哈茨木霉发酵产木霉素的培养条件优化
木霉菌的发酵条件研究(1)
产孢的影响 液体培养基中以红糖、 肝糖为碳源, 培养 BTC21 所获得的菌丝干重最大 , 这可能与红糖中含有 其它生长所需成分有关 ; 其次为淀粉、 蔗糖、 L (+ )树 胶醛糖、 麦芽糖、 半乳糖; 以山梨糖、 木糖、 密二糖、 葡萄 糖、 甘露醇、 果糖为碳源获得的 BTC21 菌丝干重较轻; 以菊糖、 棉子糖为碳源菌丝干重最轻。不同碳源培养 后性状差异很大 , 缺碳对照、 菊糖、 棉子糖培养后产生 纸屑或粉末状菌丝, 不形成菌球且数量极少。麦芽糖、 果糖、 葡萄糖、 甘露醇、 红糖、 半乳糖、 密二糖、 L (+ )树 胶醛糖、 肝糖及蔗糖为碳源, 液体培养过程中易产生小 菌球 ( 直径 < 0. 3mm) ; 木糖、 淀粉、 乳糖为碳源时可产 生不同大小的菌球。并且大多数碳源不利于孢子的产 生, 其中以果糖、 密二糖为碳源的培养滤液中观察到了 大量的木霉菌分生孢子; 其次为蔗糖、 半乳糖、 菊糖、 葡 萄糖、 L ( + ) 树 胶 醛 糖 与 淀 粉。其 余 8 种 碳 源 的 BTC21 培养滤液中几乎未见到分生孢子。综合以上结 果, 液体发酵 BTC21 最利于菌丝生 长的碳源为红糖, 最利于产生孢子的碳源是果糖与密二糖。
效的 BTC21( Trichoderma. harzianum) 菌株。 1. 2 不同碳源对 BTC21 菌丝生长及产孢的影响
5 、 25 、 27. 5 、 30 、 35 等温度下进行振荡培养, 测量 5d 后的菌丝干重及分生孢子量。 2 2. 1 结果与讨论 不同碳源培养 BTC21 后的性状及对菌丝生长与
[ 作者简介]
薛燕潍 ( 1962 年 6 月 ~ ) , 女 ( 汉族 ) , 山东省淄博市人 , 实验师。
哈茨木霉液体发酵产厚垣孢子条件的优化
山西农业科学 2 0 1 4 , 4 2 ( 2 ) : 1 6 9 — 1 7 3 d o i : 1 0 . 3 9 6 9 6 . i s s n . 1 0 0 2 — 2 4 8 1 . 2 0 1 4 . 0 2 . 1 8
J o u r n a l o f S h a n x i A g r i c u l t u r a l S c i e n c e s
Ab s t r a c t : B a s e d o n s i n g l e — f a c t o r e x p e r i me n t s ,w e a p p l i e d Bo x - B e h n k e n c e n t r a l c o mp o s i t e e x p e r i me n t s a n d r e s p o n s e s u r f a c e a n a l y s i s t o o p t i mi z e t h e l i q u i d f e r me n t a t i o n c o n d i t i o n s . T h e r e s u l t s s h o we d t h a t t h e o p t i mu m f e r me n t a t i o n c o n d i t i o n s w e r e he t f o l l o wi n g :
三种霉菌产纤维素酶能力分析与培养条件优化
三种霉菌产纤维素酶能力分析与培养条件优化胡翠英李良智赵建钱玮顾华杰(苏州科技学院化学生物与材料工程学院,苏州 215009)【摘要】摘要:对实验室现有3种真菌产纤维素酶能力的分析及培养条件优化。
比较了3种菌在刚果红培养基上的透明圈大小、并分析产纤维素酶酶活;通过单因素与响应面分析的方法优化毛酶产纤维素酶的培养条件。
通过试验得出3种真菌均能产纤维素酶,毛霉能产较多的纤维素酶。
毛霉产纤维素酶的最佳条件为:pH 5.0,转速 220 r/min,发酵时间47 h,发酵温度 35 ℃,纤维素酶活为6.99 U/mL。
毛霉、青霉、曲霉均产纤维素酶,毛霉能降解玉米芯纤维素。
【期刊名称】生物技术通报【年(卷),期】2014(000)001【总页数】6【关键词】霉菌纤维素酶培养条件优化节约粮食和提高农副产品的利用率,减少农业废弃物燃烧带来的环境污染问题,已经引起众多人的关注,将农业废弃物转为可利用能源成为大家研究的课题。
我国北方每年都有大量玉米芯被焚烧,如能加以利用,将节约原料成本,故降解此物成为本研究的目的。
但一方面由于半纤维素与木质素等组成的致密结构,另一方面纤维素本身不能为丙酮丁醇梭菌直接利用,故需先进行一连串的预处理、酶解等[1-3],将纤维素降解为葡萄糖、木糖等单糖。
纤维素酶的提取过程[4,5]较繁琐,酶损失较大,成本较高,如能直接利用纤维素酶产生菌降解纤维素为单糖,可省去酶的提取、纯化的过程,减少酶活力损失、节约成本。
其降解物直接作为产能源菌的碳源,形成两菌共培养的情形。
目前纤维素降解菌研究[6-9]中多为真菌,且大多为青霉、曲霉、木霉等。
本文的主要研究内容为从实验室现有霉菌中寻找纤维素降解菌,比较纤维素酶活,优化培养条件,为进行共培养提供参考。
1 材料与方法1.1 材料1.1.1 菌种青霉、毛霉、曲霉,来自本实验室。
玉米芯:来自山西农村,往年搁置1年,风干粉碎过40目筛子备用。
1.1.2 主要仪器纤维素酶活测定采用723PC型分光光度计(上海欣茂),发酵溶剂分析用气相色谱仪GC112A型(上海精科),FID检测器,PEG毛细管柱。
哈茨木霉发酵生产MonocillinI的培养基优化研究
关 键词 : 哈 茨木 霉 ; 培 养基 ; Mo n o c i l l i nI
中图分 类号 : ¥ 7 6 3 . 1 文献标 志码 : A 文章编 号 : 1 0 0 1 — 7 4 6 1 ( 2 0 1 4 ) 一 0 2 — 0 1 4 4 — 0 5
Ab s t r a c t : Re s p o n s e s u r f a c e me t h o d o l o g y ( RS M ) wa s a d o p t e d t o o p t i mi z e t h e me d i a f o r c u l t u r i n g mo n o c i l l i n
西 北 林 学 院学 报 2 0 1 4 , 2 9 ( 2 ) : 1a l o f No r t h we s t F o r e s t r y Un i v e r s i t y
d o i : 1 0 . 3 9 6 9 / j . i s s n . 1 0 0 1 7 4 6 1 . 2 0 1 4 . 0 2 . 2 7
哈茨 木 霉 发 酵 生产 Mo n o c i l l i n I的培 养基 优 化 研 究
姚 琳 ,杨 谦
( 1 .哈 尔 滨 工 业 大 学 生 命 科 学 与 技 术 学 院 , 黑 龙 江 哈尔 滨 1 5 0 0 0 1 ; 2 .哈 尔 滨 师 范 大 学 生 命 科 学 与 技 术 学 院 , 黑 龙 江 哈尔 滨 1 5 0 0 2 5 )
摘 要 : 采用响应 面分析 法优化哈 茨木 霉菌发 酵 生产 Mo n o c i l l i n I培 养基 。以 mo n o c i l l i n工产量 为指 示, 通过 HP L C / Ms测定其 产量 。在 单 因素 试验基 础 上 , 选定 麦 芽糖 、 黄 豆粉 和磷 酸 二 氢钾 添加 量 3 个因素做 中心组合 试验 , 建 立二次 回 归方程 , 并用响 应 面分析 法进 行优 化 。结 果表 明 : 绿 色木 霉 菌的 最优碳 源 、 氮 源、 磷 源及 其最优添加 量分别 为麦芽糖 4 . 1 6 2 、 黄 豆粉 0 . 2 5 3 、 磷酸二 氢钾 0 . 0 4 4 5 %。 在此 条件下培养 的哈 茨木 霉菌发 酵产 生 Mo n o c i l l i n 工产量达到 1 6 . 2 4 1 mg / L, 表 明响应 面分析 法非 常 适合优 化 Mo n o c i l l i n I发酵培养基 , 使 产量提 高 了 3 4 . 5 。 因此 , 培养基优 化 方法 高效 、 简便 、 耗 时少 ,
哈茨木霉产β-1,3-葡聚糖内切酶的发酵工艺条件研究
源( 葡萄糖 、 茯苓 多糖 ) 、 胰 蛋 白胨 、 N a N O 和磷 酸 盐进 行 了 L 。 ( 3 ) 试验 , 研 究 了 4种 因素 对哈 茨木
霉产酶的影响, 确定 了最佳培养条件 : 葡萄糖 4 2 . 0 g / L , 茯苓 多糖 1 8 . 0 g / L , 胰蛋 白胨 1 5 . 0 g / L , N a N O 3 5 . 0 g / L , 初始 p H 6 . 0 , 接种量 8 %, 2 8 q c , 1 1 0 r / m i n 培养 6 d 。优化后 总酶活 E 和B 一 1 , 3 一 葡聚糖 内切 酶 E e n d 。 活力达 到 了 4 7 1 . 6 U / m L和 3 2 7 . 4 U / m L , 比优 化前 分 别提 高 了 7 . 3倍 和 2 3倍 ,
本文以 T r i c h o d e r m a h a r z i a n u m G I M 3 . 4 4 2为 出 发 菌株 , 对其 培养 基 成 分 和 培养 条 件 进 行 了单 因素
p - 1 , 3 一 糖苷键连接的线性葡聚糖 , 其产量 与质 量均
可控制 , 生产不受环境和季节限制 , 但 由于热凝胶分
制备 B 一 1 , 3 . 葡寡糖的研究热点 。 G r a n d p i e r r e 等 已利 用 B . 1 , 3 . 葡 聚糖 酶 水解 热 凝胶 , 得到了聚合度为 2 — 1 2的寡糖。但 B 一 1 , 3 - 葡聚
糖 酶是 一类混 合 酶 系 , 主 要 分 为外 切 一 1 , 3 - 葡 聚糖 酶( E c 3 . 2 . 1 . 5 8 ) 、 内切 B - 1 , 3 一 葡聚糖酶 ( E C 3 . 2 . 1 . 3 9 ) 。现 阶段 发 酵生产 B . 1 , 3 - 葡聚 糖酶 的研究 已有大 量报 道 , 报 道显 示 总酶活 的量 已有 较大 提高 ,
土传病害生防菌哈茨木霉菌剂生产工艺的研究
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三、研究目标与内容
(二)研究内容
1、哈茨木霉固体发酵条件的研究 2、哈茨木霉固体发酵方式的研究 3、哈茨木霉固体发酵过程中营养成分的检测 4、哈茨木霉固体发酵产物的保存期及菌体稳定性检测 5、哈茨木霉菌剂的田间应用
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四、研究方法与技术路线
(一)研究方法——生防菌哈茨木霉固体发酵条件的研究
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一、国内外研究现状与趋势
➢ 生防微生物主要有木霉菌、丛枝菌根真菌、非致病性 尖孢镰刀菌。其中,木霉菌对多种植物病害具有很好 的生防作用,被认为具有重要生防价值。
➢ 木霉菌已广泛用于各种作物枯萎病的防治中,如 Thangavelu, 2003; 杨春林, 2008; Ling N, 2009。
植株生长情况
•番茄、茄 子
哈茨木霉菌培养方法
哈茨木霉菌培养方法哈茨木霉菌是一种常见的真菌,广泛分布于自然界中。
它是一种产生青霉素类药物的重要菌株,因其具有较高的生物合成能力而备受关注。
在生物制药领域中,哈茨木霉菌的培养方法具有极为重要的意义。
哈茨木霉菌的培养方法主要包括以下几个步骤:1. 培养基的制备哈茨木霉菌需要特定的培养基才能生长繁殖。
一般而言,哈茨木霉菌的培养基含有蔗糖、麦芽粉、酵母浸出物、磷酸盐和微量元素等营养成分。
这些成分需要按照一定比例混合,调节pH值和温度,使得培养基的营养成分均衡,为哈茨木霉菌的生长提供有利的环境。
2. 培养基的接种将哈茨木霉菌的孢子接种到培养基中,通常可以采用涂布法、点菌法等方式进行。
接种后,需要将培养基置于恰当的温度、湿度和光照条件下,利于哈茨木霉菌的生长。
3. 培养基的培养在适宜的条件下,哈茨木霉菌会开始生长繁殖。
经过一段时间的培养,可以观察到菌落的形成和生长情况。
此时,需要对培养基进行适当的调节和维护,以保持培养环境的稳定性和一致性。
4. 收获和提取当哈茨木霉菌生长到一定阶段后,可以进行收获和提取。
通常可以通过离心、过滤、超声波破碎等方法对菌体进行分离和提取,得到所需的代谢产物或活性成分。
需要注意的是,哈茨木霉菌的培养方法需要严格控制培养条件,以避免可能的污染和变异。
同时,对于哈茨木霉菌的培养过程中,需要严格遵守生物安全和伦理规范,保证实验的安全性和合法性。
哈茨木霉菌的培养方法是生物制药领域中的一项重要技术,对于生产和开发青霉素类药物具有重要的意义。
通过对哈茨木霉菌的培养方法的深入研究和优化,有望为药物研发提供更加高效和可靠的技术支持。
不同培养条件对长枝木霉SMF2和哈茨木霉T39生长与产孢的影响
㊀山东农业科学㊀2023ꎬ55(8):56~64ShandongAgriculturalSciences㊀DOI:10.14083/j.issn.1001-4942.2023.08.008收稿日期:2022-10-20基金项目:国家自然科学基金项目(32001929)ꎻ山东省自然科学基金项目(ZR2020MC125)作者简介:赵晓彤(2000 )ꎬ女ꎬ山东东营人ꎬ硕士研究生ꎬ研究方向为园林植物种质资源创新与应用ꎮE-mail:2581146949@qq.com通信作者:王桂清(1968 )ꎬ女ꎬ河北泊头人ꎬ博士ꎬ教授ꎬ主要从事植物保护教学与科研工作ꎮE-mail:wangguiqing@lcu.edu.cn不同培养条件对长枝木霉SMF2和哈茨木霉T39生长与产孢的影响赵晓彤ꎬ王桂清(聊城大学农学与农业工程学院ꎬ山东聊城㊀252000)㊀㊀摘要:采用十字交叉法和血球计数法分析不同培养基㊁温度㊁光照㊁酸碱度㊁碳源和氮源等对长枝木霉SMF2和哈茨木霉T39菌丝生长和孢子形成的影响ꎬ明确两种木霉生长繁殖的最佳条件ꎬ指导其人工扩繁和工厂化生产ꎮ结果表明ꎬSMF2和T39在含碳源和有机氮的PDA㊁CDA培养基中ꎬ常温㊁黑暗㊁非强酸强碱培养条件下其菌丝生长良好ꎬ光照㊁果糖㊁牛肉膏培养条件更有利于二者孢子形成ꎻ温度㊁酸碱度和培养基是影响SMF2和T39孢子形成的主要因素ꎬ35ħ㊁pH值为7㊁PDA培养基最利于SMF2产孢ꎬ30ħ㊁pH值为6㊁CDA培养基最利于T39产孢ꎻ相同条件下ꎬSMF2的菌丝生长略快ꎬ而T39的产孢能力更强ꎻ单糖和有机氮更有利于促进SMF2和T39产孢ꎮ关键词:培养条件ꎻ长枝木霉SMF2ꎻ哈茨木霉T39ꎻ菌丝生长ꎻ孢子形成中图分类号:S476.1㊀㊀文献标识号:A㊀㊀文章编号:1001-4942(2023)08-0056-09EffectsofDifferentCultureConditionsonGrowthandSporulationofTrichodermaLongibrachiatumSMF2andTrichodermaHarzianumT39ZhaoXiaotongꎬWangGuiqing(AgriculturalScienceandEngineeringSchoolꎬLiaochengUniversityꎬLiaocheng252000ꎬChina)Abstract㊀TheeffectsofdifferentmediaꎬtemperatureꎬlightꎬpHꎬcarbonsourcesandnitrogensourcesonthehyphagrowthandsporeformationofTrichodermalongibrachiatumSMF2andTrichodermaharzianumT39wereanalyzedbycrossmethodandbloodcellcountingmethod.Itwasaimedtoclarifytheoptimalcondi ̄tionsforthegrowthandreproductionofthetwoTrichodermaspeciesꎬandtoguidetheirartificialpropagationandfactoryproduction.TheresultsshowedthatSMF2andT39hadbetterhyphagrowthunderroomtempera ̄tureꎬdarkꎬnon ̄strongacidandalkalicultureconditionsinPDAandCDAmediacontainingcarbonsourceandorganicnitrogenꎬandthecultureconditionsoflightꎬfructoseandbeefpasteweremoreconducivetothesporeformation.TemperatureꎬpHandmediumwerethemainfactorsaffectingtheformationofSMF2andT39sporesꎻ35ħꎬpH=7andPDAmediumwerethemostconducivetoSMF2sporeproductionꎬand30ħꎬpH=6andCDAmediumwerethemostconducivetoT39sporeproduction.UnderthesameconditionsꎬthehyphagrowthrateofSMF2wasslightlyfasterꎬandthesporeproductioncapacityofT39wasstronger.Mono ̄saccharidesandorganicnitrogenweremoreconducivetoSMF2andT39sporulation.Keywords㊀CultureconditionsꎻTrichodermalongibrachiatumSMF2ꎻTrichodermaharzianumT39ꎻHy ̄phagrowthꎻSporulation㊀㊀生防真菌在防治作物病害(尤其是土传病害)方面发挥着巨大作用ꎬ其中研究最多和应用最广的为木霉菌(Trichodermaspp.)[1]ꎮ木霉菌广泛分布于不同生态环境中ꎬ以丰富的次生代谢物和强大的竞争能力及重寄生特性实现其生物防治作用ꎬ在土壤修复㊁促进植物生长和控制病害方面发挥着重要作用[2]ꎬ可作为高效㊁经济㊁环保的原材料应用于工业和农业生产[3]ꎮ因其具有生长分布的广泛性㊁种类株系的适应性㊁拮抗真菌的广谱性㊁活性物质的多样性㊁作用机制的复杂性和对环境的友好性等特点而成为最有应用前途的生防因子[4-6]ꎮ最为常见的木霉菌有哈茨木霉(Trichodermaharzianum)㊁棘孢木霉(Trichodermaasperellum)㊁长枝木霉(Trichodermalongibrachiatum)和绿色木霉(Trichodermaviride)等ꎮ哈茨木霉是目前农业生物防治中最具商业化价值的木霉菌ꎬ应用广泛ꎻ长枝木霉是较为常见的拮抗类木霉ꎬ在植病生防中越来越受到重视ꎮ哈茨木霉T22㊁T39作为生防产品已登记注册ꎬ不仅可以诱导寄主防御基因表达产生抗病性而防治植物病害ꎬ还可以促进作物生长进而提高生物量[7-9]ꎮ长枝木霉SMF2主要通过产生抗菌肽康宁霉素(trichokoninsꎬTKs)而对植物病害产生抑制作用ꎬ同时对苦瓜㊁白三叶草等植物具有明显的促生作用[1ꎬ10]ꎮ木霉菌种类不同㊁菌株不同ꎬ其生态适应性也不同ꎮ绿色木霉TR-8㊁哈茨木霉TH-1均可在PDA培养基上正常生长ꎻ光照可促进孢子产生ꎬ但二者最适生长温度㊁pH值等略有不同ꎻ微量元素Mn对TR-8菌丝生长有一定的促进作用[11-12]ꎮ生物学特性是研究真菌繁殖条件㊁发生规律㊁生态调控等方面的理论基础ꎬ对生防菌的科学利用具有指导作用[13]ꎮ本试验通过研究不同培养条件下长枝木霉SMF2和哈茨木霉T39的生物学特性ꎬ明确其生长繁殖条件ꎬ为其人工扩繁和工厂化生产奠定理论基础ꎮ1㊀材料与方法1.1㊀供试材料供试菌种为长枝木霉(T.longibrachiatum)SMF2和哈茨木霉(T.harzianum)T39ꎬ由聊城大学植物病理实验室提供ꎮ将供试菌种在(25ʃ1)ħ㊁LʒD(光照ʒ黑暗)=12hʒ12h的恒温光照培养箱内采用PDA培养基培养3d后ꎬ用打孔器取直径0.7cm的菌饼备用ꎮ1.2㊀试验设计1.2.1㊀培养基㊀供试培养基为马铃薯葡萄糖琼脂培养基(PDA:去皮马铃薯200g㊁葡萄糖20g㊁琼脂20g㊁蒸馏水1L)㊁察氏培养基(CDA:葡萄糖20g㊁KH2PO40.5g㊁K2HPO40.6g㊁MgSO4 7H2O0.5g㊁NaCl0.1g㊁天门冬酰胺5g㊁CaCl20.1g㊁琼脂20g㊁蒸馏水1L)㊁燕麦培养基(OMA:燕麦片40g㊁琼脂20g㊁蒸馏水1L)㊁基础固体培养基(BCM:蛋白胨10g㊁牛肉浸膏3g㊁K2HPO41g㊁NaCl5g㊁琼脂20g㊁蒸馏水1L)㊁麦芽糖琼脂培养基(MEA:麦芽糖20g㊁琼脂20g㊁蒸馏水1L)[15]共5种ꎮ1.2.2㊀温度㊀以PDA培养基为营养源ꎬ温度范围5~40ħ之间ꎬ设置5㊁10㊁15㊁20㊁25㊁30㊁35㊁40ħ共8个处理ꎮ1.2.3㊀光照㊀以PDA培养基为营养源ꎬ设置全光照㊁光暗交替(LʒD=12hʒ12h)㊁全黑暗3个处理ꎮ1.2.4㊀pH值㊀以PDA培养基为营养源ꎬ使用1.0mol/LHCl溶液和1.0mol/LNaOH溶液调节PDA培养基的pH值ꎬ设pH值为3㊁4㊁5㊁6㊁7㊁8㊁9㊁10㊁11㊁12共10个处理ꎮ1.2.5㊀碳源㊀以CDA培养基作为基础培养基ꎬ用供试碳源等量替换其中的葡萄糖(标准碳)ꎬ制成不同碳源培养基ꎮ供试碳源选用蔗糖㊁麦芽糖㊁乳糖㊁果糖㊁海藻糖㊁阿拉伯糖㊁可溶性淀粉㊁微晶纤维素共8种ꎬ并以无碳处理作为空白对照ꎮ1.2.6㊀氮源㊀以CDA培养基作为基础培养基ꎬ用供试氮源等量替换其中的天门冬酰胺(标准氮)ꎬ制成不同氮源培养基ꎮ供试氮源选用硫酸铵㊁氯化铵㊁硝酸钠㊁牛肉膏㊁酵母浸膏㊁蛋白胨㊁甘氨酸共7种ꎬ并以无氮处理作为空白对照ꎮ1.3㊀测定项目及方法将高压湿热灭菌后的培养基制成平板(直径9cm)ꎬ于培养皿内接种木霉菌饼ꎬ1皿1饼ꎬ重复3次ꎮ研究不同培养基㊁温度㊁光照㊁pH值㊁碳源和氮源对SMF2㊁T39菌丝生长和产孢量的影响ꎮ不同处理分别于(25ʃ1)ħ㊁LʒD=12hʒ12h的恒温光照培养箱培养48h后ꎬ采用十字交叉法测量菌落直径ꎬ72h后用相机拍照记录培养性状ꎬ采用血球计数法计算产孢量[14-15]ꎮ75㊀第8期㊀㊀㊀㊀㊀赵晓彤ꎬ等:不同培养条件对长枝木霉SMF2和哈茨木霉T39生长与产孢的影响1.4㊀数据处理与分析利用MicrosoftExcel2020处理数据ꎬ用AdobePhotoshop2020软件处理照片ꎬ用DPS19.05中的Duncan s法进行多组样本间的差异显著性分析ꎮ2㊀结果与分析2.1㊀不同培养基对两种木霉菌丝生长和产孢能力的影响图1显示ꎬSMF2㊁T39在5种供试培养基中均可生长ꎬ菌丝生长呈辐射状ꎬ色素颜色为黄绿色ꎬ培养基不同菌丝色素颜色深浅不同ꎮ其中ꎬ二者在MEA培养基上生长均不理想ꎬ菌丝稀薄ꎬ不产生色素ꎬ产孢量小ꎮ不同培养基条件下两种木霉菌丝生长速度和产孢量存在差异ꎮ由图2可知ꎬ二者在PDA培养基上生长状况最好ꎬ菌落大㊁菌丝生长旺盛ꎬ产孢量大ꎮSMF2菌落直径达7.69cmꎬ是T39的1.25倍(表1)ꎬ产孢量为2.64ˑ1010个/皿ꎻT39菌落直径为6.16cmꎬ产孢量为3.86ˑ1010个/皿ꎮ在CDA㊁OMA㊁BCM培养基上ꎬ二者生长状况较好ꎬT39的产孢量是SMF2的1.27~6.55倍(表1)ꎬ且T39在CDA上的产孢量高达4.58ˑ1010个/皿ꎮ上行图为SMF2ꎬ下行图为T39ꎬ下同ꎻ从左至右依次为PDA㊁CDA㊁OMA㊁BCM㊁MEAꎮ图1㊀不同培养基条件下两种木霉培养结果比较图2㊀不同培养基对两种木霉菌丝生长和产孢量的影响㊀㊀表1㊀不同培养基下SMF2与T39生物量的倍数比较指标PDACDAOMABCMMEA菌落直径1.251.050.971.090.84产孢量1.466.551.272.010.88㊀㊀注:表中菌落直径的倍数为SMF2/T39ꎬ产孢量的倍数为T39/SMF2ꎬ下同ꎮ㊀㊀综合菌丝生长速度㊁产孢量和培养性状ꎬPDA为SMF2菌株生长发育的最佳培养基ꎬCDA为T39的最佳培养基ꎮT39菌株的产孢能力明显大于SMF2ꎮ2.2㊀不同温度对两种木霉菌丝生长和产孢能力的影响由图3可知ꎬ两种木霉在25~35ħ范围内菌丝生长旺盛ꎬ呈辐射状ꎬ菌落致密ꎬ在整个培养基上密布成堆ꎮ当培养温度ɤ20ħ或高达40ħ时ꎬ两种木霉生长状况均较差ꎬ菌丝稀薄ꎬ产孢量少ꎮ由图4可知ꎬ供试温度范围内ꎬ随着温度升高ꎬ两种木霉的菌落直径和产孢量均呈现先升高后降低的变化ꎮSMF2的菌落直径和产孢量拐点均出现在35ħꎬ菌落直径最大达8.75cmꎬ是T39的1.29倍(表2)ꎬ产孢量最高达61.06ˑ10885㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀山东农业科学㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀第55卷㊀个/皿ꎻ而T39的菌落直径拐点出现在25ħꎬ最大达8.35cmꎬ产孢量拐点出现在30ħꎬ最高达206.46ˑ108个/皿ꎮ5~30ħ范围内ꎬ同一温度下ꎬT39的产孢能力强于SMF2ꎬ前者的产孢量是后者的1.11~23.83倍(表2)ꎻ而35~40ħ时ꎬT39的产孢能力低于SMF2ꎬ后者的产孢量是前者的1.06~1.96倍ꎮ从左至右依次为5㊁10㊁15㊁20㊁25㊁30㊁35㊁40ħꎮ图3㊀不同温度条件下两种木霉培养结果比较㊀㊀表明两种木霉在最适培养温度上有差异ꎬSMF2的菌丝生长和产孢最适温度均为35ħꎬT39的菌丝生长最适温度为25~30ħꎬ产孢最适温度为30ħꎮ相同温度下T39产孢量整体较高ꎮ图4㊀不同温度条件下两种木霉菌丝生长和产孢量比较㊀㊀表2㊀不同温度条件下SMF2与T39生物量的倍数比较指标5ħ10ħ15ħ20ħ25ħ30ħ35ħ40ħ菌落直径0.901.492.241.210.930.981.290.94产孢量1.171.114.003.7023.8313.620.510.952.3㊀不同光照对两种木霉菌丝生长和产孢能力的影响图5显示ꎬSMF2㊁T39在3种不同光照条件下均能正常生长ꎬ菌落致密ꎬ菌丝呈辐射状ꎬ生长旺盛ꎮ二者在全光照条件下产孢最多ꎬ光暗交替条件下次之ꎬ全黑暗条件下最少ꎮ由图6可知ꎬ不同光照条件下ꎬSMF2㊁T39的菌落直径范围分别为6.31~8.13㊁5.75~6.67cmꎬ且菌落直径均在全黑暗条件下达到最大ꎬ全光照条件下次之ꎬ光暗交替条件下最小ꎮSMF2菌丝生长较快ꎬ是T39的1.05~1.22倍(表3)ꎮ从左到右依次为全光照㊁光暗交替㊁全黑暗ꎮ图5㊀不同光照条件下两种木霉培养结果比较T39㊁SMF2产孢量均在全光照条件下达到最大ꎬ分别为33.83ˑ108㊁9.50ˑ108个/皿ꎻ不同光照条件下ꎬT39的产孢量为SMF2的2.45~4.14倍(表3)ꎮ表明光照条件能够有效增加二者的产孢量ꎬ且同一光照条件下ꎬT39产孢量明显高于SMF2ꎮ图6㊀不同光照条件下两种木霉菌丝生长和产孢量比较95㊀第8期㊀㊀㊀㊀㊀赵晓彤ꎬ等:不同培养条件对长枝木霉SMF2和哈茨木霉T39生长与产孢的影响㊀㊀表3㊀不同光照条件下SMF2与T39生物量的倍数比较指标全光照光暗交替全黑暗菌落直径1.051.101.22产孢量3.562.454.142.4㊀不同pH值对两种木霉菌丝生长和产孢能力的影响图7显示ꎬ两种木霉在pH值为4~11条件下均可生长ꎬ菌落相对致密ꎬ菌丝生长比较旺盛ꎬ孢子均匀密布整个培养基ꎻ但极强的酸㊁碱环境即pH值为3㊁12条件下ꎬ二者生长状况较差ꎬpH值为12条件下菌丝生长缓慢ꎬ菌落较小ꎬ产孢量较少ꎻpH值为3条件下由于酸性过大ꎬ培养基无法凝固ꎬ两种菌生长缓慢ꎬ产孢极少ꎮ从左到右依次为pH=3㊁4㊁5㊁6㊁7㊁8㊁9㊁10㊁11㊁12ꎮ图7㊀不同pH值条件下两种木霉培养结果比较㊀㊀由图8可知ꎬpH值为4~11条件下ꎬSMF2㊁T39的菌丝生长和产孢量存在明显差异ꎮSMF2的菌落直径范围为6.51~8.45cmꎬpH值为9时菌落直径最大ꎻT39的菌落直径范围为4.95~7.48cmꎬpH值为4时菌落直径最大ꎬ且随pH值增大整体呈减小趋势ꎮpH值为4~5时ꎬT39的菌丝生长比较快ꎬ其菌落直径是SMF2的1.07~1.15倍ꎻpH值为6~11时ꎬSMF2的菌丝生长比较快ꎬ其菌落直径是T39的1.17~1.59倍(表4)ꎮpH值为4~11条件下ꎬSMF2的产孢量为(0.46~2.91)ˑ1010个/皿ꎬpH值为7时孢子量最多ꎻT39的产孢量为(1.48~5.22)ˑ1010个/皿ꎬpH值为6时孢子量最多ꎮ相同pH值下T39的产孢量是SMF2的1.25~4.20倍(表4)ꎮ表明中性偏碱环境有利于SMF2的生长和繁殖ꎬ其菌丝生长和产孢的最适pH值分别为9和7ꎻ偏酸条件则更有利于T39的生长发育ꎬ其菌丝生长和产孢的最适pH值分别为4和6ꎮ图8㊀不同pH值条件下两种木霉菌丝生长和产孢量比较㊀㊀表4㊀不同pH值条件下SMF2与T39生物量的倍数比较指标3456789101112菌落直径1.290.870.931.241.171.211.591.231.541.34产孢量4.893.684.203.131.251.321.761.931.431.172.5㊀不同碳源对两种木霉菌丝生长和产孢能力的影响图9显示ꎬ两种木霉在无碳培养基上可产孢ꎬ从左到右依次为无碳㊁果糖㊁阿拉伯糖㊁海藻糖㊁麦芽糖㊁蔗糖㊁乳糖㊁可溶性淀粉㊁微晶纤维素ꎮ图9㊀不同碳源条件下两种木霉培养结果比较06㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀山东农业科学㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀第55卷㊀但产孢量较少㊁生长较差ꎬ菌落直径相对较小ꎬ菌丝稀疏ꎻ在其他碳源培养基上菌丝生长均较旺盛ꎬ产孢量大ꎬ呈辐射状ꎬ分生孢子密布于菌落上ꎮ不同碳源处理下两种木霉的生长发育状况较无碳对照均明显提高ꎬ表明其对碳源的要求不严格ꎬ但对单糖(果糖㊁阿拉伯糖)的利用效果优于双糖(海藻糖㊁麦芽糖㊁蔗糖㊁乳糖)和多糖(可溶性淀粉㊁微晶纤维素)ꎮ微晶纤维素由于自身溶解性较差ꎬ以其为碳源时ꎬ菌丝生长和产孢能力不理想ꎬ但其生长发育状况仍优于无碳对照ꎮ由图10可知ꎬ无碳条件下ꎬSMF2和T39菌落直径均低于5cmꎬ产孢量不超过1.00ˑ1010个/皿ꎮ不同碳源处理下ꎬSMF2的菌落直径为5.16~7.71cmꎬ产孢量为(0.95~1.62)ˑ1010个/皿ꎬ分别是无碳培养基的1.06~1.59㊁2.71~4.63倍ꎻT39的菌落直径为4.20~5.62cmꎬ产孢量为(1.56~2.50)ˑ1010个/皿ꎬ与无碳培养基相比ꎬ前者产孢量是后者的1.68~2.69倍ꎬ菌落直径的倍数关系在1.01~1.36之间ꎬ差异较小ꎮ阿拉伯糖为SMF2和T39菌丝生长的最适碳源ꎬ果糖为二者产孢的最佳碳源ꎮ由表5可知ꎬ不同碳源条件下ꎬSMF2的菌丝生长较快ꎬ菌落直径是T39的1.23~1.47倍ꎻT39的产孢能力明显大于SMF2ꎬ前者是后者的1.10~1.64倍ꎮ图10㊀不同碳源条件下两种木霉菌丝生长和产孢量比较㊀㊀表5㊀不同碳源条件下SMF2与T39生物量的倍数比较指标无碳果糖阿拉伯糖海藻糖麦芽糖蔗糖乳糖可溶性淀粉微晶纤维素菌落直径1.171.471.371.441.411.331.331.351.23产孢量2.651.541.421.521.551.461.101.551.642.6㊀不同氮源对两种木霉菌丝生长和产孢能力的影响图11显示ꎬ无氮条件下ꎬ两种木霉的孢子肉眼几乎不可见ꎮ相比较无氮对照ꎬ两种木霉在以蛋白胨㊁酵母浸膏㊁牛肉膏㊁甘氨酸为氮源的培养基上生长良好ꎬ菌丝致密ꎬ产孢量较多ꎻ而在其他氮源培养基中ꎬ菌丝稀薄ꎬ产孢量少ꎬ生长㊁产孢均不理想ꎮ从左到右依次为无氮㊁蛋白胨㊁牛肉膏㊁酵母浸膏㊁甘氨酸㊁硝酸钠㊁硫酸铵㊁氯化铵ꎮ图11㊀不同氮源条件下两种木霉培养结果比较㊀㊀由图12可知ꎬ不同氮源条件下两种木霉的菌丝生长差异明显ꎮ在以有机氮(蛋白胨㊁牛肉膏㊁酵母浸膏)㊁氨基酸态氮(甘氨酸)为氮源的培养基上生长速率均快于铵态氮(硫酸铵㊁氯化铵)和硝态氮(硝酸钠)ꎮ在有机氮㊁氨基酸态氮为氮源的培养基上菌落直径为4.28~7.69cmꎬ在其他氮源培养基上的菌落直径仅为0.92~1.87cmꎮ其中ꎬSMF2在有机氮㊁氮基酸态氮㊁硝态氮为氮源的培养基上菌落直径大于T39ꎬ前者是后者的1.03~1.39倍(表6)ꎮ16㊀第8期㊀㊀㊀㊀㊀赵晓彤ꎬ等:不同培养条件对长枝木霉SMF2和哈茨木霉T39生长与产孢的影响无氮条件下ꎬSMF2和T39的菌落直径分别为3.72㊁4.72cmꎬ产孢量为9.17ˑ108㊁73.75ˑ108个/皿ꎮ不同有机氮源条件下ꎬSMF2产孢量达到(304.38~528.33)ˑ108个/皿ꎬT39产孢量达到(91.88~159.38)ˑ108个/皿ꎬSMF2的产孢量是T39的2.94~5.69倍ꎻ而以硝态氮和铵态氮为氮源时ꎬT39的产孢能力增强ꎬ其产孢量是SMF2的2.73~4.68倍(表6)ꎮ㊀㊀表6㊀不同氮源条件下SMF2与T39生物量的倍数比较指标无氮蛋白胨牛肉膏酵母浸膏甘氨酸硝酸钠硫酸铵氯化铵菌落直径0.791.391.051.031.061.160.860.81产孢量8.050.180.300.340.434.683.062.73㊀㊀添加有机氮源培养基的SMF2和T39菌落直径㊁产孢量分别是无氮源添加的1.11~2.07㊁1.25~57.64倍ꎮ且两种木霉的菌落直径和产孢量均在有机氮源培养基中达到最大值ꎬ其菌落直径和产孢量的最佳氮源分别为酵母浸膏和牛肉膏ꎬ表明二者对有机氮源的利用情况优于其他氮源ꎮ图12㊀不同氮源条件下两种木霉菌丝生长和产孢量比较3㊀讨论培养基㊁温度㊁光照㊁酸碱度㊁碳源和氮源均对木霉菌的菌丝生长和孢子形成有不同影响ꎮ3.1㊀不同培养基对两种菌培养的影响培养基是微生物学研究和微生物发酵工业的基础ꎬ其营养组成直接影响微生物生长发育ꎮ目前培养木霉菌常用的培养基有PDA㊁CDA㊁MEA㊁PSA㊁糖浆培养基㊁玉米粉葡萄糖培养基㊁小麦汁培养基和玉米培养基[16]等ꎮ马铃薯是PDA的重要组分ꎬ含有丰富的B族维生素㊁纤维素㊁微量元素㊁氨基酸㊁蛋白质㊁脂肪和优质淀粉等营养元素ꎬ为微生物生长提供充裕碳源㊁氮源㊁维生素和无机盐ꎻ葡萄糖是活细胞的能量来源和新陈代谢的中间产物ꎬ能够提供优质碳源ꎮCDA中葡萄糖和天门冬酰胺为重要的碳源㊁氮源ꎬ含量较高的氯化钠具有抑制细菌和减缓毛霉生长的作用ꎬ其他成分则提供必需离子ꎻOMA中的燕麦含有丰富的蛋白质㊁脂肪㊁淀粉㊁微量元素和膳食纤维ꎬ是氮源㊁碳源和微量元素等的重要来源ꎻBCM中的牛肉膏和蛋白胨为碳源㊁氮源㊁磷酸盐和维生素的主要来源ꎬ氯化钠则提供无机盐ꎮ有研究表明ꎬ长枝木霉T05在PDA㊁MEA㊁CDA㊁BCM上都能生长ꎬ且菌丝在PDA上生长最快[17]ꎻ哈茨木霉TH-1分别在PDA㊁MEA㊁CDA㊁BCM上培养均能产孢ꎬ其中PDA为最适培养基[12]ꎮ本试验中PDA㊁CDA㊁OMA㊁BCM四种培养基因营养成分丰富ꎬ成为SMF2和T39菌丝生长及孢子繁殖的适宜培养基ꎬ以PDA和CDA最佳ꎬ而MEA培养基成分单一ꎬ除凝固剂琼脂外ꎬ仅含有麦芽糖ꎬ故两种木霉在其上生长发育不理想ꎮ这与前人研究结果大体一致ꎬ进一步证明木霉菌株对营养环境的广泛适应性ꎮ3.2㊀不同温度对两种菌培养的影响木霉菌是一种嗜温真菌ꎬ棘孢木霉PZ6在15~37ħ均能生长ꎬ25~37ħ菌丝生长较好ꎬ以30ħ菌丝生长最快[16]ꎻ长枝木霉HQ1㊁非洲哈茨木霉BB12菌株适宜培养温度为28~33ħ[18]ꎮ本试验中T39㊁SMF2在25~35ħ范围内生长发育良好ꎻ在高温(40ħ)或低温(20ħ及以下)环境条件下ꎬ由于没有达到木霉菌生长发育的起点温度或有效积温积累不足ꎬ或者环境温度过高导致菌体内蛋白质㊁核酸等重要组成物质遭受不可逆的破坏ꎬ致使其生长较差ꎮ3.3㊀不同光照对两种菌培养的影响光为木霉菌菌丝生长和孢子形成提供能量ꎮ光照对哈茨木霉TH-1菌丝生长影响不大但明显影响菌株产孢量ꎬ光照时间越长产孢量越大[12]ꎻ全黑暗条件有利于长枝木霉GAASL3-1-0.8菌丝的营养生长ꎬ而光暗交替条件则对产孢有利[19]ꎬ即光照可以促进分生孢子产生ꎮ本试验中26㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀山东农业科学㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀第55卷㊀T39㊁SMF2在全光照㊁光暗交替㊁全黑暗3种条件下均可正常生长ꎬ全黑暗条件对菌丝生长更为有利ꎬ而全光照条件对产孢更有利ꎮ这与前人的研究结果相吻合ꎬ且相同光照条件下ꎬ长枝木霉SMF2菌丝生长较快ꎬ而哈茨木霉T39产孢量更大ꎮ3.4㊀不同pH值对两种菌培养的影响pH值不仅通过影响真菌体内的酶活性而影响酶促反应效率ꎬ而且还通过影响膜结构稳定性和细胞质膜的通透性而影响其对营养物质的吸收ꎮ有研究表明ꎬ棘孢木霉PZ6最适生长和产孢的pH值为5~9[16]ꎻ哈茨木霉Th-81㊁短密木霉(T.brevicompactum)Tb-50和长枝木霉T1-70在pH值为2~7时均能生长ꎬ最适生长的pH值为4[20]ꎮ本试验中ꎬT39㊁SMF2对酸碱度的适应性较强㊁范围较广ꎬ在pH值为4~11条件下均生长较好ꎬ且中性至弱碱性(pH值7~9)为SMF2培养的最佳酸碱条件ꎬ其菌丝生长㊁产孢最适pH值分别为9和7ꎻT39培养的最佳酸碱条件为弱酸和偏酸(pH值4~6)ꎬ其菌丝生长㊁产孢最适pH值分别为4和6ꎮ3.5㊀不同碳源对两种菌培养的影响碳源物质是真菌生长的碳素来源ꎮ木霉菌对单糖㊁双糖㊁多糖㊁嘌呤㊁嘧啶和氨基酸等的利用效果均较好[21]ꎮ不同木霉菌其最适碳源有所差异ꎬ长枝木霉GAASL3-1-0.8以葡萄糖㊁麦芽糖㊁果糖和乳糖为碳源时ꎬ菌丝生长和产孢较好ꎬ葡萄糖为最适碳源[19]ꎻ木糖㊁果糖和蔗糖有利于哈茨木霉T21的菌丝生长和产孢ꎬ木糖为最适碳源[22]ꎮ本试验中ꎬSMF2和T39在无碳源添加的培养基中虽能生长ꎬ但其菌丝质量和产孢量均不理想ꎮ碳源的加入提供了必要的营养物质ꎬ提升其生长发育质量ꎮ微晶纤维素主要成分为以β-1ꎬ4-葡萄糖苷键结合的直链式多糖类物质ꎬ由于自身不易溶解致使碳源的促生作用较差ꎮ单糖(果糖㊁阿拉伯糖)补充热能的效果比双糖㊁多糖更快ꎬ故以果糖和阿拉伯糖为碳源时SMF2和T39的生长发育最优ꎬ且SMF2的菌丝生长优于T39ꎬ但T39的产孢能力更强ꎬ这可为二者混合使用以防治病害提供理论基础ꎮ3.6㊀不同氮源对两种菌培养的影响氮源是真菌生长的重要氮素来源ꎬ主要用于合成蛋白质等含氮物质ꎬ有助于产孢ꎮ有机氮源像蛋白胨㊁牛肉膏和酵母浸膏等成分复杂㊁营养丰富ꎬ微生物在其培养基中常表现出生长旺盛㊁菌体增长迅速等特点ꎮ有研究表明ꎬ蛋白胨和酵母膏分别为长枝木霉T05和GAASL3-1-0.8营养生长和产孢的最适氮源[17ꎬ19]ꎬ哈茨木霉T21在以牛肉膏为氮源的培养基中菌丝生长和产孢最优[22]ꎮ氨基酸态氮(甘氨酸)存在于土壤蛋白质和多肽类化合物中ꎬ降解后只释放出相应的氨基酸为微生物生长发育提供单一营养ꎻ硝态氮和铵态氮为无机氮源(硫酸铵㊁氯化铵㊁硝酸钠)ꎬ易被菌体直接利用ꎬ促进菌体生长ꎬ但与有机氮源相比ꎬ因其成分简单㊁缺乏营养物质㊁利用效率低致使木霉菌菌丝稀薄㊁产孢量较少ꎮ因此ꎬ相比于氨基酸态氮㊁硝态氮和铵态氮ꎬSMF2和T39在以有机氮(蛋白胨㊁牛肉膏㊁酵母浸膏)为氮源的培养基中生长发育更优ꎬ有机氮源为SMF2和T39生长发育的适宜氮源ꎬ这与前人的研究结果一致ꎮ且SMF2和T39对氮源的要求相较于碳源而言更严格ꎮ4㊀结论本研究结果表明ꎬSMF2和T39具有广泛的适应性ꎬ对环境条件要求不严格ꎬ在常温㊁黑暗㊁非强酸强碱㊁含有碳源和有机氮源的条件下ꎬ二者的菌丝生长和孢子形成状况均较为优良ꎮ光照㊁果糖㊁牛肉膏更有利于二者孢子形成ꎻPDA和CDA最适宜产孢ꎻ且二者对氮源的要求相较于碳源而言更严格ꎬ两种木霉在无碳条件下可产孢ꎬ但产孢量较少ꎬ而在无氮条件下孢子肉眼几乎不可见ꎮSMF2和T39在添加碳源培养基中的菌落直径㊁产孢量是无碳源添加的1.01~1.59㊁1.68~4.63倍ꎬ而在添加有机氮源培养基中的菌落直径㊁产孢量是无氮源添加的1.11~2.07㊁1.25~57.64倍ꎮ相同条件下ꎬSMF2菌丝生长较快ꎬ而哈茨木霉T39产孢能力更高ꎮ35ħ㊁pH值为7时最利于SMF2产孢ꎬ而30ħ㊁pH值为6时最利于T39产孢ꎮ人工扩繁时ꎬ可通过调节环境温度和培养基酸碱度调控SMF2㊁T39的产孢情况ꎻ有机氮和单糖更有利于SMF2和T39菌丝生长和孢子形成ꎮ36㊀第8期㊀㊀㊀㊀㊀赵晓彤ꎬ等:不同培养条件对长枝木霉SMF2和哈茨木霉T39生长与产孢的影响参㊀考㊀文㊀献:[1]㊀王永阳ꎬ杜佳ꎬ高克祥.苦瓜枯萎病生防木霉的筛选鉴定及其定殖的qPCR检测[J].山东农业科学ꎬ2018ꎬ50(8):110-115.[2]㊀RanimolGꎬThulasiVꎬShijiGꎬetal.ProductionoflaccasefromTrichodermaharzianumanditsapplicationindyedeco 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平菇菌糠培养哈茨木霉对植物生长的促进作用
第46卷第7期东 北 林 业 大 学 学 报Vol.46No.72018年7月JOURNALOFNORTHEASTFORESTRYUNIVERSITYJul.20181)吉林省科技发展计划项目(20150411005);天津港集团有限公司项目(2016-89)。
第一作者简介:温瑞成,男,1996年4月生,吉林农业大学生命科学学院,本科生。
E-mail:1217921581@qq.com。
通信作者:程志强,吉林农业大学资源与环境学院,副教授。
E-mail:czq5974@163.com。
收稿日期:2017年11月27日。
责任编辑:程 红。
平菇菌糠培养哈茨木霉对植物生长的促进作用1)温瑞成 蔡静波 李芮 程志强 张建峰 董浩(吉林农业大学,长春,130118) 摘 要 以废弃的平菇(Pleurotusostreatus)菌糠作为培养哈茨木霉的基质,通过筛选最适培养条件及成分优化获得发酵产物并进行成分分析,采用萌发试验和盆栽试验研究其对拟南芥(Arabidopsisthaliana)和烟草(Nicotianatobacum)生长的促进作用。
结果表明:哈茨木霉的最佳培养条件为,接种量1.5×108个·mL-1,料液比1.0g∶1.5mL,初始pH=6,培养温度24℃,发酵时间12d。
另外,向菌糠中补充一定量氮源以及微量元素可以促进哈茨木霉的产孢量。
拟南芥和烟草种子分别在20倍和10倍的稀释菌糠发酵液中萌发效果最好,活力指数分别为15.61和20.49;利用发酵物栽培的拟南芥、烟草植株的株高和茎粗等生物量指标显著增加。
关键词 菌糠;哈茨木霉;发酵物;产孢量;菌肥分类号 S625.5+4;Q815PromotingEffectofOysterMushroomSubstratumCultureTrichodermaharzianumonPlantGrowth//WenRuicheng,CaiJingbo,LiRui,ChengZhiqiang,ZhangJianfeng,DongHao(JilinAgriculturalUniversityCollege,Changchun130118,P.R.China)//JournalofNortheastForestryUniversity,2018,46(7):67-72.TheabandonedPleurotusostreatusbranwasusedasthesubstrateforthecultivationofTrichodermaharzianum.Thefermentationproductwasoptimizedbythecultureconditionsandcomposition.GerminationexperimentandpotexperimentwerecarriedouttostudytheArabidopsistobaccogrowthrole.Theoptimumconditionswereasfollows:theinoculationamountwas1.5×108,theratioofmaterialtoliquidwas1.0g∶1.5mL,theinitialpHwas6,theculturetemperaturewas24℃,andthefermentationtimewas12d.AddingacertainamountofnitrogensourceandtraceelementtoitsgrowthcanpromotethesporulationofT.harzianum.Arabidopsisthalianaandtobaccoseedshadthebestgerminationeffectin20 folddilutionand10 folddilutionfermentationbroth,withthevigorindexesof5.61and20.49,respectively,anditscultivationofarabi dopsis,andtobaccoplantbiomasswerealsoincreasedsignificantly.Keywords Mushroomsubstratum;Trichodermaharzianum;Fermentation;Sporeconcentration;Microbialfertilizer 长期以来,对于植物病害以及生长状况不佳的情况,人们往往依赖于施用大量的农药和化肥来解决问题。
分批发酵和补料分批发酵生产木霉素的研究
!&4 !#"$FE $2"%H: %G"5@: 0$"5IE G1"&J: !&2"#K: !1%"1L: !$&"#M: !$&"1MB !$&"&MB !1G"2M: 注:不同大写字母表示同行数据差异显著 ( ! / &"&%) , 不同小写字母表示同列数据差异显著 ( ! / &"&%) 。下同。 O9A?:PB<;?= Q*A3 D*CC?’?+A :BR*AB< <?AA?’= *+ A3? =B)? <*+? B+D D*CC?’?+A =)B<< <?AA?’= *+ A3? =B)? :9<;)+ B’? =*6+*C*:B+A<S D*CC?’?+A BA &"&% <?T?<,’?=R?:A*T?<SU V3? =B)? E?<9QU
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哈茨木霉H-13培养条件的优化
基础 培养基 中的葡萄糖 , 配成不 同碳 源 的培养 基在 上述 最 佳生 长条 件下 培养菌 株 , 以基 础 培养 基 为对 照 , 观察 测 量
菌落 直径ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ和产孢量 。
表 2 正交组合及其产孢量和菌落直径 的测定
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学仪 器有 限公 司 ) D P一 02型 电热 恒 温 培养 箱 ( 海 、H 98 上
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112 试 剂 .. 均为 分析纯 试剂 1 1 3 主要仪 器 x P C .. S 8 E型 生物 显 微 镜 ( 海 长 方 光 上
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菌 水将 孢子洗 下 , 1 l 子悬 浮 液 , 血 球计 数 板测 定 取 m孢 用 孢 子数 。
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哈茨木霉T-aloe防治小麦赤霉病潜能及发酵条件优化
庞 丽,宋昊跃,王春迪,等.哈茨木霉T-aloe防治小麦赤霉病潜能及发酵条件优化[J].江苏农业科学,2023,51(23):132-140.doi:10.15889/j.issn.1002-1302.2023.23.020哈茨木霉T-aloe防治小麦赤霉病潜能及发酵条件优化庞 丽1,2,宋昊跃1,2,王春迪2,赵薛红2,安慧敏2,库园冉2,王彩芳2,张建夫3,葛红莲2,张福丽1,2(1.三峡大学生物技术研究中心/三峡区域植物遗传与种质创新湖北省重点实验室,湖北宜昌443000;2.周口师范学院生命科学与农学学院,河南周口466000;3.周口师范学院化学化工学院,河南周口466000) 摘要:对哈茨木霉T-aloe促进小麦生长和防治小麦赤霉病的潜能进行分析,并对其液体发酵条件进行优化。
通过平板对峙试验发现,T-aloe能够抑制小麦赤霉病原菌PH-1生长,抑菌率为72.38%。
通过温室试验发现,T-aloe可以促进小麦幼苗生长,提高小麦的抗病性。
在无小麦赤霉病菌胁迫下,T-aloe提高小麦幼苗的株高、根长和叶片含水量,其中叶片含水量提高1.01倍,株高和根长分别提高16.7%和16.2%。
在小麦赤霉病菌胁迫下,T-aloe提高小麦体内抗氧化酶POD和CAT活性28.17%和39.33%,同时降低了MDA和游离脯氨酸含量34.26%和25.71%。
通过田间试验发现,T-aloe对小麦赤霉病的防治效果达到了68.42%,且高于阳性对照霉灵。
通过正交试验发现,糖蜜-酵母膏培养基为T-aloe液体发酵产孢的最优培养基,最佳培养基条件为:培养温度32℃、接种量5%、转速180r/min,产孢量可达1.82×108CFU/mL,比优化前提高64.91%。
综上所述,哈茨木霉T-aloe是1株既能促进小麦生长又能防治小麦赤霉病的优势菌株。
为了哈茨木霉T-aloe进一步商业化应用,对发酵条件进行优化,提高哈茨木霉T-aloe的产孢量,为哈茨木霉T-aloe的应用提供理论依据和奠定基础。
不同培养条件对哈茨木霉菌抑制串珠镰刀菌能力的影响
不同培养条件对哈茨木霉菌抑制串珠镰刀菌能力的影响引言串珠镰刀菌(Fusarium graminearum)是一种重要的植物病原真菌,能够感染小麦、玉米等作物,引起严重的病害。
而哈茨木霉菌(Trichoderma harzianum)被广泛认为是一种具有很强生防功能的真菌,其菌丝能够产生抑制类似串珠镰刀菌这样的病原真菌的特殊代谢物质。
了解哈茨木霉菌在不同培养条件下对串珠镰刀菌的抑制能力对于植物病害的防治具有重要的理论与应用价值。
材料与方法1. 材料:哈茨木霉菌(Trichoderma harzianum)和串珠镰刀菌(Fusarium graminearum)。
2. 实验设计:分别在不同的培养条件(温度、pH值、培养基成分)下,进行哈茨木霉菌对串珠镰刀菌的抑制实验。
3. 培养条件:将不同的培养条件进行分组处理,如温度分别为25℃、30℃、35℃;pH值分别为5.5、6.0、6.5;培养基成分包括葡萄糖、蛋白胨等。
4. 实验方法:分别向含有串珠镰刀菌的琼脂平板上均匀涂抹哈茨木霉菌孢子悬液,观察不同条件下哈茨木霉菌对串珠镰刀菌的抑制情况。
结果与讨论在不同的培养条件下,哈茨木霉菌对串珠镰刀菌的抑制能力存在较大差异。
在25℃下,哈茨木霉菌对串珠镰刀菌的抑制效果明显优于30℃和35℃,提示较低的温度有利于哈茨木霉菌的生长和生防代谢产物的产生。
在不同pH值下,哈茨木霉菌对串珠镰刀菌的抑制效果随pH值的升高而下降,表明酸性条件有利于哈茨木霉菌的生防活性。
在不同培养基成分下,哈茨木霉菌对串珠镰刀菌的抑制效果也存在差异,不同成分可能影响到哈茨木霉菌生防代谢产物的产生或释放。
这些结果表明,不同培养条件下哈茨木霉菌对串珠镰刀菌的抑制能力受到温度、pH值和培养基成分的影响,为我们理解和提高哈茨木霉菌的生防作用提供了重要的参考。
结论哈茨木霉菌是一种具有生防潜力的真菌,在不同的培养条件下对串珠镰刀菌的抑制能力存在差异。
在实际的生产实践中,可以根据不同的环境条件和作物生长周期,合理调控哈茨木霉菌的生长环境,从而提高其生防效果,减少植物病害的发生。
不同条件对哈茨木霉菌株Th-B菌丝生长的影响
不同条件对哈茨木霉菌株Th-B菌丝生长的影响
李栎;何月秋;苏春丽
【期刊名称】《云南农业大学学报》
【年(卷),期】2004(019)006
【摘要】对木霉菌Th-B的生长温度、pH范围、碳氮营养要求以及对6种常用化学杀菌剂的耐受程度进行了研究.结果表明,该菌株在15~35 ℃下均能生长,其最适生长温度为25~30 ℃;在pH 5~8之间均能生长,最适的pH范围为5~6; 蔗糖、甘露糖、葡萄糖、木糖和淀粉有利于菌丝生长,而麦芽糖和D-半乳糖较差.在7种氮源中,胰蛋白胨和硫酸铵为最适氮源,而尿素不利于菌丝生长.6种化学杀菌剂不同有效浓度对其均有抑制作用,但在同一有效浓度下,速克灵对木霉菌株Th-B的抑制作用最大,菌核净、瑞毒霉和甲基托布津对其生长的抑制作用较小.
【总页数】4页(P677-680)
【作者】李栎;何月秋;苏春丽
【作者单位】云南农业大学植物保护学院,云南,昆明,650201;云南农业大学植物保护学院,云南,昆明,650201;云南农业大学植物保护学院,云南,昆明,650201
【正文语种】中文
【中图分类】S476.1
【相关文献】
1.发酵条件对木霉菌株T23的菌丝生长及几丁质酶活性的影响 [J], 吕淑霞;于晓丹;张彩霞;陈捷
2.哈茨木霉在不同条件下菌丝生长和产孢情况研究 [J], 周洪岩
3.不同碳氮源对平菇菌株新831菌丝生长的影响 [J], 王振河;武模戈;董自梅;武忠伟
4.不同营养因子和培养条件对草菇菌株V115菌丝生长的影响 [J], 王伟科;周祖法;袁卫东;闫静;陆娜
5.不同培养基对松口蘑及栎松口蘑不同菌株菌丝生长的影响 [J], 全雪丽;吴松权;傅伟杰;吴基日
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哈茨木霉发酵条件的初步研究
哈茨木霉发酵条件的初步研究张爱华,白石,周国兴,张连学3 (吉林农业大学中药材学院,吉林长春130118)摘要 [目的]了解哈茨木霉30371在自然情况下的培养条件。
[方法]将哈茨木霉30371的孢子悬液在液体培养基中摇床振荡培养,研究培养温度、pH 值、无机离子、各种碳源和氮源等条件对其生长的影响。
[结果]麦麸培养基中哈茨木霉30371的菌丝干重最高,其次是玉米粉培养基、P DA 培养基,豆饼粉培养基最低。
哈茨木霉30371在22~34℃下均能生长,22℃为其最适生长温度;在pH 值4.0~8.5均能生长,最适pH 值是5.5。
各因素对哈茨木霉30371生长的影响由大到小依次为:(NH 4)2S O 4>K H 2P O 4>MgS O 4·7H 2O >麦麸、豆饼粉。
[结论]哈茨木霉最适的发酵条件为:在麦麸培养基中培养,培养温度22℃,自然pH 值,2.00%麦麸,1.00%豆饼粉,1.00%(NH 4)2S O 4,0.25%MgS O 4·7H 2O,0.50%K H 2P O 4。
关键词 哈茨木霉;菌丝干重;液体培养中图分类号 S182 文献标识码 A 文章编号 0517-6611(2008)23-09821-02Prelim i nary Study on Ferm ent a tion Conditions of Trichoderm a ha rzianumZHANG A i 2hua et a l (College of Traditional Chinese Medicinal material,J ilin Agricultural University,Changchun,J ilin 130118)Abstract [Objective ]The study was to understand the culture conditi ons of Trichoder m a harzianum 30371under natural condition .[Meth 2od ]The s pore sus pension of T .harzianum 30371was put in liquid medium for shaking culture t o study the effects of culture conditi ons such as the temperature,pH value,inorganic ions,various carbon s ources and nitrogen s ources etc .on its growth .[Result]The mycelial dry weight of T .harzianum 30371was highest in wheat bran medium,the second was that in maize powder medium and PDA medium,the lowest was that in bean cake powder medium.T .harzianum 30371could gr ow under 22-34℃,and the op ti mum growth temperature was 22℃.It could grow under pH of 4.0-8.5,and the op ti m um pH was 5.5.The effects of these conditions on the gr owth of T .harzianum 30371from big t o s mall was (NH 4)2S O 4dosage >KH 2PO 4dosage >MgS O 4·7H 2O dosage >wheat bran and bean cake powder dosage .[Conclusi on ]The best suitable fer mentati on conditions of T .harzianum were:culturing in wheat bran medium,culture temperature of 22℃,natural pH,2.00%wheat bran, 1.00%bean cake powder, 1.00%(NH 4)2S O 4,0.25%MgS O 4·7H 2O and 0.50%KH 2P O 4.Key words T .harzianum ;D ry weight of mycelium;L iquid culture作者简介 张爱华(1978-),女,山东泰安人,博士,从事药用植物学研究。
哈茨木霉H-13产几丁质酶与纤维素酶液体发酵工艺的研究
哈茨木霉H-13产几丁质酶与纤维素酶液体发酵工艺的研究魏练平;李明江;王耸;蒋立科
【期刊名称】《江苏农业科学》
【年(卷),期】2011(039)004
【摘要】利用正交试验对哈茨木霉菌株H-13的液体发酵条件进行了优化,通过中试发酵与小试发酵的对比探讨了该工艺产业化的可行性,并对木霉发酵液酶活的保存条件进行了研究.结果表明,最佳产酶发酵条件为温度28℃,发酵时间72 h,起始pH值7.在此条件下进行中试发酵,可获得26 L发酵原液,其几丁质酶活力为256 U/mL,纤维素酶活力为482 U/mL.与小式发酵相比,两者在发酵程度、产孢量以及酶活方面均接近,表明该工艺稳定性好,可产业化.发酵产物酶活稳定性研究结果表明,添加4 g/L苯甲酸钠可有效减少发酵液保存过程中的酶活损失,在60d以内,发酵原液在低温情况下的几丁质酶活能保存88.36%左右,纤维素酶活也能保存70.67%以上.
【总页数】4页(P132-135)
【作者】魏练平;李明江;王耸;蒋立科
【作者单位】安徽农业大学生命科学学院,安徽合肥230036;安徽农业大学生命科学学院,安徽合肥230036;安徽农业大学生命科学学院,安徽合肥230036;安徽农业大学生命科学学院,安徽合肥230036
【正文语种】中文
【中图分类】Q55
【相关文献】
1.哈茨木霉高产几丁质酶菌株的筛选及产酶条件研究
2.响应面法优化小刺青霉16-7产纤维素酶液体发酵工艺
3.镰刀菌产纤维素酶液体发酵工艺研究
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不同培养条件对哈茨木霉菌抑制串珠镰刀菌能力的影响
不同培养条件对哈茨木霉菌抑制串珠镰刀菌能力的影响
哈茨木霉菌(Trichoderma harzianum)是一种常见的真菌,被广泛应用于生物防治和植物生长促进剂的制备中。
串珠镰刀菌(Fusarium oxysporum)是一种常见的植物病原菌,可引起多种作物的根腐病和叶枯病。
本文将探讨不同培养条件对哈茨木霉菌抑制串珠镰刀菌能力的影响。
影响真菌生长的温度和pH值是重要的因素之一。
研究表明,哈茨木霉菌最适宜的生长温度为25-30℃,最适宜的pH值为5-7。
在这个温度和pH范围内,哈茨木霉菌的生长速度较快,菌丝长度较长,能够更好地抑制串珠镰刀菌的生长。
而在较低或较高的温度和pH条件下,哈茨木霉菌的生长能力会受到限制,从而对串珠镰刀菌的抑制能力也会减弱。
培养基成分对真菌的生长和代谢活性也有重要影响。
在培养基中添加适量的碳、氮、矿质盐等营养物质可以促进哈茨木霉菌生长,提高其对串珠镰刀菌的抑制效果。
添加葡萄糖和酵母粉等碳源和氮源可以提高哈茨木霉菌的生物量和分生孢子的产量,进而增强其抑制串珠镰刀菌的能力。
添加适量的微量元素和维生素等也可以提高哈茨木霉菌的生长和代谢活性,增强其对串珠镰刀菌的抑制作用。
不同培养条件对哈茨木霉菌抑制串珠镰刀菌能力的影响是多方面的。
温度和pH值、培养基成分、氧气含量和水分都对哈茨木霉菌的生长和代谢活性起到重要作用。
在适宜的培养条件下,哈茨木霉菌能够更好地生长和发育,从而增强其对串珠镰刀菌的抑制能力,为生物防治和植物生长促进剂的开发和应用提供了科学依据。
高速逆流色谱法从哈茨木霉发酵液中分离纯化抑菌活性成分_沙莎
85
率(%)=(对照菌落生长直径−处理菌落生长直径)/(对照菌落生长直径−4 mm)×100% 。最后计算 EC50 及 EC90。 1.6 HPLC 分析 HSCCC 分离得到的组分 根据抑菌实验结果,用 HPLC 检测具有抑菌活性的组分,流动相见本文 1.3,乙腈 10%~95%线性梯 度洗脱,流速 1mL·min1,检测波长 210 nm,时间 30 min。检测到的单一化合物干燥后做活性测定(方法 同 1.5,甲醇作为溶剂对照)及结构鉴定,混合组分干燥后做以下制备。 1.7 HPLC 半制备 HSCCC 分离得到的混合组分 流动相同 1.5,将上述干燥后的混合样品溶解于 1 mL 甲醇中,作为上样液。HPLC 半制备,乙腈梯度 如下﹕0~5 min 50%~54%,5~8 min 54%,8~10 min 54%~56%,10~14 min 56%,14~17 min 56%~ 60%, 17~22 min 60%, 22~25 min 60%~70%, 25~30 min 70~50%, 流速 5 mL·min1, 检测波长 210 nm, 时间 30 min,手动收集。所得成分做活性测定(方法同 1.5,甲醇作为溶剂对照)。 1.8 化合物结构鉴定 用 FTICR 质谱仪及 NMR 仪鉴定单一化合物的结构。
1 材料与方法
1.1 菌株及培养条件 水稻纹枯病菌 T. cucmeris 作为指示菌,由浙江省生物计量及检验检疫技术重点实验室保藏。在 PDA 固体培养基上,25 ℃的培养箱中活化培养 2 d。 哈茨木霉 T. harzianum 从浙江省天目山的植物枸骨中分离得到[6]。培养条件同前期研究[9]。 1.2 实验仪器与试剂 TBE-300 高速逆流色谱仪(上海同田生物技术有限公司),NS-1007 恒流泵(北京天宝物华生物技术 有限公司),UV500-检测器(杭州天钊科技有限公司),N2000 色谱工作站(浙江大学智达信息工程有限 公司),BSZ-100 自动部分收集器(上海沪粤明科学仪器有限公司),HX-1050 恒温循环器(杭州蓝天仪 器有限公司)。 Varian HPLC 仪 (335DAD 检测器, 240 溶剂传输装置, 410 自动进样器) , AgiLent Zorbax EcLipse XDB C18 分析柱(150 mm×4.6 mm,3.5 μm),Agilent Zorbax EcLipse XDB C18 半制备柱(250 mm×9.4 mm, 5 μm)。Varian LC Ver.6.41 工作站。 Bruker Avance DMX-500 核磁共振(NMR)仪(1H,500MHz;13C,125MHz)。Bruker Apex III 傅里 叶变换离子回旋共振(FTICR)质谱仪。Bruker XMASS v6.1.1 工作站。用 FTICR 质谱仪及 NMR 仪鉴定 单一化合物的结构。 用于 HSCCC 的有机试剂均为分析纯,用于 HPLC 的乙腈及甲醇是色谱纯(均购自杭州汇普化工仪器 有限公司)。 1.3 乙酸乙酯提取液的制备及 HPLC 法分析 制备发酵液的乙酸乙酯提取液发酵方法同前期研究[9]。 5 L 发酵液用 1 L 乙酸乙酯进行萃取, 重复 5 次。 合并萃取液,用旋转蒸发仪减压浓缩至 30 mL 左右。取部分浓缩液冷冻干燥、称重,用于计算产量。 HPLC 分析的乙酸乙酯提取液:流动相为乙腈(加入 0.05%三氟乙酸)/水(加入 0.05%三氟乙酸) 。 1 乙腈 0%~100%线性梯度洗脱,流速 1mL·min ,检测波长 210 nm,时间 60 min。 1.4 HSCCC 法分离 由于不知道活性成分的极性, 最初采用 3 种两相溶剂体系, 分别为正己烷:乙酸乙酯:甲醇:水 (v/v/v/v) =2:5:2:5、4:5:4:5 和 7:3:5:5。取 4 mL 上述浓缩液溶解于 20 mL 上相及下相(v/v)=1:1 的混合液中作 为上样液。HSCCCC 恒温循环器的温度保持在 25 ℃。用上相(固定相)将柱充满后,开始泵入下相(流 动相),流度为 5 mL·min1,螺旋管转速 900 r·min1。当流动相开始流出,表示体系达到了流体动力学平 衡,此时通过手动进样阀上样,流速降为 2 mL·min1。210 nm 紫外检测,自动收集,每管 10 mL。分离结 束后,计算固定相的保留值[8,10]。 1.5 活性测定 HSCCC 分离得到的组分 用菌丝生长速率法测定 HSCCC 分离得到的组分对水稻纹枯病菌的毒性[11]。HSCCC 的流动相作为溶 剂对照。从每个试管中各取出 1 mL,分别加入到装有 30 mL PDA 液体培养基的锥形瓶中,高压蒸汽灭菌 后倒平板,待凝固后,将直径为 4 mm 的水稻纹枯病菌的菌块接于平板中间,每处理重复 3 次,于 25 ℃的 培养箱中培养。36 h 后测量菌落直径,计算每管分离得到的组分对水稻纹枯病菌的抑制率。菌丝生长抑制
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收稿日期:2009204205基金项目:浙江省自然科学基金项目(Y 3080238);浙江省重大科技项目(2006C12032)作者简介:申屠旭萍(1974-),女,硕士,讲师,E 2mail :stxp @ ;3通讯作者,博导。
哈茨木霉发酵产木霉素的培养条件优化申屠旭萍,石一,俞晓平3(中国计量学院生命科学学院,杭州310018)摘要:采用快速有效的数学统计方法对一株枸骨内生真菌哈茨木霉生产木霉素的培养条件进行了优化。
首先利用Plackett 2Burrman 设计在影响木霉素产量的6个因素中筛选出主效因素:葡萄糖浓度、发酵时间、接种量。
在此基础上,再利用响应面分析法对以上三个显著因子的最佳水平范围进行研究,建立并分析了各因子与木霉素产量关系的回归模型。
通过模型确定出最佳的试验条件:葡萄糖浓度4218g/L ,接种量1139ml 和发酵时间102188h ,该条件下木霉素的产量可达147144mg/L 。
经五批培养验证,预测值与验证试验平均值接近。
关 键 词:木霉素;哈茨木霉;优化;Plackett 2Burman 设计;响应面分析法中图分类号:S4821292;T Q92016文献标识码:A 文章编号:100529261(2009)0420348207Optimization of Conditions for Production of T richoderminby Trichoderma harzianumSHE NT U Xu 2ping ,SHI Y i 2jun ,Y U X iao 2ping 3(C ollege of Life Sciences ,China Jiliang University ,Hangzhou 310018,China )Abstract :Factorial design and response surface techniques were used to design and optimize the process to increase the yield of trichodermin produced by the Trichoderma har zianum ,an endophytic fungus is o 2lated from Llex cornuta.Initially ,Plackett 2Burman design was undertaken to evaluate the effects of the six factors and three statistically significant parameters including glucose ,fermentation time and inoculum size were selected.In the second phase of the optimization process ,a response surface methodology was used to optimize the above critical factors ,and to find out the optimal concentration levels and the rela 2tionships between these factors.By s olving the m odel ,the optimal batch fermentation conditions were de 2termined.Under conditions of glucose ,4218g/L ;inoculum size ,1139ml ;fermentation time ,102188h ,the yield of trichodermin reached 147144mg in 1L fermentation liquor.A fter five batches cultivation ,the predicted values were verified by validation experiments.K ey w ords :trichodermin ;Trichoderma har zianum ;optimization ;Plackett 2Burman design ;responsesurface methodology84325(4)348-354 中国生物防治 Chinese Journal of Biological C ontrol 2009年11月 第4期 申屠旭萍等:哈茨木霉发酵产木霉素的培养条件优化 木霉素(trichodermin)为单端孢霉烯类化合物的一种,因其对植物病原真菌有一定的抑制作用,在防治农作物病害中具有广阔的应用前景。
同时木霉素可抑制真核生物细胞(如人体宫颈癌传代细胞、兔子红血球细胞)内核糖体中肽键的形成,是一种蛋白质合成抑制剂。
国外在20世纪70年代就开始关注木霉素在医学方面的应用[1,2]。
木霉素还可以作为化学合成的前体物质[3]。
国外有文献报道从绿色木霉(Trichoderma viride)、木素木霉(T.lignorum)、肉座菌(Hypocrea austograndis)和树束梗孢菌(Dendrostilbella sp.)等多种真菌代谢产物中分离到木霉素[4~6]。
本研究组从浙江临安天目山采集的枸骨中分离筛选到一株活性内生真菌,经中国科学院微生物研究所鉴定为哈茨木霉(Trichoderma har zianum Rifai)。
通过对该内生真菌代谢产物的提取分离和结构鉴定研究,明确了主要抑菌活性成分为木霉素,并借助气相色谱仪建立了木霉素的检测方法[7,8],这是国内首次有关木霉素的文献报道。
但由于木霉素发酵单位很低,规模制备存在难度,无法满足多方面的需要。
因此,有必要对哈茨木霉的发酵条件进行优化,以提高木霉素的产量。
Plackett2Burman设计是一种两水平的试验设计方法,适用于从众多的考察因素中快速有效地筛选出最为重要的几个因素,供进一步研究使用[9]。
响应面分析法(Response Surface Method2 ology,RS M)[10]是一种寻找多因素系统中最佳条件的数学统计方法[8],这种方法已广泛地应用于微生物发酵条件的优化工作中[11~16]。
本研究拟在前期工作的基础上,先用Plackett2Burman试验设计筛选出影响哈茨木霉产木霉素的主要因素,然后利用Box2Behnken试验设计及响应面分析法对此进行优化。
1 材料与方法111 供试菌株哈茨木霉菌株由中国计量学院生物安全与食品科学研究所分离筛选得到,已在中国微生物菌种保藏管理委员会(CG MCC)保藏,保藏号为:CG MCC N o.1780。
112 培养基固体培养基(g/L):马铃薯200g、葡萄糖20g、琼脂20g、pH自然;发酵培养基(g/L):蛋白胨50g、牛肉浸膏10g、NH4Cl011g、MnCl2015g、葡萄糖30g。
113 培养方法采用摇瓶培养,250ml三角瓶中装量30ml液体发酵培养基,121℃高温灭菌20min,冷却至室温。
接入哈茨木霉孢子悬液1ml(1×107个/ml),28℃、180r/min条件下摇床培养。
114 分析方法将发酵液5000r/min离心15min,取上清液,经乙酸乙酯萃取,取上层,微膜过滤(0145μm)。
采用气相色谱法检测木霉素的含量。
条件为:色谱柱HP25弹性石英毛细管柱(以5%苯基甲基硅氧烷为固定液,30m×320μm×0125μm);检测器:氢火焰离子检测器(FI D),检测器温度270℃,进样口温度250℃;柱温度:程序升温,初始温度100℃,保持5min,以10℃/min升温至260℃保持5min;载气:氮气;流速115ml/min;不分流,以甲醇为溶剂。
115 试验设计11511 Plackett2Burman设计 根据哈茨木霉生长所需营养要素的基本原则和发酵影响因素的一般规律,结合前期试验,选用试验次数N=8的Plackett2Burman试验设计,考查了葡萄糖浓度943(A)、牛肉浸膏浓度(B)、接种量(C)、发酵时间(D)、pH值(E)、MnCl2用量(F)6个因素对木霉素发酵单位的影响,G为空白因素,每个因素取两水平,响应值为木霉素产量(Y),试验设计和各因素水平编码见表1和表2。
11512 响应面分析法试验设计 根据Box2Behnken中心组合设计原理设计了以葡萄糖(X1,g/ L)、孢子悬液接种量(X2,ml)和发酵时间(X3,h)为自变量,每个因素取3个水平。
按方程x i= (X i-X0)/△X对自变量进行编码(x i为自变量的编码值,X i为自变量的真实值,X0为试验中心点处自变量的真实值,△X为自变量的变化步长)。
利用软件Design2Expert61015分析。
2 结果与分析211 影响哈茨木霉产木霉素的重要因素按Plackett2Burman设计进行发酵试验,试验结果(表1)经S AS810分析和整理,各因素主效应分析结果见表2。
由表2可知,对木霉素产量有显著影响的因素为葡萄糖、发酵时间、接种量,并以此作为主要因素进行响应面优化试验。
表1 N=8的P lackett2Burm an试验设计及响应值试验号A B C D E F G Y(mg/L) 1+++-+--145133 2-+++-+-138112 3--+++-+140164 4+--+++-127194 5-+--+++107137 6+-+--++126178 7++-+--+136120 8-------105133表2 P lackett2Burm an试验设计各因素水平编码及影响效果编码因素水平T2test Prob>T显著性(-)(+)A葡萄糖(g/L)304571820010813B牛肉浸膏(g/L)101541598011365C接种量(m l)1113121927010491D发酵时间(h)96108101143010632E pH5621593012346F MnCl2(g/L)015017-41765011324212 响应面分析法(RSM)优化试验条件选用葡萄糖、发酵时间和孢子悬液接种量为自变量,采用Box2Benhnken试验设计进行3因素3水平的响应面分析试验,包括12个析因试验和3个中心试验(表3)。
表3 试验设计的因素水平及编码值变量代码编码水平未编码编码-10+1葡萄糖(g/L)X1x1304050接种量(m l)X2x21113116发酵时间(h)X3x388100112053 中国生物防治 第25卷 响应面优化回归分析模型为:Y i=c0+∑ni=1a i x i+∑nj≤ib ij x i x j,其中:Y i为预测响应值,即木霉素含量的预测值;x i和x j为自变量编码值;C0为常数项;a i为线性系数;b ij为二次项系数;n为因子数,本试验n为3。