫卫生一样。
然后,把多聚赖
氨酸溶液小心翼翼地倒在爬片上,让它均匀地覆盖住每一个角落,这
就好像给小窝铺上了一层柔软的垫子。
接下来可不能马虎,得让爬片在多聚赖氨酸溶液里好好泡一会儿,
让它们充分亲密接触,就像人和床要好好磨合一下一样。
泡够了时间,再把多余的溶液轻轻地倒掉,可别太粗鲁了,不然会把好不容易弄好
的“垫子”给弄乱了。
这时候,把爬片放在一边晾干,就等着细胞们来入住啦!你想想,
细胞们来到这个已经被精心处理过的小窝里,是不是会觉得特别舒服,特别愿意在这里安家落户呀!
不过啊,这过程中可得注意一些小细节。
比如说倒多聚赖氨酸溶液
的时候,可别手抖倒多了或者倒少了,那就不好啦!还有啊,泡的时
间也得把握好,太短了效果不好,太长了也不行呢。
这就好像做饭,
火候掌握不好,做出来的菜味道就不对啦!
而且啊,不同的细胞可能对多聚赖氨酸的反应还不太一样呢,就像
不同的人对同一种床的感受也不一样。
所以啊,咱得多试试,找到最
适合的处理方法,让细胞们都能开开心心地在爬片上生活、成长。
处理细胞爬片虽然听起来有点复杂,但只要咱一步一步认真做,肯定能做好呀!大家说是不是?等把这些都搞定了,就能更好地观察细胞啦,想想都觉得很有成就感呢!所以啊,别害怕,大胆去尝试,让我们和细胞来一场美妙的邂逅吧!。
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配制0.01%的多聚赖氨酸: 首先买来sigma 公司的多聚赖氨酸,如是25mg,就需要250ml三蒸水,用移液管将少量三蒸水加到多聚赖氨酸的小塑料瓶中,然后将溶解的多聚赖氨酸加到200ml左右三蒸水中,(已置烧杯中)。
最后加三蒸水达250ml,过滤除菌分装与小瓶中即可。
保存于-20度,近期用的话可放于4度冰箱内保存。
注意每一小瓶的量不要太满,若20ml的瓶子,只装15ml可,若太满,放于-2度有可能会将瓶子弄碎,因冻后体积增加。
(我就有这个教训) 另外烧杯,小瓶、移液管都要灭菌处理的,泡酸高压什么的。
我们用的是一种用注射器过滤的过滤器,一次性的。
一个能最多有效过滤200ml。
铺板的操作:首先要在消毒实验室,包括超净台,紫外消度20-30分钟。
消毒后30分钟进入实验室。
事先准备100ml三蒸水,经高压灭菌处理。
具体细节就不多说了。
首先打开板子,用消毒好的试管将0.01%的多聚赖氨酸加入每一孔中,大概每孔3-4滴吧。
将板子盖好放到培养箱中(37度 5%CO2)30分钟。
取出板子,用吸管将多聚赖氨酸吸出。
换吸管,加入三蒸水,冲洗三次,即将每孔内加入三蒸水,没过底,多点也行。
再将水吸出来。
反复三次。
注意换吸管,要无菌操作的。
最后将铺好的板子放于培养箱待用。
如果你做免疫组化,需要放小的玻片到孔内,就在加多聚赖氨酸之前用无菌的镊子将无菌的玻片夹到孔内即可。
我曾用过多聚赖氨酸包被培养瓶,但浓度是0.1mg/ml,我都是放一夜,第二天吸掉晾干就用,当然要紫外消一下.我觉得时间长点没什么大碍。
我们这里的老师说,多聚赖氨酸不能用紫外线照射。
1.用赖氨酸包被培养板和培养瓶时,应该选用多聚左旋赖氨酸(分子量为15-30万) ;2.感觉你“浓度为50ng/1ml”有些低,我一般最后多聚赖氨酸使用浓度达到20-30ug/ml;3.包被时间一般为6-7h,或者过夜也可;4.使用时应该先用灭菌水洗三次+PBS(起平衡盐作用)洗一次,洗液的量应该大于包被液的量;5.“多聚赖氨酸可以在培养瓶中放多长时间,太长了会有影响吗?”,我包被时间最长的经历有过48h,最后只是多聚赖氨酸随着时间延长蒸发一些而量变少了,但是对细胞生长并无大碍,这是我曾经有过的经历,所以我会负责地告诉你;6.“多聚赖氨酸能在4度冰箱里放多久?”,最好置于-20度保存,放置数月乃至半年都可以。
我问过博士德公司,他们分装的多聚赖氨酸是用来作免疫组化的,没有做过细胞培养实验,他们不保证能否用在细胞培养中,建议你买其他公司的吧,有固体的,分子量为15-30万,我们实验室用浓度0.01%的来促进神经细胞贴壁。
我们用的多聚赖氨酸浓度为100ug/ml,一般包被3-4小时即可用.我们包被完后一般放在培养箱里,临用时拿出来洗三次,吹干即可.如果不急着用,放在培养箱里较长时间也没关系,把瓶盖拧紧即可,我最长放了2星期也没有问题。
左旋和右旋的多聚赖氨酸都可以用于包被细胞培养器具,主要看你的细胞贴壁能力如何,左旋的更利于细胞贴壁.我们一般使用0.01%浓度的,包被过夜,第二天用双蒸水洗两三次,超净台紫外照射,风干。
可以直接买sigma的原装粉剂自己配。
还有,配好的多聚赖氨酸在4度时间不能放置太久,大概就一两周吧。
存放于-20度中的一般为0.1%的,而且不能反复冻融,只能融化一次。
最好是配好后分装。
方法是:浓度为50ng/1ml的多聚赖氨酸,加入培养板或培养瓶能均匀覆盖底部就可,放置在无菌操作台中过夜。
第二天早上用时先用双蒸水冲洗三遍再用。
各位生物秀才们,我在做细胞培养时。
用多聚赖氨酸包被过的培养皿,种细胞后,第二天发现里头根本没有细胞存活。
请教了老师后得知,在使用PLL包被过的皿时,应当用基培平衡一下Ph。
我于是用基培平衡后的皿种细胞,发现细胞还是死掉了。
反倒是用未经多聚赖氨酸包被的皿,培养细胞,里头倒是长得很好。
因为我的实验需要用多聚赖氨酸包被,你们觉得我应该如何改进?请高手指导指导,谢谢诸位了。
涂完PLL后的板要用灭菌的去离子水洗3遍,无水乙醇洗2遍,灭菌去离子水再洗3遍,试试这样如何因为自己做PC12细胞培养,想在接种前将培育皿用多聚赖氨酸包被,到园子里搜索了下,关于多聚赖氨酸的帖子不少,看了一些帖子,将大部分收集在此。
个人觉得关于多聚赖氨酸的配置、保存、使用各方面问题,这些帖子里面都解释了。
注:收集过程中,因为减少时间没有表明每一句话来自哪位战友,只是在前面标明出处帖子的链接地址。
要具体知道哪句建议出自哪位战友请到该相关帖子里查询。
我只是摘了一个帖子里某段或某句话。
一般一段话来自某一位战友。
/bbs/post/view?bid=76&id=9327093&tpg=1&ppg=1&sty=1&age=0#9327093常用的多聚赖氨酸包被可以用三蒸水,或者PBS,浓度一般为用0.1 mg/ml进行包被其他常用包被方法比较(以各种免疫分析为例):/upload/2007/06/18/49456826.snap.jpg我配成1mg/ml的储存液,用Mini-Q(超纯水)配制,放在-20℃储存,使用时稀释10倍(也用超纯水),即终浓度100ug/ml,过滤后使用。
工作液过滤使用,如一次用不完,放在4℃储存。
多聚赖氨酸在水溶液中易分解,所以一次不要配太多工作液。
/bbs/actions/archive/post/1683809_1.html我现在要配多聚赖氨酸,书上写的用PBS配,但没写PH,浓度,向各位请教.PH应该在7.0~7.4PBS:取氯化钠7.650 g,无水磷酸氢二钠0.724 g,磷酸二氢钾0.210g 溶于蒸馏水1000 mL 中,以1N 氢氧化钠溶液调pH 值为7.0~7.4,经121℃灭菌15 分钟/bbs/actions/archive/post/3631859_1.html我准备用多聚赖氨酸涂片培养细胞,不知道多聚赖氨酸涂过的玻片如何灭菌 .能否干烤灭菌Sigma的产品说明书上写的很明白的。
另外,有本书上是这么写的,供参考:Poly-lysine-coated tissue culture surfacesTo coat coverslips: Prepare a stock solution by dissolving 25 mg/ml polylysine in 4.73 ml water (both poly-L-lysine and poly-D-lysine are used to coat tissue culture surfaces; check specific protocol for choice of isomer) and filter sterilize through a 0.22-μm filter. Store in 100-μl aliquots at −20°C.When ready to use, dilute one aliquot in 40 ml water to prepare 13 μg/ml working solution. Sterilize coverslips by autoclaving prior to coating. Dip coverslips in the working solution, then incubate 15 min to several hours in a humidified 37°C, 5% CO2 incubator. Allow surface to dry.To coat culture dishes or 8-well chamber slides: Prepare a stock solution by dissolving 100 mg poly-lysine in 100 ml water (both poly-L-lysine and poly-D-lysine are used to coat tissue culture surfaces; check specific protocol for choice of isomer) and filter sterilize through a 0.22-μm filter. Store in 5-ml aliquots at −20°C.When ready to use, dilute 1 part stock solution with 9 parts water to prepare 100 μg/ml working solution. Fill tissue culture dishes or slide wells with the working solution and incubate 1 hr in a humidified 37°C, 5% CO2 incubator, then remove solution by vacuum aspiration and allow surface to dry.Store coated tissue culture ware up to 3 months at 4°C. Use diluted solutions only once, but unused diluted aliquots can be stored up to 3 months at 4°C.你可以配置好PLL后单独将其过滤除菌,分装,待用。
玻片也是事先泡洗洁精,泡酸,双蒸水洗,烘干后高压灭菌,待用。
培养的前一天包被培养板时先把玻片放入培养孔然后把PLL加到玻片上,静置15分钟,洗出多余的PLL,然后用高压过的双蒸水洗板,培养板放入37度烘箱里过夜就可以用了。
/bbs/actions/archive/post/3979612_1.html多聚赖氨酸消毒该怎么办??紫外照射消毒我没试过,但用0.22um的滤器消毒是没问题的(小的一次性滤器可以过滤200ml)。
在液体消毒时,如果所含成份经过高温,钴60照射发生变性者,建议用滤器(0.22),多聚赖氨酸为氨基酸类,建议用滤器,如果要求程度高,可以两个滤器过滤两次。
资料:多聚赖氨酸溶液(Poly-L-Lysine Solution)Conc.: 0.1% w/v, in water Storage: 18-26℃Thimerosal, 0.01%, added as preservative 多聚赖氨酸溶液是广泛应用的组织切片与玻片黏合剂,该多聚阳离子分子与组织切片上的阴离子相互作用会产生较强的黏合力。