用两步MS-PCR结合ELISA检测HIV-1逆转录酶基因的耐药性突变
艰难梭菌感染实验室诊断的研究进展
艰难梭菌感染实验室诊断的研究进展杨靖;赵建宏【摘要】艰难梭菌是一种专性厌氧革兰阳性芽孢杆菌,一般认为是环境和人类肠道中的正常菌群.过度应用抗生素、免疫抑制剂或化疗药物使耐药的艰难梭菌产毒株过度繁殖并释放毒素是导致艰难梭菌感染(Clostridioides difficile infection,CDI)的主要因素.CDI的发病率在全球范围内不断增加,尤其是高产毒株在北美地区造成了医院内的暴发流行,引起了世界范围的关注.在此对艰难梭菌的致病机制和实验室诊断方法的研究进展进行阐述,为艰难梭菌相关性腹泻的早期诊断和治疗提供新思路.【期刊名称】《临床荟萃》【年(卷),期】2018(033)005【总页数】4页(P373-376)【关键词】梭菌感染;诊断【作者】杨靖;赵建宏【作者单位】河北医科大学第二医院河北省临床检验中心,河北石家庄 050000;河北医科大学第二医院河北省临床检验中心,河北石家庄 050000【正文语种】中文【中图分类】R517.5艰难梭菌(Clostridioides difficile)是一种专性厌氧革兰阳性芽孢杆菌,一般认为是人类肠道的正常菌群。
大量应用广谱抗生素、免疫抑制剂或化疗药物后可导致该菌过度繁殖,引起艰难梭菌感染(C. difficile infection, CDI)。
近年来在欧洲和北美一些国家出现了一种艰难梭菌高产毒株027/NAP1/BI的暴发流行,所致的CDI复发率和死亡率高,耐药性强,在发达国家已成为一种严重的医疗相关性感染,造成了巨大的经济损失,引起了世界范围的广泛关注[1-3]。
对于艰难梭菌及其毒素的早期诊断和治疗可以有效降低CDI的发病率、死亡率,避免不必要的医疗资源浪费。
目前,美国食品和药物管理局(FDA)已经批准了一些用于诊断CDI的实验室检测试剂。
近十年来,CDI的流行病学发生了很大变化[4],因此迫切需要建立一套适合临床的诊断方法,来准确区分CDI与艰难梭菌定植(C. difficile colonization, CDC)。
艾滋病实验室检测管理与设备维护培训
明胶颗粒凝集试验(PA)原理
以HIV抗原致敏粉红色明胶粒子(载体)。 这种致敏载体和血清中HIV抗体相遇被桥 联而出现肉眼可见的凝集反应,非致敏的 明胶粒子因无抗原参与,则不发生凝集。 如果试验中的未致敏粒子对照出现凝集, 即提示血清中含非特异性凝集因子,需 用未致敏粒子吸附处理,重新做试验。
HIV抵抗力--物理因素
HIV保存: 在-70℃不加保存剂冷冻保存,其感
染性可丧失。但若在-70℃保存于 35%山梨醇或50%小牛血清(FBS)可 存活3 个月以上,在液氮中(196℃)HIV可存活数年以上。因此, 毒种必须置于液氮中方可长期保存。
HIV抵抗力—化学因素
HIV耐碱不耐酸:在pH3.0条件下HIV 滴度在10分钟可下降4个对数级,而 pH值高达9.0时,HIV滴度下降甚微。
目前已有HIV-1和HIV-2抗原共同致敏的PA 试剂(AFD HIV 1/2 PA)和HIV-1、HIV-2抗原 分别致敏的PA试剂(AERODIA-HIV-1/2)。前 者可用于HIV1/2的筛查,后者可用于区分HIV1型和HIV-II型。
其缺点是判定结果用肉眼观察,无法保存。
目前这问题已得到解决,为了保存试验结 果,试剂盒可配备数码相机。
二、艾滋病病毒的抵抗力
HБайду номын сангаасV抵抗力
HIV一旦离开宿主在外界环境中生存 能力便很快消失,HIV对环境中的物 理因素和化学因素抵抗力均较弱, 比乙肝病毒(HBV)的抵抗力低得多。 因此,对HBV有效的消毒和灭活方法 均适用于HIV。
HIV抵抗力--物理因素
HIV对热很敏感,对低温的耐受 性强于高温。因此,可以用高温 灭活HIV,在低温条件下保存HIV。
HIV-1表型耐药检测方法研究进展
HIV-1表型耐药检测方法研究进展采用HIV耐药检测了解患者的HIV耐药性,对治疗艾滋病患者和控制疫情十分重要。
常用检测方法有基因型和表型耐药检测,基因型耐药检测是间接法,针对已被证实的突变位点,不能发现潜在的耐药突变点,不能解释多种耐药突变位点的协同吉抗效应。
表型耐药检测可克服其不足,准确检测HIV病毒的耐药性。
本文对HIV-1表型耐药检测方法学进展作一综述。
1.HIV-1表型耐药检测原理美国食品和药品管理局批准用于HIV抗病毒治疗药物分三类:蛋白酶抑制剂、逆转录酶抑制剂和融合抑制剂。
HIV表型耐药检测就是针对这些药物而进行。
表型耐药检测是病毒耐药性分析的标准方法,运用体外药敏分析法,在逐渐增加药物浓度下对HIV复制能力直接评价。
结果以50%抑制浓度(IC50)来表达,并与同类野生株的IC50或临界值(CUT-OFF值)相比,通过其倍数改变评价耐药程度[1]。
2.常用的HIV-1表型耐药检测方法2.1 传统表型耐药检测方法(即标准表型检测)其实质是体外药敏试验,从病人体内分离外周血单核淋巴细胞(PBMC),与植物血凝素(PHA)刺激正常人的PBMC共培养,分离出病毒株并计算其50%组织培养感染计量(TCID50),用一定的病毒量(1000 TCID50)体外感染PHA活化的正常人PBMC,在梯度稀释的药物浓度下孵育病毒,7天后用ELISA法检测上清液中P24抗原量,以此计算IC50,与野生株IC50或cut-off值进行比较得出病毒株的耐药程度[2]。
该法检测的病毒是通过分离培养患者PBMC获得,不是直接来自患者血浆的病毒。
但前者中的HIV-1耐药突变迟于后者。
2.2 C8166-R5细胞替代PHA活化PBMC的表型耐药检测 Krowick H等人通过对10种细胞系表达CD4受体、CCR5、CXCR4辅助受体的能力、HIV感染力及耐药检测分析等方面的研究,认为C8166-R5细胞具备替代PHA活化PBMC用于表型耐药检测的效果,有很好的治疗效果预此种培养增殖周期短(倍增时间<16h),易于长时间稳定培养[3]。
HIV储存库检测方法的研究进展
中国艾滋病性病2020年12月第26卷第12期Chin J AIDS STD Vol.26No.12Dec20201365 DOI:10.13419/ki.aids.2020.12.28.综述.HIV储存库检测方法的研究进展张鑫,潘品良,金聪(中国疾病预防控制中心性病艾滋病预防控制中心,北京102206)摘要:艾滋病病毒(HIV)感染者通过抗病毒治疗(ART)能够使血浆中的病毒量下降至检测不到的水平,但由于HIV整合在宿主细胞的基因组中形成病毒储存库,难以被根治。
精准测量感染者体内病毒储存库的大小对评价治疗方案的疗效以及判断感染者是否获得功能性治愈均具有重要的临床意义。
目前已有多种HIV储存库检测方法,但检测性能参差不齐,缺乏统一的衡量标准,限制了HIV治疗方案的准确评估和发展。
基于体外培养的HIV储存库检测方法能够检测出病毒储存库,但仅能代表病毒储存库的最低水平。
基于荧光定量聚合酶链反应(PCR)检测技术的传统PCR检测和数字PCR检测因为无法区分复制功能缺陷的病毒储存库而高估病毒储存库的大小。
近来出现的IPDA和Q4PCR检测方法通过应用多重PCR检测可以在PCR高灵敏度的基础上特异地检测出完整的病毒库。
本文对HIV储存库的特征及其现有的主要检测方法和新近技术进展进行了综述。
关键词:艾滋病病毒;病毒储存库;检测方法中图分类号:R512.91;R373.9文献标志码:A文章编号:1672-5662(2020)12-1365-04Research progress on testing methods for HIV viral reservoir ZHANG Xin,PAN Pinliang,JIN Cong.(National Centerfor AIDS/STD Control and Prevention,Chinese Center f or Disease Control and Prevention,Beijing102206,China) Corresponding author:JIN Cong,Email:*****************Supported by the National Science and Technology Major Project in Infectious Disease of the13th Five-year Plan in China(2018ZX10301102-003,2018ZX10734404-005)Abstract:Although highly active antiretroviral therapy(HAART)can suppress viral replication to undetectable levels,it is difficult to completely cure HIV infected patients because viruses integrate into host cell genomes to form the HIVviral reservoir.Accurately measuring the size of HIV reservoir is of great clinical significance in evaluating the efficacy oftreatment regimens and judging whether an infected person is functionally cured or not.At present,a variety of assays forHIV reservoir has been developed.However,the uneven detection performance and lack of measurement standards limit theaccurate evaluation and development of new HIV treatment regimens.Culture-based assays are good at measuring the HIVreservoir,but their results only represent the lowest level of the HIV reservoir.PCR-based assays,qPCR and ddPCR,usuallyoverestimate the size of HIV reservoir,because they can't detect whether the reservoir is defective.The recently developedassays,IPDA and Q4PCR,employing the technique of multiple PCR testing can detect more accurately the complete HIVreservoir with high sensitivity and specificity.This article reviews the characteristics of the HIV reservoir,the major assaysused in measuring the HIV reservoir,and recent progress on testing techniques.Keywords:HIV;viral reservoir;testing method现行的艾滋病(AIDS)抗病毒治疗(ART)最大限度地抑制艾滋病病毒(HIV)复制,并在一定程度上延长HIV感染者的预期寿命,但在既往研究中发现一旦患者中断治疗后,收稿曰期:2020-03-20;修回日期:2020-08-13基金项目:国家“十三五”传染病防治科技重大专项(2018ZX1 0301102-003,2018ZX10734404-005)第一作者简介:张鑫(1997-),男,硕士在读,研究方向:基础医学。
应用定量PCR技术检测HIV-1逆转录环节的方法的建立
激素 ( C H)及皮质酮 ( O T)浓度 ;H A T C R E染色观察胎 鼠肝、肺形态学改变 ;E le hr h法检 i 测胎 鼠肝 、肺 P s A 代谢物含量 ;并检测胎 鼠肝 、肺还原型谷胱甘肽 ( S G H)含量 ,胎鼠肝脏丙
mm l L o ・ 磷酸二氢钠) H:9 6 ,p . 。结果 :通过对 p H值 ,缓 冲溶液浓度 的优选 ,在该 系统条
件下 ,供试品中 l 种黄酮被很好分离并定量。结论 :该方法可以为野菊花药材的质量鉴定 ,为 O
黄酮类药物制剂 的分离测定提供依据。方法简便准确。
应 用定量 P R技术 检测 HⅣ 一1 C 逆转 录环节 的方法 的建立
氨酸 转氨 酶/ 门冬氨 酸 转 氨 酶 ( T/ T) 活 力 及 相 关 抗 氧 化 指 标 :谷 胱 甘 肽 巯 基 转 移 酶 天 AL AS ( T) GS 、谷胱 甘肽 过 氧 化 物 酶 ( x 、谷 胱 甘 肽 还原 酶 ( GP ) GR) 和超 氧化 物 歧 化 酶 ( OD) 活 S
性 ,以及丙二醛 ( A MD )含量 。结果 :小剂量 R t e 组胎 鼠体重和身长均较正常对照组降低 ( P
< O 0 ,P . 5 ,大剂 量 R t MC .1 <O 0 ) e和 T组 胎 鼠的 生长 发育 指标 也 有 降低 趋 势 ;R t e 处理 组 胎 血
皮质酮均高于正常,大剂量 R t e 暴露能显著升高胎血 A T 水平 ( <O 0 ) C H P .5 ;胎 鼠肝脏部分出
细 管 电泳法 系 统分 离黄 酮 。压 力 进 样 2 pi s 0 a,5 ;运 行 时 间 3mi,电压 1k ( 压 分 析 ) 5 n 5V 恒 ;柱 温 3℃ ;检测 波 长 :30 m 0 3n 运 行 缓 冲 液 为 硼 砂 一 磷 酸 二 氢 钠 系 统 (0 2mmo ・L 硼 砂 ,5 l 0
HIV耐药检测
HIV耐药检测江苏省CDC郭宏雄2010-4-26Antiretroviral drugs used in the treatment of HIV infectio Multi-class Combination ProductsNucleoside Reverse Transcriptase Inhibitors (NRTIs)Nonnucleoside Reverse Transcriptase Inhibitors (NNRTIs)Protease Inhibitors (PIs)Fusion InhibitorsEntry Inhibitors -CCR5 co-receptor antagonistHIV integrase strand transfer inhibitorsHIV HIV的耐药性的耐药性HIV HIV耐药性是指病毒通过自身的遗传变耐药性是指病毒通过自身的遗传变异,产生对药物的抑制作用产生对药物的抑制作用,,使药物敏感性降低或不敏感的现象性降低或不敏感的现象。
产生耐药性的原因病毒自身的原因环境压力病毒自身的因素—HIV-l的逆转录酶(RT)不具有DNA聚合酶的校正功能,因此,在复制过程中,病毒核酸表现出高度的错误倾向性。
病毒的高速复制过程中,高频率突变在很短的时间内随时发生。
每个复制周期产生一个突变点;每天产生109–1010个新病毒;病毒基因组中平均每个碱基每天突变一次。
药物的选择压力在药物选择压力下,耐药变异株完全取代药物敏感株最快能发生在14 至28天内。
(Combined) Use of Active Antiretroviral AgentsPressure: Drug A Pressure: Drug B Pressure: Drug C,....Viral Load &Replication RateLow Replication Rate &Viral Load Less “fit” virusTIME促使耐药性病毒株出现的因素1病毒载量耐药株出现时间300,000 30,000 3,000300 300.1 1 10 100 1,000促使耐药性病毒株出现的因素2病毒学失败率 (%)1008071.466.76054.64021.7200 >9590-9580-9070-80服药依从性 (%)82.1<70促使耐药性病毒株出现的因素3最后一次用药第一天第二天药物浓度潜在病毒复制区01224时间 (小时)药物配伍不当— 药代显著不同药物配伍单药治疗IC90 IC503648S. Taylor et al. 11th CROI Abs 131促使耐药性病毒株出现的因素3— 细胞周期依赖性药物 AZT, D4T ( 活化期细胞) DDI (静止相细胞) 蛋白酶抑制剂 (活化期细胞)— 非细胞周期依赖性药物 3TC, FTC, Abacavir Tenofovir NNRTIs促使耐药性病毒株出现 的因素4— 胃肠道吸收不好:呕吐,腹泻; — 随意间歇服药; — 与中药或其他药物同时服用。
艾滋病检测原理和技术规范培训
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各筛查实验室每月10日前上报上月检测数据:
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四、艾滋病检测的质量控制
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行政支持 重视、投入、理解 实验室规范化建设 规范、制度、程序 人员要求 资质条件、培训和轮训
ELISA(国产第三代)
3周多
20~25天
普及,稳定性欠佳
ELISA(进口第三代)
3周
18~22天
较为成熟,稳定性好
ELISA(进口第四代)
2周多
16~17天
假阳性率偏高
核酸检测
1周多
10~12天
不用于常规诊断
各种诊断试剂特性
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硒标法
金标法
HIV抗体筛查试验
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明胶颗粒凝集试验 (Particle agglutination test,PA)
HSV所致的慢性口腔、呼吸道、食道炎症
弥漫性或肺外的组织胞浆菌病
侵润性宫颈癌
弥漫性或肺外的球孢子菌病
卡波济肉瘤
肺外隐球菌病
伯基特淋巴瘤
肺部或肺外的结核病
免疫母细胞型淋巴瘤
原发性肺炎
原发性脑淋巴瘤
卡氏肺囊虫肺炎
进行性多发性脑白质病
慢性肠道隐孢子病(病程>1个月)
脑弓形体病
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HIV-1 M组
HIV-1 O组
HIV-2
非洲中部和东部
美国、欧洲、南美洲、非洲和亚洲
南美洲、印度、赞比亚、中国
非洲中部和东部
泰国、中非、印度
巴西、罗马尼亚、喀麦隆
加蓬、苏联、尼日利亚、乌干达、塞内加尔、赞比亚
PCR结合ELISA检测HIV-1逆转录酶基因的耐药性突变
PCR结合ELISA检测HIV-1逆转录酶基因的耐药性突变PCR结合ELISA检测HIV-1逆转录酶基因的耐药性突变中国生物工程杂志ChinaBiotechnology,2006,26(8):42-46用两步MS—PCR结合ELISA检测HIV一1逆转录酶基因的耐药性突变何红秋程绍辉刘斌陈慰祖王存新(北京工业大学生命科学与生物工程学院北京100022)摘要高效抗逆转录病毒治疗法(HAART)的推广使用有效地抑制了HIV-1病毒的传播和艾滋病(AIDS)的发病率,死亡率.近年来,HIV.1逆转录酶基因突变所导致的耐药性已成为HAART治疗失败的主要原因,耐药性突变的检测对于指导病人用药以及新药开发具有重要意义.发展了一种检测HIV.1逆转录酶基因耐药性突变的新方法.采用两步MS.PCR方法检测HIV.1B亚型野生型和耐药突变型逆转录酶基因突变,检测点包括M41L,K70R,K103N,Y181C 和T215,并在两步MS.PCR基础上,设计比野生型引物长的突变型引物,结合微孔板杂交ELISA 呈色技术检测各点突变.结果显示,简化的两步MS—PCR能保持灵敏度和特异性高的优点,ELISA 的阳性结果与阴性结果的比值(P/N)达到要求,两步MS-PCR结合EuSA方法灵敏度高,操作简单,结果直观,成本低,相对耗时短且能进行高通量检测,使其无论在HIV-1耐药性突变及其它的点突变检测中都具有较好的临床应用前景.关键词两步MS—PCRELISAHIV-1逆转录酶基因耐药性中图分类号:Q939.4 人类免疫缺陷病毒1型(humanimmunodeficiency virustype1,HIV一1)的迅速传播引起的人类获得性免疫缺陷综合症(acquiredimmunodeficiencysyndrome, AIDS)已经夺走了全球大约2000万人的生命….高效抗逆转录病毒治疗法(highlyactiveanti-retroviraltherapy,HAART)被用作治疗HIV.1感染病人的标准疗法,该方法的推广使用,对于延长感染者寿命,提高其生存质量起到了巨大作用J.但是HIV.1耐药突变毒株的出现和传播,严重影响了HAART的治疗效果.耐药性突变通常以字母,数字,字母的方式表达,第一个字母代表野生型病毒氨基酸残基,数字代表该残基在蛋白质中的位置,第二个字母代表突变型病毒氨基酸残基.例如:M41L表示病毒第41个氨基酸残基由野生型的蛋氨酸(methionine,M)突变为亮氨酸(1eucine,L),文中所有突变均以该方法表示.在大收稿日期:2006-04-28修回日期:2006-05.15 ?国家自然科学基金资助项目(30500429),北京市教委基金面上项目Kh0o51ooo50o1),北京市教委重点项目(KZ200410005002)}?通讯作者,电子信箱:cxwang@. 规模使用HAART前,我国HIV感染者中耐药相关突变尚处于低流行状态,应当在用药过程中定期监控以减少耐药突变的产生与传播.这就要求有一种操作较简单,灵敏度和特异性较高的可靠的耐药性检测方法. HIV-1耐药性检测方法分为基因型检测方法和表型检测方法,基因型检测具有可提供交叉耐药资料,所需的时间短(几天或几小时),技术步骤少,费用较便宜等优点,主要包括DNA序列分析法和分子杂交分析法..基于RT—PCR扩增后的DNA测序方法被称为 HIV耐药性临床检测中的黄金标准,该方法准确性高,但对野生型和突变型混和毒株检测时灵敏度较低,受到亚型特异性的限制,而且成本较高].其它的基因型检测法包括基因芯片技术受到灵敏度较低的限制….突变分离的PCR(mutagenically.separatedPCR,MS—PCR)…是一种基于PCR的点突变检测方法,该方法特异性较高,应用于HIV-1耐药性突变检测,取得了较好的结果'.本研究以MS.PCR方法为出发2006,26(8)何红秋等:用两步MS—PCR结合ELISA检测HIV一1逆转录酶基因的耐药性突变43点,发展并研究了两步MS-PCR方法的特异性和灵敏度,在此基础上,改变传统MS-PCR中引物设计,使突变型引物长于野生型引物,基于突变型引物中多出的片段设计寡核苷酸探针,运用核酸杂交和酶联免疫吸附实验(ELISA)检测耐药性突变.1材料和方法1.1材料PTC-100PehierThermalCyclerPCR仪,550型酶标仪(美国伯乐生命医学产品有限公司,Bio-Rad); CovaLinkNHModule酶标板(丹麦Nunc公司);DYY- 7C电泳仪(北京六一仪器厂).ZB-2422碱磷酶标记链亲和素(北京中杉金桥生物技术有限公司);TaqDNA 聚合酶(北京天为时代科技有限公司);聚蔗糖Ficoll 40O,BSA,PVP-40,鲑鱼精DNA,P-NPP等购自北京欣经科生物技术有限公司;1-甲基咪唑(1-methylimidazole),1-ethyl-3(3-dimethylaminopropy1)-carbodiimide(EDC)购自百灵威化学技术有限公司.含HIV.1B亚型毒株基因的质粒(野生型标准株和M41L,K70R,K103N, Y181C,T215F耐药变异株)由本实验室保存.PBS-T (PBS-0.1%Tween20),杂交液(0.25g/LFicoll4OO,0.25g/LBSA,0.25g/LPVP,0.0625g/L鲑鱼精DNA,6×SSC),DNA变性缓冲液(1.5mol/LNaCI,0.5mol/L NaOH),显色底物[6.7mmol/LP-NPP,0.1mol/LNa2CO(pH9.5),2mmol/LMscl2],封闭液(0.5%PVP4o,0. 25%Ficoll4OO,0.5%BSA)由实验室配制.1.2方法MS-PCR包括3轮PCR反应,第1轮用1对引物,后两轮均使用3个引物:根据模板链设计的1对MS. PCR引物和根据互补链设计的公用引物,MS.PCR引物 3末端的碱基互异,分别与相应模板配对,MS.PCR引物的3端2,4位各引入1个突变,且引入位点互不相同,则第二轮PCR产物3的4个碱基有3个位点各异, 第3轮MS-PCR引物不变只改变公用引物,引物和模板的错配由单碱基增至三碱基,提高特异性.野生型引物较突变型引物长20mer,PCR扩增片段在3%的琼脂糖凝胶电泳中得以区别川.1.2.1引物设计根据NCBI数据库中中国HIV.1的gag-pol基因序列进行比对,设计公用引物和杂交探针如表1和MS.PCR引物如表2,简并代码:M=(A/C),W=(A/T),R=(A/G),Y=(C/T),K=(G/T),N =(A/G/C/T).(5biotin=5生物素标记,5P=5磷酸化标记).表1各点突变检测的公用引物和杂交探针序列Table1Commonprimersandhybridprobesequenceforpointmutationdetections 表2MS-PCR检测HIV-1RT基因突变的等位基因特异性引物及与公用引物PCR扩增片段长度Table2Allele-specificprimersusedforMS-PCRdetectionsofmutationsinHIV-1RTandthePCRproductfragmentlengthwithCommonprimers MS—PCRprimersequenceFragmentlength 41W5I.rRTArGGATrKTCAGGCCCA从A兀'GW从TITrYCCITCCTnACAT3 41M5TrrI-IlCWA^Trr]nCCITCCTITYCAG370W5GITCNCrGAATI?TACTAATrI'rCTCCAGT370M5RTI,IrrGAGTI?TrITA兀IARrGTCNCTG从ITCrACT从TITTCTC从TC3103W5TCMCCCACATCYAGTAYTGTI'RCrGATGIT3 103M5AGGGAACrGAAAAATA眦AGAMCCCACATCYAGTAYTGTI'RCTGAGI'I'G3 181W5nGAAAACAAAATCCAGAMATAGWTArATA3 181M5ACAAAAATCITAGAGCCYTTAIlGAAAACAAAATCCAGAMATAGWTAGCTG3215W5AGAC从CATCrGTKGAGG-r(GGACrGAC3215M5AG从CA从从rAGAGGAGCTGG从CAACATCTIXGAGGTGGGGACG兀T3卵卯l一99110O7加"44中国生物工程杂志ChinaBiotechnologyVo1.26No.82006 1.2.2两步MS-PCR 检测耐药性突变简化的MS-PCR由两步组成,第一轮使用引物P,(5GTACAGTAI'I'AGTAGGACCYACACCTGTC3)和P2(5GATATGTccAI'IbGccI-I'Gcc3)各0.1p,mol/L扩增条件:4min94?,9×(1min94?,1min58?,1min72?),5min72?.第二轮使用MS.PCR引物野生型(W)0.05~molZL,突变型(M)0.1p.mol/L,公用引物0.05p.moL/L,扩增条件:4min94,35×(1min94?,1min55?,1min72?),10min72?,3%琼脂糖凝胶电泳检测PCR产物.1.2.3微孔板杂交-ELISA呈色检测突变杂交探针溶于10mmoL/L预冷的1一甲基咪唑(pH7.0)至终浓度 6lxg/l,取75加入酶标孔中,与250.2mol/LEDC 混匀,50?水浴5h.50~CNaOH-SDS洗液200洗板 3次.加入200封闭液后包被的CovaLinkNH 板在 4?下可以保存数月仍能使用.取MS-PCR扩增产物15lxl,加入等量DNA变性缓冲液,室温5min,取25加入微孔板,加入100杂交液,37?lh,PBS-T洗涤3次,加入100Ixl碱性磷酸酶标记的亲和素(PBS1/1000稀释),37lh,PBS-T洗板 3次,200显色底物避光显色30min,0.1moL/LNaOH终止,酶标仪测定A枷.2结果M41L,K70R,K103N,Y181C和T215F的MS-PCR 检测均使用MS.PCR引物,无论野生型或是突变型,长引物在PCR体系中浓度为0.05Ixmol/L而短引物为0.1p.moL/L,每个点均选取野生型(WT)模板,混合模板 (WT/MT=19:1,9:1,2:1,1:1),突变型(MT)模板进行扩增,从检测结果可以看到(图1):只有一种模板 (野生型或突变型)存在时,其扩增产物只有一条与之对应的特异带,两种模板按照一定比例混合时,检测极限一般能达到10%,即WT/MT=9:1,如图2中A,B, C,D,E的泳道3,与文献报道的结果一致,因此可以认为,简化的两步MS.PCR方法能够达到较好的特异性和灵敏度.在MS.PCR电泳检测时给出的可能是一条带(突变型或野生型),也可能是两条带(突变野生混合型) (图1)而检测目的是突变型是否存在,因此对70,103, 181和215等点,我们设计突变型引物较野生型引物长20个寡核苷酸片段,根据其序列设计杂交探针包被微孔板,公用引物5端标记生物素,取两步MS.PCR扩增 200100I1p300200IlI1200100{图1两步MS?PCR检测HIV?1RT各点突变结果 M:100bp梯度DNA分子量标准,采用MS—PCR引物;1:耐药突变型模板;2,5:野生型和耐药突变型混合模板,其中野生型与突变型模板比例分别为19:1,9:1,2:1,1:1;6:野生型模板;(8),(b),(c),(d) 和(e)分别为41.70,103,181以及215的检测结果Fig.1Two?stepMS?PCRforthedetectionofpointmutatiOIlSinl?V.1产物在微孔板中杂交,ELISA呈色的方法直接判断突变是否存在,设定P/N值大于2.0为阳性结果.当混合模板中突变型的比例为10%甚至5%时,P/N值达到阳性要求,随着突变型毒株在模板中比例的增加,杂交信号有一定增强,该方法灵敏度较电泳结果高且结果更直观(图2).3讨论HIV-1逆转录酶缺乏校正功能,使HIV.1复制过程中随机产生突变,某些突变会造成病毒对药物的敏感度降低.随着HAART疗法推广使用,部分点突变在病毒传代过程中被选择下来并在药物选择压力下成为优势毒株,造成治疗失败和耐药性病毒的传播蔓延. 对目前应用较广而且我国正在使用的齐多夫定 (Zidovudine,AZT),司他夫定(Stavudine,d4T),拉米夫定(1_amivudine,3TC),内韦拉平(Nevirapine,NVP)等逆转录酶抑制剂,HIV.1逆转录酶基因发生造成的耐药性的主要突变有M41L,K70R,T215F/Y,Y181C和K103N 等J,本研究对这些点突变进行了两步MS.PCR检测,3%琼脂糖凝胶电泳分析,结果表明经过简化步骤的MS—PCR能够用于HIV一1逆转录酶基因耐药性的检测.传统的MS-PCR方法包括3步,一般认为经过第2 ?瑚2006,26(8)何红秋等:用两步MS—PCR结合ELISA检测HIV—l逆转录酶基因的耐药性突变450.60.5O.4i0-3号《0.20.1l2345678Groups图2ELISA检测各点突变显色结果及A值1:耐药突变型模板;2—5:野生型和耐药突变型混合模板,其中野生型与突变型模板比例分别为19:1,9:1,2:1,1:1;6:野生型模板;7,8:空白对照;a…bCd分别为70,103,181和215 的检测结果Fig.2A4fortheELISAdetection ofpointmutations步PCR后,MS.PCR引物存在于多数产物中,再以这些产物为模板时,由于各自的突变引入不同,而模板与非特异性引物的不匹配位点增加为3个,进一步提高了扩增的特异性.我们认为,如果在第2轮PCR中已经有引物的选择性和竞争性,经过少数循环后,由于引物而引入突变的模板已经完全占据优势,随着循环的不断进行,PCR的级数放大效应使这一优势继续扩大, 与非特异性引物存在3个位点不匹配,而与特异性引物完全匹配的模板也逐渐增多,无需再将第2轮PCR 产物取出进行第3轮PCR反应即可达到理想效果,这样可以节约时间和成本,避免操作过程中带来的污染, 结果表明(图2),简化的两步MS—PCR选择特异性并不受影响.据文献报道川,为了抑制MS—PCR长引物多出的20个片段的退火效应,在其与短引物5端对应位置再引入2个错配,我们在进行K70R,K103N,Y181C和 T215F的突变检测时,设计MT引物长于引物,而 M41L仍为WT引物长于MT引物,结果显示,长引物竞争能力较短引物好,扩增占优势(图1),70和215点检测极限为MT/WT毒株1:19,较文献报道检出极限1: l0好,表明长引物中再引入2个连续错配仍不能有效抑制其退火效应,基于MS—PCR的检测方法应尽量避免引物长度带来的影响.直接对PCR结果进行凝胶电泳时条带较难辨识, 检测量小相对耗时且溴化乙锭有污染,因此我们对MS? PCR产物进行了微孔板杂交ELISA显色分析的初步研究.PCR-~孔板反向杂交分析技术是一种较新的基因诊断技术",具有杂交时间短,操作简便,检测结果特异性和可靠性好等优点.PCR.微孔板反向杂交分析技术中,微孔板包被有寡核苷酸探针,变性后的PCR扩增产物与捕获探针杂交,酶标亲和素与扩增产物5端标记的生物素反应,加入底物显色,酶标仪测定吸光值,杂交灵敏性比琼脂糖电泳法要高出至少一个数量级.实验表明,在两步MS—PCR的基础上,微孔板反向杂交一ELISA方法灵敏度较高,即MW/WT在10%甚至5%时,P/N值大于2.0,特异性较好,应用该方法进行耐药性检测可避免电泳检测的污染,方法更简单,成本较低且能实现高通量检测(在96孔板等微孔板中进行),相对耗时短.总之,两步MS.PCR结合分子杂交及ELISA呈色技术能够实现对逆转录酶基因的耐药性突变检测,具有灵敏度高,特异性好,无污染,能实现高通量等一系列优点,有较好的临床应用前景,下一步工作将进行较多临床样品实测,并通过与国际认可的标准方法平行比较,完善该方法以求达到临床应用要求.参考文献[1]RenisioJG,CosquerS,CherrakI,eta1.Pre—organized structureofviralDNAatthebinding—processingsiteofHIV一1integrase.NucleicAcidsResearch,2005,33:1970—1981[2]BHIVAWritingCommitteeonbehalfoftheBHIVAExecutiveCommittee.BritishH?Association(BHIVA)guidelinesforthetreatmentofHIV—infectedadultswi山antiretroviraltherapy.H【vMedicine,.1:76—101[3]sixF,HuangHL,weiM,eta1.PrevalenceofdmgresistancemutationamongantiretroviraldrugnaiveHIV一1一infectedpatientsinChina.ChineseJExpClinViral,2004.l8: 308—311[4]GallantJE,GerondehsPZ,Wainbe~MA,eta1.Nucleoside andnucleotideanaloguel~vel-Betranscriptsseinhibtors:a clinicalreviewofantiretroviralresistance.Antivirer.2003. 8:489—5o6[5]GingolaniA,AntinoriA,RizzoMG,ofulnessof中国生物工程杂志ChinaBiotechnologyVol_26No.82006monitoringHIVdrugresistanceandadherenceinindividuals failinghighlyactiveantiretroviraltherapy:arandomizedstudy (ARGENTA).AIDS,2002,16:369,379[6]WuSL,YanYS,JiangY.TheHIVdrugresistancemutation detectionmethodsandclinicuse.ChineseJournalofAIDS&STD,2004,10:312,315[7]FraterAJ,ChaputCC,BeddowsS,eta1.Simpledetectionof pointmutationsassociatedwitIlHIV一1drugresisance.Journal ofVirologicalMethods,2001,93:145,156[8]SchuurmanR,BrambiIIaAM,deGreetT,eta1.Second worldwideevaluationofHIV一1drugresistancegenotypingqualityusingtheENVA2pane1.in:3rdInternational WorkshoponHIVDrugResistanceandTreatmentStrategies, 23-26June1999,SanDiego,USA[9]MyintL,AriyoshiK,YanH,eta1.Mutagenicallyseparated PCRassayforrapiddetectionofM41LandK70RzidovudineresistancemutationsinCRF01一AE(SubtypeE)humanimmunodeficiencyvirustype1.AntimicrobAgentsChemother,2002,46:3861,3868[1O]VaheyM,NauME,BarrickS,eta1.Performanceofthe AffymetrixGeneChipHIVPRT44Oplatformforantiretroviral drugresistancegenotyping0fhumanimmunodeficiencyvirustype1cladesandviralisolateswitIllengthpolymorphisms.JClinMicrobiol,1999,37:2533,2537[11]RustS,FunkeH,AssmannG.MutagenicallyseparatedPCR (MS—PCR):ahishlyspecificonestepprocedureforeasymutationdetection.NucleicAcidsRes,1993,21:3623,3629[12]ChangJG,LuJM,HuangJM,eta1.Rapiddiagnosisof beta—thalassaemiabymutagenicallyseparatedpolymerasechain reaction(MS—PCR)anditsapplicationtoprenataldiagnosis. 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HIV-1耐药基因检测的研究进展
HIV-1耐药基因检测的研究进展陈瑶;吴英松【摘要】HIV-1耐药是影响艾滋病抗病毒治疗效果的主要因素.随着抗病毒疗法的普及和接受治疗者的增多,HIV-1耐药的问题日益凸显,使艾滋病治疗面临巨大的挑战.因此,了解各抗病毒药物治疗引起的HIV-1耐药突变位点并及时采用有效方法进行耐药基因检测对临床治疗具有重要指导意义.HIV-1耐药位点基因型检测方法因其快速准确的特点,目前是HIV-1耐药检测最常用也是最有前景的方法.本文对HIV-1耐药位点和耐药基因检测的研究进展做简单综述.【期刊名称】《分子诊断与治疗杂志》【年(卷),期】2017(009)002【总页数】5页(P142-146)【关键词】HIV-1;耐药位点;基因型;耐药检测【作者】陈瑶;吴英松【作者单位】南方医科大学检验与生物技术学院,广东,广州510515;南方医科大学检验与生物技术学院,广东,广州510515【正文语种】中文艾滋病(acquired immune deficiency syndrome,AIDS)是由人免疫缺陷病毒(human immunodefi⁃ciency virus,HIV)引起的传染病,目前世界范围内主要流行HIV⁃1。
HIV耐药是由于病毒基因发生突变,使得药物作用靶点的生化特点或者结构特征发生改变,导致病毒对抗病毒药物敏感性降低,或者失去敏感性[1⁃3]。
随着高效联合抗逆转录病毒(highly active antiretroviral therapy,HAART)药物的广泛应用,导致HIV⁃1病毒发生突变。
耐药突变株在药物选择压力下逐渐成为优势病毒株,导致耐药菌株感染的病例不断出现。
因此,作为帮助临床医生选择联合用药方案的重要工具,耐药检测就显得十分重要。
目前HIV⁃1耐药检测方法主要有表型检测和基因型检测。
其中,基因型检测因其快速准确的特点,成为调整治疗方案的首选[3]。
随着抗病毒治疗的发展及新型靶点抗病毒药物的临床应用,已确定了200多个各种类型HIV⁃1耐药相关的基因突变,它们对于耐药及病毒的生物学特性产生不同程度的影响[4⁃5]。
一步法或两步法反转录cDNA文库的PCR实验原理和流程,gi
一步法或两步法反转录cDNA文库的PCR实验原理和流程,gi逆转录PCR逆转录是指以RNA为模板合成与其互补的cDNA的过程。
逆转录PCR是将RNA的逆转录(reverse transcription) 和cDNA的聚合酶链式反应(PCR)相结合的技术,故逆转录称为RT-PCR或反转录PCR。
逆转录PCR实验原理是,提取组织或细胞中的总RNA,以RNA为模板,利用逆转录酶反转录成cDNA,再以cDNA链为模板进行PCR扩增,从而获得大量拷贝。
逆转录PCR的出现使RNA检测的灵敏性提高了几个数量级,使一些极为微量RNA样品分析成为可能。
逆转录PCR应用逆转录PCR的用途广泛,可用于分析基因的转录产物、检测细胞中RNA病毒的含量、合成cDNA探针、直接克隆特定基因的cDNA序列等。
如在临床上RT-PCR可以用于遗传病诊断、癌症检测、检测病人标本中的RNA病毒,如HAV、HCR、HIV等。
在植物方面RT-PCR常用于研究环境胁迫对植物基因表达的影响,以及在特定的环境或生长阶段中植物体不同部位基因表达的差异性。
使用RT-PCR检测分析RNA 转录产物具有以下突出的优点:理论上可以检测几乎任何基因的转录产物;可以实现极为微量RNA样品(ng级别)的检测;样品耐受性好,未经纯化的粗制生物样品也可以用于检测;模板逆转录PCR的模板是RNA,可以是总RNA、mRNA或体外转录的RNA产物。
无论使用何种RNA,都需确保RNA中无RNA酶和基因组DNA的污染。
RNA提取可以利用试剂盒从细胞(或组织)中提取得到RNA。
模板RNA的纯度和完整性对于扩增的结果有很大影响,从细胞中分离RNA应注意尽量减少RNA酶的污染(RNA酶分布广泛,除细胞内源性RNA酶外环境中也存在大量RNA酶),在提取RNA时,应尽量创造一个无RNA酶的环境:避免RNA酶污染包括去除外源性RNA酶污染和抑制内源性RNA酶活性,主要是采用焦碳酸二乙酯(DEPC)去除外源性RNA酶,通过RNA酶的阻抑蛋白Rnasin和强力的蛋白质变性剂抑制内源性RNA酶。
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中国生物工程杂志ChinaBiotechnology,2006,26(8):42~46用两步MS—PCR结合ELISA检测HIV一1逆转录酶基因的耐药性突变术何红秋程绍辉”刘斌陈慰祖王存新”(北京工业大学生命科学与生物工程学院北京100022)摘要高效抗逆转录病毒治疗法(HAART)的推广使用有效地抑制了HIV.1病毒的传播和艾滋病(AIDS)的发病率、死亡率。
近年来,HIV一1逆转录酶基因突变所导致的耐药性已成为HAART治疗失败的主要原因,耐药性突变的检测对于指导病人用药以及新药开发具有重要意义。
发展了一种检测HIV一1逆转录酶基因耐药性突变的新方法。
采用两步MS—PCR方法检测HIV一1B亚型野生型和耐药突变型逆转录酶基因突变,检测点包括M41L、K70R、K103N、Y181C和rr215,并在两步Ms—PcR基础上,设计比野生型引物长的突变型引物,结合微孔板杂交EusA呈色技术检测各点突变。
结果显示,简化的两步Ms—PCR能保持灵敏度和特异性高的优点,EuSA的阳性结果与阴性结果的比值(P/N)达到要求,两步Ms-PcR结合EuSA方法灵敏度高,操作简单、结果直观、成本低、相对耗时短且能进行高通量检测,使其无论在HIV一1耐药性突变及其它的点突变检测中都具有较好的临床应用前景。
关键词两步MS—PCREUSAHIV.1逆转录酶基因耐药性中图分类号:Q939.4人类免疫缺陷病毒1型(humanimmunode6ciencyvirustype1,HIV.1)的迅速传播引起的人类获得性免疫缺陷综合症(acquiredimmunodeficiencysyndrome,AIDs)已经夺走了全球大约2000万人的生命¨J。
高效抗逆转录病毒治疗法(highlyactiveanti.retroviraltherapy,HAART)被用作治疗HIV一1感染病人的标准疗法口。
,该方法的推广使用,对于延长感染者寿命,提高其生存质量起到了巨大作用口1。
但是HIV.1耐药突变毒株的出现和传播,严重影响了HAART的治疗效果Hj。
耐药性突变通常以字母、数字、字母的方式表达,第一个字母代表野生型病毒氨基酸残基,数字代表该残基在蛋白质中的位置,第二个字母代表突变型病毒氨基酸残基M1。
例如:M41L表示病毒第41个氨基酸残基由野生型的蛋氨酸(methionine,M)突变为亮氨酸(1eucine,L),文中所有突变均以该方法表示。
在大收稿日期:2006・04.28修回日期:2006JD5・15t国家自然科学基金资助项目(30500429),北京市教委基金面上项目K^1200510005001),北京市教委重点项目(1湿00410005002)}{通讯作者,电子信箱:cxwaIlg@bjut.edu.cn.规模使用HAART前,我国HIV感染者中耐药相关突变尚处于低流行状态,应当在用药过程中定期监控以减少耐药突变的产生与传播HJ。
这就要求有一种操作较简单、灵敏度和特异性较高的可靠的耐药性检测方法。
HIV-1耐药性检测方法分为基因型检测方法和表型检测方法,基因型检测具有可提供交叉耐药资料,所需的时问短(几天或几小时),技术步骤少,费用较便宜等优点,主要包括DNA序列分析法和分子杂交分析法。
6。
基于RT—PcR扩增后的DNA测序方法被称为HIV耐药性临床检测中的黄金标准o7I,该方法准确性高,但对野生型和突变型混和毒株检测时灵敏度较低…,受到亚型特异性的限制Ⅲ,而且成本较高‘91。
其它的基因型检测法包括基因芯片技术受到灵敏度较低的限制¨…。
突变分离的PCR(mutagenically—separatedPCR,MS.PCR)¨川是一种基于PCR的点突变检测方法,该方法特异性较高,应用于HIV.1耐药性突变检测,取得了较好的结果[7’9'““3I。
本研究以Ms.PCR方法为出发2006,26(8)何红秋等:用两步Ms—PCR结合ELIsA检测HIv一1逆转录酶基因的耐药性突变43点,发展并研究了两步MS-PcR方法的特异性和灵敏度,在此基础上,改变传统Ms-PcR中引物设计,使突变型引物长于野生型引物,基于突变型引物中多出的片段设计寡核苷酸探针,运用核酸杂交和酶联免疫吸附实验(EusA)检测耐药性突变。
1材料和方法1.1材料阳c-100PeltierThe瑚alcyclerPcR仪,550型酶标仪(美国伯乐生命医学产品有限公司,Bio—Rad);CovaLinkNHModule酶标板(丹麦Nunc公司);DYY-7c电泳仪(北京六一仪器厂)。
zB-2422碱磷酶标记链亲和素(北京中杉金桥生物技术有限公司);TaqDNA聚合酶(北京天为时代科技有限公司);聚蔗糖Ficoll400、BSA、PVP40、鲑鱼精DNA、P.NPP等购自北京欣经科生物技术有限公司;l-甲基咪唑(1一methylimidazole)、l-ethyl.3(3-dimethylamin叩ropyl)一carbodiimide(EDC)购自百灵威化学技术有限公司。
含HIV-1B亚型毒株基因的质粒(野生型标准株和M41L、K70R、K103N、Y181c、T215F耐药变异株)由本实验室保存。
PBs—T(PBs—O.1%Tween20),杂交液(0.259/LFicoll400,0.259/LBSA,0.259/LPVP,0.06259/L鲑鱼精DNA,6×ssc),DNA变性缓冲液(1.5moL/LNaCl,0.5啪L/LNaoH),显色底物[6.7m咖L/LP-NPP,0.1咖L/LNa2C03(pH9.5),2姗0L/LMgCl2],封闭液(0.5%PVP40,0.25%Ficou400,0.5%BsA)由实验室配制。
1.2方法Ms—PcR包括3轮PcR反应,第1轮用l对引物,后两轮均使用3个引物:根据模板链设计的1对Ms—PcR引物和根据互补链设计的公用引物,Ms—PcR引物3’末端的碱基互异,分别与相应模板配对,Ms-PCR引物的3’端2~4位各引入1个突变,且引入位点互不相同,则第二轮PcR产物3’的4个碱基有3个位点各异,第3轮Ms—PcR引物不变只改变公用引物,引物和模板的错配由单碱基增至三碱基,提高特异性。
野生型引物较突变型引物长20mer,PcR扩增片段在3%的琼脂糖凝胶电泳中得以区别"・11]。
1.2.1引物设计根据NcBI数据库中中国HIV一1的gag-pol基因序列进行比对,设计公用引物和杂交探针如表1和Ms—PcR引物如表2,简并代码:M=(A/c),W=(A/T),R=(A/G),Y=(C/T),K=(G/T),N=(A/G/c/T)。
(5,biotin=5’生物素标记,5’P=5’磷酸化标记)。
表1各点突变检测的公用引物和杂交探针序列Table1C咖monprime璐andhybridpmbe∞quenceforp咖tmuta6蚰detectio哪表2MS-PCR检测HIV-1Rr基因突变的等位基因特异性引物及与公用引物PCR扩增片段长度Table2AUele-specmcprime聪usedforMS-PCRdetectic吣of删ta廿。
璐inHⅣ一1RrandthePCRproductfh静吡entl蚰gthwith咖珈吣nprime璐MS・PCRprimersequenceF阳目mentleng:tll41W5’7ITRTATGGATrKTCAGGCCCAAAATI’GWAAT兀’IYCC7ITCCTrYTACAT3’41M5’TITITGWAATITIYCCTTCCTITYCAG3’70W5’G7兀’cNCTGAATI℃TACTAATrI'I.CTCCAGT3’70M5’RTNTTGAGll℃TYTTATTARTGTCNCTGAATTCTACTAA7rTrTC7I℃AATC3’103W5’TCMCCCACATCYAGTAYTGTTRC7rGATGTT3’103M5’AGGGAACTGAAAAATATGCAGAMCCCACA7I℃YAGTAYTGTrRCTGAGTI’G3’18lW5’TAGAAAACAAAATCCAGAMATAGWTATATA3’181M5’ACAAAAATCTTAGAGCCYTTATGAAAACAAAATCCAGAMATAGWTAGCTG3’215W5’AGACAACATCTGTKGAGGTGGGGAC7I’GAC3’215M5’AGAACAAAAATAGAGGAGCTGGAACAACATCTGTKGAGGTGGGGACGTIT3’201bp179bp268bp299bp291bp31lbp200bp220bp157bp178bp44中国生物工程杂志ChinaBiotechnologyVol-26No.820061.2.2两步MS.PCR检测耐药性突变简化的Ms-PcR由两步组成,第一轮使用引物P。
(5’GTACAGTATTAG7I'AGGACCYACACCTGTC3’)和P2(5’GATATGTccA7兀BGccTTGCc3’)各0.1仙moL/L扩增条件:4min94℃,9×(1min94cc,1min58℃,1min72℃),5min72℃。
第二轮使用MS.PCR引物野生型(w)0.05斗moL/L,突变型(M)0.1斗moL/L,公用引物0.05斗moL/L,扩增条件:4min94℃,35×(1min94℃,1min55℃,1min72℃),10min72℃,3%琼脂糖凝胶电泳检测PcR产物。
1.2.3微孔板杂交.EUSA呈色检测突变杂交探针溶于10mmoL/L预冷的1.甲基咪唑(pH7.0)至终浓度6斗g/斗l,取75灿l加入酶标孔中,与25肛l0.2moL/LEDC混匀,50℃水浴5h。
50℃NaOH-sDs洗液200斗l洗板3次。
加入200¨l封闭液后包被的CovaLinkNH板在4℃下可以保存数月仍能使用。
取Ms.PcR扩增产物15斗1,加入等量DNA变性缓冲液,室温5min,取25山加入微孔板,加入100斗l杂交液,37℃lh,PBs-T洗涤3次,加入100汕l碱性磷酸酶标记的亲和素(PBs1/1000稀释),37“11h,PBs-T洗板3次,200斗l显色底物避光显色30min,0.1moL/LNaOH终止,酶标仪测定A加,。
2结果M41L、K70R、K103N、Y181C和他15F的MS—PCR检测均使用Ms.PcR引物,无论野生型或是突变型,长引物在PcR体系中浓度为0.05仙moL/L而短引物为O.1斗moL/L,每个点均选取野生型(WT)模板、混合模板(wr/MT=19:1,9:1,2:1,1:1)、突变型(MT)模板进行扩增,从检测结果可以看到(图1):只有一种模板(野生型或突变型)存在时,其扩增产物只有一条与之对应的特异带,两种模板按照一定比例混合时,检测极限一般能达到10%,即wr/MT=9:l,如图2中A、B、C、D、E的泳道3,与文献报道的结果一致"1,因此可以认为,简化的两步Ms.PcR方法能够达到较好的特异性和灵敏度。