小鼠麻醉大鼠麻醉兔麻醉狗麻醉

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动物麻醉方法及麻醉药剂量

常用麻醉药的剂量和用法
1、戊巴比妥钠：适用于犬、猫、兔时多采用静脉和腹腔注射的方法，静脉时剂量为３０mg/kg常用浓度为３％，用药量为１.０ml/kg，腹腔时剂量为４０-５０mg/kg，常用浓度为３％。

当对象为豚鼠时，用腹腔注射剂量为４０-５０mg/kg常用浓度为２％。

大，小鼠时，用腹腔，剂量为４５mg/kg，常用浓度为２％。

2、氨基甲醛：主要用于犬、猫、兔采用腹腔和静脉注射的方法，一般剂量为７５０-１０００mg/kg常用浓度为２５％。

3、氨基甲酸乙酯（乌拉坦）：适用于豚鼠和大，小鼠时，多采用腹腔注射的方法，剂量为１３５０mg/kg，常用浓度为２０％家兔，可以静脉，也可以腹腔注射。

剂量1g/kg。

4、异戊巴比妥：适用于犬、猫、兔时，如果采用静脉时，剂量为４０-５０mg/kg常用浓度为５％，用药量为０.８-１.０mg/kg，如果采用腹腔和肌肉注射时，剂量为８０-１００mg/kg常用浓度为１０％。

5、硫喷妥钠: 适用于犬、猫、兔时采用静脉和腹腔方法,剂量为25-50mg/kg,常用浓度为2％。

当是大白鼠时,采用静脉和腹腔方法,剂量为50-100/kg,常用浓度为1％。

麻醉时间为15-30min,效力强,宜慢注射。

6、乙醚：适用于各种动物，采用器官内插入吸入。

实验动物的麻醉方法

实验动物的麻醉方法This model paper was revised by the Standardization Office on December 10, 2020实验动物麻醉方法麻醉(anesthesia)的基本任务是消除实验过程中所至的疼痛和不适感觉，保障实验动物的安全，使动物在实验中服从操作，确保实验顺利进行。

一、常用的麻醉药(一)常用局部麻醉剂：普鲁卡因，此药毒性小，见效快，常用于局部浸润麻醉，用时配成0.5％～1％；利多卡因，此药见效快，组织穿透性好，常用1％～2％溶液作为大动物神经干阻滞麻醉，也可用0.25％～0.5％溶液作局部浸润麻醉。

(二)常用全身麻醉剂：1.乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法,各种动物都可应用。

其麻醉量和致死量相差大,所以其安全度大。

但由于乙醚局部刺激作用大,可刺激上呼吸道粘液分泌增加；通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动，并且容易引起窒息，在麻醉过程中要注意。

但总起来说乙醚麻醉的优点多，如麻醉深度易于掌握，比较安全，而且麻醉后恢复比较快。

其缺点是需要专人负责管理麻醉，在麻醉初期出现强烈的兴奋现象，对呼吸道又有较强的刺激作用，因此，需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品(基础麻醉)，通常在麻醉前20－30分钟，皮下注射盐酸或硫酸吗啡(每公斤体重5～10mg)及阿托品(每公斤体重0.1mg)。

盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性，提高痛阈，还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。

阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用，可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞，或手术后发生吸入性肺炎。

进行手术或使用过程中，需要继续给予吸入乙醚，以维持麻醉状态。

慢性实验预备手术的过程中，仍用麻醉口罩给药，而在一般急性使用,麻醉后可以先进行气管切开术,通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。

在继续给药过程中，要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小(如发现角膜反射消失，瞳孔突然放大，应立即停止麻醉。

实验动物麻醉方法

实验动物麻醉方法
实验动物麻醉是为了减少动物的痛苦和压力，使其在实验环境下更加安静和可控。

有多种不同的麻醉方法可供选择，具体使用哪种方法取决于实验的具体要求以及动物的品种、大小和健康状况。

以下是几种常见的实验动物麻醉方法：
1. 注射麻醉药物：通过在动物的静脉、肌肉或腹腔等部位注射麻醉药物来实现麻醉效果。

常用的药物包括巴比妥类药物（如硫喷妥钠）、苯二氮䓬类药物（如地西泮）和麻醉药物（如异丙酚）。

这些药物可以引起全身麻醉，但需要根据具体情况来确定剂量。

2. 吸入麻醉药物：将麻醉药物以气体形式通过鼻腔或口腔进行吸入，使其通过呼吸道进入动物的肺部。

常用的麻醉药物包括异氟醚和七氟醚。

这种方法可以提供快速和精确的麻醉效果。

3. 局部麻醉：通过局部麻醉药物（如利多卡因）直接作用于特定部位的神经末梢，阻断其传导信号，从而实现止痛和麻醉效果。

这种方法适用于局部小手术或操作。

4. 麻醉气体：某些小型动物（如小鼠和大鼠）可以通过麻醉气体进行麻醉，常用的气体有二氧化碳和氮气。

这种方法需要使用专门的气体麻醉设备。

重要的是，在进行实验动物麻醉之前，必须首先获得适当的批准和许可，并按照
相关法规和伦理要求进行操作。

另外，还需要考虑动物的疼痛评估和监测，以确保动物的麻醉状态安全和有效。

实验动物的麻醉方法

实验动物的麻醉方法 The Standardization Office was revised on the afternoon of December 13, 2020实验动物麻醉方法麻醉(anesthesia)的基本任务是消除实验过程中所至的疼痛和不适感觉，保障实验动物的安全，使动物在实验中服从操作，确保实验顺利进行。

一、常用的麻醉药(一)常用局部麻醉剂：普鲁卡因，此药毒性小，见效快，常用于局部浸润麻醉，用时配成％～1％；利多卡因，此药见效快，组织穿透性好，常用1％～2％溶液作为大动物神经干阻滞麻醉，也可用％～％溶液作局部浸润麻醉。

(二)常用全身麻醉剂：1.乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法,各种动物都可应用。

其麻醉量和致死量相差大,所以其安全度大。

但总起来说乙醚麻醉的优点多，如麻醉深度易于掌握，比较安全，而且麻醉后恢复比较快。

其缺点是需要专人负责管理麻醉，在麻醉初期出现强烈的兴奋现象，对呼吸道又有较强的刺激作用，因此，需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品(基础麻醉)，通常在麻醉前20－30分钟，皮下注射盐酸或硫酸吗啡(每公斤体重5～10mg)及阿托品(每公斤体重。

盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性，提高痛阈，还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。

阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用，可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞，或手术后发生吸入性肺炎。

进行手术或使用过程中，需要继续给予吸入乙醚，以维持麻醉状态。

慢性实验预备手术的过程中，仍用麻醉口罩给药，而在一般急性使用,麻醉后可以先进行气管切开术,通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。

在继续给药过程中，要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小(如发现角膜反射消失，瞳孔突然放大，应立即停止麻醉。

万一呼吸停止，必须立即施行人工呼吸。

(精选)动物麻醉剂及麻醉剂量

动物麻醉方法及给药剂量一、动物麻醉的目的1.清醒状态的动物虽然更加接近其生理状态，但是试验过程中的各种强刺激容易引起动物大脑皮质的抑制，使动物机体发生生理机能障碍影响到实验的结果。

甚至引起动物死亡或休克。

2.防止动物伤害实验操作者。

3.基于人道主义的考虑，麻醉是动物保护所必需采取的措施。

二、麻醉的类型和方法1.全身麻醉的方法：吸入麻醉：吸入麻醉是将挥发性麻醉剂或气体的麻醉剂经过动物的呼吸道进入体内产生麻醉的效果。

常见的麻醉剂有乙醚、安氟醚、三氟乙烷等，其中乙醚因麻醉深度容易掌握、安全、动物容易恢复等优点，使用最为广泛。

1）大鼠、小鼠、豚鼠的乙醚麻醉：将含有乙醚的棉球/纱布放在大烧杯中，将动物放入，封口。

动物先兴奋后抑制，自行倒下。

当动物角膜反应迟钝，肌肉紧张度降低时，即可取出动物。

如果动物逐渐恢复肌肉紧张（挣扎），可重复麻醉一次，待平静后即可开始试验。

如果试验时间较长，可将动物固定在其口鼻处放置含有乙醚的棉球或纱布，并在实验中注意动物的反应，适时追加乙醚的吸入量，以维持麻醉的深度和实践。

2）猫、兔的乙醚麻醉：将动物放进内装含有乙醚的棉球/纱布的麻醉瓶中，封口。

经过1~2min，从动物后腿依次出现麻痹现象，而后失去运动能力，表明动物进入麻醉状态。

4~6min后可以将动物麻醉，如观察到动物倾斜不能站立、跌倒时，说明动物已经深度麻醉，立即取出动物，这时动物肌肉松弛、四肢紧张度降低，角膜反射迟钝，皮肤痛觉消失，可进行试验。

3）犬的乙醚麻醉：首先将犬用绳子绑定，根据犬的大小选择适合的麻醉口罩，将纱布/棉花放到口罩内，加入乙醚。

一人固定犬的前后肢，另一人用膝盖顶住犬的胸颈处，一手捏住头颈（注意力量，防止窒息），将口罩套在犬嘴上。

开始乙醚用量可大一些，之后逐渐减少。

犬开始兴奋后出现挣扎、呼吸不规则现象，而后呼吸逐渐平稳，肌肉紧张度逐渐消失，角膜反射迟钝，对皮肤刺激无反应，此时可开始试验。

乙醚吸入如果出现呼吸窒息应暂停吸入乙醚，等呼吸恢复后在继续吸入。

实验动物麻醉方法

实验动物麻醉所有可能引起实验动物疼痛或不适的实验方案都必须使用合适的麻醉剂、止痛剂和镇静剂。

如麻醉剂、止痛剂或镇静剂可能影响实验数据，该实验方案可不使用麻醉剂、止痛剂或镇静剂，但必须在实验方案中予以详细说明，并在实验动物管理委员会批准后方可开展相关实验。

包括动物品系、使用途径、体重、性别、动物健康状况、温度、其它同时使用的药物在内的多种因素影响麻醉剂、止痛剂或镇静剂的使用剂量和有效时间。

因此，在使用麻醉剂时必须时刻监测实验动物的麻醉深度，以防止过度麻醉导致动物死亡或麻醉不足无法缓解动物的疼痛。

足底反射、角膜反射、肌肉紧张和对皮肤夹捏的反应是检测动物麻醉深度的有用指标，在条件许可时，推荐测量动物心率、血压、呼吸频率及体温作为检测动物麻醉深度更为精确的指标。

使用麻醉剂时，一定要注意方法的可靠性，根据不同的动物选择合适的方法。

1．麻醉剂的用量，除参照一般标准外，还应考虑个体对药物的耐受性不同。

一般说，衰弱和过胖的动物，其单位体重所需剂量较小。

在使用麻醉剂过程中，特别是使用巴比妥类药物时，一般应首先使用较小剂量，随时检查动物的反应情况，并逐步提高剂量。

2．动物在麻醉期体温容易下降，要采取保温措施。

相比清醒的动物，麻醉后的动物反应相对迟钝。

因此，推荐使用循环水浴保温垫，不推荐使用照明灯、电加热器等不易控制温度的设备，以免灼伤实验动物。

3．静脉注射麻醉剂发挥作用速度快，静脉注射必须缓慢，同时观察肌肉紧张、角膜反射和对皮肤夹捏的反应,当这些活动明显减弱或消失时，应立即停止注射。

配制的药液浓度要适中，不可过高，以免麻醉过急；但也不能过低，以减少注入溶液的体积。

实验操作涉及腹腔注射时，不应使用腹腔注射麻醉剂。

4．气温较低时，麻醉剂在注射前应加热至动物体温水平。

5．注射麻醉剂前12小时实验动物应禁食，以防止食物回流。

注射前3小时应限制饮水。

6．如需使用抗生素以防止术后感染，手术前1小时应肌肉注射抗生素，并于手术过程中静脉注射抗生素。

实验动物麻醉方法及注意事项

实验动物麻醉方法及注意事项麻醉(anesthesia)的基本任务是消除实验过程中所至的疼痛和不适感觉，保障实验动物的安全，使动物在实验中服从操作，确保实验顺利进行。

一、常用的麻醉药(一)常用局部麻醉剂：普鲁卡因，此药毒性小，见效快，常用于局部浸润麻醉，用时配成0.5%～1%;利多卡因，此药见效快，组织穿透性好，常用1%～2%溶液作为大动物神经干阻滞麻醉，也可用0.25%～0.5%溶液作局部浸润麻醉。

(二)常用全身麻醉剂：1.乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法,各种动物都可应用。

其麻醉量和致死量相差大,所以其安全度大。

但由于乙醚局部刺激作用大,可刺激上呼吸道粘液分泌增加;通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动，并且容易引起窒息，在麻醉过程中要注意。

但总起来说乙醚麻醉的优点多，如麻醉深度易于掌握，比较安全，而且麻醉后恢复比较快。

其缺点是需要专人负责管理麻醉，在麻醉初期出现强烈的兴奋现象，对呼吸道又有较强的刺激作用，因此，需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品(基础麻醉)，通常在麻醉前20-30分钟，皮下注射盐酸或硫酸吗啡(每公斤体重5～10mg)及阿托品(每公斤体重0.1mg)。

盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性，提高痛阈，还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。

阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用，可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞，或手术后发生吸入性肺炎。

进行手术或使用过程中，需要继续给予吸入乙醚，以维持麻醉状态。

慢性实验预备手术的过程中，仍用麻醉口罩给药，而在一般急性使用，麻醉后可以先进行气管切开术,通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。

在继续给药过程中，要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小(如发现角膜反射消失，瞳孔突然放大，应立即停止麻醉。

万一呼吸停止，必须立即施行人工呼吸。

待恢复自动呼吸后再进行操作。

2.苯巴比妥钠此药作用持久,应用方便，在普通麻醉用量情况下对于动物呼吸、血压和其它功能无多大影响。

实验动物的麻醉

巴比妥类

硫喷妥钠：超短效巴比妥类

戊巴比妥钠：短效巴比妥类，多用3％溶液。静脉一
次注射，犬用40mg/kg，兔、鼠用30mg／kg，腹腔注
射剂量增加20％，可维持持2小时有效全麻，在外科
麻醉中，对呼吸和循环系统都有严重抑制。用于兔、鼠死亡率较高；用于大等较大动物，亦需要辅助呼吸和其他复苏措施，且完全苏醒需要6～8小时。
2.5%（0.6-0.8ml/Kg）
现用现配，由于对腹膜刺激大，不宜腹腔注射。
动物麻醉流程图
动物的准备
麻醉人员及仪器的准备
麻醉方式的选择
麻醉药品的准备
术前药麻醉诱导麻醉维持
的使用是比较安全的，因为它很少因为过量而致动
物死亡。
(2)不良反应：动物诱导时不舒服，而且乙醚对粘膜的刺激可导致咳嗽、大量的支气管和唾液腺分泌物，偶尔还会导致喉痉挛。乙醚还能在动物的麻醉苏醒期后诱发既有的慢性呼吸系统疾病急性发作，特别
是兔和啮齿类动物。乙醚是可燃的，和空气或氧气
构成爆炸性混合物。

麻醉效果的观察

③肌张力：亢进，麻醉过浅；全身肌肉松弛，麻醉合适。
④皮肤夹捏反应：麻醉过程中可随时用止血钳或有齿镊夹捏动物皮肤，若反应灵敏，则麻醉过浅；若反应消失，则麻醉程度合适。

麻醉意外及处理

呼吸系统
呼吸频率的变化潮气量的变化 SpO2

心血管系统
血压心率心律
麻醉注意事项

麻醉前用药

麻醉前用药是指在手术前30分钟以内适当使用抗
胆碱类药物(如阿托品)及镇静镇痛药物(如安定、鲁米那、度冷丁等)，可以减少呼吸道的分泌物和
防止呕吐，使动物安静以保证麻醉诱导的平稳和

动物常用麻醉药及应用

舒泰麻醉剂使用说明书简要说明：舒泰是一种新型分离麻醉剂，它含镇静剂替来他明和肌松剂唑拉西泮。

在全身麻醉时，舒泰能够保证诱导时间短、极小的副作用和最大的安全性。

在经肌肉盒静脉途径注射时，舒泰具有良好的局部受耐性。

舒泰是一种非常安全的麻醉剂。

适用范围用于犬、猫和野生动物的保定及全身麻醉。

应用剂量麻醉前给药注射舒泰前15分钟按以下剂量给予硫酸阿托品犬：0.1mg/kg ，皮下注射猫：0.05mg/kg ，皮下注射诱导麻醉剂剂量犬：7—25mg/kg ，肌肉注射5—10mg/kg ，静脉注射犬：10—15mg/kg ，肌肉注射5—7.5mg/kg ，静脉注射麻醉维持时间：根据剂量不同，从20到60分钟不等。

维持麻醉剂量建议给予初始剂量的1/3—1/2 ，静脉注射。

野生动物：使用详细说明灵长类动物（平均值）肌肉注射..........................4—6mg/kg 。

猫科动物（平均值）肌肉注射..........................4—7.5mg/kg 。

犬科动物（平均值）肌肉注射..........................5—11mg/kg 。

熊科动物（平均值）肌肉注射..........................3.5—8mg/kg 。

牛科动物（平均值）肌肉注射..........................3.5—33mg/kg 。

灵猫科动物（平均值）肌肉注射..........................2.5—6mg/kg 。

小鼠（平均值）肌肉注射..........................50—75mg/kg 。

大鼠（平均值）肌肉注射..........................50—75mg/kg 。

豚鼠（平均值）肌肉注射..........................20mg/kg 。

仓鼠（平均值）肌肉注射..........................50mg/kg 。

动物实验常用麻醉剂的比较与选择

第25卷　第2期2008年4月实验动物科学LABORAT ORY ANI M A L SCIE NCE V ol.25　N o.2April 2008综述・进展动物实验常用麻醉剂的比较与选择周　昆　屈彩芹(天津中医药大学中医药研究院,天津　300193)关键词:动物实验;戊巴比妥钠;水合氯醛;乌拉坦;氯胺酮;α2氯醛糖;乙醚中图分类号:Q95233 文献标识码:A 文章编号:1006-6179(2008)022*******收稿日期:2007208207作者简介:周　昆(1978-),男,助理研究员,主要从事中药药理毒理研究。

动物实验中经常需要进行麻醉,麻醉剂的选择和麻醉方式都对实验结果有很大的影响。

常用的有戊巴比妥钠、水合氯醛、乌拉坦(氨基甲酸乙酯)、氯胺酮、α2氯醛糖、苯戊巴比妥等非挥发性麻醉剂,另外还有吸入性麻醉剂乙醚。

动物实验中手术时间一般相对较短,最常用的是戊巴比妥钠、水合氯醛、乌拉坦,在某些情况下氯胺酮、α2氯醛糖、乙醚则更为合适,而苯巴比妥相对较少使用[1～2]。

这些麻醉剂都有着各自的特点,结合文献和作者的经验,对这些麻醉剂的常用麻醉方式、剂量和特点做了一个总结,并对各种实验适宜选用的麻醉剂给予建议。

1　常用麻醉方式、剂量和特点戊巴比妥钠,白色粉末,麻醉持续时间2h 左右,使用较广。

用于犬、猫、兔麻醉时多用静脉注射,常用剂量为30mg Πkg 、浓度3%,如果使用腹腔注射麻醉,可以适当增大剂量;用于大鼠、小鼠、豚鼠麻醉时多用腹腔注射,常用剂量为40～50mg Πkg 、浓度2%;用于鸽子麻醉时多用肌肉注射,常用剂量为50～100mg Πkg 、浓度2%。

镇痛和肌肉松弛效果均中等。

水合氯醛,为无色透明棱状结晶,有穿透性的臭气及腐蚀性苦味。

配制后的溶液有沉淀时,可以先在水浴锅中适量加热促其融解。

麻醉持续时间2h 左右。

一般使用浓度10%,常用剂量为300mg Πkg 。

可与乌拉坦合用。

实验动物的麻醉方法知识

实验动物的麻醉方法知识Document serial number【KK89K-LLS98YT-SS8CB-SSUT-SST108】实验动物的麻醉方法麻醉（anesthesia）的基本任务是消除实验过程中所致的疼痛和不适感觉，保障实验动物的安全，使动物在实验中服从操作，确保实验顺利进行。

一、常用的麻醉药（一）常用局部麻醉剂：普鲁卡因，此药毒性小，见效快，常用于局部浸润麻醉，用时配成0.5％～1％；利多卡因，此药见效快，组织穿透性好，常用1％～2％溶液作为大动物神经干阻滞麻醉，也可用0.25％～0.5％溶液作局部浸润麻醉。

（二）常用全身麻醉剂：1.乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法，各种动物都可应用。

其麻醉量和致死量相差大，所以其安全度大。

但由于乙醚局部刺激作用大，可刺激上呼吸道粘液分泌增加；通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动，并且容易引起窒息，在麻醉过程中要注意。

但总起来说乙醚麻醉的优点多，如麻醉深度易于掌握，比较安全，而且麻醉后恢复比较快。

其缺点是需要专人负责管理麻醉，在麻醉初期出现强烈的兴奋现象，对呼吸道又有较强的刺激作用。

因此，需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品（基础麻醉），通常在麻醉前20－30分钟，皮下注射盐酸或硫酸吗啡（每公斤体重1～2mg）及阿托品（每公斤体重0.1mg）。

盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性，提高痛阈，还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。

阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用，可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞，或手术后发生吸入性肺炎。

进行手术或使用过程中，需要继续给予吸入乙醚，以维持麻醉状态。

慢性实验预备手术的过程中，仍用麻醉口罩给药，而在一般急性使用，麻醉后可以先进行气管切开术，通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。

在继续给药过程中，要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小（如发现角膜反射消失，瞳孔突然放大，应立即停止麻醉。

并施行必要的人工呼吸。

待恢复自动呼吸后再进行操作。

实验动物的麻醉方法

实验动物的麻醉方法实验动物的麻醉方法是在科学研究中使用的一种技术，目的是为了减少实验过程中的疼痛和不适感，同时保护实验动物的福利。

麻醉可以使实验动物处于无痛觉和无意识状态，以便进行各种操作、实验和手术。

在实验过程中，麻醉方法的选择应根据动物的种类、实验需求、实验所需时间等因素来确定。

常用的实验动物麻醉方法主要有以下几种：1. 局部麻醉：局部麻醉主要针对某个具体的部位或区域进行麻醉。

例如，对于小鼠或大鼠的手术操作，可以通过使用局部麻醉药物如利多卡因、戊巴比妥钠等，将药物注射到手术部位，使动物在手术过程中局部麻醉。

2. 全身麻醉：全身麻醉是指使整个动物体表现出无痛觉和无意识状态的麻醉方法。

全身麻醉适用于复杂手术或需要较长时间操作的实验，如内窥镜检查、器官移植、生物体刺激等。

目前，全身麻醉通常使用静脉麻醉或吸入麻醉两种方式。

3. 静脉麻醉：静脉麻醉是通过给动物静脉注射麻醉剂，使药物迅速进入动脉血液循环，通过血流输送到全身，产生全身麻醉效果。

动物通常会在注射后几秒钟内失去意识，并进入无痛无感觉状态。

常用的静脉麻醉药物有戊巴比妥钠、异氟醚等。

4. 吸入麻醉：吸入麻醉是将麻醉剂以气态形式通过动物的呼吸道送入肺部，通过肺泡与血液交换，达到全身麻醉的效果。

吸入麻醉常用的药物有氟烷、异氟醚、氧化亚氮等。

这些药物可以通过吸入气体的方式进行给药，既可控制麻醉剂的剂量，还可根据需要调整麻醉深度。

除了以上主要的麻醉方法外，还有一些特殊情况下使用的麻醉方法，如眼科手术中常用的硬膜外麻醉、特定场景下使用的局部麻醉等。

在使用麻醉方法时，科研人员还应遵循一些麻醉实践原则以保护实验动物。

首先，选择合适的麻醉方法和药物，应考虑动物种类的特殊需求，例如老鼠和大鼠对药物的敏感性不同；其次，根据实验操作的特点选择合适的麻醉深度；另外，在麻醉后需要对动物进行有效的监测，定期检查动物的生命体征，确保其处于麻醉的状态下没有额外的不适。

需要强调的是，为了保障实验动物福利和避免不必要的痛苦，实验过程中应尽量减少动物的使用数量以及对其造成的痛苦和不适。

标准操作规程(SOP)——实验动物的麻醉

标准操作规程（SOP）——一、目的该文件用以说明实验动物麻醉的具体操作以及操作规范，以保证麻醉剂量准确，使实验动物处于麻醉状态，实验顺利进行。

同时保证操作人员的安全。

二、范围适用于中国国家流感中心的所有技术人员对实验动物进行麻醉。

三、程序（一）生物安全要求动物实验涉及到H5、H7亚型高致病性禽流感病毒，H2N2亚型流感病毒的时候，动物麻醉操作需要在ABSL-3级实验室进行操作。

操作其他病毒的时候，动物麻醉操作需要在ABSL-2级实验室中进行。

（二）材料1．实验动物：中小型实验动物，如：小鼠、大鼠、豚鼠、兔及雪貂等。

2．动物实验中常用的麻醉剂分为三类，即挥发性麻醉剂、非挥发性麻醉剂和中药麻醉剂。

（1）挥发性麻醉剂这类麻药包括乙醚、氯仿等。

乙醚吸入麻醉适用于各种动物，其麻醉量和致死量差距大，所发安全度亦大，动物麻醉深度容易掌握，而且麻后苏醒较快。

其缺点是对局部刺激作用大，可引起上呼吸道粘膜液体分泌增多，再通过神经反射可影响呼吸、血压和心跳活动，并且容易引起窒息，故在乙醚吸入麻醚时必须有人照看，以防麻醉过深而出现上情况。

（2）非挥发性麻醉剂这类麻醉剂种类较多，包括苯巴比妥钠、戊巴比妥钠、硫喷妥钠等巴比妥类的衍生物，氨基甲酸乙脂和水合氯醛。

这些麻醉剂使用方便，一次给药可维持较长的麻醉时间，麻醉过程较平衡，动物无明显挣扎现象。

但缺点是苏醒较慢。

（3）中药麻醉剂动物实验时有时也用到象洋金花和氢溴酸东莨菪碱等中药麻醉剂，但由于其作用不够稳定，而且常需加佐剂麻醉效果才能理想，故在使用过程中不能得到普及，因而，多数实验室不选用这类麻醉剂进行麻醉。

（三）实验步骤1．吸入法用一块圆玻璃板和一个钟罩或一个密闭的玻璃箱作为挥发性麻醉剂的容器，多选用乙醚作麻醉药。

麻醉时用几个棉球，将乙醚倒可其中，迅速转入钟罩或箱内，让其挥发，然后把待麻醉动物投入，约隔4-6min即可麻醉，麻醉后应立即取出，并准备一个蘸有乙醚的棉球小烧杯，在动物麻醚变浅时给套在鼻上使其补吸麻醉药。

实验四五六动物的给药、麻醉、处死术

四、涂布给药
大鼠、小鼠常采用浸尾方式经尾皮给药，从而定性地判定药物或毒物经皮肤的吸收作用。豚鼠、家兔涂布给药的部位通常为脊柱两侧的背部皮肤，给药部位需脱毛后 24h方可给药。
五、直肠给药和阴道给药
不同种类实验动物不同给药方法一次给药能耐受的最大容量（ml）
动物名称灌胃给药
小鼠 0.9
大鼠 5.0
（3）肌肉注射给药
小鼠体积小，肌肉少，很少采用肌肉注射。当给小鼠注射不溶于水而混悬于油或其他溶剂中的药物时，采用肌肉注射。用药量不超过0.1ml/10g体重。
(4)静脉注射给药
小鼠尾静脉注射：
用75%酒精棉球反复擦拭尾部,以达到消毒和使尾部血管扩张的目的. 以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧,使静脉更为充盈, 右手持4号针头注射器, 使针头与静脉平行(小于30°角),从尾巴的下1/4 处进针, 注射量为0.05-0.1ml/10g体重。
局麻常用的方法有表面麻醉、浸润麻醉和区域阻断麻醉、脊髓麻醉等，使用最多的是浸润麻醉。
表面麻醉：将穿透力强的局部麻醉药直接作用于黏膜表面，使黏膜下神经末梢麻醉，可将药物配成不同浓度的溶液、凝胶和糊剂，通过滴入、喷雾、涂布和灌注等方法将其应用到眼、口腔、鼻腔、喉外耳道或尿道等黏膜处，产生麻醉。多用丁卡因和利多卡因。丁卡因常用于眼部手术，利多卡因常用于猫气管插管前的咽喉表面麻醉。
药品：乙醚、戊巴比妥钠、咖啡因器材：麻醉箱或其它密闭容器如烧杯、棉球
实验方法：
（一）全身麻醉法
1.吸入法：吸入麻醉是将乙醚、氯仿等挥发性麻醉剂经呼吸道吸入体内而产生麻醉效果的方法。本法最适合于大、小鼠的短期操作试验的麻醉。
将大鼠、小鼠或兔放入杯或缸内，将乙醚倒在棉花上，在室温下乙醚逐渐变成气体挥发，将缸内动物麻醉，动物倒下后立即取出，此时动物肌肉松弛，角膜反射迟钝，皮肤痛觉消失。

采血安乐死麻醉，这么全的实验动物指导方针一定要收藏！

采血安乐死麻醉，这么全的实验动物指导方针一定要收藏！导读常见实验动物指导方针：一、常见动物血液采集二、安乐死的指导方针三、常见动物麻醉的指导方针一、常见动物血液采集网站：/services-name/research-animal-resources/research-support/guidelines/blood-collection本网站收集的常见动物有以下：（点击各动物前的+号可以查看详情）1、小鼠血液采集2、大鼠血液采集3、小鼠和大鼠血液采集总结4、兔血液采集5、啮齿动物常见的采血程序介绍点击各动物前的+号，可以查看详细的采血步骤。

二、安乐死的指导方针网址：/services-name/research-animal-resources/research-support/guidelines/euthanasia本网站收集的常见动物有以下：（点击对应的物种，可以跳转到查看具体的安乐死方式）1、老鼠、老鼠、沙鼠、仓鼠或其他小啮齿动物安乐死方式① Carbon dioxide (CO2)Inhalation to effect. Flow rate must displace no more than 30% of the chamber volume/minute. Prolonged exposure may be required for neonates and fetuses.② Sodium pentobarbital（戊巴比妥钠）≥100 mg/kg intraperitoneal (IP) or intravenous (IV). This is a controlled substance (DEA Schedule II). Dosing is the same for the commercial product Fatal-Plus®.③ Euthanasia solution（安乐死溶液）≥86 mg/kg IP or IV. Multiple pharmaceutical grade products available. Contains sodium pentobarbital 390 mg/ml + sodiumphenytoin 50 mg/ml (dosing based on barbiturate concentration). This is a controlled substance (DEA Schedule III).④ Cervical dislocation（颈椎脱位）Use in conscious small rodents requires demonstrated technical skill (or must be performed only on unconscious/anesthetized small rodents). Use in rats >200 g to be performed under anesthesia only.⑤ Decapitation（断头）Use in conscious small rodents requires demonstrated technical skill (or must be performed only on unconscious/anesthetized small rodents). Use in rats >200 g to be performed under anesthesia only.⑥ Isoflurane overdose（异氟醚过量）Inhalation to effect. May require prolonged exposure to ensure death.⑦ Injectable anesthetic overdose（注射麻醉过量）Administration varies (IP or IV). Consult a Research Animal Resources (RAR) veterinarian regarding specific agents.⑧ Anesthesia followed by potassium chloride（麻醉后氯化钾）75-150 mg/kg KCl IV. Administer rapidly to effect.⑨ Anesthesia followed by physic al method（麻醉后物理方法）Cervical dislocation, decapitation, exsanguination, bilateral pneumothorax.2、兔安乐死方式① Sodium pentobarbital（戊巴比妥钠）≥100 mg/kg IP or IV. This is a controlled substance (DEA Schedule II). Dosing is the same for the commercial product Fatal-Plus®.② Euthanasia solution（安乐死溶液）≥86 mg/kg IP or IV. Multiple pharmaceutical grade products available. Contains sodium pentobarbital 390 mg/ml + sodium phenytoin 50 mg/ml (dosing based on barbiturate concentration). This is a controlled substance (DEA Schedule III).③ Injectable anesthetic overdose（注射麻醉过量）Administration varies (IP or IV). Consult an RAR veterinarian regarding specific agents.④ Anesthesia followed by potassium chloride（麻醉后氯化钾）75-150 mg/kg KCl IV. Administered rapidly to effect.⑤ Anesthesia followed by physical method（麻醉后物理方法）Cervical dislocation, decapitation, exsanguination, bilateral pneumothorax三、常见动物麻醉的指导方针网址：/services-name/research-animal-resources/research-support/guidelines/analgesia此网站记录麻醉方式的物种有以下：1、小鼠麻醉方式小鼠麻醉指南，包括麻醉药物和程序和对新生小鼠麻醉特殊考虑。

最新动物麻醉剂及麻醉剂量

甚至引起动物死亡或休克。

2.防止动物伤害实验操作者。

3.基于人道主义的考虑，麻醉是动物保护所必需采取的措施。

二、麻醉的类型和方法1.全身麻醉的方法：吸入麻醉：吸入麻醉是将挥发性麻醉剂或气体的麻醉剂经过动物的呼吸道进入体内产生麻醉的效果。

常见的麻醉剂有乙醚、安氟醚、三氟乙烷等，其中乙醚因麻醉深度容易掌握、安全、动物容易恢复等优点，使用最为广泛。

1）大鼠、小鼠、豚鼠的乙醚麻醉：将含有乙醚的棉球/纱布放在大烧杯中，将动物放入，封口。

动物先兴奋后抑制，自行倒下。

当动物角膜反应迟钝，肌肉紧张度降低时，即可取出动物。

如果动物逐渐恢复肌肉紧张（挣扎），可重复麻醉一次，待平静后即可开始试验。

2）猫、兔的乙醚麻醉：将动物放进内装含有乙醚的棉球/纱布的麻醉瓶中，封口。

经过1~2min，从动物后腿依次出现麻痹现象，而后失去运动能力，表明动物进入麻醉状态。

3）犬的乙醚麻醉：首先将犬用绳子绑定，根据犬的大小选择适合的麻醉口罩，将纱布/棉花放到口罩内，加入乙醚。

一人固定犬的前后肢，另一人用膝盖顶住犬的胸颈处，一手捏住头颈（注意力量，防止窒息），将口罩套在犬嘴上。

开始乙醚用量可大一些，之后逐渐减少。

犬开始兴奋后出现挣扎、呼吸不规则现象，而后呼吸逐渐平稳，肌肉紧张度逐渐消失，角膜反射迟钝，对皮肤刺激无反应，此时可开始试验。

乙醚吸入如果出现呼吸窒息应暂停吸入乙醚，等呼吸恢复后在继续吸入。